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Biology Department, University of Illinois at Springfield
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Holland, P. J., George, A. M., Worrell, L. T. C., Landsberg, R. L. In vitro Electroporation of the Lower Rhombic Lip of Midgestation Mouse Embryos. J. Vis. Exp. (66), e3983, doi:10.3791/3983 (2012).
菱形の唇は神経管と第四脳室(1日)のroofplate間の接合部における後脳に位置して胚の神経上皮である。菱形リップはrhombomere 1(R1)を包含し、小脳の神経細胞と神経細胞の多様な脳幹系統2-4を生じさせる下菱形リップ(LRL)を生成し、上部菱形リップ(URL)に細分することができます。 LRL誘導体は、聴覚蝸牛神経核の神経細胞のバランスとモータ制御5-8制御に関与しているprecerebellar核のものが含まれています。 LRLから神経新生は、胚日(E)9.5から16.5 5、9を含む大規模な一時的なウィンドウの上に発生します。別の神経系統は、この神経ウィンドウの間に明確な発達日間分裂細胞(または生まれている)のようなLRLから出てくる。
遺伝子発現コンストラクトのエレクトロポレーションに使用することができLRL前駆細胞における遺伝子発現を操作し、潜在的にこの地域の10月12日から生産ニューロンの運命を変更することができます。胎生12.5日以降10日12月14日に生まれた系統を操作するための非常に成功しました。 子宮内エレクトロポで前のE12.5に子宮内エレクトロポレーションで経由してマウスのLRL前駆細胞の遺伝子発現を変更すると、ために主に成功していない致死率は、第四脳室のroofplate、LRLにエレクトロされている外因性DNAを提供する上で必要なステップを穿刺に関連付けられています。しかし、多くのLRL派生した系統は、以前のE12.5 9よりLRLから生じる。これらの以前の生まれの系統は横網を構成するニューロンは、外部楔状束、小脳5に脊髄および大脳皮質からの入力を接続する機能precerebellarシステムの下オリーブ核が含まれています。 LRLの式を操作するためにE12.5未満の胚から、我々は、胚をエレクトロポレーション後に文化に置かれているのin vitroシステムを開発しました。
本研究では、E11.5でLRL前駆細胞の遺伝子発現を操作するための効率的かつ効果的な手法を提案する。広くアクティブなCAGプロモーターから駆動される緑色蛍光タンパク質(GFP)でエレクトロ胚は、再現性の文化の24時間後にGFPを発現した。このアッセイの重要な側面だけのため外来遺伝子の発現しないため、エレクトロポレーションおよび培養技術から、その結果二次的効果の変更されている遺伝子発現されています。それは、内在性遺伝子の発現パターンがエレクトロポレーションおよび培養胚で邪魔されずに残っていることが判明した。このアッセイは、過剰発現用プラスミドの導入によりE12.5より若い胚のLRLから出てきた細胞の運命を変更したり、の(RNAiを介して)をノックダウンするために利用することができる別のプロ神経転写因子。
1。エレクトロポレーションに先立って準備
2。胚の収穫
3。 E11.5胚のエレクトロポレーション( 図1)
4。胚の培養
5。分析のための胚の準備
6。 IMMUnohistochemistry分析
7。代表的な結果
図1Aに模式的エレクトロポレーション実験を示しています。 図1Bは、操作の前にE11.5胚の矢状図を示します。プラスミドを含むCAGの注入後、同じ胚:: GFP 0.01%ファストグリーンは、 図1Cと一方的なGFPを示す代表的な不定胚に示されている背後脳24時間以下の培養での発現は、 図1Dに示されています。成功したエレクトロポレーションされてLRLの領域の範囲は可変であり、電極の位置に大きく依存するように見える。我々の研究では、エレクトロポレーション胚の65(80%)の52アウトに成功し、GFPを発現していることが判明した。それが(下記参照)の固定および免疫組織化学的分析は、次のいくつかのセクションに比べて局所領域におけるGFP陽性であった場合は、組織が正常にエレクトロポレーションされたものとみなされました。この基準を満たしていなかった胚は、エレクトロポレーションに失敗した試行と評価した。
エレクトロポレーション効率のさらなる評価は、第四脳室レベルでのエレクトロポレーションの胚の横断切片にGFPに対する免疫組織化学を行うことによって確かめることができる。 図2は、一方的な表示胚から代表的な連続切片GFP発現。 図2Aは、胚の左側には正極に向かったことを示しています理想的な回路図を示します。横断切片( 図2Aの中央漫画で表さレベル)排他的に後脳組織( 図2Cおよび2D)の左側にローカライズされたGFPの発現を明らかにした。 図2Cに示すように300μmの吻側以上のセクションの試験はGFPを発現する( 図2B)をしないようLRLのエレクトロポレーション領域は、神経管の全体の前後軸を延長するものではありませんでした。
遺伝子発現の操作のためのこのアッセイの有用性は、内在性タンパク質の発現ドメインの安定性に依存しています。 LRLは、プロニューラル転写因子の差動式(1日)によって特徴づけられるユニークな前駆ドメインを有するとして特徴づけされています。これらの要因のサブセット(MASH1、Math1の、Ngn1と、Ptf1a)は、LRL、今後の研究16から18のテーマでprecerebellar神経サブタイプの仕様では彼らの提案、および/ または特徴の役割のために分析のために選ばれました。すべての4つのタンパク質は、E11.5で16から18尾後脳に非常に特徴的な発現ドメインを持っています。我々は文化を置かれた胚のサイズが増加するのに失敗し、また脈絡叢上皮とLRLとE11.5とE12.5 5の間に発生するroofplate、形態学的イベントの陥入の生産を開始するために失敗したことを観察した。これらの観察結果に基づいて、これらの胚の正常な発達が停止または著しく遅延し、培養胚に匹敵するコントロールが、E11.5で教養のない胚でなければなりませんされていることを決定した。
文化やエレクトロポレーションは、内因性タンパク質のレベルを乱さないことを確認するために、我々はimmunohistochによって4つの異なるタンパク質を分析した私は、各マーカーの分析を行った胚の数を示しており、胚の割合は、通常のタンパク質レベルを保持していることを分析したエレクトロポレーションし、少なくとも24時間。 表の培養した34種類の胚でemistry(IHC)。 図3代表的なIHCデータ分析したタンパク質の2つ、MASH1( 図3Aおよび3B)からとMath1の( 図3Cおよび3D)。我々は、胚の大半はE11.5( 図3Aと3C)での制御の胚に比べて( 図3Bおよび3D)エレクトロポレーションと文化の後の式の正常なレベルを保持していることを観察した。重要なのは、これらのタンパク質の特性発現ドメインは乱されていませんでした。

図1。番目のE11.5における胚のエレクトロポレーション(A)の回路図eのエレクトロポレーション実験を行った。 E11.5の胚は、隔離され、0.01%ファストグリーンの発現プラスミドは、第四脳室に注入される。胚は、その後、電極パドルに挟まれたと前の培養液への注入前にE11.5胚の(B)矢のビューを配置されてから50 Vのパルスに供される。 (C)同じE11.5の胚は、0.01%ファストグリーンでのプラスミドの注入を後に。 (D)GFPの片側後脳の発現は、培養24時間後にE11.5胚で観察された。 MB-脳、4V-第四脳室。

図2。エレクトロポ組織におけるGFPの発現は、(A)左の漫画は、E11.5胚の周りに電極の配置を示しています。中央の漫画は、胚の左側をコードするプラスミドのGFPの取り込みおよび発現を示しています。右側の漫画は、Lで胚を通じて取得された理想的な横断面の模式図です。evelsは、中間漫画で黒い線で表される。文化の24時間後、エレクトロポレーションE11.5の胚を介して横断切片上でGFPの(B-D)免疫組織化学。矢印はroofplate(RP)がトラップを二次抗体を示しています。画像は10倍の倍率で撮影されています。示す各セクションの相対的なレベルは、(A)の真ん中の漫画を通る水平線で描かれています。 MB-脳、L 4V-第四脳室、RP-roofplate。

図3。低菱形リップの内 因性タンパク質の発現は CAGとエレクトロポレーションした胚を培養ませんでしたE11.5胚(A、C)の横断面を比較しMASH1(AおよびB)またはMath1の(CおよびD)の免疫組織化学。 :24時間(BとD)のGFPと培養した。画像は10倍の倍率で撮影した。
| プロニューラルTranscriptiファクターで分析 | 胚の数は、分析 | 通常の発現パターンを保持割合 |
| MATH1 | 15 | 86.7パーセント |
| MASH1 | 12 | 83.3パーセント |
| Ngn1 | 7 | 71.4パーセント |
| Ptf1a | 6 | 100パーセント |
LRLでノーマルプロニューラル転写因子ドメインを保持エレクトロポと培養胚の表Iの割合。
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本研究で提示したin vitroエレクトロポレーション技術は、効率的に妊娠12日未満の胚における遺伝子発現を操作するために利用することができる新たな方法論です。文化への胚の配置は、導入遺伝子の発現を可能にし、エレクトロポレーション胚をin vivoで維持する許可されているときに観察致死性を回避します。この手法は、エレクトロポレーションベースの研究のために以前にアクセスできなかった胚の前駆細胞における遺伝子発現の操作が可能になります。
エレクトロポレーション技術は、分析した胚の80%で導入遺伝子の効率的な発現をもたらした。 図2で観察されたエレクトロポレーション、組織の範囲は、個別の領域にローカライズされています。特に、これはの所在地を管轄するように電極を慎重に配置する必要がありますエレクトロポレーションのために特定の後脳領域を標的とするためにffected組織。背側の胚後脳の下の菱形リップが必要な場合は、パドルは、彼らが直接に第四脳室の開口部の広い部分に隣接していることをそのような場所でなければなりません。神経管の一方の側の一方的な表現が望まれている場合、胚は神経管の軸がパドルと平行になるように電極間に配置する必要があります。胚の傾斜は、不適切なターゲティング、および/または両側の式の中で発生する可能性があります。これはその取り込みエレクトロポレーション、DNAを細胞の割合を増加させるかもしれないとして、優れたエレクトロポレーションの効率を達成するために最適化では、1つは、エレクトロポレーション電圧を変化させることができます。一つは、さらにDNAの株式を集中することができます。神経管は液体のみの小さなボリュームを収容することができますので、より濃縮されたサンプルは、エレクトロポレーションによって細胞に導入するプラスミドの量を増やす必要があります。最後に、1つは、パドルの直径を変更することができます。一つは小さい方をターゲットにしたい場合それはパドルのサイズを小さくするのが最善かもしれませんdはより多くのローカライズされた地域。
後脳の遺伝子発現を操作することで、この手法の有用性に重要では胚のエレクトロポレーションおよび培養後、通常の遺伝子とタンパク質の発現パターンの保持です。 図3および表Iに記載されて、通常のプロニューラル転写因子レベルとパターンがよく保持された胚の83%がMASH1を表明して分析し、86%がMath1のと、Ptf1a発現して100%を表明した。他の転写因子アッセイとしてNgn1のレベルは、確実に(71%)が保持されていませんでした。それはこの特定の転写因子に悪影響をエレクトロポレーションと文化の手順に影響されている可能性がありながら、我々は別の説明があると信じています。それは背後脳でNgn1発現は、胚日(E)12.5 16によって消滅レベルで、時間の経過とともに減少することが示されている。そのp与えられたNgn1を発現している胚のercentageが評価する他のタンパク質(83%以上)のために通常の式を保持し、それらよりも低い背Ngn1の発現が欠損している胚の30%の少なくとも一部がが進んでいることが可能です正常な発達プログラム、E11.5での収穫や文化に配置した後Ngn1発現24時間をオフにします。これは、E11.5およびE12.5の間の背後脳で発生する分子の変化は胚の部分に発生する可能性があることを示唆しているが、非同期または遅延時間枠でそうします。これは今後の研究でのメリット、さらに分析を見つけることが、このアッセイのための熱意を減少させることはありません。胚は、通常の開発時に発生する分子の変化を受けているかもしれないという可能性も、このテクニックを活用した研究からの結果がどのように解釈されるか通知する必要があります。
番目に提示最適化されたエレクトロポレーションおよび培養条件のバリエーション研究が可能ですされています。それは50 Vは、組織の整合性に最小限の障害とエレクトロポレーション、遺伝子の堅牢な取り込みを行ったことが判明した。エレクトロポの電圧は、個々の実験者のニーズに、このアッセイを微調整するために変更することができます。培養条件は、直接12ウェルプレートで培養培地(上述)に配置された胚に最適化された。この手法は、12ウェルプレートの培地中に配置されている膜(コスター社)に胚を置くことによって変更することができます。培養技術の最適化中にこの変動が試行されましたが、それはかなり正常な遺伝子発現パターンのエレクトロポレーション、遺伝子発現または保持のいずれかの実験結果に影響を与える表示されませんでした。
本研究では、24時間培養して胚に焦点を当てた。胚は24時間に変更されているメディアを48時間にのためにまで培養されています。それは、組織の整合性が長いと減少したことが判明したERのインキュベーション時間がエレクトロポレーションGFPの発現を検出することができた。より長いインキュベーション時間(過去48時間)の場合は、必要な変更の培養条件かもしれないと可能性が高い将来の調査の対象となります。
文化の最適化アッセイ中にそれは内因性の遺伝子発現の保持は、メディア環境への神経管の大きなエクスポージャーを持っていた胚で改善することがわかった。これらの研究では、これは文化の中で配置前に胚の尾部に4 番目の心室roofplateと除去余分な組織を穿刺することによって達成された。顕微解剖神経管が正常にこれらの条件下で培養することができれば将来の研究では、調査します。
本研究では妊娠11.5日(E11.5)に胚のエレクトロポレーションに焦点を当てた。今後の方向性は、開発の初期段階のための技術を最適化するであろう。我々は、胚に、このテクニックを使用しているE10.5で収穫し、我々は胚の有意な数値を蓄積し、分析するために、まだ持っている間に我々は、GFPと培養胚の導入の成功を見てきました。深さ、さらに研究では以上が本研究で用いたテクニックは若い胚に適用できることを確信を持って言うことが必要であろう。それはE10.5よりも若い胚のエレクトロポすることが可能かもしれないが、それが試みられていません。
この技術の機能的なアプリケーションは、それらのタンパク質製品はLRLとは異なる神経サブタイプの生産に重要であるかを調査するために遺伝子の機能を過剰発現またはノックダウンする可能性があります。この手法の今後の実験では、E11.5でLRLから生成することが知られている異なる神経subypesの運命を変えるためにプロニューラル転写因子の導入に焦点を当てます。技術はまた、積極的にE11.5でニューロンを生産している他の神経上皮の領域を標的とするように適応することができます。
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利害の衝突が宣言されません。
著者らは、Math1の、Ngn1ためにジェーン·ジョンソンに感謝したい、とPtf1a抗体およびpCAGためのコニーCepko :: GFPプラスミドと思います。この作品は、NIH R15 1R15HD059922-01によって資金を供給された。
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Cryostat | Leica Microsystems | CM-1850 | |
| Biologie tip Dumoxel treated DUMONT forceps | Fine Science Tools | 11252-30 | |
| 20 mm MORIA perforated spoon | Fine Science Tools | 10370-17 | |
| ECM 830 Square Wave Electroporation Generator | BTX (VWR) | 47745-928 | |
| Harvard Apparatus 7 mm Tweezertrodes* Electrodes | BTX (Fisher) | BTX450165 | |
| Fisher Isotemp CO2 Incubator | Fisher Scientific | 1325525 | |
| NAPCO CO2 Gas Regulator | Fisher Scientific | 15497020 | |
| 12 Well Tissue Culture Plates | BD Falcon (Fisher) | 877229 | |
| HyClone Liquid Media DMEM/F-12 (1:1); With L-Glutamine and HEPES; 500mL | Thermo Scientific (Fisher) | SH3002301 | |
| HyClone* Donor Equine Serum | Thermo Scientific (Fisher) | SH3007402 | |
| Fetal Bovine Serum, Qualified, Heat Inactivated | Invitrogen | 16140-063 | |
| cellgro* 10,000 IU Penicillin, 10,000μg/mL Streptomycin | Mediatech (Fisher) | MT-30-002-CI | |
| HyClone* L-Glutamine L-Glutamine; 200mM in 0.85% NaCl | Thermo Scientific (Fisher) | SH3003401 | |
| Fast-Green | Fisher Scientific | AC41053-0250 | 0.01% |
Could you please send to me the detailed method for electroporation and culture of E11 embryos?
Best regards,
Evelyne Bloch-Gallego
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ReplyPosted by: Evelyne B.February 6, 2013, 11:33 AM