Name: rodent injection routes and restraint
Uploaded: 2015-07-24T15:42:00.000Z
Duration: 15 min 5 s
Channel: JoVE

K12 Standards

new-york-state-science-learning-standards

New York State Science Learning Standards

High School

Life Science

Structure and Function

HS-LS1-2.

Compound Administration I

(1) die subkutane Injektion
<ol>
	<li>Manuell zurückhalten der Maus über die einhändige Zurückhaltung halten. Einmal erfasst, ermöglichen Sie die Maus, um auf einen Tisch oder eine andere sichere Oberfläche aufliegen. Achten Sie darauf, zu vermeiden, dass Druck auf den Körper der Maus.</li>
	<li>Ruhen der Ferse der Hand auf den Tisch zu vermeiden unnötige Gewicht des Mausrads die Atmungen gefährden können. Mäuse können auch in einem kommerziellen Gerät zurückgehalten werden. Für Ratten empfiehlt es sich, eine kommerzielle Rückhalteeinrichtung verwendet.</li>
	<li>Verständnis der Haut und ziehen Sie nach oben ein Zelt der Haut zu schaffen. Wenn eine Rückhalteeinrichtung verwendet, eventuell Zange, die Haut durch den Schlitz auf der Oberseite zu erfassen.</li>
	<li>Stechen Sie die Nadel parallel zur Wirbelsäule, geleitet vom Kopf an der Basis der Hautfalte des Zeltes. Lenken Sie die Nadel vom Kopf auf die Möglichkeit der Einstiche an den Schädel zu vermeiden, wie die Schädelknochen der Maus sehr dünn ist. Ratten haben die Tendenz, ihren Kopf nach hinten, die die Injektion in die Nackenmuskulatur platziert werden könnte.</li>
	<li>Setzen Sie die Nadel Abschrägung ermöglicht ein sanftes Gleiten in die Haut ein. Beachten Sie, dass die Nadel unter die Finger greifen die Haut eingeführt wird. Zur Verbesserung der Sicherheit beim Einspritzen biogefährlichen Artikel wird die Haut mit der Pinzette, wodurch die Möglichkeit einer Nadel Stick Verletzungen ergriffen.</li>
	<li>Ziehen Sie den Kolben, um für die richtige Platzierung zu überprüfen. Wenn Luft in die Spritze gezogen wird, bedeutet dies, dass die Spitze der Nadel sich nicht unter der Haut befindet und muss zurückgezogen und neu positioniert werden. Wenn es Gegendruck gibt bei der Kolben zurück gezogen wird, bedeutet dies die richtige Platzierung der Nadel, und dass die Injektion durchgeführt werden kann.</li>
	<li>Die Substanz mit einer stetigen Bewegung langsam zu injizieren. Zur Vermeidung von Verlust des Artikels Injektion anhalten nach der Injektion, leicht drehen Sie die Nadel unter die Haut und drücken Sie die Haut an der Injektionsstelle beim Zurückziehen der Nadelöhrs.</li>
</ol>
<img alt="Figure 1" src="/files/ftp_upload/10198/10198fig1.jpg"> 
Abbildung 1. Subkutane Injektion in den Mäusen.
(2) intraperitoneale Injektion
<ol>
	<li>Die One-Handed manuelle Zurückhaltung-Methode dient dieser Injektionstechnik bei Mäusen. Passen Sie die Hand, damit ist, dass es an den Hals, um die Maus verhindern hoch genug positioniert.</li>
	<li>Fassen Sie die lose Haut am Nacken des Ansatzes zwischen Daumen und Zeigefinger.</li>
	<li>Stabilisierung der Hinterhand durch entweder fixieren die lose Haut entlang des Rückens zwischen der zweiten, dritten und vierten Finger und die Basis des Daumens, oder indem man die Rute zwischen dem dritten und vierten Finger.</li>
	<li>Die IP-Injektion bei der Ratte erfordert zwei Personen, eine Ratte und andererseits die Injektion durchführen zurückzuhalten.<ol>
		<li>Fassen Sie die Ratte über die Schultern mit den zeige- und Mittelfinger auf jeder Seite des Halses und der Handfläche auf der Rückseite. Der Daumen und die dritten und vierten Finger sollte die Truhe, um vorwärts oder rückwärts Bewegung verhindern umschließen. Die Position der Finger auf jeder Seite des Halses wird verhindert, dass die Ratte den Kopf drehen.</li>
		<li>Heben Sie die Ratte und drehen Sie es um das ventrale Abdomen verfügbar zu machen.</li>
		<li>Stabilisieren Sie das Hinterteil durch fassen die Füße und die Rute sicher und erweitern sie vom Körper weg.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Positionieren Sie die Maus oder Ratte aussetzen den Bauch, um sicherzustellen, dass es nach oben blickt.</li>
	<li>Kippen Sie das Tier mit dem Kopf nach unten an über eine 30°-Winkel, um den Darm zu nach vorne fallen lassen.</li>
	<li>Injektion Wahrzeichen sind wie folgt:<ol>
		<li>Cranially grenzt eine imaginäre Linie erstreckt sich horizontal über den Körper an der Spitze der Hüfte (von Flanke zu Flanke) im Bereich injiziert werden.</li>
		<li>Die Mittellinie ist die mediale Grenze, als Haare wachsen in entgegengesetzte Richtungen trifft. In haarlose Tiere die Mittellinie erstreckt sich in einer geraden Linie von der Xiphoid bis zum Anus.</li>
		<li>Die seitlichen Rahmen ist eine Linie von oben von der Hüfte bis die Vorhaut des Mannes und von der Oberseite der Hüfte und im Anschluss an die Zitzen in das Weibchen.</li>
		<li>Dies stellt eine dreieckige Fläche für sicheren Injektion.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Injektion eines Artikels innerhalb der Sehenswürdigkeiten<ol>
		<li>Nadel senkrecht zur Wirbelsäule, ab der Mittellinie im Dreieck wie oben beschrieben. Platzieren die Nadel in einem 90° Winkel zur Ebene des Körpers ermöglicht eine sichere Injektion unter Verwendung beider Seiten des Bauches. Dies ist besonders wichtig bei mehreren Injektionen, wie es Gewebetrauma minimiert, indem es ermöglicht Wechsel der Injektionsstellen.</li>
		<li>Wenn die Nadel in einem Winkel von 90° gesetzt ist, wird es "in die Bauchhöhle, zulassend einfacher Bestimmung der Tiefe pop". Dies ist auch ein optisches und haptisches Stichwort, dass die Nadel richtig positioniert ist.</li>
		<li>Aspirieren Sie die Spritze um Platzierung innerhalb der Bauchhöhle und nicht innerhalb der Harnblase, Darm oder vaskulären Strukturen zu gewährleisten.</li>
		<li>Kaudal in der männlichen Maus um zu verhindern, Verwaltung des Artikels in das Skrotum Sac Injektion zu vermeiden. Vermeiden Sie Einspritzen in die Zitzen des Weibchens, Trauma zu verhindern.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
<img alt="Figure 2" src="/files/ftp_upload/10198/10198fig2.jpg"> 
Abbildung 2. Wahrzeichen für intraperitoneale Injektion bei Mäusen.
(3) intramuskuläre Injektion
<ol>
	<li>Zurückhaltung für diese Technik für Mäuse und Ratten erfordert entweder zwei Personen oder die Verwendung eines Schlauches Zurückhaltung. Hier beschriebenen nutzt eine ein-Mann-Methode eine Haltevorrichtung.<ol>
		<li>Legen Sie das Tier in der Rückhalteeinrichtung.</li>
		<li>Sobald das Tier in der Röhre ist, greifen Sie die Rute um das Tier mit den Hinterbeinen aus der Tube zu positionieren.</li>
		<li>Fassen Sie die Haut der Flanke am kranialen Teil des Oberschenkelknochens zu verlängern das Bein und verhindern, dass die Knie beugen.</li>
		<li>Positionieren Sie die Rückhalteeinrichtung so, dass es mit den Kopf des Tieres wies nach unten auf dem Tisch steht, oder auf dem Tisch liegen deutete auf den Körper des Technikers zur Stabilisierung des Gerätes zu ermöglichen, während die Injektion durchgeführt wird.</li>
		<li>Injektion Wahrzeichen sind wie folgt: die Maus und Ratte Bein sind klein und die Gesäßmuskulatur (der kaudalen Oberschenkelmuskulatur) bestehend aus der größten Muskelmasse in den hinteren Gliedmaßen; die zweitgrößte Muskelmasse in den hinteren Gliedmaßen ist der Gastrocnemius (Wadenmuskel). Die Injektion erfolgt aus der kaudalen Aspekt des Beines.<ol>
			<li>Suchen Sie die Gesäßmuskel Masse posterior in den Oberschenkelknochen. Der Knochen kann getastet und leicht fühlte die großen Muskeln.</li>
			<li>Beachten Sie, dass die Mittellinie des Beines von der hinteren Seite unter dem Gesichtspunkt der Hock am Schwanz läuft. Das Haar hat oft einen Kamm, wo es zusammen, kommt wie es in entgegengesetzte Richtungen von den seitlichen und inneren Oberflächen wächst.</li>
			<li>Injektionen werden in Richtung der lateralen Seite des Oberschenkels ab der Mittellinie gemacht.</li></ol></li></ol></li></ol>Dies verringert die Wahrscheinlichkeit einer Beschädigung der Nerven und Blutgefäße befindet sich auf der medialen Fläche des Beines.
			<li>Injektionen in die Gastrocnemius gemacht werden von der hinteren Seite und mit sorgfältiger Prüfung des Standortes der seitlichen Stammvenen durchgeführt.</li>
		
		
		<li>Injektion eines Artikels innerhalb der Sehenswürdigkeiten<ol>
			<li>Stechen Sie die Nadel senkrecht in den Oberschenkelknochen aus der Mittellinie, wie oben beschrieben, auf eine maximale Tiefe von 5 mm für den Gesäßmuskel und ein Maximum von 3 mm für die Gastrocnemius.</li>
			<li>Zur Vermeidung von Trauma an den Muskel muss überflüssige Bewegung der Nadel in das Gewebe verhindert werden. Die Spritze sollte in einer Weise gehalten werden, die nicht Neuausrichtung der Hand erfordert, um die Injektion durchführen.</li>
			<li>Aspirieren Sie die Spritze um Platzierung innerhalb des Muskels und nicht in ein Blutgefäß zu gewährleisten.</li>
			<li>Injizieren Sie das Material in einer stetigen, fließenden Bewegung. Nicht injizieren Sie, schnell langsame Erweiterung des Muskels zu ermöglichen. Schnelle Injektion verursacht Gewebetrauma.</li>
		</ol>
		</li>
	
	

<img alt="Figure 3" src="/files/ftp_upload/10198/10198fig3.jpg"> 
Abbildung 3. Intramuskuläre Injektion in den Gesäßmuskel bei Ratten.
(4) intravenöse Injektion, die unter Verwendung der Rute Ader
<ol>
	<li>Zurückhaltung des Tieres ist abhängig, ob das Tier betäubt ist oder wach.<ol>
		<li>Verwenden Sie einen zylindrischen Zurückhaltung Schlauch für bewusste Mäusen oder Ratten, mit Ausnahme der haarlosen oder nackt Tiere. Aufgrund der öligen Beschaffenheit der haarlose Tiere ist es schwierig zu positionieren und entfernen sie aus dem Acryl Wachstumsbefürworter, wie ihre Haut zur Einhaltung des starren Kunststoffs neigt. So ist ein flexible Kunststoff Kegel verwendet.</li>
		<li>Anderen Injektionsgeräten gehören beleuchtete Plattformen, beheizten Plattformen und starre Kunststoff Kegel, wo die Maus in der Kegel streng mit Spannung auf das Heck aufbewahrt wird.</li>
		<li>Narkotisierten Mäuse benötigen keine Zurückhaltung.</li>
		<li>Wärmen Sie den ganzen Körper oder nur die Rute zu Vasodilatation der Schweif Schiffe zu gewährleisten.<ol>
			<li>Wärmen Sie den ganzen Körper mit einer elektrischen Heizkissen auf Medium oder eine zirkulierende Wasser Decke gesetzt.</li>
			<li>Legen Sie das Tier in der Rückhalteeinrichtung, eingehüllt in die Wärmequelle.</li>
			<li>Beobachten Sie das Tier genau, und von der Wärmequelle zu entfernen Sie, sobald die Blutgefäße erweitern. Ganzkörper-Erwärmung kann auch mit der Verwendung einer Wärmelampe in einen Käfig geleitet erreicht werden. Bei der Verwendung einer Wärmelampe müssen eng die Tiere beobachtet werden, da es einfach sie zu überhitzen.</li>
			<li>Bei der Erwärmung des ganzen Körpers nicht möglich ist, heizen die Rute allein lässt sich mit warmen Kompressen aus einem beheizten Handtuch, Wärmflasche, oder das Heck ins warme Wasser eintauchen. Vorsicht muss eingesetzt werden, um nicht zu verbrennen das Heck, weil Wärmflaschen vorgewärmte Handtücher und Warmwasser Temperaturregler nicht verfügen. Es ist üblich für die Wärmequellen, zunächst überhitzt werden. Diese Wärmequellen abkühlen auch schnell.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Die Verwendung von Gewebe-Öl ist eine weitere Möglichkeit, die Visualisierung der Schiffe zu verbessern.<ol>
			<li>Tauchen Sie einen Baumwoll-gespitzten Applikator in das Gewebe-Öl, und gelten Sie die Ölquelle entfernt den Teil des Hecks, die zur Stabilisierung Griff ist. Das Gewebe Öl bewirkt, dass die Schiffe, die mehr klar definierten erscheinen.</li>
			<li>Es gibt ungiftige Öle im Handel erhältlich, die eine Chemikalie in der Formulierung enthalten, die Erwärmung der Haut und Vasodilatation mit Verdunstung schafft. Diese Öle werden angewendet, und nach wenigen Augenblicken, wenn die Gefäße sichtbar sind, wird das überschüssige Öl mit einem Wattebausch entfernt abgewischt.</li>
			<li>Alle Öle können die Rute halten erschweren.</li>
			<li>Wenn Sie Öle zu verwenden, muss die Injektion sofort bei Visualisierung der Schiffe erfolgen.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Injektion Wahrzeichen sind wie folgt:<ol>
			<li>Die seitlichen Schweif Venen befinden sich auf den Seiten des Hecks. Es gibt auch Schiffe, die entlang der dorsalen und ventralen Mittellinien der Rute, die nicht für Injektion Zwecke geeignet sind.</li>
			<li>Das Tier in die Restrainer kann gedreht werden, so dass die seitlichen Schiffe für eine einfache Injektion gerichtet sind. Alternativ kann das Heck gedreht werden, um die Schiffe in ein akzeptabler Position für die Injektion zu bringen.</li>
			<li>Die Schiffe sind sehr oberflächlich. Sie werden mehr oberflächlich, wie sie die Schwanzwurzel erreichen.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Injektion eines Artikels in die Rute Vene erfordert Geschick. Zur Vermeidung von Verletzungen der Blutgefäße muss überflüssige Bewegung der Nadel verhindert werden. Die Spritze wird in einer Art und Weise gehalten, die nicht Neuausrichtung der Hand erfordert, um die Injektion durchführen.<ol>
			<li>Positionieren Sie das Heck, so dass das Schiff sichtbar und unter Spannung gehalten wird. Gelten nicht übermäßige Spannung am Schwanz oder das Schiff kann gestreckt werden und die Durchblutung vermindert.</li>
			<li>Stellen Sie die Nadel direkt über das Schiff soweit distal wie möglich.</li>
			<li>Üben Sie leichten Druck und schieben Sie die Nadel in die Rute Parallel zu den Wirbeln. Vermeiden Sie Angeln die Nadel nach unten die Nadel wird das Schiff Transekt. Die Nadel sollte im Behälter sichtbar sein, da es mindestens 2 mm in das Lumen weit fortgeschritten ist.</li>
			<li>Injizieren Sie das Material in einer langsamen, fließenden Bewegung, Bruch des Schiffes zu vermeiden.</li>
			<li>Besonderes Augenmerk auf die Rute beim Einspritzen. Wenn das Schiff richtig eingesteckt, ist das Injektionsmaterial fließt in das Gefäß mit keinen Widerstand spüren. Das Blutgefäß sollte blanchieren, wie das Blut durch das Injektionsmaterial herausgedrückt wird.</li>
			<li>Wenn die Nadel nicht im Behälter ist, werden starke Widerstände beim Einspritzen. Wenn mit Kraft zu injizieren, wird das Material den subkutanen Raum füllen und die Rute wird mit Positionsnummern versehen. Beenden Sie sofort, wie Material intravenös injiziert werden soll auf das umliegende Gewebe ätzend sein kann. Ziehen Sie die Nadel heraus und versuchen Sie eine weitere Injektion mehr cranially am Heck.</li>
			<li>Ziehen Sie nach der erfolgreichen Injektion die Nadel heraus und üben Sie Druck auf die Injektionsstelle, gute Hämostase zu versichern, bevor er das Tier an den Käfig.</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
<img alt="Figure 4" src="/files/ftp_upload/10198/10198fig4.jpg"> 
Abbildung 4. Tail Vene Injektion bei Mäusen.

Stoff-Verwaltung ist ein üblicher Bestandteil der experimentelle Protokolle, die Tiere zu nutzen. Wenn Sie eine Route der Lieferung wählen, müssen viele Faktoren einschließlich die technische Kompetenz der Personen, die verantwortlich für die Dosierung, die Tiere, die Größe des Tieres, die Viskosität der Flüssigkeit und die Menge verabreicht werden beraten. Sorgfältige Berücksichtigung dieser Faktoren erhöhen das Wohlbefinden des Tieres und das Gesamtergebnis des Experiments.

wirkstoffverabreichung i

Quelle: Kay Stewart, RVT, RLATG, Anus; Valerie A. Schroeder, RVT, RLATG. University of Notre Dame, IN
Wie viele Forschungsprotokolle verlangen, dass ein Tier eine Substanz injiziert werden, muss die Route und die Menge des Stoffes genau bestimmt werden. Gibt es mehrere Darreichungsformen in der Maus und Ratte. Welche Route zu verwenden, richtet sich nach mehreren Faktoren der Substanz injiziert werden: der pH-Wert der Lösung, die Lautstärke für die gewünschte Dosierung und die Viskosität der Lösung erforderlich. Schwere Gewebeschäden kann auftreten, wenn eine Substanz nicht richtig verwaltet wird. Dieses Video befasst sich mit den verschiedenen Methoden der Zurückhaltung und technischen Details für die meisten gängigen Injektion Routen.

Wirkstoffverabreichung I

Source: Kay Stewart, RVT, RLATG, CMAR; Valerie A. Schroeder, RVT, RLATG. University of Notre Dame, IN
As many research protocols require that a substance ...

Die Verabreichung von Wirkstoffen ist oft ein integraler Bestandteil einer Tierstudie, und viele Faktoren müssen bewertet werden, um sicherzustellen, dass die Verbindung korrekt und auf humane Weise verabreicht wird. Die beiden Hauptverabreichungswege sind enteral - über den Verdauungstrakt und parenteral - außerhalb des Verdauungstrakts. Der Hauptunterschied besteht darin, dass die Verbindung, wenn sie über den enteralen Weg verabreicht wird, einen Leberstoffwechsel durchläuft, BEVOR sie in den Blutkreislauf gelangt. Während die Substanz auf jedem parenteralen Weg, wie intravenös oder intramuskulär, diesen ersten Durchgang durch die Leber überspringt, führt dies in der Regel zu einer höheren Bioverfügbarkeit. In diesem ersten Video der Serie über die Verabreichung von Verbindungen beginnen wir mit der Erörterung der Faktoren, die die Wahl des Verabreichungswegs im Allgemeinen beeinflussen. Und dann werden wir die gebräuchlichsten parenteralen Injektionsmethoden überprüfen, einschließlich subkutaner Injektionen, abgekürzt als SC oder SubQ, intraperitoneal oder IP, intramuskulär oder IM und intravenös, auch bekannt als IV. Beginnen wir mit der Überprüfung einiger Dinge, die man beachten sollte, bevor man irgendeine Art von Verabreichungsverfahren durchführt. Der erste Schritt besteht darin, die zu injizierende Lösung oder Suspension vorzubereiten, und die erste grundlegende Überlegung bei der Stoffherstellung ist die Sterilität. Um eine Einschleppung von Krankheitserregern in das Tier zu verhindern, ist es wichtig, dass das Injektionsmaterial sowie die zu verwendenden Nadeln und Spritzen steril sind. Die zweite Überlegung ist die physiologische Verträglichkeit. Eine Dosierlösung, unabhängig davon, ob sie enteral oder parenteral verabreicht wird, muss physiologisch auf einen geeigneten pH-Wert gepuffert werden, damit die Verbindung richtig absorbiert wird und Gewebeverletzungen vermieden werden. Der dritte Faktor ist die Viskosität des Injektionsartikels, die bei der Auswahl der Nadel eine entscheidende Rolle spielt. In der Regel werden 20- bis 30-Gauge-Nadeln bei parenteralen Verabreichungsverfahren für Mäuse und Ratten verwendet. Die Naben dieser Nadeln sind zur leichteren Identifizierung in der Regel farbcodiert. Die Lösung sollte flüssig genug sein, um mindestens eine dieser Nadeln zu passieren. Wenn die Lösung durch mehr als eine Lösung hindurchgehen kann, dann ist die Wahl im Allgemeinen die kleinste mögliche Stärke. Der nächste Faktor ist das Verabreichungsvolumen, das sich auf die Auswahl der Spritze auswirkt. Ähnlich wie bei Nadeln sollte die kleinstmögliche Spritze gewählt werden, die für eine genaue Dosierung mit korrekter Graduierung benötigt wird. Die Nadelstärke und das Verabreichungsvolumen sind auch abhängig von der Verabreichungsroute sowie von der Art, Größe und dem Alter des zu verabreichenden Tieres. In Tabelle 1 unten finden Sie eine Übersicht über die Werte im Zusammenhang mit den in diesem Video beschriebenen Routen. Die letzte wichtige Überlegung ist die Absorptionsrate, die mit jedem Verabreichungsweg erheblich variiert und bei der Auswahl der am besten geeigneten Methode eine Rolle spielen kann. Lassen Sie uns nun über die besonderen Eigenschaften der routinemäßig verwendeten Injektionsmethoden sprechen. Bei der SC- oder SubQ-Injektion wird das Material zwischen den Hautschichten und dem Muskel in einem virtuellen Raum platziert, der durch Anheben der Haut entsteht. Dies ermöglicht eine sichere Injektion größerer Volumina, aber die Absorptionsrate ist langsamer als bei anderen Wegen, was zu einer nachhaltigeren Wirkung führt. Bei der IP-Verabreichung wird die Substanz direkt in die Bauchhöhle injiziert. Dies ist eine weitere gängige Methode, um große Mengen an Lösung zu liefern. Obwohl eine IP-Injektion als parenterale Verabreichung angesehen wird, ähnelt der Absorptionsmechanismus tatsächlich eher der oralen Dosierung. Bei einer IM-Injektion wird eine Verbindung direkt in den Gesäßmuskel oder den Gastrocnemius-Muskel abgegeben. Eine Substanz, die IM injiziert wird, wird aufgrund der großen Anzahl von Gefäßen im Muskelgewebe schnell resorbiert, was sie in einigen Fällen zu einem bevorzugten Weg machen könnte. Eine unsachgemäße oder wiederholte Injektion in den Muskel kann zu Nervenschäden führen, die zu Lähmungen oder Muskelnekrosen führen. Schließlich ist eine intravenöse Injektion in die Schwanzvene des Tieres der effektivste Verabreichungsweg, da die Substanz direkt in den Kreislauf eingeführt wird. Beachten Sie, dass die Verbindung in eine der lateralen kaudalen Schwanzvenen injiziert werden sollte, die sich an den Seiten des Schwanzes befinden. Es gibt ein Gefäß, das entlang der ventralen Mittellinie des Schwanzes verläuft und nicht für Injektionszwecke geeignet ist. Nachdem wir nun den Hintergrund besprochen haben, lernen wir die Verfahren kennen, beginnend mit SC-Injektionen. Bei Mäusen packen Sie das Tier am Schwanz und lassen Sie es auf einer anderen sicheren Oberfläche, wie z. B. einem Drahtstangendeckel, ruhen. Halten Sie das Tier dann manuell fest, indem Sie die Haut um den Hals anheben und ein Zelt bilden. Stellen Sie das Tier dann mit den Hinterfüßen auf die Oberfläche auf den Tisch und legen Sie den Handballen auf den Tisch, um ein übermäßiges Gewicht auf dem Tier zu vermeiden, das die Atmung beeinträchtigen könnte. Nehmen Sie zum Injizieren die Spritze mit der zu injizierenden Lösung auf und richten Sie die Nadel parallel zur Wirbelsäule und vom Kopf weg, um die Möglichkeit von Einstichen in den Schädel zu vermeiden. Führen Sie dann die Nadel mit der Fase nach oben ein, was ein sanftes Gleiten in die Haut ermöglicht. Ziehen Sie den Kolben zurück, um die richtige Platzierung der Nadel zu überprüfen. Kommt es beim Zurückziehen des Kolbens zu einem Gegendruck, befindet sich die Nadel in der richtigen Position. Wenn Luft in den Kolben gesaugt wird, muss die Nadel neu positioniert werden. Nachdem Sie sich vergewissert haben, dass die Nadel richtig positioniert ist, injizieren Sie langsam mit einer gleichmäßigen Bewegung. Halten Sie nach der Injektion inne und drehen Sie die Nadel leicht unter der Haut, um einen Verlust des Injektionsartikels zu verhindern. Kneifen Sie dann die Haut an der Injektionsstelle zusammen und ziehen Sie die Nadel zurück. Die gleiche Methode kann bei der Entwöhnung von Ratten angewendet werden. Bei erwachsenen Ratten muss das Tier zunächst mit einem Gerät fixiert werden, dessen Verfahren im Video "Grundlagen der Handhabung und Fixierung" dieser Sammlung erläutert wird. Dann kann man die SC-Injektion auf die gleiche Weise wie bei Mäusen durchführen. Als nächstes lernen wir, wie man eine IP-Injektion durchführt. Verwenden Sie bei Mäusen die beidhändige Fesseltechnik, um das Tier manuell zurückzuhalten, wie es auch im Video "Grundlagen der Handhabung und Fixierung" beschrieben wird. Stellen Sie sicher, dass Ihre nicht dominante Hand hoch genug am Hals positioniert ist, um zu verhindern, dass sich das Tier dreht. Stabilisieren Sie die Hinterhand, indem Sie den Schwanz zwischen den dritten und vierten Finger legen oder die Haut fest zwischen den restlichen Fingern und dem Daumenansatz feststecken. Positionieren Sie als Nächstes das Tier so, dass es seinen Bauch freilegt. Neigen Sie das Tier mit dem Kopf nach unten bei einer 30? Winkel, damit der Darm nach vorne fallen kann. Der Injektions-Orientierungspunkt kann wie folgt umrissen werden: Zeichnen Sie eine imaginäre Linie, die sich horizontal über den Körper, am oberen Ende der Hüfte, von Flanke zu Flanke erstreckt. Zeichnen Sie dann den medialen Rand oder die Mittellinie entlang der Linie, an der sich die in entgegengesetzten Richtungen wachsenden Haare treffen. Stellen Sie sich zum Schluss den lateralen Rand vor, der bei Rüden eine Linie von der Oberseite der Hüften bis zur Vorhaut ist und bei Hündinnen den Zitzen folgt. Dies bietet den dreieckigen Bereich für eine sichere IP-Injektion. Die nächste Methode, die wir besprechen werden, ist die IM-Injektion. Die Fixierung bei dieser Technik sowohl für Mäuse als auch für Ratten erfordert entweder zwei Personen oder die Verwendung eines Fixierungsschlauchs. Hier beschreiben wir die Ein-Personen-Methode, bei der ein Rückhaltegerät verwendet wird. Legen Sie zuerst das Tier in die Röhre und ziehen Sie mit den Hinterbeinen nach außen am Schwanz, um das Tier zu positionieren. Fassen Sie als Nächstes die Haut der Flanke am kranialen Teil des Oberschenkelknochens, um das Bein zu strecken und zu verhindern, dass sich das Knie verbiegt. Positionieren Sie dann die Rückhaltevorrichtung, um die Visualisierung der Injektionsstelle zu ermöglichen. Um den Gesäß-Orientierungspunkt zu identifizieren, lokalisieren Sie die Gesäßmuskelmasse hinter dem Oberschenkelknochen. Der Knochen kann abgetastet werden und der große Muskel ist gut zu spüren. Beachten Sie die Mittellinie, die von der Spitze des Sprunggelenks bis zum Schwanz verläuft. Man kann oft sehen, wie der Kamm, an dem die Haare von der Seiten- und Innenfläche zusammenkommen, in entgegengesetzte Richtungen wächst. Typischerweise werden Injektionen in Richtung des lateralen Aspekts von der Mittellinie aus durchgeführt. Der Gastrocnemius ist der Wadenmuskel und die Injektion in diesen Muskel erfolgt auch am besten von der hinteren Seite. Für den Gesäßmuskel führen Sie die Nadel an der befindlichen Landmarke bis zu einer maximalen Tiefe von ca. 5 mm ein. Vermeiden Sie es, die Spritze während der Injektion neu zu positionieren, um Muskelschäden zu vermeiden. Aspirieren Sie als nächstes, um sicherzustellen, dass sich die Platzierung innerhalb des Muskels und nicht in einem Blutgefäß befindet. Und schließlich injizieren Sie das Material langsam und gleichmäßig, da eine schnelle Injektion ein Gewebetrauma verursacht. Entfernen Sie die Nadel senkrecht auf dem gleichen Weg wie beim Einstechen. Bei Musculus gastrocnemius die Nadel bis zu einer maximalen Tiefe von 3 mm einführen und die Injektion auf die gleiche Weise wie beim Gesäßmuskel durchführen. Lassen Sie uns zum Schluss lernen, wie man eine IV-Injektion in die Schwanzvenen von Nagetieren durchführt. Die gleiche Methode ist sowohl für Mäuse als auch für Ratten anwendbar. Legen Sie das Tier in ein zylindrisches Rückhalterohr und erwärmen Sie den gesamten Körper des Tieres mit einem elektrischen Heizkissen auf MEDIUM für ca. 2-5 Minuten. Erwärmen Sie das Tier weiter, bis sich die Blutgefäße erweitern, d.h. merklich größer werden. Denken Sie daran, dass sich die lateralen kaudalen Schwanzvenen an den Seiten des Schwanzes befinden. Die Arterie, die sich in der ventralen Mittellinie befindet, ist nicht für Injektionszwecke geeignet. Drehen Sie die Rückhaltevorrichtung und positionieren Sie den Schwanz so, dass die seitlichen Schwanzvenen nach oben zeigen und unter Spannung gehalten werden. Üben Sie keine übermäßige Spannung aus, da sonst das Gefäß gedehnt und die Durchblutung vermindert werden kann. Platzieren Sie die Nadel mit der Abschrägung direkt über dem Blutgefäß so distal wie möglich und üben Sie leichten Druck aus, um die Nadel parallel zur Wirbelsäule in den Schwanz zu schieben. Injizieren Sie das Material in einer langsamen, fließenden Bewegung und beachten Sie, dass das Gefäß blanchiert, wenn das Blut durch das Injektionsmaterial herausgedrückt wird. Wenn die Nadel nicht richtig im Gefäß positioniert ist, entsteht beim Injizieren ein starker Widerstand, und wenn Sie mit Kraft injizieren, füllt das Material den subkutanen Raum aus und der Schwanz bläht sich auf. Stoppen Sie sofort, da das Material, das für die intravenöse Injektion bestimmt ist, für das umgebende Gewebe ätzend sein kann. Ziehen Sie die Nadel zurück und versuchen Sie eine weitere Injektion kranialer am Schwanz. Ziehen Sie nach erfolgreicher Injektion die Nadel zurück und üben Sie Druck auf die Injektionsstelle aus, um eine gute Blutstillung zu gewährleisten, bevor Sie das Tier in den Käfig zurückbringen. Nachdem Sie nun mit den gängigen Injektionsmethoden vertraut sind, schauen wir uns einige Anwendungen dieser Verabreichungswege an, die über die Verabreichung von Medikamenten hinausgehen. In mehreren Experimenten wird Mäusen ein bestimmter Erreger injiziert, um eine Infektion zu untersuchen. Hier nutzten die Forscher den subkutanen Weg, um antibiotikaresistente Bakterien einzuführen, die Läsionen verursachen, und die Größe dieser Läsionen diente als Auslese für die Virulenz des Erregers. Verschiedene Wissenschaftler interessieren sich für die Erforschung der Verteilung und des Überlebens von Stammzellen nach systemischer Verabreichung. In dieser Studie führten die Forscher eine Schwanzveneninjektion von genetisch markierten neuralen Stammzellen in einem Multiple-Sklerose-Tiermodell durch und lokalisierten die Verteilung der injizierten Zellen auf das Rückenmark und die Gehirnregionen. In einem anderen Experiment injizierten Forscher fluoreszenzmarkierte Myoblasten intramuskulär in ein Tiermodell für Muskeldystrophie. Anschließend wurde eine Biolumineszenz durchgeführt, um die erfolgreiche Implantation der Stammzellen zu analysieren. Schließlich können Injektionen auch zur Generierung von Tiermodellen verwendet werden. Diese Wissenschaftler führten eine intraperitoneale Injektion von Dimethylnitrosamin - einem starken Lebertoxin - in männliche Wistar-Ratten durch, um ein Tiermodell der Leberfibrose zu erzeugen, das dann zur Untersuchung der Entwicklung der Lebererkrankung verwendet wurde. Sie haben gerade den ersten Teil von JoVE über die Verabreichung von Verbindungen gesehen, in dem die häufig verwendeten parenteralen Injektionen besprochen werden. Denken Sie daran, dass der optimale Verabreichungsweg von mehreren Faktoren abhängt, darunter der pH-Wert, das Volumen und die Viskosität der injizierten Lösung. Und jede Technik hat Vor- und Nachteile, die in Bezug auf die experimentellen Bedürfnisse berücksichtigt werden müssen. Wie immer vielen Dank fürs Zuschauen!

Education

Lehre

JoVE Science Education

Basic Biology

Biologie-Grundlagen

Lab Animal Research

Labortierforschung

Rodents

Nagetiere

rodent injection routes and restraint

Rodent injection routes and restraint methods are key parts of compound administration in mice and rats. When a substance must be injected into an animal, the delivery route and the amount of compound must be chosen with care. The right choice helps match the dose to the protocol.

Several factors guide the route of administration. These include the pH of the solution, the volume needed for the desired dose, and the viscosity of the solution. Viscosity means how thick or resistant to flow a liquid is. These details help determine which injection route is most suitable.

Correct technique is important because poor administration can cause severe tissue damage. The video also shows the restraint methods used for these common injection routes. It focuses on the technical steps needed for mouse and rat injections.

Rodent Injection Routes and Restraint

rodent handling and restraint techniques

Minimizing Stress in Mouse and Rat Handling

Mouse and rat handling can create stress, even when the procedure is brief. Cage changing and other noninvasive tasks can raise heart rate, blood pressure, and serum corticosterone levels. These changes may last for several hours. Restraint for injections and blood withdrawal can also affect the animals and may influence scientific data. Because of this, proper training is needed when working with mice and rats. The goal is to reduce the effect of handling on the animals as much as possible. <br...

basic care procedures

Caring for Research Mice and Rats

Research mice and rats need careful housing, feeding, and handling. These animals make up over 90% of the animals used for biomedical research, so their care can strongly affect experiment results. Both immunocompetent animals, which have a normal immune response, and immunocompromised animals need proper support during studies. Some research animals have weakened immune systems and need extra steps to stay healthy. Common examples include naturally occurring immunocompromised mice and mice...

fundamentals of breeding and weaning

Mouse and Rat Breeding Methods

Mouse and rat breeding methods are used in biomedical research to supply animals for laboratory studies. Many research facilities buy mice from commercial breeders, but some also breed mice and rats in-house. In-house breeding can reduce costs and give researchers more options for their studies. Breeding animals in the facility also lets researchers manage genetics and timing. They can plan pregnancies to match research needs and work with embryos and newborns when needed. Mice and rats can be...

rodent identification i

Mice and Rats: Ear Tags and Punch Codes

Proper identification of laboratory mice and rats is important in biomedical research. The right animal must be used for each procedure and for data collection. Clear identification helps keep research records accurate and reliable. This page focuses on permanent identification methods for mice and rats. These methods include ear tags, ear punch codes, microchip implantation, tail tattoos for adult mice, and toe tattoos for neonates. Temporary methods such as dyes and marking pens can also be...

rodent identification ii

Rodent ID Methods for Accurate Records

Accurate rodent identification supports reliable animal records and data collection. Research animal records may include simple cage cards or a detailed database with full information on each animal. Individual identification is the key part of keeping those records correct. Mice and rats can be identified by several methods. These include tattooing, microchip placement, and temporary identification methods. Each method serves a different need in research animal management. The procedure also...

compound administration i

Rodent injection routes and restraint methods are key parts of compound administration in mice and rats. When a substance must be injected into an animal, the delivery route and the amount of compound must be chosen with care. The right choice helps match the dose to the protocol. Several factors guide the route of administration. These include the pH of the solution, the volume needed for the desired dose, and the viscosity of the solution. Viscosity means how thick or resistant to flow a...

compound administration ii

Choosing the Right Route for Compound Delivery

Compound delivery is a key part of many animal studies. The route used to give the compound can change how it is absorbed. Careful planning helps make sure the compound is delivered correctly. The substance itself also matters when a route is chosen. Its pH, viscosity, and concentration can all affect which method is best. These properties help guide the choice of administration route in a study.

compound administration iii

Specialized Injection Routes in Mice and Rats

Specialized injection routes in mice and rats are sometimes used when standard compound administration methods are not enough. Some study protocols call for less common routes such as intradermal, intranasal, and intracranial injections. These methods are used in laboratory animals and require careful technique. Intradermal injections place a compound into the skin. Intranasal injections deliver a compound through the nose. Intracranial injections are given into the brain. Because these...

compound administration iv

Specialized Injection Routes in Rodents

Specialized injection routes in laboratory mice and rats include intracardiac, footpad, and retro-orbital administration. These methods are used when a protocol calls for a route that is less common than standard compound delivery methods. Each route requires specialized training to perform correctly. Intracardiac injections deliver into the heart, footpad injections target the paw area, and retro-orbital injections are given around the eye region. Because these procedures are more technical,...

blood withdrawal i

Rodent Blood Collection Methods

Blood collection in mice and rats is a common part of research studies. The method used depends on how much blood is needed, how often samples must be taken, the animal's health, and the technician's skill level. This topic includes three blood withdrawal methods: retro-orbital sinus bleeds, initial tail snip bleeds, and intracardiac bleeds. Each method requires general anesthesia, which means the animal is made unconscious before the procedure begins.

blood withdrawal ii

Rodent Blood Sampling Methods

Blood collection from mice and rats can be done with several methods. The choice depends on the restraint needed, how invasive the procedure is, and whether a general anesthetic is required. These factors help determine which method is best for a given analysis. One older method uses the retro-orbital sinus cavity, which is located behind the eye. This approach has been debated because it may cause tissue damage or even blindness. For that reason, facial vein and submandibular vein bleeding...

anesthesia induction and maintenance

Laboratory Anesthesia and Pain Control

Laboratory anesthesia and pain control are important parts of veterinary care for research animals. The Guide for the Care and Use of Laboratory Animals says that pain assessment and pain relief must be part of that care. Anesthesia means the loss of feeling or sensation.

considerations for rodent surgery 

Aseptic Steps in Rodent Survival Surgery

Aseptic technique is essential for rodent survival surgery. It is used to keep the surgical site as clean as possible and to reduce contamination during the procedure. This approach includes patient preparation, surgeon preparation, and sterilization of instruments and other supplies. It also depends on a clean, controlled environment. Careful planning before surgery helps set up these steps for success. During the operation, animals need close monitoring. After the surgery, postoperative...

diagnostic necropsy and tissue harvest

Rat Necropsy for Tissue Collection

Rat necropsy is a key step for collecting organs and tissues at the end of many animal studies. These final samples are used for data collection time points and later testing. Because the samples are used for analysis, the way they are taken can affect sample quality. Careful collection methods help preserve the organs and tissues for testing. The method of euthanasia, or the procedure used to humanely end the animal's life, can also affect sample quality. This article outlines proper necropsy...

sterile tissue harvest

Aseptic Organ Collection in Rats and Mice

Aseptic organ collection in rats and mice is used to keep harvested tissues free from contamination. The process is important when tissues will be used for cell and tissue cultures. It also supports later protein and RNA analysis, as well as metabolic profiling of tissues. The transcript connects this work to the 3 R's, which were introduced in 1959 by W.M.S. Russell and R.L. Burch in The Principles of Humane Experimental Technique. The 3 R's are replacement, reduction, and refinement in the...

early intervention and pain management

Frühe Intervention und Schmerzmanagement

Alle hier beschriebenen Tierversuche müssen in Übereinstimmung mit den institutionellen Tierschutzrichtlinien durchgeführt und vom IACUC genehmigt werden. Alle Verfahren müssen den Prinzipien der 3Rs—Ersatz, Reduktion und Verfeinerung—folgen und von geschultem Personal durchgeführt werden.  Überwachung von Tieren auf Anzeichen von Schmerzen und Stress Das Erkennen früher Anzeichen von Schmerzen ist für eine ethische Tierforschung unerlässlich. Tiere werden routinemäßig anhand von Verhaltens-,...

humane euthanasia and confirmation of death in rodents

Humane Euthansie und Bestätigung des Todes bei Nagetieren

Alle hier beschriebenen Tierversuche müssen in Übereinstimmung mit den institutionellen Tierschutzrichtlinien durchgeführt und vom IACUC genehmigt werden. Alle Verfahren müssen den Prinzipien der 3Rs – Ersetzung, Reduktion und Verfeinerung – folgen und von geschultem Personal durchgeführt werden. Humane Endpunkte bei Nagetieren sind vordefinierte klinische, Verhaltens- oder physiologische Indikatoren, die signalisieren, dass ein Tier erhebliche Schmerzen, Leid oder einen Gesundheitsrückgang...

habituation and positive reinforcement for rodent handling

Habituierung und positive Verstärkung für den Umgang mit Nagetieren

Alle hier beschriebenen Tierversuche müssen in Übereinstimmung mit den institutionellen Richtlinien zur Tierexperimentellen Ethik durchgeführt und vom IACUC genehmigt werden. Alle Verfahren müssen den Grundsätzen der 3Rs—Ersatz, Reduktion und Verfeinerung—folgen und von geschultem Personal durchgeführt werden. Habituierung und positive Verstärkung sind Verfeinerungsverfahren, die dazu beitragen, Stress bei der routinemäßigen Handhabung und bei experimentellen Eingriffen bei Nagetieren zu...

breeding management in rodent studies

Zuchtmanagement in Nagetierstudien

Alle hier beschriebenen Tierversuche müssen in Übereinstimmung mit den institutionellen Richtlinien der Tierversuchsethik durchgeführt und vom IACUC genehmigt werden. Alle Verfahren müssen den Prinzipien der 3Rs—Ersatz, Reduzierung und Verfeinerung—folgen und von geschultem Personal durchgeführt werden. Die Zuchtverwaltung unterstützt die 3Rs, indem sie unnötige Tierproduktion minimiert und sicherstellt, dass nur die für eine Studie erforderliche Anzahl von Tieren erzeugt wird. Effektive...

transport and acclimatization of rodents for research

Transport und Akklimatisierung von Nagetieren für die Forschung

Alle hier beschriebenen Tierversuche müssen in Übereinstimmung mit den institutionellen Tierschutzrichtlinien durchgeführt und vom IACUC genehmigt werden. Alle Verfahren müssen den Prinzipien der 3Rs—Ersatz, Reduktion und Verfeinerung—folgen und von geschultem Personal durchgeführt werden. Der Transport von Nagetieren für Forschungszwecke erfordert Verfahren, die den Stress minimieren und das Wohlergehen der Tiere während der Beförderung aufrechterhalten, um den Einfluss auf die experimentellen...

environmental enrichment for rodents

Umweltbereicherung für Nagetiere

Alle hier beschriebenen Tierversuche müssen in Übereinstimmung mit den institutionellen Tierschutzrichtlinien durchgeführt und vom IACUC genehmigt werden. Alle Verfahren müssen den Prinzipien der 3Rs – Ersetzung, Reduzierung und Verfeinerung – folgen und von geschultem Personal durchgeführt werden. Umweltbereicherung umfasst Objekte und Praktiken, die natürliche Verhaltensweisen fördern, das psychische Wohlbefinden verbessern und das Wohlergehen von Labornagern fördern. Die Umweltbereicherung...

rodents

Learn how route of administration, dose, pH, volume, and viscosity guide mouse and rat injections, plus the restraint methods used to help prevent tissue damage.

Rodent Injection Routes and Restraint | JoVE K12

HS-LS1-3.

Kay Stewart

Valerie A. Schroeder

University of Notre Dame

Overview

Key Considerations for Compound Administration

Characteristics of Different Injection Techniques

Subcutaneous Injection

Intraperitoneal (IP) Injection

Intramuscular (IM) Injection

Intravenous (IV) Injection via the Tail Vein

Applications

Summary

Characteristics of Life

Biology is a natural science that studies life and living organisms, including their structure, function, development, interactions, evolution, ...

https://cloudfront.jove.com/files/media/science-education/science-education-thumbs/10647.jpg

Cell Structure

Background
Cells represent the most basic biological units of all organisms, whether it be simple, single-celled organisms like bacteria, or large, ...

Visualizing Onion and Cheek Cells
ExpandImmediately before the experiment, wash and peel onion bulbs for the class.
Remove the entire brown outer skin and ...

Visualizing Onion and Human Cells
ExpandIn this experiment you will prepare different types of cells from a plant and animal, onion and human ...

What are Cells?

Cell Diversity

The concept of a cell started with microscopic observations of dead cork tissue by Robert Hooke in 1665. Hooke coined the term &#34;cell&#34; based on the ...

Cytoplasm

The cytoplasm consists of organelles and a framework of protein scaffolds called the cytoskeleton suspended in an aqueous solution, the cytosol. The ...

The Nucleus

The nucleus is a membrane-bound organelle that acts as a control center in a eukaryotic cell. It contains chromosomal DNA, which controls gene expression ...

The Central Dogma

The DNA Helix

Nucleic Acids

DNA as a Genetic Template

Structure of a Gene

A gene is the fundamental unit of heredity. Every individual has two copies of each gene, one inherited from each parent. Although most people contain the ...

Chromosome Structure

Base-pairing and DNA Repair

What is Gene Expression?

A gene is a stretch of DNA that serves as the blueprint for functional RNAs and proteins. Since DNA is comprised&#160; of nucleotides and proteins are ...

RNA Structure

The basic structure of RNA consists of a string of ribonucleotides attached by phosphodiester bonds. Although most RNA is single-stranded, it can form ...

Types of RNA

Three main types of RNA are involved in protein synthesis: messenger RNA (mRNA), transfer RNA (tRNA), and ribosomal RNA (rRNA). These RNAs perform diverse ...

Transcription

Transcription is the synthesis of RNA from a DNA sequence by RNA polymerase. It is the first step in producing a protein from a gene sequence. ...

Translation

Translation is the process of synthesizing proteins from the genetic information carried by messenger RNA (mRNA). Following transcription, it constitutes ...

Ribosomes

Ribosomes translate genetic information encoded by messenger RNA (mRNA) into proteins. Both prokaryotic and eukaryotic cells have ribosomes. Cells that ...

Protein and Protein Structures

Proteins: From Genes to Degradation

From DNA to Protein

The flow of genetic information in cells from DNA to mRNA to protein is described by the central dogma, which states that genes specify the sequence of ...

Protein Folding

Proteins are chains of amino acids linked together by peptide bonds. Upon synthesis, a protein folds into a three-dimensional conformation, critical to ...

An Overview of Gene Expression

Gene expression is the complex process where a cell uses its genetic information to make functional products. This process is regulated at multiple ...

an-introduction-to-caenorhabditis-elegans

An Introduction to Caenorhabditis elegans

Caenorhabditis elegans is a microscopic, soil-dwelling roundworm that has been powerfully used as a model organism since the early 1970&rsquo;s.  It was ...

An Overview of Genetic Analysis

An organism&#8217;s physical traits, or phenotype, are a product of its genotype, which is the combination of alleles (gene variants) inherited from its ...

An Introduction to Cell Death

Necrosis, apoptosis, and autophagic cell death are all manners in which cells can die, and these mechanisms can be induced by different stimuli, such as ...

An Overview of Genetic Engineering

Genetic engineering &#8211; the process of purposefully altering an organism&#8217;s DNA &#8211; has been used to create powerful research tools and model ...

An Introduction to Cell Division

Cell division is the process by which a parent cell divides and gives rise to two or more daughter cells. It is a means of reproduction for single-cell ...

An Overview of Genetics and Disease

Many human diseases are associated with mutations or variations in genetic sequences. Some of these genetic variants are heritable, passed down from ...

an-introduction-to-cellular-and-molecular-neuroscience

An Introduction to Cellular and Molecular Neuroscience

Cellular and molecular neuroscience is one of the newest and fastest growing subdisciplines in neuroscience. By investigating the influences of genes, ...

Annexin V and Propidium Iodide Labeling

Staining with annexin V and propidium iodide (PI) provides researchers with a way to identify different types of cell death&#8212;either necrosis or ...

an-introduction-to-developmental-genetics

An Introduction to Developmental Genetics

Development is the complex process through which a single-celled embryo transforms into a multicellular organism. Developmental processes are guided by ...

Bacterial Transformation: Electroporation

The term &#x201C;transformation&#x201D; refers cellular ingestion of foreign DNA.  In nature, transformation can occur in certain types of bacteria.  In ...

an-introduction-to-molecular-developmental-biology

An Introduction to Molecular Developmental Biology

Molecular signals play a major role in the complex processes occurring during embryonic development. These signals regulate activities such as cell ...

bacterial-transformation-the-heat-shock-method

Bacterial Transformation: The Heat Shock Method

Transformation is the process that occurs when a cell ingests foreign DNA from its surroundings. Transformation can occur in nature in certain types of ...

an-introduction-to-saccharomyces-cerevisiae

An Introduction to Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces cerevisiae (commonly known as baker&rsquo;s yeast) is a single-celled eukaryote that is frequently used in scientific research.  S. ...

Cell Cycle Analysis

Cell cycle refers to the set of events through which a cell grows, replicates its genome, and ultimately divides into two daughter cells through the ...

An Introduction to Transfection

Transfection is the process of inserting genetic material, such as DNA and double stranded RNA, into mammalian cells. The insertion of DNA into a cell ...

Chromatin Immunoprecipitation

Histones are proteins that help organize DNA in eukaryotic nuclei by serving as &#8220;scaffolds&#8221; around which DNA can be wrapped, forming a complex ...

An Overview of Epigenetics

Since the early days of genetics research, scientists have noted certain heritable phenotypic differences that are not due to differences in the ...

community-dna-extraction-from-bacterial-colonies

Community DNA Extraction from Bacterial Colonies

Source: Laboratories of Dr. Ian Pepper and Dr. Charles Gerba - The University of Arizona
Demonstrating Author: Luisa Ikner
Traditional methods of analysis ...

Cytogenetics

Cytogenetics is the field of study devoted to chromosomes, and involves the direct observation of a cell&#8217;s chromosomal number and structure, ...

embryonic-stem-cell-culture-and-differentiation

Embryonic Stem Cell Culture and Differentiation

Culturing embryonic stem (ES) cells requires conditions that maintain these cells in an undifferentiated state to preserve their capacity for self-renewal ...

DNA Gel Electrophoresis

DNA gel electrophoresis is a technique used for the detection and separation of DNA molecules. An electric field is applied to a gel matrix comprised of ...

Enzyme Assays and Kinetics

Enzyme kinetics describes the catalytic effects of enzymes, which are biomolecules that facilitate chemical reactions necessary for living organisms. ...

DNA Ligation Reactions

In molecular biology, ligation refers to the joining of two DNA fragments through the formation of a phosphodiester bond.  An enzyme known as a ligase ...

Construct an explanation based on evidence for how the structure of DNA determines the structure of proteins which carry out the essential functions of life through systems of specialized cells.

HS-LS1-1.

Rodent Injection Routes and Restraint

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