Name: laboratory anesthesia and pain control
Uploaded: 2016-09-14T17:58:01.000Z
Duration: 14 min 1 s
Channel: JoVE
Description: Laboratory anesthesia and pain control are important parts of veterinary care for research animals. The Guide for the Care and Use of Laboratory Animals says that pain assessment and pain relief must be part of that care. Anesthesia means the loss of feeling or sensation.

K12 Standards

new-york-state-science-learning-standards

New York State Science Learning Standards

High School

Life Science

Structure and Function

HS-LS1-2.

Anesthesia Induction and Maintenance

Die richtige Auswahl der Anästhetika für Operationen und anderen schmerzhaften Eingriffen muss von einem Tierarzt ermittelt werden. Dies basiert auf zahlreichen Aspekten, einschließlich Umfang und Dauer des Verfahrens, die Art und Sorte, Alter und den physiologischen Status des Tieres.
Anästhetika stehen als Schnüffelstoffe oder Injektionen. Chirurgische Anästhesie kann mit einer Kombination von injizierbaren und Inhalat Anästhesie durchgeführt werden. 2
(1) Inhalat Anästhesie Induktion
Inhalat Anästhesie umfasst Isofluran, Sevofluran und Desfluran, mit Isofluran am häufigsten verwendet wird. Diese Anästhetika werden immer häufiger verwendet, da mit ihnen, es leichter ist zu kontrollieren, die Tiefe der Narkose. Induktion der Anästhesie mit Inhalation Anästhetika kann erreicht werden, mit einer Glasglocke oder eine Induktion-Kammer, die zu einer Präzision Vaporizer ausgestattet ist.
<ol>
	<li>Glasglocke<ol>
		<li>Ausstattung: Eine Glasglocke oder Austrocknung Jar mit Keramik- oder perforierten Plattform, einen Wattebausch, betäubende Flüssigkeit (Isofluran, Sevofluran oder Desfluran) und einem Abzug ins freie entlüftet.</li>
		<li>Vorbereitung<ol>
			<li>Verwenden Sie die Glasglocke unter eine Haube, und nicht auf der Bank des Personals zu anästhetische Gase zu vermeiden.</li>
			<li>Montieren Sie die Glasglocke mit der Plattform in den Boden, einen Raum zwischen dem Boden des Glases und der Plattform zu schaffen. Dies ist notwendig, das Tier kommen in Kontakt mit Flüssigkeit Narkose zu verhindern.</li>
			<li>Nitril-Handschuhe oder andere undurchlässige Handschuhe tragen den Wattebausch mit Narkose zu sättigen.</li>
			<li>Legen Sie den Wattebausch unter der Plattform in die Glasglocke.</li>
			<li>Befestigen Sie den Deckel auf die Glasglocke zu entweichen von der Narkose Dampf zu verhindern.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Induktion<ol>
			<li>Legen Sie das Tier in die Glasglocke mit Schiebedeckel auf der einen Seite.</li>
			<li>Sobald das Tier in der Dose ist, werden seine Tätigkeit und die Atmung, die Tiefe der Narkose bestimmen muss beachtet.</li>
			<li>Das Tier ist der Narkose Wirkung ausgesetzt.</li>
			<li>Sobald das Tier vollständig betäubt ist, schieben Sie den Deckel auf der einen Seite, wobei ein Raum ausreicht, um die Einführung einer Hand ermöglichen. Erfassen Sie der Schweif, Genick, oder im Nachrichtentext narkotisierten Tier zu, und entfernen Sie es vorsichtig aus der Glasglocke.</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Präzisions-Verdampfer Präzisions-Verdampfer können entweder mit einer Induktion Kammer oder eine Gesichtsmaske verwendet werden. Die Narkose Maschine sollte vor jedem Eingriff besichtigt werden. Sollte die richtige Narkose werden hinzugefügt, wenn niedrig sind. Das scavenging-System sollte überprüft werden, um sicherzustellen, dass die Abgase vollständig entfernt werden. Für passive Abgas Anästhesie Systeme sollten der Aufräumvorgang Kanister abgewogen werden, um festzustellen, ob es noch wirksam ist. Im Allgemeinen ist eine Zunahme an Gewicht von 50 Gramm über die Einwaage der Punkt, an dem die Kanister ausgegeben wird.<ol>
		<li>Ausrüstung<ol>
			<li>Eine Induktion-Kammer, ein Präzisions-Vaporizer, ein Abgas aufräumen Einheit (passiv oder aktiv) und eine flüssige Betäubungsmittel (Isofluran, Sevofluran oder Desfluran, bestimmt die Art der Vaporizer verwendet).</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Vorbereitung<ol>
			<li>Montieren Sie die Induktion-Kammer, so, dass die Eingabe aus dem Verdampfer und der Ausgang das Abgas System aufräumen soll.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Induktion<ol>
			<li>Legen Sie das Tier in der Induktion-Kammer. Einige Kammern haben einen Schiebedeckel, und andere haben einen aufklappbaren Deckel, der Riegel.</li>
			<li>Sobald das Tier in der Kammer ist, die Sauerstoffzufuhr wird gestartet und der Präzision Vaporizer Ebene eine Induktion von 3-4 für Isoflurane eingeschaltet ist. Niedrigeren Narkose Lieferung führt eine längere Induktionszeit.</li>
			<li>Das Tier ist der Narkose Wirkung ausgesetzt.</li>
			<li>Sobald das Tier vollständig betäubt ist, spülen Sie die Kammer mit Sauerstoff vor dem Entfernen des Tieres um Personal Exposition gegenüber anästhetische Gase zu verhindern. Wenn die Induktion Kammer in einer Dampfhaube platziert wird, entfällt Spülung mit Sauerstoff, die Betäubung aus der Kammer vor Eröffnung zu bereinigen.</li>
			<li>Erfassen Sie der Schweif, Genick, oder im Nachrichtentext narkotisierten Tier zu, und entfernen Sie es vorsichtig aus der Kammer.</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Gesichtsmaske<ol>
		<li>Ausstattung gehören ein Nagetier Rumpfspitze oder Maske, ein Präzisions-Vaporizer, ein Abgas aufräumen Einheit (passiv oder aktiv) und eine flüssige Betäubungsmittel (Isofluran, Sevofluran oder Desfluran, bestimmt die Art der Vaporizer verwendet).</li>
		<li>Vorbereitung<ol>
			<li>Montieren Sie die Rumpfspitze oder Maske, so, dass die Eingabe aus dem Verdampfer, und der Ausgang das Abgas System aufräumen soll.</li>
			<li>Nagetiere Narkose Maschinen haben oft als ein-/Ausschalter, die Narkose Dampf Lieferung frei aus der Induktion Kammer Nagetier Rumpfspitze oder Maske wechseln. Stellen Sie sicher, dass dies für die Rumpfspitze Narkose Lieferung korrekt eingestellt ist.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Induktion<ol>
			<li>Da die anästhetische Gase einen unangenehmen Geruch haben, werden viele Tiere gegen maskiert für Induktion. Die bevorzugte Methode ist, die Induktion Box gefolgt von Wartung mit der Rumpfspitze. Sobald das Tier Nase oder Gesicht sicher in der Maske ist, die Sauerstoffzufuhr wird gestartet und der Präzision Vaporizer auf Induktion Ebene 5 für Isoflurane eingeschaltet ist. Niedrigeren Narkose Lieferung führt eine längere Induktionszeit und eine Zunahme der durch das Tier zu kämpfen.</li>
			<li>Es ist zwingend notwendig, dass das Tier für die Atmung, überwacht wird, da zu fester Griff während der Induktion zu Erstickung führen kann.</li>
			<li>Sobald das Tier beginnt sich zu entspannen, die Nase oder die Fläche in der Rumpfspitze oder Maske eingestellt werden, und die Narkose Lieferung reduziert sich auf ein Wartungsniveau von 1,5-0,5 für Isofluran nach völliger Entspannung erreicht wird.</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
(2) Induktion der Anästhesie, die Verwendung von injizierbaren Anästhetika
Injizierbare Anästhetika sind in erster Linie eine Mischung von Ketamin und Beruhigungsmitteln oder Muskelentspannung.
Die häufigen Kombinationen sind: 1) Nagetier Cocktail, bestehend aus Xylazin (20 mg/ml), Ketamin (100 mg/ml), Acepromazine (10 mg/ml) und sterile Kochsalzlösung (0,9 % NaCl); (2) Ketamin/Xylazin 2:1, bestehend aus Ketamin (100 mg/ml), Xylazin (20 mg/ml) und sterile Kochsalzlösung (0,9 % NaCl); und 3) Ketamin/Xylazin Maus Mix, bestehend aus Ketamin (100 mg/ml), Xylazin (20 mg/ml) und sterile Kochsalzlösung (0,9 % NaCl). Bei der Verwendung von Ketamin/Xylazin-Combo sollte Förderung nur mit Ketamin nur, nicht Xylazin, durch die Halbwertszeiten dieser Medikamente erfolgen.
Die Kombination von Ketamin mit Sedativa und/oder Muskelrelaxantien muss als eine Stammlösung vorbereitet von der Einzeldosen gezogen werden können.Die Agenten müssen genau gemessen und verdünnt mit steriler Kochsalzlösung um sicherzustellen, dass die richtige Dosen an Tiere verabreicht werden. Da Ketamin eine kontrollierte Substanz ist, die Einsatzmenge aus den Flaschen ist auf eine "kontrollierte Droge Log" hinzuweisen, und die Mischungen müssen einzelne "kontrollierte Substanz Protokolle." Wenn Sie Mischungen vorbereiten, fügen Sie das Ketamin langsam in die Flasche wie es neigt zu schäumen wenn mit Kraft injiziert. Eine sterilen verschlossenen 20-ml-Flasche ist für die Mischung verwendet. Die Flaschen müssen ordnungsgemäß beschriftet werden, mit dem Namen der Verbindungen, das Datum gemischt, das Ablaufdatum, die Chargennummer Ketamin (wie es eine kontrollierte Substanz ist) und die empfohlene Dosierung. Das Ablaufdatum kann durch das Datum des Inhaltsstoffes am ehesten zu verfallen ermittelt werden (abhängig von den Regeln/Richtlinien der Anlage/Staat). Für genaue Protokollierung von Ketamin müssen die leere Flasche und die gefüllte Flasche abgewogen werden. Dann müssen die Gewichte aufgezeichnet werden, auf dem Etikett des Gemisches und auf das individuelle kontrollierte Substanz Log-Blatt, das auf jede Flasche vorbereitet ist. Ketamin-Mischungen in einer dunklen, temperaturgeführte Gegend Potenz zu speichern.
<ol>
	<li>Vorbereitung von Nagetier Cocktail<ol>
		<li>Ausrüstung für die Herstellung der Narkose Lösung beinhaltet 3 cc Spritzen 12 cc Spritze, 22 g x 1" Nadeln, 1,8 cc von Ketamin injizierbaren 100 mg/ml, 1,8 cc von Xylazin injizierbaren 20 mg/ml, 0,6 cc Acepromazine injizierbaren 10 mg/ml, 15,8 cc sterile Kochsalzlösung für Injektion, und eine Narkose Label.</li>
		<li>Erarbeiten 15,8 cc sterile Kochsalzlösung und injizieren sie in die Flasche. Verwenden Sie die 12 cc Spritze und einer 3 cc Spritze, und beseitigen Sie Luftblasen für genaue Messungen.</li>
		<li>Fügen Sie die Ketamin, Xylazin und Acepromazine bis zur Flasche.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Induktion von Nagetier Cocktail<ol>
		<li>Im Allgemeinen ist Nagetier Cocktail für die Maus Anästhesie verwendet. Durch Variation in Reaktion auf Nagetier Cocktail bei erwachsenen Ratten ist es am besten bei Ratten weniger als 5 Wochen verwendet. Nagetier Cocktail kann in Verbindung mit Inhalation Anästhesie, vor allem bei Ratten verwendet werden.</li>
		<li>Nagetier Cocktail wird in der Regel gegeben, um Mäuse nach Gewicht, mithilfe der folgenden Berechnung: (BW X 10) - 50 = Mikroliter Nagetier Cocktail gegeben werden. Dies variiert je nach Sorte, Alter und Gesundheitszustand.</li>
		<li>Diese Lösung ist nur intraperitoneal gegeben. Wenn intramuskulär injiziert, kann eine schwere Reaktion im Gewebe.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Vorbereitung von Ketamin/Xylazin 2:1<ol>
		<li>Ausrüstung für die Herstellung der Narkose Lösung 3 cc Spritzen, 22 g x 1" Nadeln, umfasst 10 ccm von Ketamin injizierbaren 100 mg/ml, 5 cc von Xylazin injizierbaren 20 mg/ml, steril verschlossenen 20 ml Flasche und eine Narkose Label.</li>
		<li>Fügen Sie die Ketamin und Xylazin bis zur Flasche.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Induktion<ol>
		<li>Ketamin/Xylazin 2:1 dient zur Narkose für Ratten und in Verbindung mit Inhalation Anästhesie verwendet werden.</li>
		<li>Ketamin/Xylazin 2:1 erhält in der Regel ab einer Dosis von 0,3 ccm und erhöhte sich um 0,02 cc mit Narkose Ereignisse nach dem Bilanzstichtag. Dies variiert je nach Sorte, Alter und Gesundheitszustand.</li>
		<li>Ketamin/Xylazin 2:1 ist nur intramuskulär gegeben.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Vorbereitung von Ketamin/Xylazin Maus Mix<ol>
		<li>Ketamin/Xylazin Maus Mix Ausrüstungen für die Herstellung der Narkose Lösung 3 cc Spritzen, 22 g x 1" Nadeln umfasst, 3.6 cc von Ketamin injizierbaren 100 mg/ml, 0,4 ccm Xylazin injizierbaren 20 mg/ml, 16 cc sterile Kochsalzlösung (0,9 % NaCl), eine sterile verschlossenen 20-ml-Flasche, und eine Narkose Label.</li>
		<li>Die Flasche, wodurch eine 9:1 Lösung von Ketamin, Xylazin fügen Sie Ketamin und Xylazin hinzu.</li>
		<li>Die Flasche, wodurch eine 1:4 Mischung von Ketamin/Xylazin 9:1 Saline fügen Sie Saline hinzu.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Induktion von Ketamin/Xylazin Maus Mix<ol>
		<li>Ketamin/Xylazin-Maus-Mix kann auch in Verbindung mit Inhalation Anästhesie verwendet werden.</li>
		<li>Ketamin/Xylazin-Maus-Mix wird in der Regel gegeben, um Mäuse nach Gewicht, mithilfe der folgenden Berechnung: (BW X 10) - 50 = Mikroliter Ketamin/Xylazin Maus Mix gegeben werden. Dies variiert je nach Sorte, Alter und Gesundheitszustand.</li>
		<li>Ketamin/Xylazin-Maus-Mix kann intraperitoneal gegeben werden.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
3. Anästhesie Bewertung
Narkose Tiefe kann beurteilt werden, indem Sie die Reaktion auf verschiedene Reize zu testen. Freiwillige Bewegung ergibt sich aus physikalischen Reize des Körpers. Siehe Tabelle 1 für eine Liste der physikalischen Methoden für Narkose tiefe Bewertung verwendet.
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Methode</td>
			<td>Verfahren</td>
			<td>Antwort</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Zehe Prise</td>
			<td>Erweitern Sie das Bein und isolieren Sie der Riemen zwischen den Zehen zu. Dieser Bereich ist fest eingeklemmt mit den Fingernägeln oder atraumatische Pinzetten.</td>
			<td>Ein positive Reflex wird durch das Zurückziehen des Beines oder den Entzug des Fußes. Das Tier ist nicht an eine chirurgische Ebene der Anästhesie besteht Bein oder Körper Bewegung, Vokalisation oder deutlichen Anstieg Atmungen.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tail Prise</td>
			<td>Die Schwanzspitze ist eingeklemmt, mit den Fingern oder atraumatische Pinzetten.</td>
			<td>Eine positive Reaktion wird durch zucken oder Bewegung der Rute. Das Tier ist nicht an eine chirurgische Ebene der Narkose wenn es Bewegung der Rute, Vokalisation oder deutlichen Anstieg Atmungen.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ohr-Klemme</td>
			<td>Mit den Fingern oder atraumatische Pinzetten, Kneifen Sie die Spitze der Ohrmuschel.</td>
			<td>Eine positive Reaktion schüttelt den Kopf oder die Bewegung der Schnurrhaare nach vorne. Wenn es Bewegung des Kopfes, Schnurrhaare, Vokalisation, oder deutliche Steigerung in Atmungen, das Tier nicht an eine chirurgische Ebene der Anästhesie ist.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Palpebrale reflex</td>
			<td>Berühren Sie mit der Fingerspitze, die medialen Augenwinkel (innere Ecke) des Auges.</td>
			<td>Ein positive Reflex wird durch ein blinken als Reaktion auf die Augenlider zu berühren. Bewegung der Augenlider, Schnurrhaare oder deutlichen Anstieg Atmungen ist, das Tier nicht auf eine chirurgische Ebene der Anästhesie.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hornhaut reflex</td>
			<td>Mit einer Baumwoll-gespitzten Applikator, sanft berühren der Hornhaut (Augapfel).</td>
			<td>Eine positive Reaktion wird durch ein Blinken angezeigt. Bewegung der Augenlider, Schnurrhaare oder deutlichen Anstieg Atmungen ist, das Tier nicht auf eine ausreichend tiefe Ebene der chirurgische Anästhesie.</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>
Tabelle 1. Physikalische Reize Methoden für die Beurteilung der Narkose Tiefe. 2
Physiologische Indikatoren wie Herzfrequenz, Atemfrequenz, Blutdruck, Schleimhaut Farbe und Rekapillarisierungszeit Zeit sollte auch verwendet werden.Während allgemeine Bemerkungen zum Erkennen von Änderungen in der Atemfrequenz der Tiere nützlich sein können, ist um die Herzfrequenz und Blutdruck für tiefe Bewertung nutzen spezieller Ausrüstung erforderlich. Wenn ein EKG zur Verfügung steht, können die Rate und die Stärke der die Herztöne gemessen werden. Für die Messung des Blutdrucks, gibt es eine Vielzahl von Geräten, die über das Heck oder auch über den ganzen Körper ausgestattet sind. Physikalische Reize führt wie in Tabelle 1 beschrieben eine Erhöhung alle drei dieser Parameter.
Die Farbe der Schleimhäute, Augen, Ohren, Mund, Nase, Anus, und -in geringerem Ausmaß-die Pfoten und Rute für Änderungen eingehalten werden. Die Flächen sollten rosa, Angabe ausreichende Atmung und Herzfunktion werden. Wechselt das Tier auf die Stufe IV-Anästhesie, die Atmungen aufhören, was zu Zyanose-durch eine blaue oder graue Farbe-auf die Schleimhäute und der umgebenden Haut.
Rekapillarisierungszeit Zeit ist definiert als die Menge an Zeit, Farbe zu einem externen Kapillare Bett zurück, nachdem es durch Anwendung von Druck über die Fläche blanchiert wurden hat. Ein Applikator-Stick oder einen Finger auf das Zahnfleisch, Ohrmuschel oder Nagelbetten der narkotisierten Tiere gedrückt. Die Anzahl der Sekunden, die es, den blanchierten Bereich dauert wieder eine rosa Farbe sollte nicht mehr als 1-2 Sekunden betragen. Eine erweiterte Nachfüllen Zeitrechnung schlägt einen Rückgang der Herzfrequenz oder Stärke der kardialen Kontraktionen, darauf hinweist, dass das Tier zu tief betäubt werden kann und dem Tode nahe.
Es ist wichtig, mehrere verschiedene Parameter zur Beurteilung der Narkose Tiefe zu nutzen. Mit dem gleichen Fuß oder Ohr für wiederholte Prisen desensibilisieren wird das Gebiet, und die Antwort wird unterdrückt und keine genaue Einschätzung der Narkose Tiefe zu geben. Verwenden Sie alternative Standorte für Zehen und Ohr Bewertungen kneifen. Narkose Tiefe sollte alle 10-30 Minuten während der Operation überprüft werden. 2
Studien haben gezeigt, dass in einem narkotisierten Tier kardiorespiratorische Änderungen gibt. Während mit injizierbaren Drogen betäubt, erleben Sie die Tiere eine stabile Atemfrequenz; Sie zeigen jedoch Variabilität in der Herzleistung. Die Reaktion auf injizierbaren Anästhetika wurde berichtet, zu stark variieren zwischen verschiedenen Stämmen, so ist es schwierig, die Dosierung zu standardisieren. 7 Inhalat Agenten neigen dazu, die Atemfrequenz zu verringern, aber haben einen geringeren Einfluss auf das Herz-Kreislauf-System. Da die Dosierung von Schnüffelstoffen Anästhesie während der gesamten Dauer des Verfahrens leicht angepasst ist, ist es oft die bevorzugte Methode.

Die ordnungsgemäße Verwendung von Anästhetika für Chirurgie oder andere potentiell schmerzhaften Eingriffen ist nicht nur für das Tier Wohlbefinden, sondern auch für die Integrität der wissenschaftlichen Daten gesammelt während des Eingriffs entscheidend. Es gibt viele Variablen dieser Faktor in der Wahl der entsprechenden Narkose Regiments. Die Tiefe der Narkose muss engmaschig überwacht werden, da jedes einzelne Tier anders auf das Medikament reagieren kann. Mit dem Einsatz der richtigen Narkose und sorgfältige Überwac...

einleiten und aufrechterhalten der anästhesie

Quelle: Kay Stewart, RVT, RLATG, Anus; Valerie A. Schroeder, RVT, RLATG. University of Notre Dame, IN
Der Leitfaden für die Pflege und Verwendung von Labortieren ("The Guide") besagt, dass Schmerz Bewertung und Linderung integrale Bestandteile der tierärztlichen Betreuung von Labortieren sind. 1 die Definition der Anästhesie ist der Verlust von Gefühl oder Empfindung. Es ist ein dynamisches Ereignis, die eine Änderung in der Narkose Tiefe in Bezug auf Stoffwechsel, chirurgische Stimulation oder Variationen in der äußeren Umgebung des Tieres.

Einleiten und Aufrechterhalten der Anästhesie

Source: Kay Stewart, RVT, RLATG, CMAR; Valerie A. Schroeder, RVT, RLATG. University of Notre Dame, IN
The Guide for the Care and Use of Laboratory Animals ...

Die Induktion und Aufrechterhaltung der Anästhesie ist ein integraler Bestandteil der tierärztlichen Versorgung von Versuchstieren, die sich einem chirurgischen Eingriff unterziehen. Das Ziel der Anästhesie ist es, das Tier ausreichend zu immobilisieren und alle Schmerzempfindungen zu lindern. Zusätzlich zur Induktion ist eine präzise und konstante Überwachung erforderlich, um die richtige Narkosetiefe während des gesamten Eingriffs sicher aufrechtzuerhalten. In diesem Video werden wir zunächst kurz über die Stufen der Nagetieranästhesie sprechen und welches Stadium man anstreben sollte. Als nächstes werden wir die verschiedenen Induktions- und Erhaltungsmethoden überprüfen, verschiedene Möglichkeiten, um sicherzustellen, dass sich das Tier immer in der gewünschten Narkosephase befindet, und schließlich einige reale Experimente, bei denen verschiedene Anästhetika für verschiedene Zwecke verwendet werden. Beginnen wir mit der Diskussion der Levels. Es gibt vier Stadien der Anästhesie und vier Ebenen innerhalb des dritten Stadiums oder des chirurgischen Stadiums. Im ersten Stadium verliert das Tier die Orientierung. Das zweite Stadium ist gekennzeichnet durch eine unregelmäßige Atemfrequenz und den Verlust des Aufrichtreflexes. In der ersten Ebene des dritten Stadiums fehlen der Lid- und der Schluckreflex. Während der zweiten Ebene gehen die Kehlkopf- und Hornhautreflexe verloren. Bis zu diesem Zeitpunkt hat das Anästhetikum keine Amnesie oder Analgesie ausgelöst. In der dritten Ebene schreiten die Amnesie und Analgesie von teilweise bis vollständig fort, und das Tier wird für einen chirurgischen Eingriff vollständig betäubt. Die dritte Ebene wird auch durch eine Lähmung der Interkostalmuskulatur gekennzeichnet, was zu einer Zwerchfellatmung führt, die eine flache Atmung ist. In der vierten Ebene hat das Tier eine Überdosis erhalten und kann schnell in das vierte Stadium übergehen, in dem es zu einer vollständigen Lähmung sowohl der Interkostalmuskulatur als auch des Zwerchfells kommt, was zu einem Atemstillstand und schließlich zum Tod führen kann. Anästhetika sind als Inhalationsmittel oder Injektionsmittel erhältlich, und ein Tierarzt muss entscheiden, was für den durchzuführenden Eingriff verwendet werden soll. Diese Wahl basiert auf zahlreichen Aspekten, darunter: das Ausmaß und die Dauer des Eingriffs, die Art und der Stamm, das Alter und der physiologische Zustand des Tieres. Die Klasse der häufig verwendeten Inhalationsanästhetika umfasst Verbindungen wie Isofluran, Sevofluran und Desfluran. Diese Verbindungen ermöglichen eine einfache Kontrolle der Anästhesietiefe. Es gibt einige Optionen für Geräte, aus denen man wählen kann, um Inhalationsanästhetika zu verabreichen. Eine der Optionen ist eine Glasglocke, die unter der Haube - und nicht auf der Werkbank - verwendet werden sollte, um eine Exposition des Personals gegenüber den Narkosegasen zu vermeiden. Montieren Sie das Glas mit einer perforierten Plattform aus Keramik oder Kunststoff, so dass zwischen dem Boden des Glases und der Plattform ein Raum entsteht. Tränken Sie anschließend mit undurchlässigen Handschuhen einen Wattebausch mit Betäubungsmittel und legen Sie ihn so unter die Plattform, dass er am Boden des Glases aufliegt. Sichern Sie dann sofort den Deckel, um ein Austreten des Betäubungsdampfes zu verhindern. Um das Tier zu platzieren, schieben Sie den Deckel zur Seite, führen Sie das Tier ein und sichern Sie es sofort. Beobachten Sie anschließend die Aktivität und die Atmung, um die Tiefe der Anästhesie zu bestimmen, und setzen Sie das Tier dem Inhalationsmittel aus, um zu wirken. Beachten Sie, dass die Plattform als Barriere dient und verhindert, dass das Tier in direkten Kontakt mit dem flüssigen Betäubungsmittel kommt. Eine Alternative zur Glocke ist eine Induktionskammer, die in Verbindung mit einer Präzisionsverdampfermaschine verwendet wird, die mit einem Sauerstofftank verbunden ist. Der erste Schritt besteht darin, sicherzustellen, dass der Verdampfer mit einer angemessenen Menge des flüssigen Anästhetikums gefüllt ist. Überprüfen Sie als Nächstes das Abgasreinigungssystem. Wenn es sich um das üblicherweise verwendete passive System handelt, wiegen Sie den Kanister, um festzustellen, ob es noch wirksam ist. In der Regel ist eine Erhöhung um fünfzig Gramm über dem Ausgangsgewicht der Punkt, an dem der Kanister verbraucht wird. Der nächste Schritt ist die Montage der Induktionskammer. Stellen Sie sicher, dass der Eingang vom Verdampfer und der Ausgang vom Abgasreinigungssystem stammt. Setzen Sie das Tier zunächst in die Induktionskammer und verschließen Sie den Deckel. Sobald sich das Tier in der Kammer befindet, starten Sie zuerst den Sauerstofffluss mit einer Geschwindigkeit von 1 Liter pro Minute und stellen Sie dann die Einstellung des Präzisionsverdampfers auf einen Induktionswert von 3-4 % für Isofluran ein. Setzen Sie das Tier wie eine Glocke dem Narkosemittel aus, um zu wirken. Sobald das Tier vollständig betäubt ist, spülen Sie die Kammer mit Sauerstoff, indem Sie das Isofluran ausschalten, bevor Sie das Tier vorsichtig entfernen. Damit soll verhindert werden, dass das Personal Anästhesiegaen ausgesetzt ist. Eine weitere Methode zur Narkoseeinleitung ist über einen Nasenkonus oder eine Gesichtsmaske, die ebenfalls mit dem Präzisionsverdampfer verbunden ist. Da Narkosegase jedoch einen unangenehmen Geruch haben, können Tiere Einwände dagegen haben, für die Induktion maskiert zu werden. Darüber hinaus besteht auch die Gefahr, durch zu festes Greifen Erstickungsgefahr zu verursachen. Daher ist die bevorzugte Methode, die Induktionsbox oder die Glocke zu verwenden, um eine Anästhesie einzuleiten, gefolgt von einer Wartung mit dem Nasenkonus. In den meisten Fällen ist die Anordnung so, dass sowohl der Kegel als auch die Induktionskammer mit demselben Verdampfer verbunden sind, mit einem Schalter dazwischen, um die Abgabe des Anästhesiedampfes von der Induktionskammer zum Nasenkegel und umgekehrt umzuschalten. Nachdem Sie das Tier in der Kammer betäubt haben, befestigen Sie sein Gesicht im Kegel und schalten Sie den Schalter am Schlauch um, um den Gasstrom zum Nasenkonus umzuleiten. Überwachen Sie die Atmung und reduzieren Sie nach Bestätigung, dass das Tier entspannt ist, das Narkosemittel auf ein Erhaltungsniveau von 0,5 - 1,5 %. Tragen Sie auch eine Augensalbe auf die Augen auf, um ein Austrocknen der Hornhaut zu verhindern. Für injizierbare Anästhetika eine Mischung aus Ketamin und anderen Beruhigungsmitteln oder Muskelrelaxanzien, einschließlich Xylazin und/oder Acepromazin. Mit diesen Compounds können verschiedene Kombinationen hergestellt werden. Im Text unten finden Sie häufig verwendete Verhältnisse. Beachten Sie, dass Ketamin eine kontrollierte Substanz ist und daher die verwendete Menge im Protokoll der kontrollierten Drogen vermerkt werden muss und die Mischungen ihre eigenen Protokolle für kontrollierte Substanzen haben müssen. Abhängig von der Spezies, dem Alter und dem Gesundheitszustand des Tieres werden die Mischung und die Dosis des Anästhetikums ausgewählt und die Lösung kann intraperitoneal oder intramuskulär injiziert werden. In der Regel werden Injektions- und Inhalationsanästhetika in Kombination verwendet, um eine chirurgische Anästhesie zu erreichen. Jetzt, da Sie wissen, wie man eine Anästhesie einleitet, lernen wir etwas über die Beurteilung der Narkosetiefe, die alle 10-30 Minuten überwacht werden muss, um sicherzustellen, dass das Tier während des Eingriffs nicht geschädigt wird. Es gibt verschiedene Methoden, dies bei Nagetieren zu tun. Eine häufig verwendete Methode ist das Zehenkneifen. Strecken Sie das Bein des Tieres aus und isolieren Sie das Gurtband zwischen den Zehen. Kneifen Sie dann den Bereich entweder mit den Fingernägeln oder einer atraumatischen Pinzette fest zusammen. Ein positiver Reflex wird durch das Zurückziehen des Beins oder das Zurückziehen des Fußes angezeigt. Eine andere Methode ist der Tail Pinch, der an der Spitze des Schwanzes durchgeführt wird. Eine positive Reaktion zeigt sich durch Zucken oder Schwanzbewegungen. Sie können auch die Spitze der Ohrmuschel einklemmen, und wenn der Kopf schüttelt oder sich die Schnurrhaare nach vorne bewegen, befindet sich das Tier nicht in der chirurgischen Anästhesieebene. Um die Narkosetiefe zu überprüfen, kann man auch den medialen Canthus oder den inneren Augenwinkel berühren, um den Lidreflex auszulösen, der durch ein Blinzeln als Reaktion auf die Berührung der Augenlider angezeigt wird. Selbst wenn es zu Bewegungen der Augenlider, Schnurrhaare oder einer deutlichen Zunahme der Atmung kommt, befindet sich das Tier nicht in der chirurgischen Ebene der Anästhesie. Zuletzt kann man den Hornhautreflex überprüfen, indem man die Hornhaut mit einem behandschuhten Finger oder einem Applikator mit Wattespitze berührt. Eine positive Antwort wird durch ein Blinken angezeigt. Es ist wichtig, zwischen den Stellen zu wechseln, um die Narkosetiefe zu beurteilen. Die Verwendung desselben Zehs oder Ohrs für wiederholtes Einklemmen desensibilisiert den Bereich und die Reaktion wird unterdrückt und gibt keine genaue Beurteilung der Anästhesietiefe. Zusätzlich zu diesen Methoden zur Beurteilung physikalischer Reize sollte man auch die physiologischen Indikatoren überwachen, einschließlich der Herzfrequenz, der Atemfrequenz, des Blutdrucks, der Schleimhautfarbe und der Kapillarauffüllzeit. Während allgemeine Beobachtungen nützlich sein können, um Veränderungen der Atemfrequenz zu erkennen, können spezielle Geräte wie ein Elektrokardiograph verwendet werden, um die Herzfrequenz für die Tiefenbeurteilung zu nutzen. Für die Messung des Blutdrucks gibt es eine Vielzahl von Geräten, die über dem Schwanz oder sogar über den gesamten Körper angebracht werden können. Die Farbe der Schleimhäute, der Augen, der Ohren, des Mundes, der Nase, des Anus, der Pfoten und des Schwanzes kann ebenfalls auf die Narkosetiefe hinweisen. Diese Bereiche sollten rosa sein, was auf eine angemessene Atmung und Herzfrequenz hinweist. Um die Nachfüllzeit der Kapillaren zu überprüfen, drücken Sie auf die Ohrmuschel der betäubten Tiere und zählen Sie die Anzahl der Sekunden, die es dauert, bis der blanchierte Bereich wieder eine rosa Farbe annimmt. Dies sollte nicht länger als 1 bis 2 Sekunden dauern. Eine verlängerte Nachfüllzeit deutet auf eine Verringerung der Herzfrequenz oder der Stärke der Herzkontraktion hin, was darauf hindeutet, dass das Tier möglicherweise zu tief anästhesiert und dem Tod nahe ist. Nachdem das Tier aus der Narkose genommen wurde, sollte es nicht in die Haltungseinrichtung zurückgebracht werden, bis es sich von der Narkose erholt hat, es sei denn, es wird kontinuierlich im Stallbereich überwacht. Nachdem wir nun die Prinzipien und Verfahren der Induktion und Aufrechterhaltung der Anästhesie bei Nagetieren kennengelernt haben, schauen wir uns einige der häufigsten Anwendungen von Anästhetika in der heutigen biomedizinischen Forschung an. Die wahrscheinlich häufigste Anwendung für die Nagetieranästhesie ist vor und während der Operation. Hier wollten die Forscher zum Beispiel ein Modell für einen Schlaganfall entwickeln, der durch die Bildung von Blutgerinnseln im Gehirn verursacht wird. Um dies zu erreichen, leiteten sie bei Mäusen eine Anästhesie ein und bohrten dann den Schädel, um ein dünnes Fenster zu schaffen. Und während das Tier noch sediert war, injizierten die Wissenschaftler einen lichtempfindlichen Farbstoff in den Blutkreislauf. Anschließend induzierten sie mit Hilfe eines Lasers eine Photoaktivierung durch den gebohrten Schädel, um die Bildung eines Gerinnsels im kranialen Gefäßsystem zu bewirken. Ein weiterer Fall, in dem eine Nagetieranästhesie erforderlich ist, ist die Durchführung physiologischer Analysen. Zum Beispiel verwenden Wissenschaftler häufig EKG-Elektroden an anästhesierten Tieren, um die Herzaktivität zu überwachen. Oder sie verwenden Ultraschallsonden, um die Geschwindigkeit der Zwerchfellbewegung zu bestimmen und die Atemfrequenz genauer zu quantifizieren. Schließlich ist die Verwendung einer Anästhesie obligatorisch, wenn Experimente zum Überleben in utero durchgeführt werden. Zum Beispiel die In-utero-Elektroporation - eine Methode, bei der eine schwangere Frau betäubt wird, ein Schnitt gemacht wird, um die sich entwickelnden Embryonen freizulegen, und Elektroden verwendet werden, um die embryonale zelluläre Aufnahme des injizierten genetischen Materials zu induzieren. Sie haben gerade das Video von JoVE über die Verabreichung und Aufrechterhaltung der Anästhesie gesehen. Da die Nagetieranästhesie die Durchführung einer so breiten Palette biologischer Experimente erleichtert, ist es unerlässlich, dass jeder Wissenschaftler die Fähigkeit besitzt, die richtige Anästhesietiefe während eines Experiments zu induzieren und aufrechtzuerhalten. Wie immer vielen Dank fürs Zuschauen!

Education

Lehre

JoVE Science Education

Basic Biology

Biologie-Grundlagen

Lab Animal Research

Labortierforschung

Rodents

Nagetiere

laboratory anesthesia and pain control

Laboratory anesthesia and pain control are important parts of veterinary care for research animals. The Guide for the Care and Use of Laboratory Animals says that pain assessment and pain relief must be part of that care. Anesthesia means the loss of feeling or sensation.

Laboratory Anesthesia and Pain Control

rodent handling and restraint techniques

Minimizing Stress in Mouse and Rat Handling

Mouse and rat handling can create stress, even when the procedure is brief. Cage changing and other noninvasive tasks can raise heart rate, blood pressure, and serum corticosterone levels. These changes may last for several hours. Restraint for injections and blood withdrawal can also affect the animals and may influence scientific data. Because of this, proper training is needed when working with mice and rats. The goal is to reduce the effect of handling on the animals as much as possible. <br...

basic care procedures

Caring for Research Mice and Rats

Research mice and rats need careful housing, feeding, and handling. These animals make up over 90% of the animals used for biomedical research, so their care can strongly affect experiment results. Both immunocompetent animals, which have a normal immune response, and immunocompromised animals need proper support during studies. Some research animals have weakened immune systems and need extra steps to stay healthy. Common examples include naturally occurring immunocompromised mice and mice...

fundamentals of breeding and weaning

Mouse and Rat Breeding Methods

Mouse and rat breeding methods are used in biomedical research to supply animals for laboratory studies. Many research facilities buy mice from commercial breeders, but some also breed mice and rats in-house. In-house breeding can reduce costs and give researchers more options for their studies. Breeding animals in the facility also lets researchers manage genetics and timing. They can plan pregnancies to match research needs and work with embryos and newborns when needed. Mice and rats can be...

rodent identification i

Mice and Rats: Ear Tags and Punch Codes

Proper identification of laboratory mice and rats is important in biomedical research. The right animal must be used for each procedure and for data collection. Clear identification helps keep research records accurate and reliable. This page focuses on permanent identification methods for mice and rats. These methods include ear tags, ear punch codes, microchip implantation, tail tattoos for adult mice, and toe tattoos for neonates. Temporary methods such as dyes and marking pens can also be...

rodent identification ii

Rodent ID Methods for Accurate Records

Accurate rodent identification supports reliable animal records and data collection. Research animal records may include simple cage cards or a detailed database with full information on each animal. Individual identification is the key part of keeping those records correct. Mice and rats can be identified by several methods. These include tattooing, microchip placement, and temporary identification methods. Each method serves a different need in research animal management. The procedure also...

compound administration i

Rodent Injection Routes and Restraint

Rodent injection routes and restraint methods are key parts of compound administration in mice and rats. When a substance must be injected into an animal, the delivery route and the amount of compound must be chosen with care. The right choice helps match the dose to the protocol. Several factors guide the route of administration. These include the pH of the solution, the volume needed for the desired dose, and the viscosity of the solution. Viscosity means how thick or resistant to flow a...

compound administration ii

Choosing the Right Route for Compound Delivery

Compound delivery is a key part of many animal studies. The route used to give the compound can change how it is absorbed. Careful planning helps make sure the compound is delivered correctly. The substance itself also matters when a route is chosen. Its pH, viscosity, and concentration can all affect which method is best. These properties help guide the choice of administration route in a study.

compound administration iii

Specialized Injection Routes in Mice and Rats

Specialized injection routes in mice and rats are sometimes used when standard compound administration methods are not enough. Some study protocols call for less common routes such as intradermal, intranasal, and intracranial injections. These methods are used in laboratory animals and require careful technique. Intradermal injections place a compound into the skin. Intranasal injections deliver a compound through the nose. Intracranial injections are given into the brain. Because these...

compound administration iv

Specialized Injection Routes in Rodents

Specialized injection routes in laboratory mice and rats include intracardiac, footpad, and retro-orbital administration. These methods are used when a protocol calls for a route that is less common than standard compound delivery methods. Each route requires specialized training to perform correctly. Intracardiac injections deliver into the heart, footpad injections target the paw area, and retro-orbital injections are given around the eye region. Because these procedures are more technical,...

blood withdrawal i

Rodent Blood Collection Methods

Blood collection in mice and rats is a common part of research studies. The method used depends on how much blood is needed, how often samples must be taken, the animal's health, and the technician's skill level. This topic includes three blood withdrawal methods: retro-orbital sinus bleeds, initial tail snip bleeds, and intracardiac bleeds. Each method requires general anesthesia, which means the animal is made unconscious before the procedure begins.

blood withdrawal ii

Rodent Blood Sampling Methods

Blood collection from mice and rats can be done with several methods. The choice depends on the restraint needed, how invasive the procedure is, and whether a general anesthetic is required. These factors help determine which method is best for a given analysis. One older method uses the retro-orbital sinus cavity, which is located behind the eye. This approach has been debated because it may cause tissue damage or even blindness. For that reason, facial vein and submandibular vein bleeding...

anesthesia induction and maintenance

Laboratory anesthesia and pain control are important parts of veterinary care for research animals. The Guide for the Care and Use of Laboratory Animals says that pain assessment and pain relief must be part of that care. Anesthesia means the loss of feeling or sensation.

considerations for rodent surgery 

Aseptic Steps in Rodent Survival Surgery

Aseptic technique is essential for rodent survival surgery. It is used to keep the surgical site as clean as possible and to reduce contamination during the procedure. This approach includes patient preparation, surgeon preparation, and sterilization of instruments and other supplies. It also depends on a clean, controlled environment. Careful planning before surgery helps set up these steps for success. During the operation, animals need close monitoring. After the surgery, postoperative...

diagnostic necropsy and tissue harvest

Rat Necropsy for Tissue Collection

Rat necropsy is a key step for collecting organs and tissues at the end of many animal studies. These final samples are used for data collection time points and later testing. Because the samples are used for analysis, the way they are taken can affect sample quality. Careful collection methods help preserve the organs and tissues for testing. The method of euthanasia, or the procedure used to humanely end the animal's life, can also affect sample quality. This article outlines proper necropsy...

sterile tissue harvest

Aseptic Organ Collection in Rats and Mice

Aseptic organ collection in rats and mice is used to keep harvested tissues free from contamination. The process is important when tissues will be used for cell and tissue cultures. It also supports later protein and RNA analysis, as well as metabolic profiling of tissues. The transcript connects this work to the 3 R's, which were introduced in 1959 by W.M.S. Russell and R.L. Burch in The Principles of Humane Experimental Technique. The 3 R's are replacement, reduction, and refinement in the...

early intervention and pain management

Frühe Intervention und Schmerzmanagement

Alle hier beschriebenen Tierversuche müssen in Übereinstimmung mit den institutionellen Tierschutzrichtlinien durchgeführt und vom IACUC genehmigt werden. Alle Verfahren müssen den Prinzipien der 3Rs—Ersatz, Reduktion und Verfeinerung—folgen und von geschultem Personal durchgeführt werden.  Überwachung von Tieren auf Anzeichen von Schmerzen und Stress Das Erkennen früher Anzeichen von Schmerzen ist für eine ethische Tierforschung unerlässlich. Tiere werden routinemäßig anhand von Verhaltens-,...

humane euthanasia and confirmation of death in rodents

Humane Euthansie und Bestätigung des Todes bei Nagetieren

Alle hier beschriebenen Tierversuche müssen in Übereinstimmung mit den institutionellen Tierschutzrichtlinien durchgeführt und vom IACUC genehmigt werden. Alle Verfahren müssen den Prinzipien der 3Rs – Ersetzung, Reduktion und Verfeinerung – folgen und von geschultem Personal durchgeführt werden. Humane Endpunkte bei Nagetieren sind vordefinierte klinische, Verhaltens- oder physiologische Indikatoren, die signalisieren, dass ein Tier erhebliche Schmerzen, Leid oder einen Gesundheitsrückgang...

habituation and positive reinforcement for rodent handling

Habituierung und positive Verstärkung für den Umgang mit Nagetieren

Alle hier beschriebenen Tierversuche müssen in Übereinstimmung mit den institutionellen Richtlinien zur Tierexperimentellen Ethik durchgeführt und vom IACUC genehmigt werden. Alle Verfahren müssen den Grundsätzen der 3Rs—Ersatz, Reduktion und Verfeinerung—folgen und von geschultem Personal durchgeführt werden. Habituierung und positive Verstärkung sind Verfeinerungsverfahren, die dazu beitragen, Stress bei der routinemäßigen Handhabung und bei experimentellen Eingriffen bei Nagetieren zu...

breeding management in rodent studies

Zuchtmanagement in Nagetierstudien

Alle hier beschriebenen Tierversuche müssen in Übereinstimmung mit den institutionellen Richtlinien der Tierversuchsethik durchgeführt und vom IACUC genehmigt werden. Alle Verfahren müssen den Prinzipien der 3Rs—Ersatz, Reduzierung und Verfeinerung—folgen und von geschultem Personal durchgeführt werden. Die Zuchtverwaltung unterstützt die 3Rs, indem sie unnötige Tierproduktion minimiert und sicherstellt, dass nur die für eine Studie erforderliche Anzahl von Tieren erzeugt wird. Effektive...

transport and acclimatization of rodents for research

Transport und Akklimatisierung von Nagetieren für die Forschung

Alle hier beschriebenen Tierversuche müssen in Übereinstimmung mit den institutionellen Tierschutzrichtlinien durchgeführt und vom IACUC genehmigt werden. Alle Verfahren müssen den Prinzipien der 3Rs—Ersatz, Reduktion und Verfeinerung—folgen und von geschultem Personal durchgeführt werden. Der Transport von Nagetieren für Forschungszwecke erfordert Verfahren, die den Stress minimieren und das Wohlergehen der Tiere während der Beförderung aufrechterhalten, um den Einfluss auf die experimentellen...

environmental enrichment for rodents

Umweltbereicherung für Nagetiere

Alle hier beschriebenen Tierversuche müssen in Übereinstimmung mit den institutionellen Tierschutzrichtlinien durchgeführt und vom IACUC genehmigt werden. Alle Verfahren müssen den Prinzipien der 3Rs – Ersetzung, Reduzierung und Verfeinerung – folgen und von geschultem Personal durchgeführt werden. Umweltbereicherung umfasst Objekte und Praktiken, die natürliche Verhaltensweisen fördern, das psychische Wohlbefinden verbessern und das Wohlergehen von Labornagern fördern. Die Umweltbereicherung...

rodents

Explore how anesthesia supports pain control in laboratory animals, including why pain assessment and relief are key parts of veterinary care.

Laboratory Anesthesia and Pain Control | JoVE K12

HS-LS1-3.

Kay Stewart

Valerie A. Schroeder Schroeder

University of Notre Dame

Overview

Levels of Anesthesia

Anesthesia Induction Procedures: Inhalation and Injection

Anesthetic Depth Assessment

Applications

Summary

Characteristics of Life

Biology is a natural science that studies life and living organisms, including their structure, function, development, interactions, evolution, ...

https://cloudfront.jove.com/files/media/science-education/science-education-thumbs/10647.jpg

Cell Structure

Background
Cells represent the most basic biological units of all organisms, whether it be simple, single-celled organisms like bacteria, or large, ...

Visualizing Onion and Cheek Cells
ExpandImmediately before the experiment, wash and peel onion bulbs for the class.
Remove the entire brown outer skin and ...

Visualizing Onion and Human Cells
ExpandIn this experiment you will prepare different types of cells from a plant and animal, onion and human ...

What are Cells?

Cell Diversity

The concept of a cell started with microscopic observations of dead cork tissue by Robert Hooke in 1665. Hooke coined the term &#34;cell&#34; based on the ...

Cytoplasm

The cytoplasm consists of organelles and a framework of protein scaffolds called the cytoskeleton suspended in an aqueous solution, the cytosol. The ...

The Nucleus

The nucleus is a membrane-bound organelle that acts as a control center in a eukaryotic cell. It contains chromosomal DNA, which controls gene expression ...

The Central Dogma

The DNA Helix

Nucleic Acids

DNA as a Genetic Template

Structure of a Gene

A gene is the fundamental unit of heredity. Every individual has two copies of each gene, one inherited from each parent. Although most people contain the ...

Chromosome Structure

Base-pairing and DNA Repair

What is Gene Expression?

A gene is a stretch of DNA that serves as the blueprint for functional RNAs and proteins. Since DNA is comprised&#160; of nucleotides and proteins are ...

RNA Structure

The basic structure of RNA consists of a string of ribonucleotides attached by phosphodiester bonds. Although most RNA is single-stranded, it can form ...

Types of RNA

Three main types of RNA are involved in protein synthesis: messenger RNA (mRNA), transfer RNA (tRNA), and ribosomal RNA (rRNA). These RNAs perform diverse ...

Transcription

Transcription is the synthesis of RNA from a DNA sequence by RNA polymerase. It is the first step in producing a protein from a gene sequence. ...

Translation

Translation is the process of synthesizing proteins from the genetic information carried by messenger RNA (mRNA). Following transcription, it constitutes ...

Ribosomes

Ribosomes translate genetic information encoded by messenger RNA (mRNA) into proteins. Both prokaryotic and eukaryotic cells have ribosomes. Cells that ...

Protein and Protein Structures

Proteins: From Genes to Degradation

From DNA to Protein

The flow of genetic information in cells from DNA to mRNA to protein is described by the central dogma, which states that genes specify the sequence of ...

Protein Folding

Proteins are chains of amino acids linked together by peptide bonds. Upon synthesis, a protein folds into a three-dimensional conformation, critical to ...

An Overview of Gene Expression

Gene expression is the complex process where a cell uses its genetic information to make functional products. This process is regulated at multiple ...

an-introduction-to-caenorhabditis-elegans

An Introduction to Caenorhabditis elegans

Caenorhabditis elegans is a microscopic, soil-dwelling roundworm that has been powerfully used as a model organism since the early 1970&rsquo;s.  It was ...

An Overview of Genetic Analysis

An organism&#8217;s physical traits, or phenotype, are a product of its genotype, which is the combination of alleles (gene variants) inherited from its ...

An Introduction to Cell Death

Necrosis, apoptosis, and autophagic cell death are all manners in which cells can die, and these mechanisms can be induced by different stimuli, such as ...

An Overview of Genetic Engineering

Genetic engineering &#8211; the process of purposefully altering an organism&#8217;s DNA &#8211; has been used to create powerful research tools and model ...

An Introduction to Cell Division

Cell division is the process by which a parent cell divides and gives rise to two or more daughter cells. It is a means of reproduction for single-cell ...

An Overview of Genetics and Disease

Many human diseases are associated with mutations or variations in genetic sequences. Some of these genetic variants are heritable, passed down from ...

an-introduction-to-cellular-and-molecular-neuroscience

An Introduction to Cellular and Molecular Neuroscience

Cellular and molecular neuroscience is one of the newest and fastest growing subdisciplines in neuroscience. By investigating the influences of genes, ...

Annexin V and Propidium Iodide Labeling

Staining with annexin V and propidium iodide (PI) provides researchers with a way to identify different types of cell death&#8212;either necrosis or ...

an-introduction-to-developmental-genetics

An Introduction to Developmental Genetics

Development is the complex process through which a single-celled embryo transforms into a multicellular organism. Developmental processes are guided by ...

Bacterial Transformation: Electroporation

The term &#x201C;transformation&#x201D; refers cellular ingestion of foreign DNA.  In nature, transformation can occur in certain types of bacteria.  In ...

an-introduction-to-molecular-developmental-biology

An Introduction to Molecular Developmental Biology

Molecular signals play a major role in the complex processes occurring during embryonic development. These signals regulate activities such as cell ...

bacterial-transformation-the-heat-shock-method

Bacterial Transformation: The Heat Shock Method

Transformation is the process that occurs when a cell ingests foreign DNA from its surroundings. Transformation can occur in nature in certain types of ...

an-introduction-to-saccharomyces-cerevisiae

An Introduction to Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces cerevisiae (commonly known as baker&rsquo;s yeast) is a single-celled eukaryote that is frequently used in scientific research.  S. ...

Cell Cycle Analysis

Cell cycle refers to the set of events through which a cell grows, replicates its genome, and ultimately divides into two daughter cells through the ...

An Introduction to Transfection

Transfection is the process of inserting genetic material, such as DNA and double stranded RNA, into mammalian cells. The insertion of DNA into a cell ...

Chromatin Immunoprecipitation

Histones are proteins that help organize DNA in eukaryotic nuclei by serving as &#8220;scaffolds&#8221; around which DNA can be wrapped, forming a complex ...

An Overview of Epigenetics

Since the early days of genetics research, scientists have noted certain heritable phenotypic differences that are not due to differences in the ...

community-dna-extraction-from-bacterial-colonies

Community DNA Extraction from Bacterial Colonies

Source: Laboratories of Dr. Ian Pepper and Dr. Charles Gerba - The University of Arizona
Demonstrating Author: Luisa Ikner
Traditional methods of analysis ...

Cytogenetics

Cytogenetics is the field of study devoted to chromosomes, and involves the direct observation of a cell&#8217;s chromosomal number and structure, ...

embryonic-stem-cell-culture-and-differentiation

Embryonic Stem Cell Culture and Differentiation

Culturing embryonic stem (ES) cells requires conditions that maintain these cells in an undifferentiated state to preserve their capacity for self-renewal ...

DNA Gel Electrophoresis

DNA gel electrophoresis is a technique used for the detection and separation of DNA molecules. An electric field is applied to a gel matrix comprised of ...

Enzyme Assays and Kinetics

Enzyme kinetics describes the catalytic effects of enzymes, which are biomolecules that facilitate chemical reactions necessary for living organisms. ...

DNA Ligation Reactions

In molecular biology, ligation refers to the joining of two DNA fragments through the formation of a phosphodiester bond.  An enzyme known as a ligase ...

explant-culture-for-developmental-studies

Explant Culture for Developmental Studies

Explant culture is a technique in which living cells or tissues are removed from an embryo for continued development outside of the organism. This ex vivo ...

Construct an explanation based on evidence for how the structure of DNA determines the structure of proteins which carry out the essential functions of life through systems of specialized cells.

HS-LS1-1.

Laboratory Anesthesia and Pain Control

Description

Transcript

Tags

More videos by Standards