Name: rodent injection routes and restraint
Uploaded: 2015-07-24T15:42:00.000Z
Duration: 15 min 5 s
Channel: JoVE

K12 Standards

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New York State Science Learning Standards

High School

Life Science

Structure and Function

HS-LS1-2.

Compound Administration I

1. inyección subcutánea <ol><li>refrena el ratón mediante la sujeción con una mano sostenga manualmente. Una vez entendido, permite el ratón para descansar sobre una mesa u otra superficie segura. Asegúrese de evitar la presión sobre el cuerpo del ratón.</li>
	<li>Descansar el talón de la mano sobre la mesa para evitar excesiva peso en el ratón que puede dificultar la respiración. Ratones pueden también ser asegurados en un dispositivo comercial. Para las ratas, es mejor usar un dispositivo de restricción comercial.</li>
	<li>Agarrar la piel y tire hacia arriba para crear una tienda de la piel. Si utiliza un dispositivo de sujeción, pinzas se requiera captar la piel a través de la ranura en la parte superior.</li>
	<li>Insertar la aguja paralela a la columna vertebral, dirigida a la cabeza en la base de la doblez de la piel de la tienda. Dirigir la aguja de la cabeza para evitar la posibilidad de pinchazos en el cráneo, como el hueso del cráneo del ratón es muy delgado. Las ratas tienen la tendencia a la parte trasera de su cabeza, que podría causar la inyección para colocarse en los músculos del cuello.</li>
	<li>Coloque el bisel de la aguja hacia arriba para permitir un deslizamiento suave en la piel. Tenga en cuenta que se inserta la aguja por debajo de los dedos sujetando la piel. Para mejorar la seguridad cuando fuesen artículos de inyección, la piel está agarrada con pinzas, eliminando así la posibilidad de lesiones accidentales de aguja.</li>
	<li>Tire hacia atrás el émbolo para verificar la colocación correcta. Si el aire es aspirado en la jeringa, indica que la punta de la aguja no se coloca debajo de la piel y tendrá que ser retirado y colocado de nuevo. Si hay presión cuando el émbolo se jala hacia atrás, indica la colocación correcta de la aguja y la inyección puede proceder.</li>
	<li>Inyectar la sustancia lentamente con un movimiento constante. Para evitar la pérdida del artículo inyección, hacer una pausa después de la inyección, gire ligeramente la aguja bajo la piel y pellizcar la piel en el sitio de la inyección mientras retira la aguja.</li>
</ol> <img alt="Figure 1" src="/files/ftp_upload/10198/10198fig1.jpg"> figura 1. La inyección subcutánea en los ratones.
 2. inyección intraperitoneal <ol><li>el método de sujeción manual con una sola mano se utiliza para esta técnica de inyección en ratones. Ajustar la mano que quede colocado lo suficientemente alta en el cuello para evitar que gire el ratón.</li>
	<li>Agarre la piel floja en la nuca del cuello entre el pulgar y el dedo índice.</li>
	<li>Estabilizar los cuartos traseros, ya sea fijando la piel a lo largo de la parte posterior entre el segundo, tercero y cuarto dedos y la base del pulgar, o colocando la cola entre los dedos terceros y cuarto.</li>
	Inyección de <li>IP en la rata requiere dos personas, uno para sujetar la rata y el otro para realizar la inyección.
	<ol><li>Alcance la rata sobre los hombros usando el dedo índice y medio a cada lado del cuello y la palma en la parte posterior. El pulgar y los dedos terceros y cuarto deben rodear el pecho para evitar el movimiento hacia adelante o hacia atrás. La posición de los dedos a cada lado del cuello evita que la rata de girar su cabeza.</li>
		<li>La rata de levantar y girar para dejar expuesto el abdomen ventral.</li>
		<li>Estabilizar los cuartos traseros sujetando los pies y la cola bien y extiende lejos del cuerpo.</li>
	</ol></li> <li>Coloque el ratón o rata para exponer el abdomen, asegurando que se enfrenta a hacia arriba.</li>
	<li>El animal de la inclinación con la cabeza hacia abajo en un ángulo 30°, para permitir que los intestinos a caer hacia adelante.</li>
	<li>Lugares de inyección son los siguientes: <ol><li>el área a inyectar cranially está rodeado de una línea imaginaria que se extiende horizontalmente por todo el cuerpo en la parte superior de la cadera (de flanco a flanco).</li>
		<li>La línea media es la frontera intermedia, reconocida como donde se encuentra con pelo que crece en direcciones opuestas. En los animales sin pelo, la línea media se extiende en línea recta desde el xifoides hasta el ano.</li>
		<li>La frontera lateral es una línea desde la parte superior de la cadera para el prepucio en el varón y desde la parte superior de la cadera y los pezones en la mujer.</li>
		<li>Esto proporciona un área triangular de inyección segura.</li>
	</ol></li> <li>La inyección de un artículo dentro de los hitos <ol><li>insertar una aguja perpendicular a la columna vertebral, de la línea media, en el triángulo como se describió anteriormente. Colocar la aguja en un ángulo de 90° respecto al plano del cuerpo permite inyecciones seguras utilizando ambos lados del abdomen. Esto es especialmente importante con múltiples inyecciones, ya que minimiza el trauma tisular permitiendo la alternancia de sitios de inyección.</li>
		<li>Cuando la aguja se coloca en un ángulo de 90°, lo hará " pop " en el abdomen, lo que permite más fácil determinación de la profundidad. Esto también es una referencia visual y táctil que la aguja esté bien colocada.</li>
		<li>Aspirar la jeringa para asegurar la colocación dentro de la cavidad peritoneal y no dentro de la vejiga urinaria, intestino o estructuras vasculares.</li>
		<li>Evitar inyectar caudalmente en el ratón macho para evitar administrar el artículo en el saco escrotal. Evitar inyectar en la teta de la hembra para evitar trauma.</li>
	</ol></li></ol> <img alt="Figure 2" src="/files/ftp_upload/10198/10198fig2.jpg"> figura 2. Los lugares para inyección intraperitoneal en ratones.
 3. inyección intramuscular <ol><li>restricción de esta técnica para ratones y ratas requiere dos personas o el uso de un tubo de sujeción. Se describe aquí es un método de una sola persona utilizando un dispositivo de restricción.
	<ol><li>Coloque el animal en el dispositivo de seguridad.</li>
		<li>Una vez que el animal está en el tubo, sujete la cola para colocar el animal con las patas traseras del tubo.</li>
		<li>Agarre la piel del flanco en la porción craneal del fémur para extender la pierna y evitar que la rodilla flexión.</li>
		<li>Colocar el dispositivo de sujeción para que está parado sobre la mesa con el animal ' cabeza apuntando hacia abajo, o acostado sobre la mesa apuntando hacia el cuerpo del técnico para permitir la estabilización del dispositivo mientras se realiza la inyección.</li>
		<li>Lugares de inyección es las siguientes: pierna el ratón y la rata son pequeños con los músculos glúteos (los músculos caudales del muslo) que comprende la mayor masa muscular en las extremidades, la segunda mayor masa muscular en las extremidades es el gastrocnemio (músculo del becerro). La inyección se realiza desde el aspecto caudal de la pierna.
		<ol><li>Localizar el glúteo músculo masa posterior en el fémur. Puede ser palpated el hueso y el músculo grande se siente fácilmente.</li>
			<li>Nota que la línea media de la pierna de la cara posterior del punto del corvejón a la cola. El pelo tiene a menudo una cresta donde viene junto, como crece en direcciones opuestas de las superficies lateral e interiores.</li>
			Las inyecciones de <li>se hacen hacia el aspecto lateral del muslo de la línea media. Esto reduce la probabilidad de dañar los nervios y los vasos sanguíneos situados en la superficie medial de la Leg</li>
			<li>Las inyecciones en el gastrocnemio se realizan desde la cara posterior y con la consideración cuidadosa de la localización de la vena safena lateral.</li>
		</ol></li> <li>La inyección de un artículo dentro de los hitos <ol><li>Insertar la aguja perpendicular al fémur fuera de la línea media, como se describe anteriormente, a una profundidad máxima de 5 mm para el músculo glúteo y un máximo de 3 mm para el gastrocnemio.</li>
			<li>Para evitar traumatismo en el músculo, el extraño movimiento de la aguja en el tejido debe ser prevenido. La jeringa debe celebrarse de una manera que no es necesario cambiar la posición de la mano para realizar la inyección.</li>
			<li>Aspirar la jeringa para asegurar la colocación dentro del músculo y no en un vaso sanguíneo.</li>
			<li>Inyectar el material en un movimiento fluido y constante. No se inyecte rápidamente tal que permita la expansión lenta del músculo. Inyección rápida puede causar trauma de tejido.</li>
		</ol></li></ol></li></ol> <img alt="Figure 3" src="/files/ftp_upload/10198/10198fig3.jpg"> figura 3. La inyección intramuscular en el músculo glúteo en ratas.
 4. inyección intravenosa utilizando la vena de la cola <ol><li>sujeción del animal es dependiente sobre si el animal está anestesiado o despierto.
	Animales <ol><li>uso un tubo de sujeción cilíndrico para conscientes ratones o ratas, excepto sin pelo o desnudo. Debido a la naturaleza grasa de los animales sin pelo, es difícil de colocar y quitar de las restrainers acrílico, ya que su piel tiende a adherirse al plástico rígido. Por lo tanto, se utiliza un cono de plástico flexible.</li>
		<li>Otros dispositivos de inyección incluyen plataformas iluminadas, climatizadas plataformas y conos de plástico rígidos donde el ratón se mantiene en el cono estrictamente con la tensión en la cola.</li>
		<li>Anesthetized ratones pueden no necesitar seguridad.</li>
		<li>Caliente el cuerpo entero o sólo la cola para la vasodilatación de los vasos de la cola.
		<ol><li>Caliente todo el cuerpo con una almohadilla de calefacción eléctrica en media o una manta de agua circulante con.</li>
			<li>Colocar el animal en el dispositivo de sujeción, envuelto en la fuente de calor.</li>
			<li>Observar de cerca el animal y retire de la fuente de calor tan pronto como se dilatan los vasos sanguíneos. Calentamiento de cuerpo entero también puede lograrse con el uso de una lámpara de calor dirigido en una jaula. Cuando se utiliza una lámpara de calor los animales estrechamente respete, ya que es fácil sobrecalentarlos.</li>
			<li>Al calentamiento de cuerpo entero no es factible, la cola solo la calefacción se logra utilizando compresas calientes de un calentador de toallas, botella de agua caliente, o sumergir la cola en agua caliente. PRECAUCIÓN debe ser empleada para evitar que se queme la cola porque el agua caliente, caliente toallas y bolsas de agua caliente no tienen controles de temperatura. Es común que las fuentes de calor que se sobrecalienta inicialmente. Estas fuentes de calor también enfríen rápidamente.</li>
		</ol></li> <li>El uso de aceite de tejido es otra forma de mejorar la visualización de los vasos.
		<ol><li>Sumergir un aplicador con punta de algodón en el aceite del tejido y el pozo de petróleo de la porción de la cola que se apoderó de estabilización se aplica. El aceite del tejido hace que los vasos que aparecen más claramente definidos.</li>
			<li>Allí es aceites no tóxicos comercialmente disponibles que contienen un producto químico en la formulación que genera calentamiento de la piel y vasodilatación con la evaporación. Estos aceites se aplican, y después de unos momentos, cuando los vasos son accesibles, el exceso de aceite es enjugado con una bola de algodón.</li>
			<li>Todos los aceites pueden dificultar la cola hacer.</li>
			<li>Uso de aceites, la inyección debe hacerse inmediatamente en la visualización de los vasos.</li>
		</ol></li> <li>Lugares de inyección son los siguientes: <ol><li>las venas laterales de la cola se encuentran en los lados de la cola. También hay barcos que recorren nuestra dorsal y ventral de la cola que no es adecuado para propósitos de la inyección.</li>
			<li>El animal en el limitador puede girarse para que las naves laterales son hacia arriba para facilitar la inyección. Por otra parte, la cola puede dar vuelta para traer los vasos en una posición más aceptable para la inyección.</li>
			<li>Los vasos son muy superficiales. Llegan a ser más superficiales que llegan a la base de la cola.</li>
		</ol></li> <li>Inyección de un artículo en la vena de la cola requiere habilidad. Para evitar traumatismos a los vasos sanguíneos, el extraño movimiento de la aguja debe evitarse. La jeringa se celebra de una manera que no es necesario cambiar la posición de la mano para realizar la inyección.
		<ol><li>Posición de la cola para que la nave es visible y sostenido bajo tensión. No aplique una tensión excesiva en la cola, o se puede estirar el vaso y el flujo de sangre disminuido.</li>
			<li>Colocar la aguja directamente sobre el recipiente hasta distal como sea posible.</li>
			<li>Aplique una ligera presión y deslice la aguja en el paralelo de cola a las vértebras. Evitar la pesca de la aguja hacia abajo, como la aguja transecto del buque. La aguja debe ser visible en el vaso como se es avanzado por lo menos 2 mm en el lumen.</li>
			<li>Inyectar el material en un movimiento lento y fluido para evitar la ruptura de la vasija.</li>
			<li>Prestar especial atención a la cola durante la inyección. Si correctamente en el recipiente, el material de la inyección que fluye en el recipiente se siente con ninguna resistencia. El vaso sanguíneo debe blanquear como la sangre es empujada hacia fuera por el material de inyección.</li>
			<li>Si la aguja no está en el recipiente, habrá fuerte resistencia al inyectar. Si inyectar con fuerza, el material llenará el espacio subcutáneo y la cola se globo. Parar inmediatamente, como un material diseñado para ser inyectado por vía intravenosa puede ser cáustico para los tejidos circundantes. Retire la aguja y trate de otra inyección más cranially en la cola.</li>
			<li>Después de la inyección acertada, retire la aguja y aplique presión en el sitio de la inyección para asegurar buena hemostasia antes de regresar el animal a la jaula.</li>
		</ol></li></ol></li></ol> <img alt="Figure 4" src="/files/ftp_upload/10198/10198fig4.jpg"> figura 4. Inyección en la vena en los ratones de cola.

Administración de la sustancia es un componente común de protocolos experimentales que utilizan animales. Al elegir una ruta de entrega, deben deliberaron muchos factores, incluyendo la competencia técnica de los individuos responsables de los animales, el tamaño del animal, la viscosidad del fluido y la cantidad de dosificación a administrar. Una cuidadosa consideración de estos factores aumentará el bienestar de los animales y el resultado total del experimento.

administración de compuestos i

Fuente: Kay Stewart, RVT, RLATG, CMAR; Valerie A. Schroeder, RVT, RLATG. Universidad de Notre Dame, en como muchos protocolos de investigación requieren que una sustancia se inyecta en un animal, debe determinarse con precisión la ruta de entrega y la cantidad de la sustancia. Hay varias vías de administración disponibles en el ratón y la rata. Que ruta usar está determinada por varios factores de la sustancia que se inyecta: el pH de la solución, el volumen requerido para la dosis deseada y la viscosidad de la solución. Daño tisular severa puede ocurrir si una sustancia se administra incorrectamente. Este video se ve en los diversos métodos de sujeción y detalles técnicos para los más de uso general rutas inyección.

Administración de compuestos I

Source: Kay Stewart, RVT, RLATG, CMAR; Valerie A. Schroeder, RVT, RLATG. University of Notre Dame, IN
As many research protocols require that a substance ...

La administración de compuestos es a menudo un componente integral de un estudio con animales, y es necesario evaluar muchos factores para garantizar que el compuesto se administre correctamente y de manera humana. Las dos vías de administración principales son la enteral, a través del tracto digestivo, y la parenteral, fuera del tracto digestivo. La principal diferencia es que, si el compuesto se administra por vía enteral, se somete a un metabolismo hepático ANTES de entrar en el torrente sanguíneo. Mientras que, a través de cualquier vía parenteral, como la intravenosa o la intramuscular, la sustancia se salta este primer paso a través del hígado, lo que suele dar lugar a una mayor biodisponibilidad. En este primer vídeo de la serie sobre la administración de compuestos, empezaremos por hablar de los factores que afectan a la elección de la vía de administración en general. Y luego revisaremos los métodos de inyección parenteral más comunes, incluyendo la subcutánea abreviada como SC o SubQ, intraperitoneal o IP, intramuscular o IM, e intravenosa AKA IV. Comencemos por revisar algunas cosas que uno debe tener en cuenta antes de realizar cualquier tipo de procedimiento de administración de compuestos. El primer paso es preparar la solución o suspensión que se va a inyectar, y la primera consideración fundamental para la preparación de sustancias es la esterilidad. Para evitar la introducción de patógenos en el animal, es importante que el material de inyección, así como las agujas y jeringas que se vayan a utilizar, sean estériles. La segunda consideración es la compatibilidad fisiológica. Una solución dosificadora, ya sea administrada por vía enteral o parenteral, debe estar fisiológicamente tamponada a un pH adecuado para que el compuesto se absorba correctamente y para evitar lesiones tisulares. El tercer factor es la viscosidad del artículo de inyección, que desempeña un papel fundamental en la selección de la aguja. Por lo general, se utilizan agujas de calibre 20 a 30 en los procedimientos de administración parenteral para ratones y ratas. Los cubos de estas agujas suelen estar codificados por colores para facilitar su identificación. La solución debe tener suficiente fluidez para pasar a través de al menos una de estas agujas. Si la solución puede pasar por más de uno, entonces, en general, la elección es el calibre más pequeño posible. El siguiente factor es el volumen de administración que afecta a la selección de la jeringa. Al igual que las agujas, se debe seleccionar la jeringa más pequeña posible necesaria para una dosificación precisa con graduaciones correctas. El calibre de la aguja y el volumen de administración también dependen de la vía y de la especie, el tamaño y la edad del animal que se administra. Consulte la Tabla 1 a continuación para revisar los valores relacionados con las rutas discutidas en este video. La última consideración importante es la tasa de absorción, que varía significativamente con cada vía de administración y puede desempeñar un papel en la selección del método más adecuado. Ahora, hablemos de las características peculiares de los métodos de inyección empleados habitualmente. La inyección SC o SubQ coloca el material entre las capas de la piel y el músculo en un espacio virtual creado al levantar la piel. Esto permite una inyección segura de mayores volúmenes, pero la tasa de absorción es más lenta que otras vías, proporcionando un efecto más sostenido. Durante la administración de IP, el compuesto se inyecta directamente en la cavidad peritoneal. Este es otro método común utilizado para entregar grandes volúmenes de solución. Aunque una inyección IP se considera administración parenteral, el mecanismo de absorción es en realidad más similar a la dosificación oral. Una inyección IM administra un compuesto directamente en el glúteo o en el músculo gastrocnemio. Una sustancia inyectada IM se absorbe rápidamente debido al abundante número de vasos dentro del tejido muscular, lo que podría convertirla en una ruta preferida en algunos casos. La inyección incorrecta o repetida en el músculo puede causar daño a los nervios que resulta en parálisis o necrosis muscular. Por último, la vía de administración más eficaz es una inyección intravenosa en la vena de la cola del animal, ya que la sustancia se introduce directamente en el sistema circulatorio. Tenga en cuenta que el compuesto debe inyectarse en una de las venas laterales de la cola caudal ubicadas a los lados de la cola. Hay un vaso que corre a lo largo de la línea media ventral de la cola, que no es adecuado para fines de inyección. Ahora que hemos discutido los antecedentes, aprendamos los procedimientos, comenzando con las inyecciones SC. En el caso de los ratones, toma al animal por la cola y déjalo descansar sobre otra superficie segura, como la tapa de una barra de alambre. Luego, sujete manualmente al animal levantando la piel alrededor del cuello, formando una carpa. A continuación, coloque al animal sobre la mesa con las patas traseras apoyadas en la superficie y apoye la palma de su mano sobre la mesa para evitar un peso excesivo sobre el animal que pueda comprometer la respiración. Para inyectar, levante la jeringa con la solución que se va a inyectar y dirija la aguja paralela a la columna vertebral y lejos de la cabeza para evitar la posibilidad de punciones en el cráneo. A continuación, inserte la aguja con el bisel hacia arriba, lo que permite un suave deslizamiento por la piel. Tire hacia atrás del émbolo para verificar la colocación correcta de la aguja. Si hay contrapresión cuando se tira del émbolo hacia atrás, entonces la aguja está en la posición correcta. Si se introduce aire en el émbolo, será necesario reposicionar la aguja. Después de confirmar que la aguja está colocada correctamente, inyecte lentamente con un movimiento constante. Haga una pausa después de la inyección y gire la aguja ligeramente debajo de la piel para evitar la pérdida del artículo de inyección. Luego, pellizque la piel en el lugar de la inyección y retire la aguja. Este mismo método se puede utilizar en ratas destetadas. En el caso de las ratas adultas, primero hay que sujetar al animal con un dispositivo, cuyo procedimiento se explica en el vídeo "Fundamentos de la manipulación y la sujeción" de esta colección. Luego, se puede realizar la inyección de SC de la misma manera que se hace en ratones. A continuación, aprenderemos cómo realizar una inyección de IP. En ratones, use la técnica de sujeción con las dos manos para sujetar manualmente al animal, nuevamente descrita en el video "Conceptos básicos de manejo y sujeción". Asegúrese de que su mano no dominante esté colocada lo suficientemente alto en el cuello para evitar que el animal se gire. Estabilice los cuartos traseros colocando la cola entre el tercer y el cuarto dedo o sujetando la piel firmemente entre los dedos restantes y la base del pulgar. A continuación, coloque al animal para exponer su abdomen. Inclina el animal con la cabeza apuntando hacia abajo a un 30? ángulo para permitir que los intestinos caigan hacia adelante. El punto de referencia de la inyección se puede delinear así: dibuja una línea imaginaria que se extienda horizontalmente a través del cuerpo, en la parte superior de la cadera, de flanco a flanco. A continuación, dibuja el borde medial, o la línea media, a lo largo de la línea donde se une el cabello que crece en direcciones opuestas. Por último, imagina el borde lateral, que es una línea desde la parte superior de las caderas hasta el prepucio en los machos y siguiendo los pezones en las hembras. Esto proporciona el área triangular para una inyección IP segura. El siguiente método del que hablaremos es la inyección IM. La sujeción en esta técnica, tanto para ratones como para ratas, requiere dos personas o el uso de un tubo de sujeción. Aquí, describiremos el método de una sola persona que utiliza un dispositivo de restricción. Primero, coloca al animal en el tubo y con las patas traseras hacia afuera, tira de la cola para posicionar al animal. A continuación, agarre la piel del flanco en la porción craneal del fémur para extender la pierna y evitar que la babilla se doble. Luego, coloque el dispositivo de restricción para permitir la visualización del sitio de inyección. Para identificar el punto de referencia de los glúteos, localice la masa muscular de los glúteos posterior al fémur. El hueso se puede palpar y el músculo grande se siente fácilmente. Fíjate en la línea media que va desde la punta del corvejón hasta la cola. A menudo se puede ver la cresta donde se unen los cabellos de las superficies lateral e interna, creciendo en direcciones opuestas. Por lo general, las inyecciones se realizan hacia la cara lateral de la línea media. El gastrocnemio es el músculo de la pantorrilla y la inyección en este músculo también se realiza mejor desde la cara posterior. Para el músculo glúteo, en el punto de referencia ubicado, inserte la aguja a una profundidad máxima de unos 5 mm. Evite reposicionar la jeringa durante la inyección para evitar daños musculares. A continuación, aspire para asegurarse de que la colocación esté dentro del músculo, no de un vaso sanguíneo. Y, por último, inyecte el material de manera lenta y constante, ya que la inyección rápida causará un trauma tisular. Retire la aguja de forma perpendicular siguiendo el mismo recorrido que el de la inserción. Para el músculo gastrocnemio, inserte la aguja a una profundidad máxima de 3 mm y realice la inyección de la misma manera que para el músculo glúteo. Por último, aprendamos cómo realizar una inyección intravenosa en las venas de la cola de los roedores. El mismo método es aplicable tanto para ratones como para ratas. Coloque al animal en un tubo de sujeción cilíndrico y caliente todo el cuerpo del animal utilizando una almohadilla térmica eléctrica ajustada a MEDIO durante unos 2-5 minutos. Continúe calentando al animal, hasta que los vasos sanguíneos se dilaten, es decir, sean notablemente más grandes. Recuerde, las venas laterales de la cola caudal se encuentran a los lados de la cola. La arteria que se encuentra en la línea media ventral no es adecuada para la inyección. Gire el dispositivo de sujeción y coloque la cola de manera que las venas laterales de la cola queden hacia arriba y se mantengan bajo tensión. No aplique una tensión excesiva o el vaso puede estirarse y el flujo sanguíneo disminuir. Coloque el bisel de la aguja directamente sobre el vaso sanguíneo lo más distalmente posible y aplique una ligera presión para deslizar la aguja en la cola paralela a la columna vertebral. Inyecte el material con un movimiento lento y fluido y observe que el vaso se blanquea a medida que la sangre es expulsada por el material de inyección. Si la aguja no está colocada correctamente en el vaso, habrá una fuerte resistencia al inyectar, y si inyecta con fuerza, el material llenará el espacio subcutáneo y la cola se hinchará. Deténgase inmediatamente, ya que el material, que está diseñado para inyectarse por vía intravenosa, puede ser cáustico para los tejidos circundantes. Retire la aguja e intente otra inyección más craneal en la cola. Después de una inyección exitosa, retire la aguja y aplique presión en el sitio de la inyección para asegurar una buena hemostasia antes de devolver al animal a la jaula. Ahora que está familiarizado con los métodos de inyección comunes, veamos algunas aplicaciones de estas vías de administración, además de la administración de medicamentos. En varios experimentos, se inyecta a ratones un patógeno específico para estudiar la infección. Aquí, los investigadores utilizaron la ruta subcutánea para introducir bacterias resistentes a los antibióticos que causan lesiones, y el tamaño de estas lesiones sirvió como lectura de la virulencia del patógeno. Varios científicos están interesados en estudiar la distribución y la supervivencia de las células madre después de la parto sistémico. En este estudio, los investigadores realizaron la inyección en la vena de la cola de células madre neurales marcadas genéticamente en un modelo animal de esclerosis múltiple y localizaron la distribución de las células inyectadas en las regiones de la médula espinal y el cerebro. En otro experimento, los investigadores inyectaron mioblastos marcados con fluorescencia por vía intramuscular en un modelo animal de distrofia muscular. A continuación, se realizó la bioluminiscencia para analizar el éxito de la implantación de las células madre. Por último, las inyecciones también se pueden utilizar para generar modelos animales. Estos científicos realizaron la inyección intraperitoneal de dimetilnitrosamina, una potente toxina hepática, en ratas Wistar macho para generar un modelo animal de fibrosis hepática, que luego se utilizó para estudiar el desarrollo de la enfermedad hepática. Acabas de ver la primera entrega de JoVE sobre la administración de compuestos en la que se analizan las inyecciones parenterales comúnmente empleadas. Recuerde que la ruta de administración óptima se basa en varios factores, como el pH, el volumen y la viscosidad de la solución inyectada. Y cada técnica tiene ventajas y desventajas, que deben ser consideradas en relación con las necesidades experimentales. Como siempre, ¡gracias por mirar!

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Biología básica

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Roedores

rodent injection routes and restraint

Rodent injection routes and restraint methods are key parts of compound administration in mice and rats. When a substance must be injected into an animal, the delivery route and the amount of compound must be chosen with care. The right choice helps match the dose to the protocol.

Several factors guide the route of administration. These include the pH of the solution, the volume needed for the desired dose, and the viscosity of the solution. Viscosity means how thick or resistant to flow a liquid is. These details help determine which injection route is most suitable.

Correct technique is important because poor administration can cause severe tissue damage. The video also shows the restraint methods used for these common injection routes. It focuses on the technical steps needed for mouse and rat injections.

Rodent Injection Routes and Restraint

rodent handling and restraint techniques

Minimizing Stress in Mouse and Rat Handling

Mouse and rat handling can create stress, even when the procedure is brief. Cage changing and other noninvasive tasks can raise heart rate, blood pressure, and serum corticosterone levels. These changes may last for several hours. Restraint for injections and blood withdrawal can also affect the animals and may influence scientific data. Because of this, proper training is needed when working with mice and rats. The goal is to reduce the effect of handling on the animals as much as possible. <br...

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Caring for Research Mice and Rats

Research mice and rats need careful housing, feeding, and handling. These animals make up over 90% of the animals used for biomedical research, so their care can strongly affect experiment results. Both immunocompetent animals, which have a normal immune response, and immunocompromised animals need proper support during studies. Some research animals have weakened immune systems and need extra steps to stay healthy. Common examples include naturally occurring immunocompromised mice and mice...

fundamentals of breeding and weaning

Mouse and Rat Breeding Methods

Mouse and rat breeding methods are used in biomedical research to supply animals for laboratory studies. Many research facilities buy mice from commercial breeders, but some also breed mice and rats in-house. In-house breeding can reduce costs and give researchers more options for their studies. Breeding animals in the facility also lets researchers manage genetics and timing. They can plan pregnancies to match research needs and work with embryos and newborns when needed. Mice and rats can be...

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Mice and Rats: Ear Tags and Punch Codes

Proper identification of laboratory mice and rats is important in biomedical research. The right animal must be used for each procedure and for data collection. Clear identification helps keep research records accurate and reliable. This page focuses on permanent identification methods for mice and rats. These methods include ear tags, ear punch codes, microchip implantation, tail tattoos for adult mice, and toe tattoos for neonates. Temporary methods such as dyes and marking pens can also be...

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Accurate rodent identification supports reliable animal records and data collection. Research animal records may include simple cage cards or a detailed database with full information on each animal. Individual identification is the key part of keeping those records correct. Mice and rats can be identified by several methods. These include tattooing, microchip placement, and temporary identification methods. Each method serves a different need in research animal management. The procedure also...

compound administration i

Rodent injection routes and restraint methods are key parts of compound administration in mice and rats. When a substance must be injected into an animal, the delivery route and the amount of compound must be chosen with care. The right choice helps match the dose to the protocol. Several factors guide the route of administration. These include the pH of the solution, the volume needed for the desired dose, and the viscosity of the solution. Viscosity means how thick or resistant to flow a...

compound administration ii

Choosing the Right Route for Compound Delivery

Compound delivery is a key part of many animal studies. The route used to give the compound can change how it is absorbed. Careful planning helps make sure the compound is delivered correctly. The substance itself also matters when a route is chosen. Its pH, viscosity, and concentration can all affect which method is best. These properties help guide the choice of administration route in a study.

compound administration iii

Specialized Injection Routes in Mice and Rats

Specialized injection routes in mice and rats are sometimes used when standard compound administration methods are not enough. Some study protocols call for less common routes such as intradermal, intranasal, and intracranial injections. These methods are used in laboratory animals and require careful technique. Intradermal injections place a compound into the skin. Intranasal injections deliver a compound through the nose. Intracranial injections are given into the brain. Because these...

compound administration iv

Specialized Injection Routes in Rodents

Specialized injection routes in laboratory mice and rats include intracardiac, footpad, and retro-orbital administration. These methods are used when a protocol calls for a route that is less common than standard compound delivery methods. Each route requires specialized training to perform correctly. Intracardiac injections deliver into the heart, footpad injections target the paw area, and retro-orbital injections are given around the eye region. Because these procedures are more technical,...

blood withdrawal i

Rodent Blood Collection Methods

Blood collection in mice and rats is a common part of research studies. The method used depends on how much blood is needed, how often samples must be taken, the animal's health, and the technician's skill level. This topic includes three blood withdrawal methods: retro-orbital sinus bleeds, initial tail snip bleeds, and intracardiac bleeds. Each method requires general anesthesia, which means the animal is made unconscious before the procedure begins.

blood withdrawal ii

Rodent Blood Sampling Methods

Blood collection from mice and rats can be done with several methods. The choice depends on the restraint needed, how invasive the procedure is, and whether a general anesthetic is required. These factors help determine which method is best for a given analysis. One older method uses the retro-orbital sinus cavity, which is located behind the eye. This approach has been debated because it may cause tissue damage or even blindness. For that reason, facial vein and submandibular vein bleeding...

anesthesia induction and maintenance

Laboratory Anesthesia and Pain Control

Laboratory anesthesia and pain control are important parts of veterinary care for research animals. The Guide for the Care and Use of Laboratory Animals says that pain assessment and pain relief must be part of that care. Anesthesia means the loss of feeling or sensation.

considerations for rodent surgery 

Aseptic Steps in Rodent Survival Surgery

Aseptic technique is essential for rodent survival surgery. It is used to keep the surgical site as clean as possible and to reduce contamination during the procedure. This approach includes patient preparation, surgeon preparation, and sterilization of instruments and other supplies. It also depends on a clean, controlled environment. Careful planning before surgery helps set up these steps for success. During the operation, animals need close monitoring. After the surgery, postoperative...

diagnostic necropsy and tissue harvest

Rat Necropsy for Tissue Collection

Rat necropsy is a key step for collecting organs and tissues at the end of many animal studies. These final samples are used for data collection time points and later testing. Because the samples are used for analysis, the way they are taken can affect sample quality. Careful collection methods help preserve the organs and tissues for testing. The method of euthanasia, or the procedure used to humanely end the animal's life, can also affect sample quality. This article outlines proper necropsy...

sterile tissue harvest

Aseptic Organ Collection in Rats and Mice

Aseptic organ collection in rats and mice is used to keep harvested tissues free from contamination. The process is important when tissues will be used for cell and tissue cultures. It also supports later protein and RNA analysis, as well as metabolic profiling of tissues. The transcript connects this work to the 3 R's, which were introduced in 1959 by W.M.S. Russell and R.L. Burch in The Principles of Humane Experimental Technique. The 3 R's are replacement, reduction, and refinement in the...

early intervention and pain management

Intervención temprana y manejo del dolor

Todos los procedimientos con animales descritos aquí deben realizarse de acuerdo con las directrices éticas institucionales para animales y ser aprobados por el IACUC. Todos los procedimientos deben seguir los principios de las 3R—Reemplazo, Reducción y Refinamiento—y deben ser realizados por personal capacitado.  Monitoreo de los animales para detectar signos de dolor y angustia Reconocer los primeros signos de dolor es esencial para la investigación ética en animales. Los animales se...

humane euthanasia and confirmation of death in rodents

Eutanasia Humanitaria y Confirmación de la Muerte en Roedores

Todos los procedimientos con animales descritos aquí deben realizarse de acuerdo con las directrices institucionales de ética animal y ser aprobados por el IACUC. Todos los procedimientos deben seguir los principios de las 3R: Reemplazo, Reducción y Refinamiento, y deben ser realizados por personal capacitado. Los puntos finales humanitarios en roedores son indicadores clínicos, conductuales o fisiológicos predefinidos que señalan que un animal está experimentando dolor significativo, angustia...

habituation and positive reinforcement for rodent handling

Acostumbramiento y refuerzo positivo para el manejo de roedores

Todos los procedimientos con animales descritos aquí deben realizarse de acuerdo con las directrices éticas institucionales para animales y ser aprobados por el IACUC. Todos los procedimientos deben seguir los principios de las 3R—Reemplazo, Reducción y Refinamiento—y deben ser realizados por personal capacitado. La habituación y el refuerzo positivo son estrategias de refinamiento que ayudan a reducir el estrés durante el manejo rutinario y los procedimientos experimentales en roedores. Estos...

breeding management in rodent studies

Manejo de la cría en estudios con roedores

Todos los procedimientos con animales descritos aquí deben realizarse de acuerdo con las directrices institucionales de ética animal y ser aprobados por el IACUC. Todos los procedimientos deben seguir los principios de las 3R: Reemplazo, Reducción y Refinamiento, y deben ser realizados por personal capacitado. La gestión de la cría apoya las 3R al minimizar la producción innecesaria de animales y asegurar que solo se genere el número de animales requerido para un estudio. Las estrategias de...

transport and acclimatization of rodents for research

Transporte y Aclimatación de Roedores para Investigación

Todos los procedimientos con animales descritos aquí deben realizarse de acuerdo con las directrices éticas institucionales para animales y aprobados por IACUC. Todos los procedimientos deben seguir los principios de las 3R: Reemplazo, Reducción y Refinamiento, y deben ser realizados por personal capacitado. El transporte de roedores para investigación requiere procedimientos que minimicen el estrés y mantengan el bienestar animal durante el traslado para minimizar la influencia en los...

environmental enrichment for rodents

Enriquecimiento ambiental para roedores

Todos los procedimientos con animales descritos aquí deben realizarse de acuerdo con las directrices éticas institucionales para animales y ser aprobados por el IACUC. Todos los procedimientos deben seguir los principios de las 3R—Reemplazo, Reducción y Refinamiento—y deben ser realizados por personal capacitado. El enriquecimiento ambiental implica objetos y prácticas que fomentan comportamientos naturales, mejoran el bienestar psicológico y promueven un mejor estado de salud en los roedores...

rodents

Learn how route of administration, dose, pH, volume, and viscosity guide mouse and rat injections, plus the restraint methods used to help prevent tissue damage.

Rodent Injection Routes and Restraint | JoVE K12

HS-LS1-3.

Kay Stewart

Valerie A. Schroeder

University of Notre Dame

Overview

Key Considerations for Compound Administration

Characteristics of Different Injection Techniques

Subcutaneous Injection

Intraperitoneal (IP) Injection

Intramuscular (IM) Injection

Intravenous (IV) Injection via the Tail Vein

Applications

Summary

Characteristics of Life

Biology is a natural science that studies life and living organisms, including their structure, function, development, interactions, evolution, ...

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Cell Structure

Background
Cells represent the most basic biological units of all organisms, whether it be simple, single-celled organisms like bacteria, or large, ...

Visualizing Onion and Cheek Cells
ExpandImmediately before the experiment, wash and peel onion bulbs for the class.
Remove the entire brown outer skin and ...

Visualizing Onion and Human Cells
ExpandIn this experiment you will prepare different types of cells from a plant and animal, onion and human ...

What are Cells?

Cell Diversity

The concept of a cell started with microscopic observations of dead cork tissue by Robert Hooke in 1665. Hooke coined the term &#34;cell&#34; based on the ...

Cytoplasm

The cytoplasm consists of organelles and a framework of protein scaffolds called the cytoskeleton suspended in an aqueous solution, the cytosol. The ...

The Nucleus

The nucleus is a membrane-bound organelle that acts as a control center in a eukaryotic cell. It contains chromosomal DNA, which controls gene expression ...

The Central Dogma

The DNA Helix

Nucleic Acids

DNA as a Genetic Template

Structure of a Gene

A gene is the fundamental unit of heredity. Every individual has two copies of each gene, one inherited from each parent. Although most people contain the ...

Chromosome Structure

Base-pairing and DNA Repair

What is Gene Expression?

A gene is a stretch of DNA that serves as the blueprint for functional RNAs and proteins. Since DNA is comprised&#160; of nucleotides and proteins are ...

RNA Structure

The basic structure of RNA consists of a string of ribonucleotides attached by phosphodiester bonds. Although most RNA is single-stranded, it can form ...

Types of RNA

Three main types of RNA are involved in protein synthesis: messenger RNA (mRNA), transfer RNA (tRNA), and ribosomal RNA (rRNA). These RNAs perform diverse ...

Transcription

Transcription is the synthesis of RNA from a DNA sequence by RNA polymerase. It is the first step in producing a protein from a gene sequence. ...

Translation

Translation is the process of synthesizing proteins from the genetic information carried by messenger RNA (mRNA). Following transcription, it constitutes ...

Ribosomes

Ribosomes translate genetic information encoded by messenger RNA (mRNA) into proteins. Both prokaryotic and eukaryotic cells have ribosomes. Cells that ...

Protein and Protein Structures

Proteins: From Genes to Degradation

From DNA to Protein

The flow of genetic information in cells from DNA to mRNA to protein is described by the central dogma, which states that genes specify the sequence of ...

Protein Folding

Proteins are chains of amino acids linked together by peptide bonds. Upon synthesis, a protein folds into a three-dimensional conformation, critical to ...

An Overview of Gene Expression

Gene expression is the complex process where a cell uses its genetic information to make functional products. This process is regulated at multiple ...

an-introduction-to-caenorhabditis-elegans

An Introduction to Caenorhabditis elegans

Caenorhabditis elegans is a microscopic, soil-dwelling roundworm that has been powerfully used as a model organism since the early 1970&rsquo;s.  It was ...

An Overview of Genetic Analysis

An organism&#8217;s physical traits, or phenotype, are a product of its genotype, which is the combination of alleles (gene variants) inherited from its ...

An Introduction to Cell Death

Necrosis, apoptosis, and autophagic cell death are all manners in which cells can die, and these mechanisms can be induced by different stimuli, such as ...

An Overview of Genetic Engineering

Genetic engineering &#8211; the process of purposefully altering an organism&#8217;s DNA &#8211; has been used to create powerful research tools and model ...

An Introduction to Cell Division

Cell division is the process by which a parent cell divides and gives rise to two or more daughter cells. It is a means of reproduction for single-cell ...

An Overview of Genetics and Disease

Many human diseases are associated with mutations or variations in genetic sequences. Some of these genetic variants are heritable, passed down from ...

an-introduction-to-cellular-and-molecular-neuroscience

An Introduction to Cellular and Molecular Neuroscience

Cellular and molecular neuroscience is one of the newest and fastest growing subdisciplines in neuroscience. By investigating the influences of genes, ...

Annexin V and Propidium Iodide Labeling

Staining with annexin V and propidium iodide (PI) provides researchers with a way to identify different types of cell death&#8212;either necrosis or ...

an-introduction-to-developmental-genetics

An Introduction to Developmental Genetics

Development is the complex process through which a single-celled embryo transforms into a multicellular organism. Developmental processes are guided by ...

Bacterial Transformation: Electroporation

The term &#x201C;transformation&#x201D; refers cellular ingestion of foreign DNA.  In nature, transformation can occur in certain types of bacteria.  In ...

an-introduction-to-molecular-developmental-biology

An Introduction to Molecular Developmental Biology

Molecular signals play a major role in the complex processes occurring during embryonic development. These signals regulate activities such as cell ...

bacterial-transformation-the-heat-shock-method

Bacterial Transformation: The Heat Shock Method

Transformation is the process that occurs when a cell ingests foreign DNA from its surroundings. Transformation can occur in nature in certain types of ...

an-introduction-to-saccharomyces-cerevisiae

An Introduction to Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces cerevisiae (commonly known as baker&rsquo;s yeast) is a single-celled eukaryote that is frequently used in scientific research.  S. ...

Cell Cycle Analysis

Cell cycle refers to the set of events through which a cell grows, replicates its genome, and ultimately divides into two daughter cells through the ...

An Introduction to Transfection

Transfection is the process of inserting genetic material, such as DNA and double stranded RNA, into mammalian cells. The insertion of DNA into a cell ...

Chromatin Immunoprecipitation

Histones are proteins that help organize DNA in eukaryotic nuclei by serving as &#8220;scaffolds&#8221; around which DNA can be wrapped, forming a complex ...

An Overview of Epigenetics

Since the early days of genetics research, scientists have noted certain heritable phenotypic differences that are not due to differences in the ...

community-dna-extraction-from-bacterial-colonies

Community DNA Extraction from Bacterial Colonies

Source: Laboratories of Dr. Ian Pepper and Dr. Charles Gerba - The University of Arizona
Demonstrating Author: Luisa Ikner
Traditional methods of analysis ...

Cytogenetics

Cytogenetics is the field of study devoted to chromosomes, and involves the direct observation of a cell&#8217;s chromosomal number and structure, ...

embryonic-stem-cell-culture-and-differentiation

Embryonic Stem Cell Culture and Differentiation

Culturing embryonic stem (ES) cells requires conditions that maintain these cells in an undifferentiated state to preserve their capacity for self-renewal ...

DNA Gel Electrophoresis

DNA gel electrophoresis is a technique used for the detection and separation of DNA molecules. An electric field is applied to a gel matrix comprised of ...

Enzyme Assays and Kinetics

Enzyme kinetics describes the catalytic effects of enzymes, which are biomolecules that facilitate chemical reactions necessary for living organisms. ...

DNA Ligation Reactions

In molecular biology, ligation refers to the joining of two DNA fragments through the formation of a phosphodiester bond.  An enzyme known as a ligase ...

Construct an explanation based on evidence for how the structure of DNA determines the structure of proteins which carry out the essential functions of life through systems of specialized cells.

HS-LS1-1.

Rodent Injection Routes and Restraint

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