Name: rodent injection routes and restraint
Uploaded: 2015-07-24T15:42:00.000Z
Duration: 15 min 5 s
Channel: JoVE

K12 Standards

new-york-state-science-learning-standards

New York State Science Learning Standards

High School

Life Science

Structure and Function

HS-LS1-2.

Compound Administration I

1. הזרקה תת עורית
<ol><li>לרסן את העכבר באופן ידני באמצעות אחיזת האיפוק ביד אחת. לאחר אחיזה, אפשר לעכבר לנוח על שולחן או על משטח מאובטח אחר. הקפד להימנע מהפעלת לחץ על גוף העכבר.</li>
	<li>הנח את עקב היד על השולחן כדי למנוע משקל מופרז על העכבר שיכול לסכן נשימה. עכברים יכולים להיות מרוסנים גם במכשיר מסחרי. עבור חולדות, עדיף להשתמש במכשיר איפוק מסחרי.</li>
	<li>לתפוס את העור, ולמשוך כלפי מעלה כדי ליצור אוהל של עור. אם אתם משתמשים במכשיר ריסון, ייתכן שיידרשו מלקחיים כדי לתפוס את העור דרך החריץ בחלק העליון.</li>
	<li>הכנס את המחט במקביל לעמוד השדרה, מכוון מהראש בבסיס קיפול העור של האוהל. כוון את המחט מהראש כדי למנוע את האפשרות של נקבים לגולגולת, כמו עצם הגולגולת של העכבר הוא דק מאוד. לחולדות יש נטייה להרים את ראשן, מה שעלול לגרום להזרקה להיות ממוקמת בשרירי הצוואר.</li>
	<li>הכנס את משופע המחט כדי לאפשר גלישה עדינה לתוך העור. שים לב כי המחט מוכנסת מתחת לאצבעות אוחזות בעור. כדי לשפר את הבטיחות בעת הזרקת מאמרים biohazardous, העור נתפס עם מלקחיים, ובכך מבטל את האפשרות של פציעות מקל מחט.</li>
	<li>משוך את הבוכנה כדי לבדוק מיקום נכון. אם האוויר נמשך לתוך המזרק, הוא מציין כי קצה המחט אינו ממוקם מתחת לעור ויהיה צורך לסגת ולמקם אותו מחדש. אם יש לחץ גב כאשר הבוכנה נמשכה לאחור, זה מצביע על מיקום נכון של המחט, וכי ההזרקה יכולה להמשיך.</li>
	<li>הזריקו את החומר לאט בתנועה קבועה. כדי למנוע אובדן של מאמר ההזרקה, להשהות לאחר הזרקה, לסובב מעט את המחט מתחת לעור, ולצבוט את העור באתר ההזרקה תוך משיכת המחט.</li>
</ol><img alt="Figure 1" src="/files/ftp_upload/10198/10198fig1.jpg"> איור 1. הזרקה תת עורית בעכברים.
2. הזרקה תוך-איפריטונית
<ol><li>שיטת הריסון הידנית ביד אחת משמשת לטכניקת הזרקה זו בעכברים. התאם את היד כך שהיא ממוקמת גבוה מספיק על הצוואר כדי למנוע מהעכבר להסתובב.</li>
	<li>תפוס את העור הרופף בעורף הצוואר בין האגודל לאצבע המורה.</li>
	<li>לייצב את הרבעים האחוריים על ידי הצמדת העור הרופף לאורך הגב בין האצבע השנייה, השלישית והרביעית ובסיס האגודל, או על ידי הצבת הזנב בין האצבע השלישית והרביעית.</li>
	<li>הזרקת ה- IP בחולדה דורשת שני אנשים, אחד לרסן את החולדה והשני לבצע את הזריקה.<ol>
<li>תפסו את החולדה מעבר לכתפיים באמצעות האינדקס והאצבעות האמצעיות בכל צד של הצוואר וכף היד על הגב. האגודל והאצבע השלישית והרביעית צריכים להקיף את החזה כדי למנוע תנועה קדימה או אחורה. מיקום האצבעות בכל צד של הצוואר מונע מהעכברוש לסובב את ראשו.</li>
		<li>הרם את החולדה וסובב אותו כדי לחשוף את הבטן הגחית.</li>
		<li>לייצב את הרבעים האחוריים על ידי אחיזת הרגליים והזנב בבטחה והרחבתם הרחק מהגוף.</li>
	</ol>
</li>
	<li>מקם את העכבר או החולדה כדי לחשוף את הבטן, להבטיח כי הוא פונה כלפי מעלה.</li>
	<li>הטה את החיה כשהראש מצביע כלפי מטה בזווית של כ-30 מעלות, כדי לאפשר למעיים ליפול קדימה.</li>
	<li>ציוני דרך הזרקה הם כדלקמן:<ol>
<li>האזור שיש להזריק גובל באופן cranially על ידי קו דמיוני המשתרע אופקית על פני הגוף בחלק העליון של הירך (מאגף לאגף).</li>
		<li>קו האמצע הוא הגבול הממצעי, המוכר כהיכן שהשיער צומח בכיוונים מנוגדים נפגש. בבעלי חיים חסרי שיער, קו האמצע משתרע בקו ישר מן xiphoid לפי הטבעת.</li>
		<li>הגבול לרוחב הוא קו מראש הירך אל ההקדמה בזכר, ומחלק העליון של הירך ולעקוב אחר הפטמות בנקבה.</li>
		<li>זה מספק אזור משולש להזרקה בטוחה.</li>
	</ol>
</li>
	<li>הזרקת מאמר בתוך ציוני הדרך<ol>
<li>הכנס מחט בניצב לעמוד השדרה, מחוץ לקו האמצע, במשולש כמתואר לעיל. הצבת המחט בזווית של 90 מעלות למישור הגוף מאפשרת הזרקה בטוחה המשתמשת בשני צידי הבטן. זה חשוב במיוחד עם זריקות מרובות, כפי שהוא ממזער טראומה רקמה על ידי מתן אפשרות לסירוגין של אתרי הזרקה.</li>
		<li>כאשר המחט ממוקמת בזווית של 90 מעלות, היא "תקפוץ" לתוך הבטן, ותאפשר קביעת עומק קלה יותר. זהו גם סימן חזותי ומישוש כי המחט ממוקמת כראוי.</li>
		<li>שאפו את המזרק כדי להבטיח מיקום בתוך חלל הצפק ולא בתוך שלפוחית השתן, המעי או מבני כלי הדם.</li>
		<li>הימנע הזרקת caudally בעכבר הגברי כדי למנוע מתן המאמר לתוך שק האשכים. הימנע הזרקה לתוך פטם של הנקבה כדי למנוע טראומה.</li>
	</ol>
</li>
</ol><img alt="Figure 2" src="/files/ftp_upload/10198/10198fig2.jpg"> איור 2. ציוני הדרך להזרקה תוך-איפריטונית בעכברים.
3. הזרקה תוך שרירית
<ol><li>איפוק לטכניקה זו עבור עכברים וחולדות דורש שני אנשים או שימוש בצינור ריסון. מתואר כאן היא שיטה של אדם אחד באמצעות מכשיר מרסן.<ol>
<li>הנח את החיה במכשיר האיפוק.</li>
		<li>ברגע שהחיה נמצאת בצינור, לתפוס את הזנב כדי למקם את החיה עם הרגליים האחוריות מתוך הצינור.</li>
		<li>לתפוס את העור של האגף בחלק הגולגולתי של עצם הירך כדי להאריך את הרגל ולמנוע את המחניק מכופף.</li>
		<li>מקם את מכשיר האיפוק כך שהוא עומד על השולחן כשראש החיה מכוון כלפי מטה, או שוכב על השולחן הצביע לכיוון גופו של הטכנאי כדי לאפשר ייצוב של המכשיר בזמן ביצוע ההזרקה.</li>
		<li>ציוני דרך הזרקה הם כדלקמן: הן העכבר והן רגל החולדה הם קטנים עם שרירי gluteal (שרירי הירך caudal) המרכיבים את מסת השריר הגדולה ביותר בגפה האחורית; מסת השריר השנייה בגודלה בגפיים האחוריות היא הגסטרוקנמיוס (שריר השוק). הזריקה עשויה מההיבט התקתק של הרגל.<ol>
<li>אתר את מסת שריר gluteal אחורית עד עצם הירך. העצם יכולה להיות מישוש ואת השריר הגדול מורגש בקלות.</li>
			<li>שים לב כי קו האמצע של הרגל מן ההיבט האחורי פועל מנקודת למשכן לזנב. לשיער יש לעתים קרובות רכס שבו הוא מתחבר, כפי שהוא גדל בכיוונים מנוגדים מן המשטחים לרוחב והפנימה.</li>
			<li>זריקות נעשות לכיוון ההיבט לרוחב של הירך מקו האמצע. זה מקטין את הסבירות לפגיעה בעצבים ובכלי הדם הממוקמים על פני השטח המתיווכים של הרגל.</li>
			<li>זריקות שנעשו לתוך gastrocnemius נעשים מן ההיבט האחורי עם התחשבות זהירה של המיקום של הווריד saphenous לרוחב.</li>
		</ol>
</li>
		<li>הזרקת מאמר בתוך ציוני הדרך<ol>
<li>הכנס את המחט בניצב עצם הירך את קו האמצע כמתואר לעיל, לעומק מרבי של 5 מ"מ עבור שריר gluteal מקסימום של 3 מ"מ עבור gastrocnemius.</li>
			<li>כדי למנוע טראומה לשריר, יש למנוע תנועה צפונית של המחט ברקמה. המזרק צריך להיות מוחזק באופן שאינו דורש מיקום מחדש של היד כדי לבצע את הזריקה.</li>
			<li>שאפו את המזרק כדי להבטיח מיקום בתוך השריר ולא בכלי דם.</li>
			<li>הזריקו את החומר בתנועה יציבה וזורמת. אין להזריק במהירות כדי לאפשר התרחבות איטית של השריר. הזרקה מהירה תגרום לטראומה ברקמות.</li>
		</ol>
</li>
	</ol>
</li>
</ol><img alt="Figure 3" src="/files/ftp_upload/10198/10198fig3.jpg"> איור 3. הזרקה תוך שרירית לתוך שריר העכוז בחולדות.
4. הזרקה תוך ורידי ניצול וריד הזנב
<ol><li>איפוק החיה תלוי בשאלה אם החיה היא מרדים או ער.<ol><li>השתמש צינור ריסון גלילי עבור עכברים מודעים או חולדות, למעט בעלי חיים חסרי שיער או עירום. בשל האופי השמנוני של בעלי החיים חסרי השיער, קשה למקם מחדש ולהסיר אותם מן מרסן אקריליק, כמו העור שלהם נוטה לדבוק פלסטיק נוקשה. לכן, חרוט פלסטיק גמיש משמש.</li>
		<li>התקני הזרקה אחרים כוללים פלטפורמות מוארות, פלטפורמות מחוממות וקונוסים מפלסטיק נוקשים שבהם העכבר נשמר בקונוס אך ורק עם מתח על הזנב.</li>
		<li>עכברים מרדים אולי לא יזדקקו לאיפוק.</li>
		<li>לחמם את כל הגוף או רק את הזנב כדי להבטיח vasodilation של כלי הזנב.<ol>
<li>מחממים את כל הגוף עם כרית חימום חשמלית על שמיכת מים בינונית או במחזור.</li>
			<li>מניחים את החיה במכשיר האיפוק, עטוף במקור החום.</li>
			<li>התבונן בחיה מקרוב, והסר אותה ממקור החום ברגע שכלי הדם מתרחבים. התחממות גוף שלם יכולה להיות מושגת גם עם שימוש במנורת חום המופנית לכלוב. בעת שימוש מנורת חום יש נצפים מקרוב, שכן קל לחמם אותם יתר על המידה.</li>
			<li>כאשר התחממות הגוף כולה אינה ריאלית, חימום הזנב לבדו יכול להיות מושגת באמצעות קומפרסים חמים ממגבות מחוממות, בקבוק מים חמים, או שקוע הזנב לתוך מים חמים. יש לנקוט משנה זהירות כדי להימנע משריפת הזנב מכיוון שלבקבוקי מים חמים, מגבות מחוממות ומים חמים אין בקרת טמפרטורה. זה נפוץ עבור מקורות החום להיות מחומם יתר על המידה בתחילה. מקורות חום אלה גם להתקרר במהירות.</li>
		</ol></li>
		<li>השימוש בשמן רקמות הוא דרך נוספת לשפר את ההדמיה של כלי הדם.<ol>
<li>טובלים אפליקטור עם קצה כותנה בשמן הרקמות, ומחילים את השמן הרחק מחלק הזנב הנאחז לייצוב. שמן הרקמה גורם לכלים להיראות מוגדרים בצורה ברורה יותר.</li>
			<li>ישנם שמנים לא רעילים זמינים מסחרית המכילים כימיקל בפורמולה היוצרת התחממות של העור ו vasodilation עם אידוי. שמנים אלה מוחלים, ולאחר כמה רגעים, כאשר כלי הדם נראים, השמן עודף נמחק עם כדור כותנה.</li>
			<li>כל השמנים יכולים להקשות על אחיזת הזנב.</li>
			<li>בעת שימוש בשמנים, ההזרקה חייבת להתבצע מיד עם הדמיה של כלי הדם.</li>
		</ol></li>
		<li>ציוני דרך הזרקה הם כדלקמן:<ol>
<li>ורידי הזנב הצדדיים ממוקמים בצדי הזנב. ישנם גם כלי הפועלים לאורך קו האמצע האחורי והיצוחני של הזנב שאינם מתאימים למטרות הזרקה.</li>
			<li>ניתן לסובב את החיה במרסן כך שהכלים לרוחב פונים למעלה להקל על הזרקה. לחלופין, הזנב יכול להיות הפוך כדי להביא את כלי למצב מקובל יותר עבור הזרקה.</li>
			<li>הכלים מאוד שטחיים. הם נעשים שטחיים יותר כשהם מגיעים לבסיס הזנב.</li>
		</ol></li>
		<li>הזרקת מאמר לתוך הווריד הזנב דורש מיומנות. כדי למנוע טראומה לכלי הדם, יש למנוע תנועה חוץ של המחט. המזרק מוחזק באופן שאינו דורש מיקום מחדש של היד כדי לבצע את הזריקה.<ol>
<li>מקם את הזנב כך שהכלי נראה ומוחזק תחת מתח. אין למרוח מתח מוגזם על הזנב, או שניתן למתוח את כלי הדם וזרימת הדם פוחתת.</li>
			<li>מניחים את המחט ישירות מעל הכלי ככל האפשר.</li>
			<li>הפעל לחץ קל ולהחליק את המחט לתוך הזנב במקביל לחוליות. הימנעו מלהעביר את המחט כלפי מטה, שכן המחט תקיף את כלי הדם. המחט צריכה להיות גלויה בכלי כפי שהוא מתקדם לפחות 2 מ"מ לתוך לומן.</li>
			<li>הזריקו את החומר בתנועה איטית וזורמת כדי למנוע קרע בכלי הדם.</li>
			<li>שים לב במיוחד לזנב במהלך ההזרקה. אם מוכנס כראוי לכלי, חומר ההזרקה הזורם לתוך כלי השיט מורגש ללא התנגדות. כלי הדם צריך לקשקש כמו הדם נדחף החוצה על ידי חומר ההזרקה.</li>
			<li>אם המחט אינה בכלי, תהיה התנגדות חזקה בעת הזרקה. אם מזריקים כוח, החומר ימלא את החלל התת עורי והזנב יתנפח. עצור מיד, כמו חומר שנועד להיות מוזרק תוך ורידי עשוי להיות קאוסטית לרקמות שמסביב. משוך את המחט, ולנסות זריקה נוספת יותר cranially על הזנב.</li>
			<li>לאחר הזרקה מוצלחת, למשוך את המחט ולהפעיל לחץ על אתר ההזרקה כדי להבטיח hemostasis טוב לפני החזרת החיה לכלוב.</li>
		</ol></li>
	</ol></li>
</ol><img alt="Figure 4" src="/files/ftp_upload/10198/10198fig4.jpg"> איור 4. הזרקת וריד זנב בעכברים.

מתן חומרים הוא מרכיב נפוץ בפרוטוקולים ניסיוניים המשתמשים בבעלי חיים. בעת בחירת מסלול של משלוח, גורמים רבים חייבים להיות דנו, כולל מיומנות טכנית של אותם אנשים האחראים על מנונים את בעלי החיים, את גודל החיה, את הצמיגות של הנוזל, ואת הסכום שיש לנהל. התחשבות זהירה בגורמים אלה תשפר את רווחת החיה ואת התוצאה הכוללת של הניסוי.

ניהול מורכב i

מקור: קיי סטיוארט, RVT, RLATG, CMAR; ואלרי א. שרודר, אר.די.ג'י, אר-אל-ג'י. אוניברסיטת נוטרדאם, IN
כפי שפרוטוקולי מחקר רבים דורשים כי חומר יוזרק לתוך בעל חיים, יש לקבוע במדויק את מסלול הלידה ואת כמות החומר. ישנם מספר נתיבי ניהול זמינים בעכבר וחולדה. איזה מסלול להשתמש נקבע על ידי מספר גורמים של החומר להיות מוזרק: ה- pH של הפתרון, הנפח הנדרש עבור המינון הרצוי, ואת הצמיגות של הפתרון. נזק חמור לרקמות יכול להתרחש אם חומר מנוהל באופן שגוי. וידאו זה בוחן את שיטות האיפוק השונות ואת הפרטים הטכניים עבור נתיבי הזרקה הנפוצים ביותר.

ניהול מורכב I

Source: Kay Stewart, RVT, RLATG, CMAR; Valerie A. Schroeder, RVT, RLATG. University of Notre Dame, IN
As many research protocols require that a substance ...

מתן תרכובת הוא לעתים קרובות מרכיב בלתי נפרד ממחקר בבעלי חיים, ויש להעריך גורמים רבים כדי להבטיח שהתרכובת מועברת בצורה נכונה ואנושית. שני דרכי המתן העיקריות הן אנטרליות - דרך מערכת העיכול, ופרנטרליות - מחוץ למערכת העיכול. ההבדל העיקרי הוא שאם התרכובת ניתנת דרך הנתיב האנטרלי היא עוברת חילוף חומרים בכבד לפני שהיא נכנסת לזרם הדם. בעוד שדרך כל דרך פרנטרלית, כמו תוך ורידי או תוך שרירי, החומר מדלג על המעבר הראשון הזה דרך הכבד, מה שבדרך כלל מביא לזמינות ביולוגית גבוהה יותר. בסרטון הראשון בסדרה על מתן תרכובות, נתחיל בדיון בגורמים המשפיעים על בחירת מסלול המתן באופן כללי. ולאחר מכן נסקור את שיטות ההזרקה הפרנטרליות הנפוצות ביותר, כולל תת עורי בקיצור SC או SubQ, תוך-צפקי או IP, תוך שרירי או IM, ו-AKA IV תוך ורידי. נתחיל בסקירת כמה דברים שכדאי לזכור לפני ביצוע כל סוג של הליך מתן תרכובת. השלב הראשון הוא הכנת התמיסה או התרחיף להזרקה, והשיקול הבסיסי הראשון להכנת החומר הוא סטריליות. כדי למנוע החדרת פתוגנים לבעל החיים, חשוב שחומר ההזרקה כמו גם המחטים והמזרקים לשימוש יהיו סטריליים. השיקול השני הוא תאימות פיזיולוגית. תמיסת מינון, בין אם ניתנת אנטרלית או פרנטרלית, חייבת להיות מחוצצת פיזיולוגית ל-pH מתאים כדי שהתרכובת תיספג כראוי, וכדי למנוע פגיעה ברקמות. הגורם השלישי הוא הצמיגות של פריט ההזרקה, הממלא תפקיד קריטי בבחירת המחט. בדרך כלל, מחטים בגודל 20 עד 30 משמשות בהליכי מתן פרנטרלי לעכברים וחולדות. הרכזות של המחטים הללו מקודדות בדרך כלל בצבע כדי להקל על הזיהוי. התמיסה צריכה להיות בעלת נזילות מספקת כדי לעבור לפחות אחת מהמחטים הללו. אם הפתרון יכול לעבור יותר מאחד, אז, באופן כללי, הבחירה היא המד הקטן ביותר האפשרי. הגורם הבא הוא נפח הניהול המשפיע על בחירת המזרק. בדומה למחטים, יש לבחור את המזרק הקטן ביותר הדרוש למינון מדויק עם סיומים נכונים. מד המחט ונפח הניהול תלויים גם במסלול, ובמין, גודל וגיל החיה הניתנת. ראה טבלה 1 להלן כדי לסקור את הערכים הקשורים למסלולים הנדונים בסרטון זה. השיקול החשוב האחרון הוא קצב הספיגה, המשתנה באופן משמעותי עם כל דרך מתן ועשוי למלא תפקיד בבחירת השיטה המתאימה ביותר. כעת, בואו נדבר על המאפיינים המוזרים של שיטות ההזרקה המופעלות באופן שגרתי. הזרקת SC או SubQ ממקמת את החומר בין שכבות העור לשריר במרחב וירטואלי שנוצר על ידי הרמת העור. זה מאפשר הזרקה בטוחה של נפחים גדולים יותר, אך קצב הספיגה איטי יותר מדרכים אחרות, ומספק אפקט מתמשך יותר. במהלך מתן IP, התרכובת מוזרקת ישירות לחלל הצפק. זוהי שיטה נפוצה נוספת המשמשת לאספקת כמויות גדולות של תמיסה. למרות שהזרקת IP נחשבת למתן פרנטרלי, מנגנון הספיגה למעשה דומה יותר למינון דרך הפה. הזרקת IM מעבירה תרכובת ישירות לשריר העכוז או לשריר הגסטרוקנמיוס. חומר המוזרק IM נספג במהירות בשל המספר הרב של כלי הדם ברקמת השריר, מה שעשוי להפוך אותו למסלול מועדף במקרים מסוימים. הזרקה לא נכונה או חוזרת בשריר עלולה לגרום לנזק עצבי וכתוצאה מכך לשיתוק או לנמק שרירים. לבסוף, הזרקת IV לווריד הזנב של החיה היא דרך המתן היעילה ביותר, מכיוון שהחומר מוחדר ישירות למערכת הדם. שימו לב שיש להזריק את התרכובת לאחד מוורידי הזנב הצדדיים הממוקמים בצידי הזנב. ישנו כלי העובר לאורך קו האמצע הגחוני של הזנב, שאינו מתאים למטרות הזרקה. כעת, לאחר שדנו ברקע, בואו נלמד את הנהלים, החל מזריקות SC. עבור עכברים, בחרו את החיה בזנבה והניחו לה לנוח על משטח בטוח אחר, כמו מכסה מוט תיל. לאחר מכן, רסנו את החיה באופן ידני על ידי הרמת העור סביב הצוואר, וצרו אוהל. לאחר מכן, הניחו את החיה על השולחן כשכפות הרגליים האחוריות מונחות על המשטח והניחו את עקב היד על השולחן כדי למנוע משקל מופרז על החיה שעלול לפגוע בנשימה. כדי להזריק, הרם את המזרק עם התמיסה להזרקה, וכוון את המחט במקביל לעמוד השדרה והרחק מהראש כדי למנוע אפשרות של פנצ'רים בגולגולת. לאחר מכן, הכנס את המחט כשהשיפוע פונה כלפי מעלה, מה שמאפשר החלקה עדינה לתוך העור. משוך לאחור את הבוכנה כדי לבדוק את מיקום המחט הנכון. אם יש לחץ אחורי כאשר הבוכנה נמשכת לאחור, אז המחט נמצאת במצב הנכון. אם נשאב אוויר לתוך הבוכנה, יהיה צורך למקם מחדש את המחט. לאחר שווידאתם שהמחט ממוקמת כהלכה, הזריקו לאט בתנועה יציבה. עצור לאחר ההזרקה וסובב את המחט מעט מתחת לעור כדי למנוע אובדן של פריט ההזרקה. לאחר מכן, צבט את העור במקום ההזרקה ומשוך את המחט. ניתן להשתמש באותה שיטה בגמילת חולדות. עבור חולדות בוגרות, ראשית יש לרסן את החיה באמצעות מכשיר, שההליך שלו נדון בסרטון "יסודות הטיפול והאיפוק" של אוסף זה. לאחר מכן, ניתן לבצע את הזרקת ה-SC באותו אופן כמו שנעשה בעכברים. בשלב הבא נלמד כיצד לבצע הזרקת IP. בעכברים, השתמשו בטכניקת הריסון בשתי ידיים כדי לרסן את החיה, המתוארת שוב בסרטון "יסודות הטיפול והאיפוק". ודא שהיד הלא דומיננטית שלך ממוקמת מספיק גבוה על הצוואר כדי למנוע מהחיה להסתובב. ייצב את החלק האחורי על ידי הנחת הזנב בין האצבע השלישית לרביעית או על ידי הצמדת העור בחוזקה בין האצבעות הנותרות לבסיס האגודל. לאחר מכן, מקם את החיה כדי לחשוף את בטנה. להטות את החיה כשהראש פונה כלפי מטה ב-30? כדי לאפשר למעיים ליפול קדימה. ניתן לתאר את ציון הדרך של ההזרקה כך: צייר קו דמיוני המשתרע אופקית על פני הגוף, בחלק העליון של הירך, מאגף לאגף. לאחר מכן צייר את הגבול המדיאלי, או קו האמצע, לאורך הקו שבו השיער הצומח בכיוונים מנוגדים נפגש. לבסוף, דמיינו את הגבול הרוחבי, שהוא קו מהחלק העליון של הירכיים לקדם אצל זכרים ועוקב אחר הפטמות אצל נקבות. זה מספק את האזור המשולש להזרקת IP בטוחה. השיטה הבאה שנדון בה היא הזרקת IM. ריסון בטכניקה זו הן לעכברים והן לחולדות דורש שני אנשים או שימוש בצינור ריסון. כאן, נתאר את השיטה של אדם אחד המשתמשת במכשיר ריסון. ראשית, הניחו את החיה בצינור וכשהרגליים האחוריות בחוץ, משכו את הזנב כדי למקם את החיה. לאחר מכן, אחוז בעור האגף בחלק הגולגולתי של עצם הירך כדי להאריך את הרגל ולמנוע את כיפוף החנק. לאחר מכן, מקם את התקן הריסון כדי לאפשר הדמיה של אתר ההזרקה. כדי לזהות את נקודת הציון של העכוז, אתר את מסת שריר העכוז האחורית לעצם הירך. ניתן למשש את העצם והשריר הגדול מורגש בקלות. שימו לב לקו האמצע שעובר מנקודת השוק לזנב. לעתים קרובות ניתן לראות את הרכס שבו השיער מהמשטחים הצדדיים והפנימיים מתאחד צומח בכיוונים מנוגדים. בדרך כלל, הזרקות נעשות לכיוון ההיבט הרוחבי מחוץ לקו האמצע. הגסטרוקנמיוס הוא שריר השוק והזרקה לשריר זה מבוצעת בצורה הטובה ביותר גם מההיבט האחורי. עבור שריר העכוז, בציון הדרך הממוקם, הכנס את המחט לעומק מרבי של כ -5 מ"מ. הימנע ממיקום מחדש של המזרק במהלך ההזרקה כדי למנוע נזק לשרירים. לאחר מכן, שאפו כדי לוודא שהמיקום נמצא בתוך השריר, ולא כלי דם. ולבסוף, הזרקו את החומר בצורה איטית ויציבה, שכן הזרקה מהירה תגרום לטראומה ברקמות. הסר את המחט בניצב באותו מסלול כמו זה של ההחדרה. עבור שריר גסטרוקנמיוס, הכנס את המחט לעומק מקסימלי של 3 מ"מ ובצע את ההזרקה באותו אופן כמו לשריר העכוז. לבסוף, בואו ללמוד כיצד לבצע הזרקת IV בוורידי הזנב של מכרסמים. אותה שיטה ישימה גם לעכברים וגם לחולדות. הנח את החיה בצינור ריסון גלילי וחמם את כל גופה של החיה באמצעות כרית חימום חשמלית המוגדרת ל-MEDIUM למשך כ-2-5 דקות. המשיכו לחמם את החיה, עד שכלי הדם מתרחבים, כלומר גדולים יותר באופן ניכר. זכרו, ורידי הזנב הזנב הצדדיים ממוקמים בצידי הזנב. העורק שנמצא בקו האמצע הגחוני אינו מתאים למטרות הזרקה. סובב את התקן הריסון ומקם את הזנב כך שוורידי הזנב הצדדיים פונים כלפי מעלה ומוחזקים במתח. אין להפעיל מתח מוגזם או שניתן למתוח את הכלי ולהפחית את זרימת הדם. הנח את שיפוע המחט ישירות מעל כלי הדם בצורה דיסטלית ככל האפשר, והפעל לחץ קל כדי להחליק את המחט לזנב במקביל לעמוד השדרה. הזרקו את החומר בתנועה איטית ונוזלית ושימו לב שכלי הדם מלבין כאשר הדם נדחף החוצה על ידי חומר ההזרקה. אם המחט אינה ממוקמת כראוי בכלי, תהיה התנגדות חזקה בעת ההזרקה, ואם תזריק בכוח החומר ימלא את החלל התת עורי והזנב יתנפח. עצור מיד מכיוון שהחומר - המיועד להזרקה תוך ורידית - עלול להיות קאוסטי לרקמות שמסביב. משוך את המחט ונסה זריקה נוספת בצורה גולגולתית יותר על הזנב. לאחר הזרקה מוצלחת, משוך את המחט והפעל לחץ על מקום ההזרקה כדי להבטיח המוסטזיס טוב לפני החזרת החיה לכלוב. כעת, כשאתה מכיר את שיטות ההזרקה הנפוצות, בואו נסתכל על כמה יישומים של דרכי מתן אלה, מלבד מתן תרופות. במספר ניסויים מוזרקים לעכברים פתוגן ספציפי כדי לחקור זיהום. כאן, החוקרים השתמשו בנתיב התת עורי כדי להכניס חיידקים עמידים לאנטיביוטיקה הגורמים לנגעים, וגודל הנגעים הללו שימש כקריאה לאלימות של הפתוגן. מדענים שונים מתעניינים בחקר התפוצה וההישרדות של תאי גזע לאחר אספקה מערכתית. במחקר זה, החוקרים ביצעו הזרקת וריד זנב של תאי גזע עצביים מתויגים גנטית במודל של בעלי חיים בטרשת נפוצה ואיתרו את התפלגות התאים המוזרקים לאזורי חוט השדרה והמוח. בניסוי אחר, חוקרים הזריקו מיובלסטים מתויגים פלואורסצנטית תוך שרירית במודל של ניוון שרירים בבעלי חיים. לאחר מכן, בוצעה ביולומינסנציה כדי לנתח השתלה מוצלחת של תאי הגזע. לבסוף, ניתן להשתמש בזריקות גם ליצירת מודלים של בעלי חיים. מדענים אלה ביצעו הזרקה תוך-צפקית של דימתיל-ניטרוזאמין - רעלן כבד חזק - בחולדות וויסטאר זכרים כדי ליצור מודל חייתי של פיברוזיס בכבד, ששימש לאחר מכן לחקר התפתחות מחלת הכבד. זה עתה צפיתם בפרק הראשון של JoVE על מתן תרכובות הדן בזריקות פרנטרליות נפוצות. זכור, מסלול האספקה האופטימלי מבוסס על מספר גורמים כולל ה-pH, הנפח והצמיגות של התמיסה המוזרקת. ולכל טכניקה יתרונות וחסרונות, אותם יש לקחת בחשבון ביחס לצרכי הניסוי. כמו תמיד, תודה שצפית!

Education

JoVE Science Education

Basic Biology

ביולוגיה בסיסית

Lab Animal Research

מחקר בבעלי חיים במעבדה

Rodents

מכרסמים

rodent injection routes and restraint

Rodent injection routes and restraint methods are key parts of compound administration in mice and rats. When a substance must be injected into an animal, the delivery route and the amount of compound must be chosen with care. The right choice helps match the dose to the protocol.

Several factors guide the route of administration. These include the pH of the solution, the volume needed for the desired dose, and the viscosity of the solution. Viscosity means how thick or resistant to flow a liquid is. These details help determine which injection route is most suitable.

Correct technique is important because poor administration can cause severe tissue damage. The video also shows the restraint methods used for these common injection routes. It focuses on the technical steps needed for mouse and rat injections.

Rodent Injection Routes and Restraint

rodent handling and restraint techniques

Minimizing Stress in Mouse and Rat Handling

Mouse and rat handling can create stress, even when the procedure is brief. Cage changing and other noninvasive tasks can raise heart rate, blood pressure, and serum corticosterone levels. These changes may last for several hours. Restraint for injections and blood withdrawal can also affect the animals and may influence scientific data. Because of this, proper training is needed when working with mice and rats. The goal is to reduce the effect of handling on the animals as much as possible. <br...

basic care procedures

Caring for Research Mice and Rats

Research mice and rats need careful housing, feeding, and handling. These animals make up over 90% of the animals used for biomedical research, so their care can strongly affect experiment results. Both immunocompetent animals, which have a normal immune response, and immunocompromised animals need proper support during studies. Some research animals have weakened immune systems and need extra steps to stay healthy. Common examples include naturally occurring immunocompromised mice and mice...

fundamentals of breeding and weaning

Mouse and Rat Breeding Methods

Mouse and rat breeding methods are used in biomedical research to supply animals for laboratory studies. Many research facilities buy mice from commercial breeders, but some also breed mice and rats in-house. In-house breeding can reduce costs and give researchers more options for their studies. Breeding animals in the facility also lets researchers manage genetics and timing. They can plan pregnancies to match research needs and work with embryos and newborns when needed. Mice and rats can be...

rodent identification i

Mice and Rats: Ear Tags and Punch Codes

Proper identification of laboratory mice and rats is important in biomedical research. The right animal must be used for each procedure and for data collection. Clear identification helps keep research records accurate and reliable. This page focuses on permanent identification methods for mice and rats. These methods include ear tags, ear punch codes, microchip implantation, tail tattoos for adult mice, and toe tattoos for neonates. Temporary methods such as dyes and marking pens can also be...

rodent identification ii

Rodent ID Methods for Accurate Records

Accurate rodent identification supports reliable animal records and data collection. Research animal records may include simple cage cards or a detailed database with full information on each animal. Individual identification is the key part of keeping those records correct. Mice and rats can be identified by several methods. These include tattooing, microchip placement, and temporary identification methods. Each method serves a different need in research animal management. The procedure also...

compound administration i

Rodent injection routes and restraint methods are key parts of compound administration in mice and rats. When a substance must be injected into an animal, the delivery route and the amount of compound must be chosen with care. The right choice helps match the dose to the protocol. Several factors guide the route of administration. These include the pH of the solution, the volume needed for the desired dose, and the viscosity of the solution. Viscosity means how thick or resistant to flow a...

compound administration ii

Choosing the Right Route for Compound Delivery

Compound delivery is a key part of many animal studies. The route used to give the compound can change how it is absorbed. Careful planning helps make sure the compound is delivered correctly. The substance itself also matters when a route is chosen. Its pH, viscosity, and concentration can all affect which method is best. These properties help guide the choice of administration route in a study.

compound administration iii

Specialized Injection Routes in Mice and Rats

Specialized injection routes in mice and rats are sometimes used when standard compound administration methods are not enough. Some study protocols call for less common routes such as intradermal, intranasal, and intracranial injections. These methods are used in laboratory animals and require careful technique. Intradermal injections place a compound into the skin. Intranasal injections deliver a compound through the nose. Intracranial injections are given into the brain. Because these...

compound administration iv

Specialized Injection Routes in Rodents

Specialized injection routes in laboratory mice and rats include intracardiac, footpad, and retro-orbital administration. These methods are used when a protocol calls for a route that is less common than standard compound delivery methods. Each route requires specialized training to perform correctly. Intracardiac injections deliver into the heart, footpad injections target the paw area, and retro-orbital injections are given around the eye region. Because these procedures are more technical,...

blood withdrawal i

Rodent Blood Collection Methods

Blood collection in mice and rats is a common part of research studies. The method used depends on how much blood is needed, how often samples must be taken, the animal's health, and the technician's skill level. This topic includes three blood withdrawal methods: retro-orbital sinus bleeds, initial tail snip bleeds, and intracardiac bleeds. Each method requires general anesthesia, which means the animal is made unconscious before the procedure begins.

blood withdrawal ii

Rodent Blood Sampling Methods

Blood collection from mice and rats can be done with several methods. The choice depends on the restraint needed, how invasive the procedure is, and whether a general anesthetic is required. These factors help determine which method is best for a given analysis. One older method uses the retro-orbital sinus cavity, which is located behind the eye. This approach has been debated because it may cause tissue damage or even blindness. For that reason, facial vein and submandibular vein bleeding...

anesthesia induction and maintenance

Laboratory Anesthesia and Pain Control

Laboratory anesthesia and pain control are important parts of veterinary care for research animals. The Guide for the Care and Use of Laboratory Animals says that pain assessment and pain relief must be part of that care. Anesthesia means the loss of feeling or sensation.

considerations for rodent surgery 

Aseptic Steps in Rodent Survival Surgery

Aseptic technique is essential for rodent survival surgery. It is used to keep the surgical site as clean as possible and to reduce contamination during the procedure. This approach includes patient preparation, surgeon preparation, and sterilization of instruments and other supplies. It also depends on a clean, controlled environment. Careful planning before surgery helps set up these steps for success. During the operation, animals need close monitoring. After the surgery, postoperative...

diagnostic necropsy and tissue harvest

Rat Necropsy for Tissue Collection

Rat necropsy is a key step for collecting organs and tissues at the end of many animal studies. These final samples are used for data collection time points and later testing. Because the samples are used for analysis, the way they are taken can affect sample quality. Careful collection methods help preserve the organs and tissues for testing. The method of euthanasia, or the procedure used to humanely end the animal's life, can also affect sample quality. This article outlines proper necropsy...

sterile tissue harvest

Aseptic Organ Collection in Rats and Mice

Aseptic organ collection in rats and mice is used to keep harvested tissues free from contamination. The process is important when tissues will be used for cell and tissue cultures. It also supports later protein and RNA analysis, as well as metabolic profiling of tissues. The transcript connects this work to the 3 R's, which were introduced in 1959 by W.M.S. Russell and R.L. Burch in The Principles of Humane Experimental Technique. The 3 R's are replacement, reduction, and refinement in the...

early intervention and pain management

התערבות מוקדמת וניהול כאב

כל נהלי החיות המתוארים כאן חייבים להתבצע בהתאם להנחיות האתיות המוסדיות של בעלי חיים ולהיות מאושר על ידי IACUC. כל הנהלים חייבים לעקוב אחר עקרונות שלושת ה-Rs—החלפה, הפחתה ושיפור—וחייבים להתבצע על ידי צוות מאושר.  מעקב אחר חיות לסימני כאב ומצוקה זיהוי סימני כאב מוקדמים חיוני למחקר אתיים בבעלי חיים. בעלי חיים מונטרים באופן שגרתי באמצעות פרמטרים התנהגותיים, פיזיים ופיזיולוגיים המשקפים את הרווחה הכוללת. אלו כוללים שינויים במשקל הגוף, שם ירידה הדרגתית במשקל או אי יכולת לשמור על עלייה צפויה במשקל...

humane euthanasia and confirmation of death in rodents

המתת חסד אנושית ואימות המוות במכרסמים

כל הליכי הטיפול בבעלי חיים המתוארים כאן חייבים להתבצע בהתאם להנחיות האתיקה המוסדיות של בעלי חיים ובאישור הוועדה לטיפול והשתמשה בבעלי חיים במחקר (IACUC). כל ההליכים חייבים לעקוב אחר עקרונות שלושת ה-R—החלפה, צמצום ושיפור—וחייבים להתבצע על ידי צוות מאומן. קצוות הומאניים במכרסמים הם אינדיקטורים קליניים, התנהגותיים או פיזיולוגיים מוגדרים מראש המצביעים על כך שהחיה חווה כאב משמעותי, מצוקה או ירידה בבריאות. כאשר סימנים אלו נצפים, מתחילים התערבות בזמן כדי למזער סבל ולהגן על רווחת החיה.  אותנסיה כימית<br...

habituation and positive reinforcement for rodent handling

הרגלה וחיזוק חיובי לטיפול במכרסמים

כל הליכי הטיפול בבעלי החיים המתוארים כאן חייבים להתבצע בהתאם להנחיות האתיות המוסדיות לבעלי חיים ולהיות מאושר על ידי IACUC. כל ההליכים חייבים לעקוב אחר עקרונות שלושת ה-Rs—החלפה, צמצום ושיפור—ויבוצעו על ידי צוות מיומן. הרגלת חיזוק חיובי הם אסטרטגיות שיפור המסייעות להפחתת מתח במהלך טיפול שגרתי ונהלים ניסויים במכרסמים. גישות אלו משפרות את רווחת בעלי החיים, מעודדות שיתוף פעולה מרצון ומפחיתות את ההשפעות הקשורות במתח שעלולות להשפיע על תוצאות המחקר. הרגל הרגל היא צורה של למידה לא אסוציאטיבית בה התגובה...

breeding management in rodent studies

ניהול גידול במחקרים על מכרסמים

כל הליכי הטיפול בבעלי חיים המתוארים כאן חייבים להתבצע בהתאם להנחיות האתיקה של בעלי חיים מוסדיות ולהיות מאושר על ידי IACUC. כל ההליכים חייבים לעקוב אחר עקרונות 3Rs—החלפה, הפחתה ושיפור—וחייבים להתבצע על ידי צוות מיומן. ניהול גידול תומך ב-3Rs על ידי צמצום ייצור בעלי חיים מיותר והבטחת שמספר בעלי החיים הנדרש למחקר ייצר בלבד. אסטרטגיות גידול יעילות עוזרות להפחית בעלי חיים עודפים ולשפר את השימוש היעיל במשאבי בעלי חיים תוך שמירה על היעדים המדעיים. גורמים המשפיעים על הצלחת הגידול תוכניות גידול צריכות...

transport and acclimatization of rodents for research

הובלה והתאקלמות של מכרסמים לצורכי מחקר

כל נהלי הטיפול בבעלי החיים המתוארים כאן חייבים להתבצע בהתאם להנחיות האתיות המוסדיות בטיפול בבעלי חיים ולהיות מאושרים על ידי IACUC. כל הנהלים חייבים לעקוב אחר עקרונות שלושת ה-R—החלפה, הפחתה ושיפור—וחייבים להתבצע על ידי צוות מיומן. הובלת מכרסמים למחקר דורשת נהלים שממזערים לחץ ושומרים על רווחת בעלי החיים במהלך ההעברה כדי למזער את ההשפעה על תוצאות הניסוי. כלובים להובלה צריכים לספק אוורור מספק, מצע, מזון ומקור הידרציה כמו חבילת ג'ל. יש לטפל בעכברים בעדינות ולהכניסם לכלוב ללא הצפיפות כדי להפחית לחץ,...

environmental enrichment for rodents

העשרה סביבתית למכרסמים

כל הליכי הטיפול בבעלי החיים המתוארים כאן חייבים להתבצע בהתאם להנחיות האתיות המוסדיות לבעלי חיים ולהיות מאושר על ידי IACUC. כל ההליכים חייבים לעקוב אחר עקרונות שלושת ה-Rs—תחליף, הפחתה ושיפור—וחייבים להתבצע על ידי צוות מוסמך. העשרה סביבתית כוללת חפצים ושיטות שמעודדים התנהגויות טבעיות, משפרים את הרווחה הפסיכולוגית, ומקדמים רווחה טובה יותר אצל מכרסמים במעבדה. העשרה סביבתית צריכה להיות מותאמת למין המכרסם, לזנים, לגילאים, למינים ולתכנון המחקר, ולהיעשות בהתאם לפרוטוקולים המוסדיים לטיפול בבעלי חיים.<br...

rodents

Learn how route of administration, dose, pH, volume, and viscosity guide mouse and rat injections, plus the restraint methods used to help prevent tissue damage.

Rodent Injection Routes and Restraint | JoVE K12

HS-LS1-3.

Kay Stewart

Valerie A. Schroeder

University of Notre Dame

Overview

Key Considerations for Compound Administration

Characteristics of Different Injection Techniques

Subcutaneous Injection

Intraperitoneal (IP) Injection

Intramuscular (IM) Injection

Intravenous (IV) Injection via the Tail Vein

Applications

Summary

Characteristics of Life

Biology is a natural science that studies life and living organisms, including their structure, function, development, interactions, evolution, ...

https://cloudfront.jove.com/files/media/science-education/science-education-thumbs/10647.jpg

Cell Structure

Background
Cells represent the most basic biological units of all organisms, whether it be simple, single-celled organisms like bacteria, or large, ...

Visualizing Onion and Cheek Cells
ExpandImmediately before the experiment, wash and peel onion bulbs for the class.
Remove the entire brown outer skin and ...

Visualizing Onion and Human Cells
ExpandIn this experiment you will prepare different types of cells from a plant and animal, onion and human ...

What are Cells?

Cell Diversity

The concept of a cell started with microscopic observations of dead cork tissue by Robert Hooke in 1665. Hooke coined the term &#34;cell&#34; based on the ...

Cytoplasm

The cytoplasm consists of organelles and a framework of protein scaffolds called the cytoskeleton suspended in an aqueous solution, the cytosol. The ...

The Nucleus

The nucleus is a membrane-bound organelle that acts as a control center in a eukaryotic cell. It contains chromosomal DNA, which controls gene expression ...

The Central Dogma

The DNA Helix

Nucleic Acids

DNA as a Genetic Template

Structure of a Gene

A gene is the fundamental unit of heredity. Every individual has two copies of each gene, one inherited from each parent. Although most people contain the ...

Chromosome Structure

Base-pairing and DNA Repair

What is Gene Expression?

A gene is a stretch of DNA that serves as the blueprint for functional RNAs and proteins. Since DNA is comprised&#160; of nucleotides and proteins are ...

RNA Structure

The basic structure of RNA consists of a string of ribonucleotides attached by phosphodiester bonds. Although most RNA is single-stranded, it can form ...

Types of RNA

Three main types of RNA are involved in protein synthesis: messenger RNA (mRNA), transfer RNA (tRNA), and ribosomal RNA (rRNA). These RNAs perform diverse ...

Transcription

Transcription is the synthesis of RNA from a DNA sequence by RNA polymerase. It is the first step in producing a protein from a gene sequence. ...

Translation

Translation is the process of synthesizing proteins from the genetic information carried by messenger RNA (mRNA). Following transcription, it constitutes ...

Ribosomes

Ribosomes translate genetic information encoded by messenger RNA (mRNA) into proteins. Both prokaryotic and eukaryotic cells have ribosomes. Cells that ...

Protein and Protein Structures

Proteins: From Genes to Degradation

From DNA to Protein

The flow of genetic information in cells from DNA to mRNA to protein is described by the central dogma, which states that genes specify the sequence of ...

Protein Folding

Proteins are chains of amino acids linked together by peptide bonds. Upon synthesis, a protein folds into a three-dimensional conformation, critical to ...

An Overview of Gene Expression

Gene expression is the complex process where a cell uses its genetic information to make functional products. This process is regulated at multiple ...

an-introduction-to-caenorhabditis-elegans

An Introduction to Caenorhabditis elegans

Caenorhabditis elegans is a microscopic, soil-dwelling roundworm that has been powerfully used as a model organism since the early 1970&rsquo;s.  It was ...

An Overview of Genetic Analysis

An organism&#8217;s physical traits, or phenotype, are a product of its genotype, which is the combination of alleles (gene variants) inherited from its ...

An Introduction to Cell Death

Necrosis, apoptosis, and autophagic cell death are all manners in which cells can die, and these mechanisms can be induced by different stimuli, such as ...

An Overview of Genetic Engineering

Genetic engineering &#8211; the process of purposefully altering an organism&#8217;s DNA &#8211; has been used to create powerful research tools and model ...

An Introduction to Cell Division

Cell division is the process by which a parent cell divides and gives rise to two or more daughter cells. It is a means of reproduction for single-cell ...

An Overview of Genetics and Disease

Many human diseases are associated with mutations or variations in genetic sequences. Some of these genetic variants are heritable, passed down from ...

an-introduction-to-cellular-and-molecular-neuroscience

An Introduction to Cellular and Molecular Neuroscience

Cellular and molecular neuroscience is one of the newest and fastest growing subdisciplines in neuroscience. By investigating the influences of genes, ...

Annexin V and Propidium Iodide Labeling

Staining with annexin V and propidium iodide (PI) provides researchers with a way to identify different types of cell death&#8212;either necrosis or ...

an-introduction-to-developmental-genetics

An Introduction to Developmental Genetics

Development is the complex process through which a single-celled embryo transforms into a multicellular organism. Developmental processes are guided by ...

Bacterial Transformation: Electroporation

The term &#x201C;transformation&#x201D; refers cellular ingestion of foreign DNA.  In nature, transformation can occur in certain types of bacteria.  In ...

an-introduction-to-molecular-developmental-biology

An Introduction to Molecular Developmental Biology

Molecular signals play a major role in the complex processes occurring during embryonic development. These signals regulate activities such as cell ...

bacterial-transformation-the-heat-shock-method

Bacterial Transformation: The Heat Shock Method

Transformation is the process that occurs when a cell ingests foreign DNA from its surroundings. Transformation can occur in nature in certain types of ...

an-introduction-to-saccharomyces-cerevisiae

An Introduction to Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces cerevisiae (commonly known as baker&rsquo;s yeast) is a single-celled eukaryote that is frequently used in scientific research.  S. ...

Cell Cycle Analysis

Cell cycle refers to the set of events through which a cell grows, replicates its genome, and ultimately divides into two daughter cells through the ...

An Introduction to Transfection

Transfection is the process of inserting genetic material, such as DNA and double stranded RNA, into mammalian cells. The insertion of DNA into a cell ...

Chromatin Immunoprecipitation

Histones are proteins that help organize DNA in eukaryotic nuclei by serving as &#8220;scaffolds&#8221; around which DNA can be wrapped, forming a complex ...

An Overview of Epigenetics

Since the early days of genetics research, scientists have noted certain heritable phenotypic differences that are not due to differences in the ...

community-dna-extraction-from-bacterial-colonies

Community DNA Extraction from Bacterial Colonies

Source: Laboratories of Dr. Ian Pepper and Dr. Charles Gerba - The University of Arizona
Demonstrating Author: Luisa Ikner
Traditional methods of analysis ...

Cytogenetics

Cytogenetics is the field of study devoted to chromosomes, and involves the direct observation of a cell&#8217;s chromosomal number and structure, ...

embryonic-stem-cell-culture-and-differentiation

Embryonic Stem Cell Culture and Differentiation

Culturing embryonic stem (ES) cells requires conditions that maintain these cells in an undifferentiated state to preserve their capacity for self-renewal ...

DNA Gel Electrophoresis

DNA gel electrophoresis is a technique used for the detection and separation of DNA molecules. An electric field is applied to a gel matrix comprised of ...

Enzyme Assays and Kinetics

Enzyme kinetics describes the catalytic effects of enzymes, which are biomolecules that facilitate chemical reactions necessary for living organisms. ...

DNA Ligation Reactions

In molecular biology, ligation refers to the joining of two DNA fragments through the formation of a phosphodiester bond.  An enzyme known as a ligase ...

explant-culture-for-developmental-studies

Explant Culture for Developmental Studies

Explant culture is a technique in which living cells or tissues are removed from an embryo for continued development outside of the organism. This ex vivo ...

Construct an explanation based on evidence for how the structure of DNA determines the structure of proteins which carry out the essential functions of life through systems of specialized cells.

HS-LS1-1.

Rodent Injection Routes and Restraint

Description

Transcript

Tags

More videos by Standards