Name: minimizing stress in mouse and rat handling
Uploaded: 2015-08-24T15:22:25.000Z
Duration: 15 min 57 s
Channel: JoVE

1。 スクラッフィング マウスが最もよくスクラッフィング テクニックを使用して拘束されたが、幼若ラットは、この方法でも拘束されたことができます。ラットはより多くの筋肉の首、たるんだ皮膚の減少量とこのメソッドへの嫌悪感のためこの手法で抑制するため難しく。
<ol><li>片手の拘束方法は、無胸腺のヌード、SCID, といくつかの宝石の系統など、非常に穏やかなマウス系統において最も頻繁に利用されています。ただし、この方法でかまれることの大きなリスクがあります。初心者動物ハンドラーは、片手でメソッドを実行する前に両手拘束技術と快適になります。
	<ol><li>ワイヤ バー ケージ上部など、マタイ、彼らが握ることができる表面に動物の場所</li>
		<li>は、利き手の 3 番目と 4 番目の指の間尾をホールドし、穏やかな後方牽引力を適用します。これは、表面上に保持するために動物が発生し、拡大され、細長い体の結果します</li>。
		<li>手のひらが動物の体に直面しているので、手を有効にします</li>。
		<li>人差し指と親指、肩に齧歯類をピンします</li>。
		<li>ゆっくり親指と人差し指を前方と頭蓋底にそれらを配置します。首のたるんだ皮膚を持って、動物を取り出します</li>。
		<li>中指を固定して、親指の根元に対して背側皮膚背面に沿って動物を安定させるために使用します</li>。
	</ol></li> <li>両手拘束 <ol><li>ことができますグリップ表面に動物を配置します</li>。
		<li>は支配的な手で (体の 1-2 cm) 内基地で尾を押し穏やかな後方牽引力を適用します。これは、表面上に保持するために動物が発生し、拡大され、細長い体の結果します</li>。
		<li>その他の手の親指と人差し指で肩に齧歯類をピンします</li>。
		<li>ゆっくり親指と人差し指を前方と頭蓋底にそれらを配置します。首のたるんだ皮膚を持って、動物を取り出します</li>。
		<li>残りの指を固定して、親指の根元に対して背側皮膚背面に沿って動物を安定させるために使用します</li>。
		<li>第四指と手のひらに尻尾を固定することによってまたは後肢固体表面で休むことを許可することで、後半部をセキュリティで保護します</li>。
	</ol></li></ol> <img alt="Figure 1" src="/files/ftp_upload/10221/10221fig1.jpg"> 図 1: マウスの片手と両手の拘束方法
 2 です。 手袋 ラットのかみ傷からの保護のために着用するためのハンドラーに使用できるさまざまな手袋があります。彼らは一般的に器用さの喪失によるマウスでの作業に適しています。多くの場合、多くのグローブ型の欠点が利点を上回るです。
<ol><li>コットン キャンバスの作業用手袋はかみ傷耐性、ありませんが、少量の歯や爪からの保護を提供します。彼らは、便利で簡単にスライド、良いグリップを提供しない</li>
	<li>質の良い革手袋かみ傷耐性があります。しかし、その剛性は、器用さの減少を引き起こします。革の厚さも保護、削減触覚の視力と手の移動</li>。
	<li>チェーン メールの手袋は、動物のハンドラーの心理的な安心感を提供します。しかし、彼らは重いとほとんどのラット ' 歯のリンク間に浸透することができます。さらに、これらの手袋は手先の器用さを減少、不適切に使用される場合はより危険な動物のハンドラー</li>。
	<li>ゴム-齧歯動物の毛にセキュリティで保護されたグリップのためテクスチャの掌を提供でき、お皿を洗うための家庭で一般的に使用される絶縁手袋。伸縮性のあるラテックス表面は齧歯動物の門歯が穿刺に抵抗、薄いを感じるし、動物を制御することができるのに十分に十分な厚さです。主要な不利な点は、ラテックス アレルギーを持つ人のための関心事であるラテックスから成っていることです。さらに、これらの手袋光で悪化し、定期的に交換する必要があります</li>。
</ol> 3。体拘束 <ol><li>、" t. レックス グリップ " ラット用両手拘束方法です。
	<ol><li>握ることができる表面にラットを配置します</li>。
		<li>一方を持参し、人差し指と中指の分割と背中に片方の手で尾の根元を保持します</li>。
		<li>は、index finger 頭の片側と反対側に中指で肩に手を置きます。頭の両側に指は頭のサイド ・ ツー ・ サイド動きを制限します</li>。
		<li>は、第三指、第四指と親指で前足の後ろに本体を取り囲みます。胸を圧縮して、呼吸を損なうことを避けるために注意する必要があります。このグリップは手の前後の移動からネズミを防ぐことができます</li>。
		<li>または後部のフィートの上に保持することがなく尾の根元をつかんで尾と後半部を安定させる</li>。
		<li>作品と大きいラットは、よく頭にアクセスするとこの拘束が必要です</li>。
	</ol></li> <li>前肢交差メソッドは両手拘束メソッドです。
	<ol><li>ことができますグリップ表面に動物を配置します</li>。
		<li>は支配的な手で (体の 1-2 cm) 内基地で尾を押し穏やかな後方牽引力を適用します。これは、表面上にグリップする動物が発生し、拡大され、細長い体の結果します</li>。
		<li>背中にもう一方の手を後ろからもたらす</li>。
		<li>1 つの側面の指と胸の反対側の親指で、肩の後ろに直接ラットをつかんで、手の前方、招き、前足を前方にスライドです</li>。
		<li>ラットの下で前足が交差 ' s あご、物理的な障壁を作成し、に向かって指その頭からラットを防止します</li>。
		<li>胸を圧縮して、呼吸を損なうことを避けるために注意してください</li>。
	</ol></li></ol> <img alt="Figure 2" src="/files/ftp_upload/10221/10221fig2.jpg"> 図 2: T-レックス グリップと前肢にラットを抑制するための方法が十字模様 4。拘束デバイス <img alt="Figure 3" src="/files/ftp_upload/10221/10221fig3.jpg"> 図 3: ブルーム スタイル拘束デバイス
 <img alt="Figure 4" src="/files/ftp_upload/10221/10221fig4.jpg"> 図 4: 平底齧歯動物落 <ol><li>リジッド デバイスは、さまざまな種類と簡単に消毒は無孔材料の作られて一般に。
	<ol><li>ブルーム スタイル拘束は、静脈注射の尾へのアクセスを提供するために設計されています。まず落後半部に引き出される動物を可能にするデバイスのフルの長さに沿って実行されるスロットで構築されます。代わりに動物を保持するプラスチック製のノーズピースが挿入されます。
		<ol><li>拘束管体からネジをゆるめてレボルバを削除します</li>。
			<li>、尾の基部に動物をつかんで拘束チューブを向きスリット チューブの長さを実行するが向いています。優しく動物に引っ張る拘束デバイス後半部最初</li>。
			<li>チューブへの配置を容易にする滑らかな表面に動物を配置すると効果的です</li>。
			<li>動物が完全に管に- されている描画クローズド エンド スライドする開口部を閉塞し管にプラスチック製のノーズピース</li>。
			<li>ノーズピース アセンブリに置きますので、動物 ' s 鼻は、中央の開口部。レボルバを動物が呼吸できないので、しっかりと配置できません</li>。
		</ol></li> <li>平底の齧歯動物の落は制止装置の上下からアクセスできる開口を有する半円筒。硬質プラスチックのゲートは、1 つのデバイス内の動物を保持するためにいくつかの卒業スロットに挿入されます。
		<ol><li>滑らかな表面またはケージの上の支配的な手で尾のベースで動物を保持します</li>。
			<li>他方、平底拘束チューブを押しながらそれを開放端は、動物、角度 ' テーブル/ケージ上面角度 45 ° s 頭</li>。
			<li>他の消極的とチューブにそれらを操縦するためにハンドラーを必要とする間、いくつかの動物は、チューブを入力すぐにします</li>。
			<li>チューブに動物かぶせます ' s 頭。すぐに動物をタップ ' s 尻中をバックアップから動物を防ぐために圧力を維持して</li>
			<li>動物が拘束デバイス、制止装置で動物を保持するために適切なスロットにプラスチック製のゲートをスライドです</li>。
		</ol></li> <li>チューブ拘束、プレキシ ガラス シリンダーの穴や空気の循環のためのスリットを含む 1 つのクローズ エンド。いくつかは、cylinderto の長、筋肉内注射、伏在大腿採血の後肢の露出に対応または皮下注射のため背側表面へのアクセス幅 slothalf で変更されます。
		<ol><li>動物の滑らかな表面またはケージの上の支配的な手で尾の根元をつかんでいます</li>。
			<li>その他の手で拘束チューブを握り、それを開放端は、動物、角度 ' テーブル/ケージ上面角度 45 ° s 頭</li>。
			<li>いくつかの動物はすぐにチューブを入力します。他の動物は、消極的であるとチューブにそれらを操縦するためにハンドラーを必要とします</li>。
			<li>チューブに動物かぶせます ' s 頭。すぐに動物をタップ ' s 尻中をバックアップから動物を防ぐために圧力を維持して</li>
			<li>首筋と手動ガイド手に負えない動物チューブ、チューブにスリットまでスライドして開催されている皮膚を可能にします</li>。
			<li>動物は拘束デバイスでバックアップ中から動物を防ぐために開口部を閉塞する必要が</li>
			<li>に応じて、いくつかの指がオープニングを越え配置されます</li>。
			<li>は、開口部に大型のラテックス手袋を詰め込みます。手袋テクスチャです通常、プレキシ ガラス表面をグリップします</li>。
			<li>いくつかの拘束チューブが閉鎖スタイルまたはサイズを特定します</li>。
		</ol></li></ol></li></ol> <img alt="Figure 5" src="/files/ftp_upload/10221/10221fig5.jpg"> 図 5: チューブ拘束デバイス <ol start="2"> <li>柔軟な restrainers は、使い捨ての柔軟なプラスチック コーンです。透明または不透明のプラスチックがあります。プラスチック製のため拘束デバイスから動物を削除せずに注射針によって浸透を許可するのに十分に薄いです。彼らは、マウスやラット、大人と幼に合わせてサイズの変化入って来します。
	<ol><li>手足、尾、そして注入の他のサイトへのアクセスを許可するようにハサミでプラスチックをカットします</li>。
		<li>は、動物の適切なコーンのサイズを選択します。円錐であるべき動物を越える 2 3 インチを拡張するのに十分な長さ ' s 臀部</li>。
		<li><ol>コーンに動物を挿入 <li>コーンを開き、上半分の周り把握します</li>。
			<li>動物の滑らかな表面やケージの上にそれを置くこと、支配的な手で尾の根元をつかんでいます</li>。
			<li>その他の手拘束コーンを押しながらそれを開放端は、動物、角度 ' テーブル/ケージ上面角度 45 ° s 頭</li>。
			<li>いくつかの動物はすぐに円錐形を入力します。他の動物は、消極的であると拘束コーンにそれらを操縦するためにハンドラーを必要とします</li>。
			<li>コーンに動物かぶせます ' s 頭。すぐに動物をタップ ' s 尻のバックアップから動物を防ぐために圧力を維持し、。動物は、コーンの出口に好転する可能性が高く、円錐の開口部の大きい直径のため</li>。
			<li>動物に入るコーンと、すぐに開放端をつかみ、最後に動物を強制的にそれを密封します</li>。
			<li>は、尾と 2 つ折りのプラスチックにバインダー クリップを適用する、尾や皮膚をクランプに注意しながらの 1 つの側面にプラスチックを折ることによって開口部を保護します。また、均等に、尾の周りのプラスチックを収集し、開口部を確保するためできるだけ体の近くにねじれタイを配置します</li>。
		</ol></li></ol></li></ol> <img alt="Figure 6" src="/files/ftp_upload/10221/10221fig6.jpg"> 図 6: 柔軟な落 5。特定の技術的な手順の拘束方法 <ol><li>腹露出の腹腔内注射のため必要です。
	<ol><li>スクラッフィング <ol><li>動物の首筋、腹部を露出するように手を回すと</li>。
			<li>頭が 30 ° の角度で下方に指すように動物を傾ける</li>。
			<li>4 番目の指を使用して手のひらに尻尾を固定することで後半部をセキュリティで保護します</li>。
			<li>指と親指の根元の背面に沿って余分な皮膚を固定することによってまた、後半部がすることができます固定化した</li>。
		</ol></li> <li>T. レックス グリップと前肢を東奔西走拘束方法 <ol><li>動物 (ラットのみ) を把握上記のテクニックのいずれかを使用します</li>。
			<li>フリーハンド、ホック、上記両方の後ろ足を把握して尾拡張します</li>。
			<li>背面に手の手のひらで動物の重量をサポートしています</li>。
			<li>頭が 30 ° の角度で下方に指すように動物を傾ける</li>。
			<li>2 番目の人が、インジェクションを実行する</li>。
		</ol></li> <li>硬質落 <ol><li>最も厳格な制限装置は、思わず直立を維持する圧延から動物を防ぐことはできません</li>。
			<li>剛体落を採用する場合に動物、その頭が下に指して、卓上に垂直です</li>。
		</ol></li> <li>柔軟な落 <ol><li>動物は上や周りを有効にすることで柔軟なプラスチック製のコーンで適切に配置されて、.</li>
			<li>後肢は腹部へのアクセスを許可するように十分に区切られているような動物を配置する注意する必要があります</li>。
			<li>動物を圧縮すると、それは注入される脾臓、肝臓、腎臓、胃の穿刺を避けるために腹側の表面に十分に低く不可欠です</li>。
		</ol></li></ol></li> <li>背露出が皮下組織に注射のため必要。
	<ol><li>スクラッフィング <ol><li>首筋動物ができ、固体、平らな表面上に後ろ足</li>。
			<li>首と肩の上の皮膚のテントを作成する首筋を持ち上げています</li>。
			<li>の場所上の手の重量注入するとマウス テーブル。窒息を引き起こすことができますマウスの重量を配置します</li>。
			<li>、後半部が、決して胸に重みのある場所でラットを保持します</li>。
			<li>物質を動物の体に指の下のスペースに挿入します</li>。
		</ol></li> <li>硬質 restrainers <ol><li>開口部皮膚の中を引くのに十分な大きさをもつチャイルドの動物を配置</li>
			<li>鉗子を使用して肌を把握する必要があります</li>。
			<li>拘束を回転させない限り、ほとんどの動物が適切な姿勢に残ります</li>。
			<li>皮膚の注射が完了したら、開口部から後退を防ぐボリュームを挿入しません</li>。
		</ol></li></ol></li> <li>の後肢の拘束が筋肉注射に必要な大伏在静脈、大腿静脈、大腿動脈からの血液の撤退や足蹠に注入。
	<ol><li>マウスおよびラット (200 g 未満) のスクラッフィング <ol><li>動物の首筋、腹部を露出するように手を回すと</li>。
			<li>後肢足指の間足を配置することによってアクセスします</li>。
			<li>最高足蹠注射にのみ用いられます</li>。
		</ol></li> <li>T. レックス グリップや前肢十字模様 <ol><li>このメソッドには 2 人が必要です: 拘束体のための 1 つと 1 つの四肢の拘束と射出のパフォーマンス</li>。
			<li>ラットを拡張 ' 大伏在静脈、大腿静脈または動脈へのアクセス徒歩または注入のために筋肉をつかんで s 後ろ足</li>。
			<li>足蹠注射用ホックのすぐ上を保持します</li>。
		</ol></li> <li>硬質 restrainers <ol><li>最初拘束管頭の動物を配置します</li>。
			<li>注意深く引いてチューブから下位で尻尾と後半部を公開します</li>。
			<li>は、側面の皮をつかんで、膝をまっすぐにロック脚を固定します。これはマウスやラット、インジェクションの大腿四頭筋へのアクセスを提供し、拘束デバイスを終了できない動物</li>。
			<li>大規模なスロットを持つ機器でサンプリングまたは足蹠注射用血管アクセス用チューブの外側の足を配置します</li>。
			<li>フラット エンド部分とそれらの拘束チューブ許可テーブルの残りの部分に、処理中にデバイスを安定させる管</li>。
			<li>動物がこの方法で保護されているためそれは注射を行ったり、血の単一の技術者によるラットのサンプリングすることが可能です</li>。
		</ol></li> <li>柔軟な拘束 <ol><li>手足の露出に合わせて開口部を切り取ることで柔軟なプラスチック製の拘束を変更できます</li>。
			<li>作った開口部は、各動物のまたは具体的な手順についてカスタマイズできます</li>。
			<li>動物がこの方法で保護されている、またはラットのサンプリングを血液を注射を実行する単一の技術者のため不可能だ</li>。
		</ol></li></ol></li></ol>

ケージの変化と技術的なプロシージャの処理ルーチンは実験動物のストレスの原因。ストレスのこのタイプは、動物の健康に脅威ではない、研究データに悪影響を持つことができる生理学的パラメーターの変動を引き起こす可能性が。熟練労働者、適切な技術や機器の使用はいくつかのストレスを軽減できます。

齧歯動物の処理と抑制技術

Rodent Handling and Restraint Techniques

ソース: ケイ ・ スチュワート、RVT、RLATG、CMAR;ヴァレリー A. シュレーダー、RVT、RLATG。ノートルダムのノートルダム大学 によるマウスおよびラットも、最小限の処理が動物にストレスの多いことが実証されています。ケージを変更するおよび他の非侵襲的手順の処理は、心拍数, 血圧, 血中コルチコステロンなどの他の生理学的パラメーターの増加を引き起こします。変動は、最大で数時間続けることができます。科学的なデータに影響を与える可能性のある原因の生理的変化となるも注射と血液引き出しに必要な拘束の法。マウスおよびラットの適正な取扱いの訓練は、動物への影響を最小限に抑えるために必要です。1 マウスおよびラット抑制できる手動で拘束デバイスや化学薬品。手動による方法と制限装置の使用はこの原稿で覆われています。すべての拘束方法にはホーム ケージから動物を持ち上げる処理が含まれます。

Source: Kay Stewart, RVT, RLATG, CMAR; Valerie A. Schroeder, RVT, RLATG. University of Notre Dame, IN
It has been demonstrated that even minimal handling ...

げっ歯類は、さまざまな科学的問題を調査するために広く使用されているモデル生物であり、これらの動物にとって最小限の取り扱いでさえストレスになることが示されています。ケージ交換などの単純な作業では、心拍数、血圧、血清コルチコステロン値の増加を引き起こす可能性があり、これらの変動が数時間続くことがあります。一般的な注射や採血手順に必要な拘束方法も生理学的変化を引き起こす可能性があり、科学データに影響を与える可能性があります。したがって、これらの動物への影響を最小限に抑えるためには、マウスやラットの適切な取り扱いのための訓練が必要です。このビデオでは、最初にげっ歯類の取り扱いに関する基本的なテクニックを確認し、次に手動のテクニックや拘束装置の使用を含むげっ歯類の拘束手順について説明します。まず、げっ歯類の取り扱いの基本について説明します。成体のマウスまたはラットを動かす最も一般的な方法の1つは、動物の尻尾を持ち上げることです。これを行う間、尻の近くの基部で尾をつかむことが不可欠です。動物が尻尾の端で持ち上げられると、体重によって皮膚が引っ張られ、尾を切断する怪我につながる可能性があります。重要なのは、動物をある場所から別の場所に移動するには、迅速かつ着実に行う必要があるということです。動物を長時間空中に吊るすと、苦痛を引き起こすだけでなく、動物がねじれたりもがいたりして、尾に害を及ぼす可能性があります。また、ハンドラーは、安全のために動物をつかもうとして噛み付く可能性があるため、動物の下に手を置くべきではありません。成虫のげっ歯類を扱うための別の方法は、鉗子を使用することです。一般的に使用される鉗子の種類は、クッションを提供するために端にゴム、プラスチック、またはシリコンチューブが配置されたロングドレッシング鉗子または舌鉗子です。鉗子は、首筋または尾の付け根でマウスをつかむことができます。鉗子の使用は動物から動物への相互汚染を最小にし、各動物のおりの間で手袋を交換するより速く、安価である。初心者は、鉗子でマウスをどれだけしっかりとつかむか、特に首筋で呼吸を妨げる可能性があるため、訓練を受ける必要があります。尾に鉗子を使用するときは、怪我をしないように、鉗子を尾の付け根近くに配置するように注意する必要があります。動物の異なるグループの取り扱いの間に、それらを70%エタノールに伏せて保管することを忘れないでください。また、非多孔質材料で作られたチューブを使用して動物を移送することもできます。これらのチューブは、動物が避難したり、安全な避難所を探したりする場所としてケージに追加することができます。ほとんどのマウスやラットは、ケージが開いているときに進んでチューブに入るか、簡単にチューブに誘導できます。動物が中にいるときは、手のひらと指で開放端を覆います。次に、動物が離れるように促すために、新しいケージでチューブをそっと上に傾けます。動物はケージ交換のこの方法に簡単に適応するため、動物をある場所から別の場所に移動するための迅速かつ簡単なプロセスになります。一部の機関では、動物、特にラットが日常的な取り扱い中であっても、体で持ち上げることを好みます。成体のラットは胸部の周りを優しくつかみ、持ち上げられ、すぐに別のケージに入れられます。動物が幼い頃からこの取り扱い方法に慣れていることが重要です。若いラットを扱うときは、ラットの背中に手を置くと、ラットがハンドラーの手のひらに飛び込み、ネズミをつかむことができます。ラットが握りから身をよじるのを防ぐために、秒針が必要になる場合があります。新生児マウスやラットとケージを交換するときは、巣を無傷に保ちながらケージを取り外す必要があることがよくあります。両手を使って、ケージの底から巣と子犬をすくい取り、新しいケージに入れます。子犬を落とさないように、指を近づけてください。巣を新しいケージに移動したら、すべての子犬がいることを確認することが重要です。あるいは、プラスチック製のスコップを使用して、新生児のげっ歯類を巣に移動させることもできます。これを行うときは、新生児が小刻みに動いたり飛び出したりしないように、スコップの上部に手を置くことが重要です。子犬を個別に扱う場合と比較して、巣全体をすくうことは、子犬と母犬の両方にとって苦痛が少ないです。ネズミの取り扱いの基本について説明したので、ネズミの拘束の詳細な手順を掘り下げてみましょう。まず、これらの動物を手動で拘束する方法を概説します。マウスや若いラットは、片手または両手の技術を使用して拘束することができます。しかし、成体ラットの場合、T-レックスグリップを用いた全身拘束や前肢十字法が好ましい技術です。まずは両手拘束の方法を学びましょう。まず、ワイヤーバーの蓋など、動物がつかむことができる面に動物を置きます。利き手でテールを付け根で持ち、マウスをそっと後ろに引っ張ります。これにより、動物は表面をつかみ、体を引き伸ばすことができます。次に、利き手ではない人差し指と親指を頭蓋骨の付け根に置いてげっ歯類をそっと固定し、首の緩い皮膚をつかんで動物を持ち上げます。残りの指を使って、動物を親指の付け根に背を向けて動物を安定させます。薬指で尻尾を手のひらに固定すると、後肢を固定できます。片手で拘束する方法の場合は、動物をつかむことができる面に再度置きます。利き手ではない方の手の3本目と4本目の指で尻尾を持ち、ゆっくりと後方に引っ張ります。人差し指と親指を同じ手で、げっ歯類を肩に固定します。親指と人差し指を前方にそっとスライドさせ、首のたるんだ皮膚をつかんで動物を持ち上げます。中指を使って、背側の皮膚を親指の付け根に固定することにより、動物を背中に沿って安定させます。3つ目の拘束方法は、ラット用の両手拘束方法であるT-レックスグリップです。まず、ラットをマットのような固い表面に置き、つかむことができます。片手で尾の付け根を持ちながら、もう一方の手をネズミの肩に置き、人差し指と中指を両側に分割します。これは、頭の左右の動きを制限するためです。頭が安定したら、中指と薬指、親指で前足の後ろに体を囲みます。動物の呼吸を損なわないように、胸部を圧迫しないでください。最後に、経口強制経口投与を計画している場合は、後足をつかむことなく尾の付け根をつかんで、尾と後肢を安定させます。または、動物を注射する意図がある場合は、後ろ足をつかんで。最後に、前肢十字法を使用してラットを拘束するには、動物をつかむことができる面に置きます。次に、利き手で尾を根元に持ち、動物の体が伸びるようにゆっくりと後方に牽引します。次に、もう一方の手で、手首の片側に指、反対側に親指で、肩の真後ろで動物をつかみ、手を前にスライドさせます。この動きにより、動物の前足があごの下で交差し、動物が頭を下に動かすのを防ぐ物理的な障壁が作成されます。胸部を圧迫すると呼吸困難になるので、注意が必要です。手動拘束のテクニックを確認したので、専用のデバイスを使用してげっ歯類を拘束する方法を学びましょう。最初に学ぶ装置は、ブルームスタイルの拘束装置です。デバイスの全長に沿って走るスロットと、動物を所定の位置に保持するために挿入されるプラスチック製のノーズピースがあります。ネジを緩めてノーズピースを取り外すことから始めます。次に、スリットが上を向くように拘束チューブを向けます。尾の付け根で動物をつかみ、動物を拘束装置にそっと引き込みます。動物が中に入ったら、プラスチック製のノーズピースをチューブにスライドさせて戻して、開かないようにします。動物の鼻が開口部の中央にくるようにノーズピースを置きます。動物が呼吸できないほどきつく配置しないでください。拘束装置の別の例は、平底のげっ歯類拘束装置であり、これは装置の上部と下部からのアクセスを可能にする開口部を備えた半円筒です。また、動物を所定の位置に保持するために硬質プラスチックゲートを挿入できるスロットもあります。この拘束具を使用するには、利き手でげっ歯類の尾の付け根をつかみ、滑らかな面に置きます。もう一方の手で、平底の拘束チューブを持ち、開放端が動物の頭に45度でくるようにしますか?表面に対する角度。チューブを動物の頭にかぶせ、すぐに尻を軽くたたいて動物が後退しないようにします。デバイスに入れたら、プラスチック製のゲートを適切なスロットにスライドさせて、動物の位置を固定します。3つ目のタイプの装置は、チューブ拘束装置です。これらはプレキシガラスのシリンダーで、一方の閉じた端には空気循環用の穴があり、開いた端にはスリットがあります。チューブ拘束具を使用するには、動物をつかんで滑らかな面に置きます。次に、チューブの開放端を動物の頭に45で配置しますか?角。げっ歯類がチューブに入ったらすぐに、尻を軽くたたいて後退しないようにします。最後に、大きなラテックス手袋を詰めて開口部を塞ぎ、プレキシガラスの表面をつかみ、動物がチューブから出るのを防ぎます。最後に、さまざまなサイズで利用できる使い捨ての柔軟なプラスチックコーンである柔軟な拘束具の使用方法について説明します。コーンの選択は、動物のサイズによって異なります。理想的には、動物の臀部から2〜3インチ伸びるのに十分な長さである必要があります。前の方法と同様に、動物を滑らかな面に置き、拘束コーンを45番に置きますか?動物の頭の上で角度をつけます。動物が円錐形に入ったらすぐに、開いた端をつかんで密封し、動物を最後まで押し込みます。プラスチックをテールの片側に折り、折りたたんだプラスチックにバインダークリップを当てて開口部を固定し、テールやスキンを締め付けないように注意します。取り扱いの基本とさまざまな拘束技術について説明した後、これらの手順を理解することがin vivoの科学者にとって必要な理由を確認しましょう。これらの基本的な取り扱い手順の背後にある知識と理論的根拠は、動物の健康を維持するための核心です。動物は生まれたときから、計量、検査、ケージ交換などの簡単な日常的な活動のために扱われますが、これらは科学的な目的に関係なく行われるべきです。拘束手順は、マーキングの目的にも役立ちます。例えば、耳を殴るなどの処置を行うためには、動物を首筋で拘束する必要があります。一方、ラットにマイクロチップを挿入する場合は、永久にタグを付けることができるように、拘束装置を使用する必要があります。最後に、手動拘束法は、皮下投与や腹腔内投与などの一般的な注射手順に使用されます。また、拘束装置の知識は、注射中の動物の動きを最小限に抑える必要がある静脈内投与を行うときに役立ちます。JoVEのげっ歯類の基本的な取り扱いと拘束技術の紹介をご覧になりました。これらの施術には、自信に満ち溢れたしっかりとした、しかし優しい手触りが必要です。暫定的なアプローチはハンドラーの咬傷につながる可能性があり、積極的な取り扱いはげっ歯類に怪我を引き起こす可能性があります。そのため、これらのテクニックをしっかりと学び、主張の強い握り方と優しい握り方のバランスを見つけることが重要です。いつものように、ご覧いただきありがとうございます!

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rodent identification i

Mice and Rats: Ear Tags and Punch Codes

Proper identification of laboratory mice and rats is important in biomedical research. The right animal must be used for each procedure and for data collection. Clear identification helps keep research records accurate and reliable. This page focuses on permanent identification methods for mice and rats. These methods include ear tags, ear punch codes, microchip implantation, tail tattoos for adult mice, and toe tattoos for neonates. Temporary methods such as dyes and marking pens can also be...

rodent identification ii

Rodent ID Methods for Accurate Records

Accurate rodent identification supports reliable animal records and data collection. Research animal records may include simple cage cards or a detailed database with full information on each animal. Individual identification is the key part of keeping those records correct. Mice and rats can be identified by several methods. These include tattooing, microchip placement, and temporary identification methods. Each method serves a different need in research animal management. The procedure also...

compound administration i

Rodent Injection Routes and Restraint

Rodent injection routes and restraint methods are key parts of compound administration in mice and rats. When a substance must be injected into an animal, the delivery route and the amount of compound must be chosen with care. The right choice helps match the dose to the protocol. Several factors guide the route of administration. These include the pH of the solution, the volume needed for the desired dose, and the viscosity of the solution. Viscosity means how thick or resistant to flow a...

compound administration ii

Choosing the Right Route for Compound Delivery

Compound delivery is a key part of many animal studies. The route used to give the compound can change how it is absorbed. Careful planning helps make sure the compound is delivered correctly. The substance itself also matters when a route is chosen. Its pH, viscosity, and concentration can all affect which method is best. These properties help guide the choice of administration route in a study.

compound administration iii

Specialized Injection Routes in Mice and Rats

Specialized injection routes in mice and rats are sometimes used when standard compound administration methods are not enough. Some study protocols call for less common routes such as intradermal, intranasal, and intracranial injections. These methods are used in laboratory animals and require careful technique. Intradermal injections place a compound into the skin. Intranasal injections deliver a compound through the nose. Intracranial injections are given into the brain. Because these...

compound administration iv

Specialized Injection Routes in Rodents

Specialized injection routes in laboratory mice and rats include intracardiac, footpad, and retro-orbital administration. These methods are used when a protocol calls for a route that is less common than standard compound delivery methods. Each route requires specialized training to perform correctly. Intracardiac injections deliver into the heart, footpad injections target the paw area, and retro-orbital injections are given around the eye region. Because these procedures are more technical,...

blood withdrawal i

Rodent Blood Collection Methods

Blood collection in mice and rats is a common part of research studies. The method used depends on how much blood is needed, how often samples must be taken, the animal's health, and the technician's skill level. This topic includes three blood withdrawal methods: retro-orbital sinus bleeds, initial tail snip bleeds, and intracardiac bleeds. Each method requires general anesthesia, which means the animal is made unconscious before the procedure begins.

blood withdrawal ii

Rodent Blood Sampling Methods

Blood collection from mice and rats can be done with several methods. The choice depends on the restraint needed, how invasive the procedure is, and whether a general anesthetic is required. These factors help determine which method is best for a given analysis. One older method uses the retro-orbital sinus cavity, which is located behind the eye. This approach has been debated because it may cause tissue damage or even blindness. For that reason, facial vein and submandibular vein bleeding...

anesthesia induction and maintenance

Laboratory Anesthesia and Pain Control

Laboratory anesthesia and pain control are important parts of veterinary care for research animals. The Guide for the Care and Use of Laboratory Animals says that pain assessment and pain relief must be part of that care. Anesthesia means the loss of feeling or sensation.

considerations for rodent surgery 

Aseptic Steps in Rodent Survival Surgery

Aseptic technique is essential for rodent survival surgery. It is used to keep the surgical site as clean as possible and to reduce contamination during the procedure. This approach includes patient preparation, surgeon preparation, and sterilization of instruments and other supplies. It also depends on a clean, controlled environment. Careful planning before surgery helps set up these steps for success. During the operation, animals need close monitoring. After the surgery, postoperative...

diagnostic necropsy and tissue harvest

Rat Necropsy for Tissue Collection

Rat necropsy is a key step for collecting organs and tissues at the end of many animal studies. These final samples are used for data collection time points and later testing. Because the samples are used for analysis, the way they are taken can affect sample quality. Careful collection methods help preserve the organs and tissues for testing. The method of euthanasia, or the procedure used to humanely end the animal's life, can also affect sample quality. This article outlines proper necropsy...

sterile tissue harvest

Aseptic Organ Collection in Rats and Mice

Aseptic organ collection in rats and mice is used to keep harvested tissues free from contamination. The process is important when tissues will be used for cell and tissue cultures. It also supports later protein and RNA analysis, as well as metabolic profiling of tissues. The transcript connects this work to the 3 R's, which were introduced in 1959 by W.M.S. Russell and R.L. Burch in The Principles of Humane Experimental Technique. The 3 R's are replacement, reduction, and refinement in the...

early intervention and pain management

早期介入と疼痛管理

ここで説明されているすべての動物実験手順は、機関の動物倫理ガイドラインに従って行われ、IACUCによって承認されている必要があります。すべての手順は、3Rsの原則、すなわち置換、削減、改善の原則に従い、訓練を受けた人員によって実施されなければなりません。 痛みと苦痛の兆候に対する動物のモニタリング<br...

humane euthanasia and confirmation of death in rodents

げっ歯類における人道的な安楽死と死亡確認

ここに記述されているすべての動物実験手順は、機関の動物倫理ガイドラインに従って行われ、IACUCの承認を得たものでなければなりません。すべての手順は3R（代替、削減、改善）の原則に従い、訓練を受けた人員によって行われなければなりません。 げっ歯類におけるヒューマンエンドポイントは、動物が重大な痛み、苦痛、または健康の低下を経験していることを示す、事前に定義された臨床的、行動的、または生理学的指標です。これらの兆候が観察された場合、苦痛を最小限に抑え、動物の福祉を保護するためにタイムリーな介入が行われます。 化学的安楽死 この手順は通常、種および研究プロトコルに応じて、承認された麻酔薬の過量投与の注射から始まります。ペントバルビタールナトリウムなどの注射可能な麻酔薬は、中枢神経系の活動を急速に抑制します。投与後、動物は意識と反射活動を失います。深い麻酔は呼吸抑制に進展し、その後心臓と脳の機能が停止します。恐怖とストレスを最小限に抑えるため、導入前に優しく扱い、適切に拘束することが重要です。 吸入法<br...

habituation and positive reinforcement for rodent handling

齧歯類の扱いに対する順化とポジティブ強化

ここで記述されているすべての動物実験手順は、機関の動物倫理指針に従って行われ、IACUCによって承認されなければなりません。すべての手順は、3R（置換、削減、改善）の原則に従い、訓練された人員によって行われなければなりません。 順応とポジティブ強化は、げっ歯類の日常的な取り扱いや実験手順中のストレスを軽減するための改善戦略です。これらのアプローチは動物の福祉を向上させ、自主的な協力を促進し、研究結果に影響を与える可能性のあるストレス関連の影響を軽減します。 順応 順応は、動物が繰り返される非脅威性の刺激に対する反応が時間とともに徐々に減少する非連合学習の一形態です。取り扱い担当者、取り扱いデバイス、または手順環境に繰り返し接触することで、げっ歯類は恐怖や回避行動を引き起こす可能性のある経験に慣れていきます。順応セッションは短時間で一貫性があり、動物が自分のペースで適応できるよう徐々に導入する必要があります。 ポジティブ強化<br...

breeding management in rodent studies

げっ歯類研究における繁殖管理

ここで説明されているすべての動物実験手順は、機関の動物倫理指針に従って実施され、IACUCの承認を受けている必要があります。すべての手順は3Rの原則（代替、削減、改善）に従い、訓練を受けた人員によって実行されなければなりません。 繁殖管理は、不必要な動物生産を最小限に抑え、研究に必要な数の動物のみを生成することで3Rをサポートします。効果的な繁殖戦略は、研究目的を維持しながら、過剰な動物の削減と動物資源の効率的な使用を促進します。 繁殖成功に影響を与える要因 繁殖計画は、交配成功、出生数、子孫の生存率、遺伝子型頻度、性別分布、繁殖力、生殖寿命など、コロニーの生産性に影響を与える株特有の生物学的変数を考慮する必要があります。これらの変数の正確な予測は、研究者に必要な数の動物を生産しつつ、過度の繁殖を避けるのに役立ちます。 繁殖計算<br...

transport and acclimatization of rodents for research

研究用げっ歯類の輸送と順応

ここで説明されているすべての動物実験手順は、機関の動物倫理ガイドラインに従って実施され、IACUCによって承認されている必要があります。すべての手順は3R原則—代替、削減、改善—に従い、訓練された人員によって実施されなければなりません。 研究目的でのげっ歯類の搬送には、実験結果への影響を最小限に抑えるために、ストレスを最小限に抑え、移動中に動物の福祉を維持する手順が必要です。輸送用のケージは、適切な換気、寝床、食事、そしてゲルパックなどの水分源を提供する必要があります。ネズミは優しく取り扱い、過度の混雑を避けてケージに入れることで、ストレス、攻撃性、怪我のリスクを軽減します。ケージはしっかりと閉鎖し、「生体」および関連する搬送情報でラベル付けし、通気性のある素材で覆い、外部刺激を減らしながら、適切な換気と温度制御を維持します。 搬送とストレス軽減<br...

environmental enrichment for rodents

げっ歯類のための環境エンリッチメント

ここに記述されているすべての動物実験は、機関の動物倫理指針に従って実施し、IACUCの承認を得たものでなければなりません。すべての実験は3R（Replacement、Reduction、Refinement）の原則に従い、訓練を受けた人員によって実施されなければなりません。 環境エンリッチメントには、自然な行動を促し、心理的な幸福を向上させ、実験用げっ歯類の福祉を促進する物や実践が含まれます。環境エンリッチメントは、げっ歯類の種、系統、年齢、性別、および研究設計に合わせて調整し、機関の動物ケアプロトコルに従って提供する必要があります。 げっ歯類のエンリッチメント ネスト材料とトンネル<br...

rodents

Learn how mouse and rat handling can affect stress, heart rate, and blood pressure, and explore manual restraint methods and devices used in labs.

Minimizing Stress in Mouse and Rat Handling

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