Name: rodent injection routes and restraint
Uploaded: 2015-07-24T15:42:00.000Z
Duration: 15 min 5 s
Channel: JoVE

K12 Standards

new-york-state-science-learning-standards

New York State Science Learning Standards

High School

Life Science

Structure and Function

HS-LS1-2.

Compound Administration I

1. Wstrzyknięcie podskórne
<ol>
	<li>Ręcznie przytrzymuj mysz za pomocą jednoręcznego przytrzymywania krępowania. Po uchwyceniu pozwól myszy spocząć na stole lub innej bezpiecznej powierzchni. Pamiętaj, aby unikać wywierania nacisku na korpus myszy. </li>
	<li>Oprzyj piętę dłoni na stole, aby uniknąć nadmiernego obciążenia myszy, które może utrudnić oddychanie. Myszy można również unieruchomić w urządzeniu komercyjnym. W przypadku szczurów najlepiej jest użyć komercyjnego urządzenia przytrzymującego. </li>
	<li>Chwyć skórę i pociągnij w górę, aby stworzyć namiot ze skóry. W przypadku korzystania z urządzenia przytrzymującego może być konieczne użycie kleszczy do uchwycenia skóry przez szczelinę na górze. </li>
	<li>Wbić igłę równolegle do kręgosłupa, skierowaną od głowy u podstawy fałdu skórnego namiotu. Skieruj igłę z dala od głowy, aby uniknąć możliwości przebicia czaszki, ponieważ kość czaszki myszy jest bardzo cienka. Szczury mają tendencję do podnoszenia głowy, co może spowodować umieszczenie zastrzyku w mięśniach szyi. </li>
	<li>Włóż igłę skos do góry, aby umożliwić delikatne wślizgiwanie się w skórę. Zwróć uwagę, że igła jest wsuwana poniżej palców chwytających skórę. Aby zwiększyć bezpieczeństwo podczas wstrzykiwania przedmiotów niebezpiecznych biologicznie, skórę chwyta się kleszczami, eliminując w ten sposób możliwość zranienia igłą. </li>
	<li>Odciągnąć tłok, aby sprawdzić, czy jest prawidłowo umieszczony. Jeśli powietrze zostanie zassane do strzykawki, oznacza to, że końcówka igły nie znajduje się pod skórą i będzie musiała zostać pobrana i ponownie położona. Jeśli po odciągnięciu tłoka występuje ciśnienie wsteczne, oznacza to prawidłowe umieszczenie igły i możliwość kontynuowania wstrzykiwania. </li>
	<li>Wstrzykiwać substancję powoli, równomiernym ruchem. Aby zapobiec utracie przedmiotu do wstrzykiwań, należy zrobić przerwę po wstrzyknięciu, lekko obrócić igłę pod skórą i ścisnąć skórę w miejscu wstrzyknięcia, jednocześnie wyjmując igłę. </li>
</ol>
<img alt="Figure 1" src="/files/ftp_upload/10198/10198fig1.jpg"> 
Rysunek 1. Wstrzyknięcie podskórne u myszy. 
2. Iniekcja dootrzewnowa
<ol>
	<li>W tej technice wstrzykiwania u myszy stosuje się metodę ręcznego krępowania jedną ręką. Wyreguluj rękę tak, aby znajdowała się wystarczająco wysoko na szyi, aby zapobiec obracaniu się myszy. </li>
	<li>Chwyć luźną skórę na karku między kciukiem a palcem wskazującym. </li>
	<li>Ustabilizuj tylne ćwiartki, przypinając luźną skórę wzdłuż grzbietu między drugim, trzecim i czwartym palcem a podstawą kciuka lub umieszczając ogon między trzecim a czwartym palcem. </li>
	<li>Wstrzyknięcie IP u szczura wymaga dwóch osób, jednej do przytrzymania szczura, a drugiej do wykonania wstrzyknięcia.
	<ol>
		<li>Chwyć szczura za ramiona, używając palca wskazującego i środkowego po obu stronach szyi oraz dłoni z tyłu. Kciuk oraz trzeci i czwarty palec powinny otaczać klatkę piersiową, aby zapobiec ruchom do przodu lub do tyłu. Ułożenie palców po obu stronach szyi zapobiega obracaniu głowy przez szczura. </li>
		<li>Podnieś szczura i obróć go, aby odsłonić brzuszny brzuch. </li>
		<li>Ustabilizuj tylne ćwiartki, mocno chwytając stopy i ogon i odsuwając je od ciała. </li>
	</ol>
	</li>
	<li>Ustaw mysz lub szczura tak, aby odsłonił brzuch, upewniając się, że jest skierowany do góry. </li>
	<li>Przechyl zwierzę z głową skierowaną w dół pod kątem około 30°, aby jelita opadły do przodu. </li>
	<li>Punkty orientacyjne iniekcji są następujące:
	<ol>
		<li>Obszar, który ma zostać wstrzyknięty, jest otoczony czaszką wyimaginowaną linią biegnącą poziomo w poprzek ciała w górnej części biodra (od boku do boku). </li>
		<li>Linia środkowa to granica przyśrodkowa, rozpoznawana jako miejsce, w którym spotykają się włosy rosnące w przeciwnych kierunkach. U zwierząt bezwłosych linia środkowa rozciąga się w linii prostej od mieczykowatej do odbytu. </li>
		<li>Granica boczna to linia biegnąca od górnej części biodra do napletka u samca oraz od górnej części biodra i wzdłuż strzyków u samicy. </li>
		<li>Zapewnia to trójkątny obszar do bezpiecznego wstrzykiwania. </li>
	</ol>
	</li>
	<li>Wprowadzenie artykułu w obrębie punktów orientacyjnych
	<ol>
		<li>Wbij igłę prostopadle do kręgosłupa, poza linią środkową, w trójkąt, jak opisano powyżej. Umieszczenie igły pod kątem 90° do płaszczyzny ciała pozwala na bezpieczne wstrzyknięcie z wykorzystaniem obu stron brzucha. Jest to szczególnie ważne w przypadku wielokrotnych wstrzyknięć, ponieważ minimalizuje uraz tkanki, umożliwiając naprzemienność miejsc wstrzyknięć. </li>
		<li>Gdy igła zostanie umieszczona pod kątem 90°, "wskoczy" w brzuch, co pozwoli na łatwiejsze określenie głębokości. Jest to również wizualna i dotykowa wskazówka, że igła jest prawidłowo ustawiona. </li>
		<li>Odessać strzykawkę, aby zapewnić umieszczenie w jamie otrzewnej, a nie w pęcherzu moczowym, jelicie lub strukturach naczyniowych. </li>
		<li>Należy unikać wstrzykiwania doogonowo samcowi myszy, aby zapobiec podawaniu artykułu do worka mosznowego. Należy unikać wstrzykiwania do smoczka samicy, aby zapobiec urazowi. </li>
	</ol>
	</li>
</ol>
<img alt="Figure 2" src="/files/ftp_upload/10198/10198fig2.jpg"> 
Rysunek 2. Punkty orientacyjne dla wstrzyknięcia dootrzewnowego u myszy. 
3. Wstrzyknięcie domięśniowe
<ol>
	<li>Unieruchomienie w tej technice dla myszy i szczurów wymaga albo dwóch osób, albo użycia rurki krępującej. Opisana tutaj jest metoda jednoosobowa wykorzystująca urządzenie krępujące.
	<ol>
		<li>Umieścić zwierzę w urządzeniu przytrzymującym. </li>
		<li>Gdy zwierzę znajdzie się w tubie, chwyć za ogon, aby ustawić zwierzę z tylnymi nogami poza rurką. </li>
		<li>Chwyć skórę boku w czaszkowej części kości udowej, aby wyprostować nogę i zapobiec zgięciu kolana. </li>
		<li>Urządzenie przytrzymujące należy ustawić tak, aby stało na stole z głową zwierzęcia skierowaną w dół lub leżało na stole skierowanym w stronę ciała technika, aby umożliwić stabilizację urządzenia podczas wykonywania wstrzyknięcia. </li>
		<li>Punkty orientacyjne wstrzyknięcia są następujące: zarówno noga myszy, jak i szczura są małe, a mięśnie pośladkowe (mięśnie ud ogonowych) stanowią największą masę mięśniową w kończynie tylnej; Drugą co do wielkości masą mięśniową kończyny tylnej jest mięsień brzuchaty łydki (mięsień łydki). Wstrzyknięcie wykonuje się od strony ogonowej nogi.
		<ol>
			<li>Zlokalizuj masę mięśniową pośladków za kością udową. Kość można wyczuć palpacyjnie, a duży mięsień jest łatwo wyczuwalny. </li>
			<li>Zwróć uwagę, że linia środkowa nogi od tylnej części biegnie od punktu stawu skokowego do ogona. Włosy często mają grzbiet, w którym się łączą, ponieważ rosną w przeciwnych kierunkach od powierzchni bocznej i wewnętrznej. </li>
			<li>Zastrzyki wykonuje się w kierunku bocznej części uda poza linią środkową. Zmniejsza to prawdopodobieństwo uszkodzenia nerwów i naczyń krwionośnych znajdujących się na przyśrodkowej powierzchni nogi.</li>
			<li>Iniekcje do mięśnia brzuchatego łydki wykonuje się od strony tylnej i ze starannym uwzględnieniem lokalizacji żyły odpiszczelowej bocznej. </li>
		</ol>
		</li>
		<li>Wprowadzenie artykułu w obrębie punktów orientacyjnych
		<ol>
			<li>Wbić igłę prostopadle do kości udowej poza linią środkową, jak opisano powyżej, na maksymalną głębokość 5 mm w przypadku mięśnia pośladkowego i maksymalnie 3 mm w przypadku mięśnia brzuchatego łydki. </li>
			<li>Aby uniknąć urazu mięśnia, należy zapobiegać obcemu ruchowi igły w tkance. Strzykawkę należy trzymać w taki sposób, aby nie wymagała zmiany pozycji ręki w celu wykonania wstrzyknięcia. </li>
			<li>Odessać strzykawkę, aby zapewnić umieszczenie jej w mięśniu, a nie w naczyniu krwionośnym. </li>
			<li>Wstrzykiwać materiał równomiernym, płynnym ruchem. Nie należy wstrzykiwać szybko, aby umożliwić powolne rozszerzanie mięśni. Szybkie wstrzyknięcie spowoduje uraz tkanki. </li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
<img alt="Figure 3" src="/files/ftp_upload/10198/10198fig3.jpg"> 
Rysunek 3. Wstrzyknięcie domięśniowe do mięśnia pośladkowego u szczurów. 
4. Wstrzyknięcie dożylne z wykorzystaniem żyły ogonowej
<ol>
	<li>Unieruchomienie zwierzęcia zależy od tego, czy zwierzę jest znieczulone, czy przytomne.
	<ol>
		<li>Użyj cylindrycznej rurki krępującej dla przytomnych myszy lub szczurów, z wyjątkiem zwierząt bezwłosych lub nagich. Ze względu na tłustą naturę bezwłosych zwierząt trudno jest zmienić ich położenie i usunąć z akrylowych ograniczników, ponieważ ich skóra ma tendencję do przylegania do sztywnego plastiku. W ten sposób stosuje się elastyczny stożek z tworzywa sztucznego. </li>
		<li>Inne urządzenia iniekcyjne obejmują oświetlone platformy, podgrzewane platformy i sztywne plastikowe stożki, w których mysz jest utrzymywana w stożku ściśle z napięciem na ogonie. </li>
		<li>Znieczulone myszy mogą nie potrzebować ograniczeń. </li>
		<li>Ogrzej całe ciało lub tylko ogon, aby zapewnić rozszerzenie naczyń krwionośnych naczyń ogonowych.
		<ol>
			<li>Ogrzej całe ciało za pomocą elektrycznej poduszki grzewczej ustawionej na podłożu lub koca z obiegową wodą. </li>
			<li>Umieść zwierzę w urządzeniu przytrzymującym, owinięte w źródło ciepła. </li>
			<li>Uważnie obserwuj zwierzę i usuń je ze źródła ciepła, gdy tylko naczynia krwionośne się rozszerzą. Rozgrzanie całego ciała można również osiągnąć za pomocą lampy grzewczej skierowanej do klatki. Podczas korzystania z lampy grzewczej zwierzęta muszą być uważnie obserwowane, ponieważ łatwo je przegrzać. </li>
			<li>Gdy rozgrzanie całego ciała nie jest możliwe, samo podgrzanie ogona można osiągnąć za pomocą ciepłych okładów z podgrzewanego ręcznika, butelki z gorącą wodą lub zanurzenia ogona w ciepłej wodzie. Należy zachować ostrożność, aby uniknąć poparzenia ogona, ponieważ butelki z gorącą wodą, podgrzane ręczniki i ciepła woda nie mają regulatorów temperatury. Często zdarza się, że źródła ciepła są początkowo przegrzane. Te źródła ciepła również szybko się schładzają. </li>
		</ol>
		</li>
		<li>Stosowanie oleju tkankowego to kolejny sposób na poprawę wizualizacji naczyń krwionośnych.
		<ol>
			<li>Zanurz aplikator z bawełnianą końcówką w oleju w chusteczce i nałóż olejek z dala od części ogona, która jest chwytana w celu stabilizacji. Olej tkankowy powoduje, że naczynia stają się wyraźniej zaznaczone. </li>
			<li>Na rynku dostępne są nietoksyczne oleje, które zawierają substancję chemiczną w preparacie, która powoduje ocieplenie skóry i rozszerzenie naczyń krwionośnych wraz z parowaniem. Olejki te nakłada się, a po kilku chwilach, gdy naczynka są już widoczne, nadmiar sebum wyciera się wacikiem. </li>
			<li>Wszystkie oleje mogą utrudniać utrzymanie ogona. </li>
			<li>W przypadku stosowania olejków iniekcja musi być wykonana natychmiast po wizualizacji naczyń. </li>
		</ol>
		</li>
		<li>Punkty orientacyjne iniekcji są następujące:
		<ol>
			<li>Boczne żyły ogonowe znajdują się po bokach ogona. Istnieją również naczynia biegnące wzdłuż grzbietowej i brzusznej linii środkowej ogona, które nie nadają się do celów iniekcyjnych. </li>
			<li>Zwierzę w unieruchomieniu można obrócić tak, aby naczynia boczne były skierowane do góry, co ułatwia wstrzyknięcie. Alternatywnie, ogon można obrócić, aby ustawić naczynia w bardziej akceptowalnej pozycji do wstrzyknięcia. </li>
			<li>Naczynia są bardzo powierzchowne. Stają się bardziej powierzchowne, gdy docierają do podstawy ogona. </li>
		</ol>
		</li>
		<li>Wstrzyknięcie artykułu do żyły ogonowej wymaga umiejętności. Aby uniknąć urazu naczynia krwionośnego, należy zapobiegać obcemu ruchowi igły. Strzykawka jest trzymana w taki sposób, że nie wymaga zmiany pozycji ręki w celu wykonania wstrzyknięcia.
		<ol>
			<li>Ustaw ogon tak, aby naczynie było widoczne i utrzymywane pod napięciem. Nie należy nadmiernie napinać ogona, ponieważ naczynie może zostać rozciągnięte, a przepływ krwi zmniejszony. </li>
			<li>Umieścić igłę bezpośrednio nad naczyniem tak daleko, jak to możliwe. </li>
			<li>Lekko dociśnij i wsuń igłę w ogon równolegle do kręgów. Unikaj pochylania igły w dół, ponieważ igła przebije naczynie. Igła powinna być widoczna w naczyniu, ponieważ jest wsunięta co najmniej 2 mm w światło. </li>
			<li>Wstrzykiwać materiał powolnym, płynnym ruchem, aby uniknąć pęknięcia naczynia. </li>
			<li>Zwróć szczególną uwagę na ogon podczas wstrzykiwania. Po prawidłowym włożeniu do naczynia materiał iniekcyjny wpływający do naczynia jest wyczuwalny bez oporu. Naczynie krwionośne powinno blednąć, gdy krew jest wypychana przez materiał do wstrzykiwań. </li>
			<li>Jeśli igła nie znajduje się w naczyniu, podczas wstrzykiwania wystąpi silny opór. W przypadku wstrzykiwania z siłą materiał wypełni przestrzeń podskórną, a ogon wzrośnie. Należy natychmiast przerwać pracę, ponieważ materiał przeznaczony do wstrzykiwania dożylnego może działać żrąco na otaczające tkanki. Wyjąć igłę i podjąć kolejną próbę wstrzyknięcia bardziej czaszkowo w ogon. </li>
			<li>Po udanym wstrzyknięciu należy wyjąć igłę i przyłożyć ucisk do miejsca wstrzyknięcia, aby zapewnić dobrą hemostazę przed powrotem zwierzęcia do klatki. </li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
<img alt="Figure 4" src="/files/ftp_upload/10198/10198fig4.jpg"> 
Rysunek 4. Wstrzyknięcie żyły ogonowej u myszy.

Podawanie substancji jest powszechnym składnikiem protokołów eksperymentalnych, które wykorzystują zwierzęta. Przy wyborze drogi dostawy należy wziąć pod uwagę wiele czynników, w tym biegłość techniczną osób odpowiedzialnych za dawkowanie zwierząt, wielkość zwierzęcia, lepkość płynu i ilość, która ma być podawana. Staranne rozważenie tych czynników poprawi samopoczucie zwierzęcia i ogólny wynik eksperymentu.

podawanie związków i

Źródło: Kay Stewart, RVT, RLATG, CMAR; Valerie A. Schroeder, RVT, RLATG. Uniwersytet Notre Dame, IN
Ponieważ wiele protokołów badawczych wymaga, aby substancja została wstrzyknięta zwierzęciu, droga podania i ilość substancji muszą być dokładnie określone. U myszy i szczura dostępnych jest kilka dróg podawania. O tym, którą drogę zastosować, decyduje kilka czynników wstrzykiwanej substancji: pH roztworu, objętość wymagana do uzyskania pożądanej dawki oraz lepkość roztworu. W przypadku nieprawidłowego podania substancji może dojść do poważnego uszkodzenia tkanek. W tym filmie omówiono różne metody unieruchamiania i szczegóły techniczne dotyczące najczęściej stosowanych dróg iniekcji.

Podawanie związków I

Source: Kay Stewart, RVT, RLATG, CMAR; Valerie A. Schroeder, RVT, RLATG. University of Notre Dame, IN
As many research protocols require that a substance ...

Podawanie związków jest często integralnym elementem badań na zwierzętach i należy ocenić wiele czynników, aby upewnić się, że związek jest dostarczany prawidłowo i w humanitarny sposób. Dwie główne drogi podania to dojelitowo - przez przewód pokarmowy i pozajelitowo - na zewnątrz przewodu pokarmowego. Główna różnica polega na tym, że jeśli związek jest podawany drogą dojelitową, ulega metabolizmowi wątrobowemu PRZED wejściem do krwiobiegu. Natomiast dowolną drogą pozajelitową, taką jak dożylna lub domięśniowa, substancja pomija to pierwsze przejście przez wątrobę, co zwykle skutkuje wyższą biodostępnością. W tym pierwszym filmie z serii na temat podawania związków zaczniemy od omówienia czynników wpływających na wybór drogi podawania w ogóle. Następnie przyjrzymy się najczęstszym metodom wstrzykiwań pozajelitowych, w tym podskórnym w skrócie SC lub SubQ, dootrzewnowym lub IP, domięśniowym lub domięśniowym oraz dożylnym AKA IV. Zacznijmy od przeglądu kilku rzeczy, o których należy pamiętać przed przystąpieniem do jakiejkolwiek procedury podawania związku. Pierwszym krokiem jest przygotowanie roztworu lub zawiesiny do wstrzyknięcia, a pierwszą podstawową kwestią przy przygotowywaniu substancji jest sterylność. Aby zapobiec przedostawaniu się patogenów do organizmu zwierzęcia, ważne jest, aby materiał do wstrzykiwań oraz igły i strzykawki, które mają być użyte, były sterylne. Drugą kwestią jest zgodność fizjologiczna. Roztwór dozujący, niezależnie od tego, czy jest podawany dojelitowo, czy pozajelitowo, musi być fizjologicznie buforowany do odpowiedniego pH, aby związek był prawidłowo wchłaniany i aby zapobiec uszkodzeniu tkanek. Trzecim czynnikiem jest lepkość artykułu do wstrzykiwań, która odgrywa kluczową rolę w doborze igły. Zwykle igły o rozmiarze od 20 do 30 są używane w procedurach podawania pozajelitowego dla myszy i szczurów. Piasty tych igieł są zwykle oznaczone kolorami w celu ułatwienia identyfikacji. Roztwór powinien mieć wystarczającą płynność, aby przejść przez co najmniej jedną z tych igieł. Jeśli rozwiązanie może przejść przez więcej niż jeden, to ogólnie rzecz biorąc, wybór jest najmniejszym możliwym miernikiem. Kolejnym czynnikiem jest objętość podanego leku, która wpływa na wybór strzykawki. Podobnie jak w przypadku igieł, należy wybrać możliwie najmniejszą strzykawkę potrzebną do dokładnego dozowania z prawidłową podziałką. Rozstaw igieł i objętość podawanego leku są również zależne od drogi leczenia oraz gatunku, wielkości i wieku podawanego zwierzęcia. Zapoznaj się z poniższą tabelą 1, aby zapoznać się z wartościami związanymi z trasami omówionymi w tym filmie. Ostatnią ważną kwestią jest szybkość wchłaniania, która różni się znacznie w zależności od drogi podania i może odgrywać rolę w wyborze najlepiej dopasowanej metody. Porozmawiajmy teraz o szczególnych cechach rutynowo stosowanych metod iniekcji. SC lub SubQ Injection umieszcza materiał między warstwami skóry a mięśniem w wirtualnej przestrzeni powstałej poprzez uniesienie skóry. Pozwala to na bezpieczne wstrzykiwanie większych objętości, ale szybkość wchłaniania jest wolniejsza niż w przypadku innych dróg, zapewniając bardziej trwały efekt. Podczas podawania IP, związek jest wstrzykiwany bezpośrednio do jamy otrzewnej. Jest to inna powszechna metoda stosowana do dostarczania dużych ilości roztworu. Chociaż wstrzyknięcie IP jest uważane za podanie pozajelitowe, mechanizm wchłaniania jest w rzeczywistości bardziej podobny do dawkowania doustnego. Wstrzyknięcie domięśniowe dostarcza związek bezpośrednio do mięśnia pośladkowego lub mięśnia brzuchatego łydki. Substancja wstrzykiwana domięśniowo jest szybko wchłaniana ze względu na dużą liczbę naczyń w tkance mięśniowej, co może sprawić, że w niektórych przypadkach będzie to preferowana droga. Niewłaściwe lub powtarzające się wstrzyknięcie w mięsień może spowodować uszkodzenie nerwów, powodując paraliż lub martwicę mięśni. Wreszcie, wstrzyknięcie dożylne do żyły ogonowej zwierzęcia jest najskuteczniejszą drogą podawania, ponieważ substancja jest bezpośrednio wprowadzana do układu krążenia. Należy pamiętać, że związek należy wstrzyknąć do jednej z bocznych żył ogonowych znajdujących się po bokach ogona. Istnieje naczynie biegnące wzdłuż brzusznej linii środkowej ogona, które nie nadaje się do celów iniekcyjnych. Teraz, gdy omówiliśmy tło, nauczmy się procedur, zaczynając od zastrzyków SC. W przypadku myszy chwyć zwierzę za ogon i pozwól mu odpocząć na innej bezpiecznej powierzchni, takiej jak pokrywa z drucianych prętów. Następnie ręcznie skrępuj zwierzę, unosząc skórę wokół szyi, tworząc namiot. Następnie połóż zwierzę na stole tak, aby tylne łapy opierały się o powierzchnię i oprzyj piętę dłoni na stole, aby uniknąć nadmiernego obciążenia zwierzęcia, które może utrudnić oddychanie. Aby wykonać wstrzyknięcie, należy podnieść strzykawkę z roztworem, który ma być wstrzyknięty, i skierować igłę równolegle do kręgosłupa i z dala od głowy, aby uniknąć możliwości nakłucia czaszki. Następnie włóż igłę skosem skierowanym do góry, co pozwala na delikatne wślizgiwanie się w skórę. Odciągnąć tłok, aby sprawdzić, czy igła jest prawidłowo umieszczona. Jeśli po odciągnięciu tłoka występuje przeciwciśnienie, oznacza to, że igła znajduje się we właściwej pozycji. Jeśli powietrze zostanie zassane do tłoka, konieczne będzie przemieszczenie igły. Po upewnieniu się, że igła jest prawidłowo umieszczona, należy wstrzykiwać powoli, równomiernym ruchem. Po wstrzyknięciu należy zrobić przerwę i lekko obrócić igłę pod skórą, aby zapobiec utracie przedmiotu do wstrzykiwań. Następnie należy uszczypnąć skórę w miejscu wstrzyknięcia i wyjąć igłę. Ta sama metoda może być stosowana u szczurów odsadzonych od piersi. W przypadku dorosłych szczurów najpierw zwierzę musi zostać skrępowane za pomocą urządzenia, którego procedura została omówiona w filmie "Podstawy obchodzenia się z nim i krępowania" z tej kolekcji. Następnie można wykonać wstrzyknięcie SC w taki sam sposób, jak u myszy. Następnie dowiemy się, jak wykonać wstrzyknięcie adresu IP. U myszy użyj techniki krępowania oburęcznego, aby ręcznie przytrzymać zwierzę, ponownie opisanej w filmie "Podstawy obsługi i krępowania". Upewnij się, że twoja niedominująca ręka jest umieszczona wystarczająco wysoko na szyi, aby zapobiec obracaniu się zwierzęcia. Ustabilizuj kończyny tylne, umieszczając ogon między trzecim a czwartym palcem lub mocno przypinając skórę między pozostałymi palcami a podstawą kciuka. Następnie ustaw zwierzę tak, aby odsłoniło brzuch. Przechylić zwierzę z głową skierowaną w dół na 30? kąt, aby jelita mogły opadać do przodu. Punkt orientacyjny wstrzyknięcia można narysować w następujący sposób: narysuj wyimaginowaną linię, która rozciąga się poziomo w poprzek ciała, w górnej części biodra, od boku do boku. Następnie narysuj granicę przyśrodkową lub linię środkową wzdłuż linii, w której spotykają się włosy rosnące w przeciwnych kierunkach. Na koniec wyobraź sobie boczną granicę, która jest linią od góry bioder do napletka u mężczyzn i podążającą za strzykami u samic. Zapewnia to trójkątny obszar do bezpiecznego wstrzykiwania IP. Następną metodą, którą omówimy, jest wstrzyknięcie IM. Unieruchomienie w tej technice zarówno dla myszy, jak i szczurów wymaga albo dwóch osób, albo użycia rurki przytrzymującej. Tutaj opiszemy metodę jednoosobową z wykorzystaniem urządzenia krępującego. Najpierw umieść zwierzę w rurze i wyciągnij tylne nogi na zewnątrz, pociągnij ogon, aby ustawić zwierzę. Następnie chwyć skórę boku w czaszkowej części kości udowej, aby wyprostować nogę i zapobiec zgięciu kolana. Następnie ustawić urządzenie przytrzymujące w taki sposób, aby umożliwić wizualizację miejsca wstrzyknięcia. Aby zidentyfikować punkt orientacyjny pośladków, zlokalizuj masę mięśni pośladkowych za kością udową. Kość można wyczuć palpacyjnie, a duży mięsień jest łatwo wyczuwalny. Zwróć uwagę na linię środkową, która biegnie od punktu stawu skokowego do ogona. Często można zobaczyć grzbiet, w którym włosy z powierzchni bocznej i wewnętrznej łączą się, rosnąc w przeciwnych kierunkach. Zazwyczaj, zastrzyki są wykonywane w kierunku bocznego aspektu poza linią środkową. Mięsień brzuchaty łydki to mięsień łydki, a wstrzyknięcie do tego mięśnia najlepiej wykonywać również od strony tylnej. W przypadku mięśnia pośladkowego, w miejscu znajdującego się punktu orientacyjnego, wbij igłę na maksymalną głębokość około 5 mm. Należy unikać zmiany położenia strzykawki podczas wstrzyknięcia, aby zapobiec uszkodzeniu mięśni. Następnie zaaspiruj, aby upewnić się, że umieszczenie znajduje się w mięśniu, a nie w naczyniu krwionośnym. I na koniec, wstrzyknij materiał powoli i równomiernie, ponieważ szybkie wstrzyknięcie spowoduje uraz tkanki. Wyjąć igłę prostopadle, podążając tą samą drogą, którą ma miejsce wkłucia. W przypadku mięśnia brzuchatego łydki należy wprowadzić igłę na maksymalną głębokość 3 mm i wykonać wstrzyknięcie w taki sam sposób, jak w przypadku mięśnia pośladkowego. Na koniec dowiedzmy się, jak wykonać wstrzyknięcie dożylne w żyły ogonowe gryzoni. Ta sama metoda ma zastosowanie zarówno dla myszy, jak i szczurów. Umieść zwierzę w cylindrycznej rurce przytrzymującej i ogrzej całe ciało zwierzęcia za pomocą elektrycznej poduszki grzewczej ustawionej na MEDIUM na około 2-5 minut. Kontynuuj ogrzewanie zwierzęcia, aż naczynia krwionośne ulegną rozszerzeniu, czyli zauważalnie większemu. Pamiętaj, że boczne żyły ogonowe ogona znajdują się po bokach ogona. Tętnica, która znajduje się w brzusznej linii środkowej, nie nadaje się do celów iniekcyjnych. Obrócić urządzenie przytrzymujące i ustawić ogon w taki sposób, aby boczne żyły ogonowe były skierowane do góry i utrzymywane w napięciu. Nie należy stosować nadmiernego napięcia, ponieważ naczynie może zostać rozciągnięte, a przepływ krwi zmniejszony. Umieść igłę skośnie bezpośrednio nad naczyniem krwionośnym tak dystalnie, jak to możliwe, i lekko dociśnij, aby wsunąć igłę w ogon równolegle do kręgosłupa. Wstrzyknij materiał powolnym, płynnym ruchem i zauważ, że naczynie blednie, gdy krew jest wypychana przez materiał do wstrzykiwań. Jeśli igła nie zostanie prawidłowo umieszczona w naczyniu, podczas wstrzykiwania wystąpi duży opór, a jeśli wstrzykniesz z siłą, materiał wypełni przestrzeń podskórną, a ogon będzie balonował. Należy natychmiast przerwać działanie, ponieważ materiał przeznaczony do wstrzykiwania dożylnego może działać żrąco na otaczające tkanki. Wyjąć igłę i podjąć kolejną próbę wstrzyknięcia, bardziej czaszkowo w ogon. Po udanym wstrzyknięciu należy wyjąć igłę i przyłożyć ucisk do miejsca wstrzyknięcia, aby zapewnić dobrą hemostazę przed powrotem zwierzęcia do klatki. Teraz, gdy jesteś już zaznajomiony z typowymi metodami wstrzykiwań, przyjrzyjmy się niektórym zastosowaniom tych dróg podawania, innym niż dostarczanie leków. W kilku eksperymentach myszom wstrzykuje się określony patogen w celu zbadania infekcji. W tym przypadku naukowcy wykorzystali drogę podskórną do wprowadzenia bakterii opornych na antybiotyki, które powodują zmiany chorobowe, a rozmiar tych zmian posłużył jako odczyt zjadliwości patogenu. Różni naukowcy są zainteresowani badaniem dystrybucji i przeżycia komórek macierzystych po dostarczeniu ogólnoustrojowym. W tym badaniu badacze przeprowadzili wstrzyknięcie do żyły ogonowej genetycznie oznakowanych nerwowych komórek macierzystych w modelu zwierzęcym stwardnienia rozsianego i zlokalizowali rozmieszczenie wstrzykniętych komórek w rdzeniu kręgowym i obszarach mózgu. W innym eksperymencie naukowcy wstrzyknęli domięśniowo znakowane fluorescencyjnie mioblasty w zwierzęcy model dystrofii mięśniowej. Następnie przeprowadzono bioluminescencję, aby przeanalizować udaną implantację komórek macierzystych. Wreszcie, zastrzyki mogą być również wykorzystywane do generowania modeli zwierzęcych. Naukowcy przeprowadzili dootrzewnowe wstrzyknięcie dimetylonitrozoaminy - silnej toksyny wątrobowej - samcom szczurów rasy Wistar, aby wygenerować zwierzęcy model zwłóknienia wątroby, który następnie został wykorzystany do zbadania rozwoju choroby wątroby. Właśnie obejrzałeś pierwszy odcinek JoVE na temat podawania związków, omawiający powszechnie stosowane zastrzyki pozajelitowe. Pamiętaj, że optymalna trasa dostarczania zależy od kilku czynników, w tym pH, objętości i lepkości wstrzykiwanego roztworu. Każda technika ma zalety i wady, które należy rozpatrywać w odniesieniu do potrzeb eksperymentalnych. Jak zawsze, dziękujemy za oglądanie!

Education

JoVE Science Education

Basic Biology

Podstawy biologii

Lab Animal Research

Badania na zwierzętach laboratoryjnych

Rodents

Gryzonie

rodent injection routes and restraint

Rodent injection routes and restraint methods are key parts of compound administration in mice and rats. When a substance must be injected into an animal, the delivery route and the amount of compound must be chosen with care. The right choice helps match the dose to the protocol.

Several factors guide the route of administration. These include the pH of the solution, the volume needed for the desired dose, and the viscosity of the solution. Viscosity means how thick or resistant to flow a liquid is. These details help determine which injection route is most suitable.

Correct technique is important because poor administration can cause severe tissue damage. The video also shows the restraint methods used for these common injection routes. It focuses on the technical steps needed for mouse and rat injections.

Rodent Injection Routes and Restraint

rodent handling and restraint techniques

Minimizing Stress in Mouse and Rat Handling

Mouse and rat handling can create stress, even when the procedure is brief. Cage changing and other noninvasive tasks can raise heart rate, blood pressure, and serum corticosterone levels. These changes may last for several hours. Restraint for injections and blood withdrawal can also affect the animals and may influence scientific data. Because of this, proper training is needed when working with mice and rats. The goal is to reduce the effect of handling on the animals as much as possible. <br...

basic care procedures

Caring for Research Mice and Rats

Research mice and rats need careful housing, feeding, and handling. These animals make up over 90% of the animals used for biomedical research, so their care can strongly affect experiment results. Both immunocompetent animals, which have a normal immune response, and immunocompromised animals need proper support during studies. Some research animals have weakened immune systems and need extra steps to stay healthy. Common examples include naturally occurring immunocompromised mice and mice...

fundamentals of breeding and weaning

Mouse and Rat Breeding Methods

Mouse and rat breeding methods are used in biomedical research to supply animals for laboratory studies. Many research facilities buy mice from commercial breeders, but some also breed mice and rats in-house. In-house breeding can reduce costs and give researchers more options for their studies. Breeding animals in the facility also lets researchers manage genetics and timing. They can plan pregnancies to match research needs and work with embryos and newborns when needed. Mice and rats can be...

rodent identification i

Mice and Rats: Ear Tags and Punch Codes

Proper identification of laboratory mice and rats is important in biomedical research. The right animal must be used for each procedure and for data collection. Clear identification helps keep research records accurate and reliable. This page focuses on permanent identification methods for mice and rats. These methods include ear tags, ear punch codes, microchip implantation, tail tattoos for adult mice, and toe tattoos for neonates. Temporary methods such as dyes and marking pens can also be...

rodent identification ii

Rodent ID Methods for Accurate Records

Accurate rodent identification supports reliable animal records and data collection. Research animal records may include simple cage cards or a detailed database with full information on each animal. Individual identification is the key part of keeping those records correct. Mice and rats can be identified by several methods. These include tattooing, microchip placement, and temporary identification methods. Each method serves a different need in research animal management. The procedure also...

compound administration i

Rodent injection routes and restraint methods are key parts of compound administration in mice and rats. When a substance must be injected into an animal, the delivery route and the amount of compound must be chosen with care. The right choice helps match the dose to the protocol. Several factors guide the route of administration. These include the pH of the solution, the volume needed for the desired dose, and the viscosity of the solution. Viscosity means how thick or resistant to flow a...

compound administration ii

Choosing the Right Route for Compound Delivery

Compound delivery is a key part of many animal studies. The route used to give the compound can change how it is absorbed. Careful planning helps make sure the compound is delivered correctly. The substance itself also matters when a route is chosen. Its pH, viscosity, and concentration can all affect which method is best. These properties help guide the choice of administration route in a study.

compound administration iii

Specialized Injection Routes in Mice and Rats

Specialized injection routes in mice and rats are sometimes used when standard compound administration methods are not enough. Some study protocols call for less common routes such as intradermal, intranasal, and intracranial injections. These methods are used in laboratory animals and require careful technique. Intradermal injections place a compound into the skin. Intranasal injections deliver a compound through the nose. Intracranial injections are given into the brain. Because these...

compound administration iv

Specialized Injection Routes in Rodents

Specialized injection routes in laboratory mice and rats include intracardiac, footpad, and retro-orbital administration. These methods are used when a protocol calls for a route that is less common than standard compound delivery methods. Each route requires specialized training to perform correctly. Intracardiac injections deliver into the heart, footpad injections target the paw area, and retro-orbital injections are given around the eye region. Because these procedures are more technical,...

blood withdrawal i

Rodent Blood Collection Methods

Blood collection in mice and rats is a common part of research studies. The method used depends on how much blood is needed, how often samples must be taken, the animal's health, and the technician's skill level. This topic includes three blood withdrawal methods: retro-orbital sinus bleeds, initial tail snip bleeds, and intracardiac bleeds. Each method requires general anesthesia, which means the animal is made unconscious before the procedure begins.

blood withdrawal ii

Rodent Blood Sampling Methods

Blood collection from mice and rats can be done with several methods. The choice depends on the restraint needed, how invasive the procedure is, and whether a general anesthetic is required. These factors help determine which method is best for a given analysis. One older method uses the retro-orbital sinus cavity, which is located behind the eye. This approach has been debated because it may cause tissue damage or even blindness. For that reason, facial vein and submandibular vein bleeding...

anesthesia induction and maintenance

Laboratory Anesthesia and Pain Control

Laboratory anesthesia and pain control are important parts of veterinary care for research animals. The Guide for the Care and Use of Laboratory Animals says that pain assessment and pain relief must be part of that care. Anesthesia means the loss of feeling or sensation.

considerations for rodent surgery 

Aseptic Steps in Rodent Survival Surgery

Aseptic technique is essential for rodent survival surgery. It is used to keep the surgical site as clean as possible and to reduce contamination during the procedure. This approach includes patient preparation, surgeon preparation, and sterilization of instruments and other supplies. It also depends on a clean, controlled environment. Careful planning before surgery helps set up these steps for success. During the operation, animals need close monitoring. After the surgery, postoperative...

diagnostic necropsy and tissue harvest

Rat Necropsy for Tissue Collection

Rat necropsy is a key step for collecting organs and tissues at the end of many animal studies. These final samples are used for data collection time points and later testing. Because the samples are used for analysis, the way they are taken can affect sample quality. Careful collection methods help preserve the organs and tissues for testing. The method of euthanasia, or the procedure used to humanely end the animal's life, can also affect sample quality. This article outlines proper necropsy...

sterile tissue harvest

Aseptic Organ Collection in Rats and Mice

Aseptic organ collection in rats and mice is used to keep harvested tissues free from contamination. The process is important when tissues will be used for cell and tissue cultures. It also supports later protein and RNA analysis, as well as metabolic profiling of tissues. The transcript connects this work to the 3 R's, which were introduced in 1959 by W.M.S. Russell and R.L. Burch in The Principles of Humane Experimental Technique. The 3 R's are replacement, reduction, and refinement in the...

early intervention and pain management

Wcześnie włączenie interwencji i zarządzanie bólem

Wszystkie procedury dotyczące zwierząt opisane tutaj muszą być przeprowadzane zgodnie z instytucjonalnymi wytycznymi etyki dotyczącymi zwierząt i muszą być zatwierdzone przez IACUC. Wszystkie procedury muszą przestrzegać zasad 3R – Zastępowania, Redukcji i Udoskonalania – i muszą być przeprowadzane przez wykwalifikowany personel.  Monitorowanie zwierząt pod kątem oznak bólu i udręki Rozpoznawanie wczesnych oznak bólu jest niezbędne w etycznych badaniach na zwierzętach. Zwierzęta są rutynowo...

humane euthanasia and confirmation of death in rodents

Ludzka eutanazja i potwierdzenie śmierci u gryzoni

Wszystkie procedury dotyczące zwierząt opisane tutaj muszą być przeprowadzane zgodnie z instytucjonalnymi wytycznymi dotyczącymi etyki eksperymentów na zwierzętach i muszą być zatwierdzone przez IACUC. Wszystkie procedury muszą przestrzegać zasad 3R—Zastępstwa, Redukcji i Ułatwienia—oraz muszą być wykonywane przez wyszkolonego personel. Humanitarne punkty końcowe u gryzoni to wcześniej określone kliniczne, behawioralne lub fizjologiczne wskaźniki, które sygnalizują, że zwierzę doświadcza...

habituation and positive reinforcement for rodent handling

Nawyk i pozytywne wzmocnienie w obsłudze gryzoni

Wszystkie procedury dotyczące zwierząt opisane tutaj muszą być przeprowadzane zgodnie z instytucjonalnymi wytycznymi dotyczącymi etyki w badaniach na zwierzętach i zatwierdzone przez IACUC. Wszystkie procedury muszą przestrzegać zasad 3R – Zamienności, Redukcji i Ułatwienia – i muszą być wykonywane przez przeszkolone personel. Przyzwyczajanie i pozytywne wzmacnianie to strategie ułatwienia, które pomagają zmniejszyć stres podczas rutynowych procedur obsługi i eksperymentalnych z gryzoniami. Te...

breeding management in rodent studies

Zarządzanie hodowla w badaniach na gryzoniach

Wszystkie procedury dotyczące zwierząt opisane tutaj muszą być przeprowadzane zgodnie z instytucjonalnymi wytycznymi etycznymi dotyczącymi zwierząt i muszą zostać zatwierdzone przez IACUC. Wszystkie procedury muszą przestrzegać zasad 3R—Zastępowania, Redukcji i Rafinacji—i muszą być przeprowadzane przez przeszkolony personel. Zarządzanie hodowlą wspiera 3R poprzez minimalizowanie niepotrzebnej produkcji zwierząt i zapewnienie, że generowana jest tylko liczba zwierząt wymagana do badania.

transport and acclimatization of rodents for research

Transport i aklimatyzacja gryzoni do badań

Wszystkie procedury dotyczące zwierząt opisane tutaj muszą być przeprowadzane zgodnie z instytucjonalnymi wytycznymi etycznymi dotyczącymi zwierząt i zatwierdzone przez IACUC. Wszystkie procedury muszą przestrzegać zasad 3R—Zastępowanie, Redukcja i Udoskonalenie—i muszą być wykonywane przez przeszkolone osoby. Transport gryzoni do badań wymaga procedur, które minimalizują stres i utrzymują dobrostan zwierząt podczas przemieszczania, aby zminimalizować wpływ na wyniki eksperymentalne. Klatki...

environmental enrichment for rodents

Wzbogacanie środowiska dla gryzoni

Wszystkie procedury dotyczące zwierząt opisane tutaj muszą być przeprowadzane zgodnie z instytucjonalnymi wytycznymi etyki zwierzęcej i zatwierdzone przez IACUC. Wszystkie procedury muszą przestrzegać zasad 3R – Zamienności, Redukcji i Ulepszenia – i muszą być wykonywane przez przeszkolony personel. Enrychment środowiskowy obejmuje obiekty i praktyki, które zachęcają do naturalnego zachowania, poprawiają samopoczucie psychologiczne i promują lepsze dobre samopoczucie u gryzoni laboratoryjnych.

rodents

Learn how route of administration, dose, pH, volume, and viscosity guide mouse and rat injections, plus the restraint methods used to help prevent tissue damage.

Rodent Injection Routes and Restraint | JoVE K12

HS-LS1-3.

Kay Stewart

Valerie A. Schroeder

University of Notre Dame

Overview

Key Considerations for Compound Administration

Characteristics of Different Injection Techniques

Subcutaneous Injection

Intraperitoneal (IP) Injection

Intramuscular (IM) Injection

Intravenous (IV) Injection via the Tail Vein

Applications

Summary

Characteristics of Life

Biology is a natural science that studies life and living organisms, including their structure, function, development, interactions, evolution, ...

https://cloudfront.jove.com/files/media/science-education/science-education-thumbs/10647.jpg

Cell Structure

Background
Cells represent the most basic biological units of all organisms, whether it be simple, single-celled organisms like bacteria, or large, ...

Visualizing Onion and Cheek Cells
ExpandImmediately before the experiment, wash and peel onion bulbs for the class.
Remove the entire brown outer skin and ...

Visualizing Onion and Human Cells
ExpandIn this experiment you will prepare different types of cells from a plant and animal, onion and human ...

What are Cells?

Cell Diversity

The concept of a cell started with microscopic observations of dead cork tissue by Robert Hooke in 1665. Hooke coined the term &#34;cell&#34; based on the ...

Cytoplasm

The cytoplasm consists of organelles and a framework of protein scaffolds called the cytoskeleton suspended in an aqueous solution, the cytosol. The ...

The Nucleus

The nucleus is a membrane-bound organelle that acts as a control center in a eukaryotic cell. It contains chromosomal DNA, which controls gene expression ...

The Central Dogma

The DNA Helix

Nucleic Acids

DNA as a Genetic Template

Structure of a Gene

A gene is the fundamental unit of heredity. Every individual has two copies of each gene, one inherited from each parent. Although most people contain the ...

Chromosome Structure

Base-pairing and DNA Repair

What is Gene Expression?

A gene is a stretch of DNA that serves as the blueprint for functional RNAs and proteins. Since DNA is comprised&#160; of nucleotides and proteins are ...

RNA Structure

The basic structure of RNA consists of a string of ribonucleotides attached by phosphodiester bonds. Although most RNA is single-stranded, it can form ...

Types of RNA

Three main types of RNA are involved in protein synthesis: messenger RNA (mRNA), transfer RNA (tRNA), and ribosomal RNA (rRNA). These RNAs perform diverse ...

Transcription

Transcription is the synthesis of RNA from a DNA sequence by RNA polymerase. It is the first step in producing a protein from a gene sequence. ...

Translation

Translation is the process of synthesizing proteins from the genetic information carried by messenger RNA (mRNA). Following transcription, it constitutes ...

Ribosomes

Ribosomes translate genetic information encoded by messenger RNA (mRNA) into proteins. Both prokaryotic and eukaryotic cells have ribosomes. Cells that ...

Protein and Protein Structures

Proteins: From Genes to Degradation

From DNA to Protein

The flow of genetic information in cells from DNA to mRNA to protein is described by the central dogma, which states that genes specify the sequence of ...

Protein Folding

Proteins are chains of amino acids linked together by peptide bonds. Upon synthesis, a protein folds into a three-dimensional conformation, critical to ...

An Overview of Gene Expression

Gene expression is the complex process where a cell uses its genetic information to make functional products. This process is regulated at multiple ...

an-introduction-to-caenorhabditis-elegans

An Introduction to Caenorhabditis elegans

Caenorhabditis elegans is a microscopic, soil-dwelling roundworm that has been powerfully used as a model organism since the early 1970&rsquo;s.  It was ...

An Overview of Genetic Analysis

An organism&#8217;s physical traits, or phenotype, are a product of its genotype, which is the combination of alleles (gene variants) inherited from its ...

An Introduction to Cell Death

Necrosis, apoptosis, and autophagic cell death are all manners in which cells can die, and these mechanisms can be induced by different stimuli, such as ...

An Overview of Genetic Engineering

Genetic engineering &#8211; the process of purposefully altering an organism&#8217;s DNA &#8211; has been used to create powerful research tools and model ...

An Introduction to Cell Division

Cell division is the process by which a parent cell divides and gives rise to two or more daughter cells. It is a means of reproduction for single-cell ...

An Overview of Genetics and Disease

Many human diseases are associated with mutations or variations in genetic sequences. Some of these genetic variants are heritable, passed down from ...

an-introduction-to-cellular-and-molecular-neuroscience

An Introduction to Cellular and Molecular Neuroscience

Cellular and molecular neuroscience is one of the newest and fastest growing subdisciplines in neuroscience. By investigating the influences of genes, ...

Annexin V and Propidium Iodide Labeling

Staining with annexin V and propidium iodide (PI) provides researchers with a way to identify different types of cell death&#8212;either necrosis or ...

an-introduction-to-developmental-genetics

An Introduction to Developmental Genetics

Development is the complex process through which a single-celled embryo transforms into a multicellular organism. Developmental processes are guided by ...

Bacterial Transformation: Electroporation

The term &#x201C;transformation&#x201D; refers cellular ingestion of foreign DNA.  In nature, transformation can occur in certain types of bacteria.  In ...

an-introduction-to-molecular-developmental-biology

An Introduction to Molecular Developmental Biology

Molecular signals play a major role in the complex processes occurring during embryonic development. These signals regulate activities such as cell ...

bacterial-transformation-the-heat-shock-method

Bacterial Transformation: The Heat Shock Method

Transformation is the process that occurs when a cell ingests foreign DNA from its surroundings. Transformation can occur in nature in certain types of ...

an-introduction-to-saccharomyces-cerevisiae

An Introduction to Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces cerevisiae (commonly known as baker&rsquo;s yeast) is a single-celled eukaryote that is frequently used in scientific research.  S. ...

Cell Cycle Analysis

Cell cycle refers to the set of events through which a cell grows, replicates its genome, and ultimately divides into two daughter cells through the ...

An Introduction to Transfection

Transfection is the process of inserting genetic material, such as DNA and double stranded RNA, into mammalian cells. The insertion of DNA into a cell ...

Chromatin Immunoprecipitation

Histones are proteins that help organize DNA in eukaryotic nuclei by serving as &#8220;scaffolds&#8221; around which DNA can be wrapped, forming a complex ...

An Overview of Epigenetics

Since the early days of genetics research, scientists have noted certain heritable phenotypic differences that are not due to differences in the ...

community-dna-extraction-from-bacterial-colonies

Community DNA Extraction from Bacterial Colonies

Source: Laboratories of Dr. Ian Pepper and Dr. Charles Gerba - The University of Arizona
Demonstrating Author: Luisa Ikner
Traditional methods of analysis ...

Cytogenetics

Cytogenetics is the field of study devoted to chromosomes, and involves the direct observation of a cell&#8217;s chromosomal number and structure, ...

embryonic-stem-cell-culture-and-differentiation

Embryonic Stem Cell Culture and Differentiation

Culturing embryonic stem (ES) cells requires conditions that maintain these cells in an undifferentiated state to preserve their capacity for self-renewal ...

DNA Gel Electrophoresis

DNA gel electrophoresis is a technique used for the detection and separation of DNA molecules. An electric field is applied to a gel matrix comprised of ...

Enzyme Assays and Kinetics

Enzyme kinetics describes the catalytic effects of enzymes, which are biomolecules that facilitate chemical reactions necessary for living organisms. ...

DNA Ligation Reactions

In molecular biology, ligation refers to the joining of two DNA fragments through the formation of a phosphodiester bond.  An enzyme known as a ligase ...

explant-culture-for-developmental-studies

Explant Culture for Developmental Studies

Explant culture is a technique in which living cells or tissues are removed from an embryo for continued development outside of the organism. This ex vivo ...

Construct an explanation based on evidence for how the structure of DNA determines the structure of proteins which carry out the essential functions of life through systems of specialized cells.

HS-LS1-1.

Rodent Injection Routes and Restraint

Description

Transcript

Tags

More videos by Standards