Name: laboratory anesthesia and pain control
Uploaded: 2016-09-14T17:58:01.000Z
Duration: 14 min 1 s
Channel: JoVE
Description: Laboratory anesthesia and pain control are important parts of veterinary care for research animals. The Guide for the Care and Use of Laboratory Animals says that pain assessment and pain relief must be part of that care. Anesthesia means the loss of feeling or sensation.

K12 Standards

new-york-state-science-learning-standards

New York State Science Learning Standards

High School

Life Science

Structure and Function

HS-LS1-2.

Anesthesia Induction and Maintenance

Właściwy dobór środków znieczulających do zabiegów chirurgicznych i innych potencjalnie bolesnych zabiegów musi zostać ustalony przez lekarza weterynarii. Opiera się to na wielu aspektach, w tym na zakresie i czasie trwania zabiegu, gatunku i odmianie, wieku i stanie fizjologicznym zwierzęcia. 
Środki znieczulające są dostępne w postaci środków wziewnych lub do wstrzykiwań. Znieczulenie chirurgiczne można wykonać za pomocą kombinacji środków znieczulających do wstrzykiwań i wziewnych. 2
1. Indukcja znieczulenia wziewnego
Znieczulenie wziewne obejmuje izofluran, sewofluran i desfluran, przy czym najczęściej stosuje się izofluran. Te środki znieczulające są stosowane częściej, ponieważ dzięki nim łatwiej jest kontrolować głębokość znieczulenia. Indukcja znieczulenia za pomocą znieczulenia wziewnego może być zrealizowana za pomocą słoika dzwonowego lub komory indukcyjnej, która jest zamontowana w waporyzatorze precyzyjnym. 
<ol>
	<li>Słoik dzwonkowy
	<ol>
		<li>Wyposażenie: Słoik dzwonowy lub słoik do suszenia z ceramiczną lub plastikową perforowaną platformą, wacik, płynny środek znieczulający (izofluran, sewofluran lub desfluran) oraz wyciąg odprowadzany na zewnątrz. </li>
		<li>Preparat
		<ol>
			<li>Używaj słoika dzwonka pod kapturem, a nie na stole, aby uniknąć narażenia personelu na gazy znieczulające. </li>
			<li>Zamontuj słoik dzwonowy z platformą na dnie, tworząc przestrzeń między dnem słoika a platformą. Jest to konieczne, aby zapobiec kontaktowi zwierzęcia z płynnym środkiem znieczulającym. </li>
			<li>Zakładając rękawice nitrylowe lub inne nieprzepuszczalne rękawice, nasącz wacik środkiem znieczulającym. </li>
			<li>Umieść wacik pod platformą w słoiku. </li>
			<li>Przymocuj pokrywkę do słoika, aby zapobiec wydostawaniu się oparów znieczulających. </li>
		</ol>
		</li>
		<li>Indukcja
		<ol>
			<li>Umieść zwierzę w słoiku, przesuwając pokrywkę na bok. </li>
			<li>Gdy zwierzę znajdzie się w słoiku, konieczne będzie obserwowanie jego aktywności i oddychania, aby określić głębokość znieczulenia. </li>
			<li>Zwierzę jest poddawane działaniu środka znieczulającego, aby uzyskać efekt. </li>
			<li>Gdy zwierzę jest w pełni znieczulone, przesuń pokrywkę na bok, pozostawiając wystarczającą przestrzeń do wprowadzenia ręki. Chwyć ogon, kark lub ciało znieczulonego zwierzęcia i delikatnie wyjmij je ze słoika. </li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Waporyzatory precyzyjne 
	Waporyzatory precyzyjne mogą być używane zarówno z komorą indukcyjną, jak i maską na twarz. Aparat anestezjologiczny powinien być sprawdzony przed każdym zabiegiem. Jeśli jego poziom jest niski, należy dodać odpowiedni środek znieczulający. System oczyszczania należy sprawdzić, aby upewnić się, że gazy odlotowe zostały całkowicie usunięte. W przypadku pasywnych systemów anestezjologii gazów odlotowych kanister do usuwania należy zważyć, aby określić, czy jest on nadal skuteczny. Ogólnie rzecz biorąc, wzrost masy o 50 gramów powyżej wagi początkowej jest punktem, w którym kanister jest zużywany.
	<ol>
		<li>Sprzęt
		<ol>
			<li>Komora indukcyjna, parownik precyzyjny, urządzenie do usuwania gazów odlotowych (pasywne lub aktywne) oraz płynny środek znieczulający (izofluran, sewofluran lub desfluran, w zależności od rodzaju używanego waporyzatora). </li>
		</ol>
		</li>
		<li>Preparat
		<ol>
			<li>Zmontuj komorę indukcyjną w taki sposób, aby wejście pochodziło z parownika, a wyjście było skierowane do systemu oczyszczania gazów odlotowych. </li>
		</ol>
		</li>
		<li>Indukcja
		<ol>
			<li>Umieść zwierzę w komorze indukcyjnej. Niektóre komory mają przesuwaną pokrywę, a inne mają pokrywę na zawiasach, która się zatrzaskuje. </li>
			<li>Gdy zwierzę znajdzie się w komorze, rozpoczyna się przepływ tlenu i włącza się parownik precyzyjny na poziomie indukcji 3-4 dla izofluranu. Niższy poziom podawania środka znieczulającego spowoduje wydłużenie czasu indukcji. </li>
			<li>Zwierzę jest poddawane działaniu środka znieczulającego, aby uzyskać efekt. </li>
			<li>Gdy zwierzę zostanie w pełni znieczulone, przepłucz komorę tlenem przed wyjęciem zwierzęcia, aby zapobiec narażeniu personelu na gazy znieczulające. Jeśli komora indukcyjna jest umieszczona w dygestorium, płukanie tlenem nie jest konieczne w celu usunięcia środka znieczulającego z komory przed otwarciem. </li>
			<li>Chwyć ogon, kark lub ciało znieczulonego zwierzęcia i delikatnie wyjmij je z komory. </li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Maska
	<ol>
		<li>Wyposażenie obejmuje stożek lub maskę na nos gryzonia, precyzyjny waporyzator, urządzenie do usuwania gazów odlotowych (pasywne lub aktywne) oraz płynny środek znieczulający (izofluran, sewofluran lub desfluran, w zależności od rodzaju używanego waporyzatora). </li>
		<li>Preparat
		<ol>
			<li>Zamontuj stożek nosowy lub maskę w taki sposób, aby wejście pochodziło z parownika, a wyjście było do systemu oczyszczania gazów odlotowych. </li>
			<li>Aparaty do znieczulania gryzoni często mają przełącznik do przełączania dostarczania pary znieczulającej z komory indukcyjnej na stożek nosowy lub maskę gryzoni. Upewnij się, że jest to prawidłowo ustawione do podawania znieczulenia stożkiem nosowym. </li>
		</ol>
		</li>
		<li>Indukcja
		<ol>
			<li>Ponieważ gazy znieczulające mają nieprzyjemny zapach, wiele zwierząt sprzeciwia się maskowaniu w celu indukcji. Preferowaną metodą jest użycie skrzynki indukcyjnej, a następnie konserwacja stożkiem nosowym. Gdy nos lub twarz zwierzęcia znajdzie się bezpiecznie w masce, rozpoczyna się przepływ tlenu i włącza się precyzyjny parownik na poziomie indukcji 5 dla izofluranu. Niższy poziom podawania środka znieczulającego spowoduje wydłużenie czasu indukcji i zwiększenie zmagań zwierzęcia. </li>
			<li>Konieczne jest, aby zwierzę było monitorowane pod kątem oddychania, ponieważ zbyt mocny uścisk podczas indukcji może spowodować uduszenie. </li>
			<li>Gdy tylko zwierzę zacznie się relaksować, nos lub twarz można wyregulować w stożku nosowym lub masce, a podawanie środka znieczulającego jest zmniejszone do poziomu utrzymania 1,5-0,5 dla izofluranu po osiągnięciu całkowitego odprężenia. </li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
2. Indukcja znieczulenia za pomocą środków znieczulających do wstrzykiwań
Środki znieczulające do wstrzykiwań to przede wszystkim mieszanina ketaminy i środków uspokajających lub zwiotczających mięśnie. 
Typowe kombinacje to: 1) Koktajl dla gryzoni, który składa się z ketaminy (100 mg / ml), ksylazyny (20 mg / ml), acepromazyny (10 mg / ml) i sterylnej soli fizjologicznej (0,9% NaCl); 2) ketamina/ksylazyna w stosunku 2:1, która składa się z ketaminy (100 mg/ml), ksylazyny (20 mg/ml) i jałowej soli fizjologicznej (0,9% NaCl); oraz 3) ketamina/ksylazyna Mouse Mix, która składa się z ketaminy (100 mg / ml), ksylazyny (20 mg / ml) i sterylnej soli fizjologicznej (0,9% NaCl). Podczas stosowania kombinacji ketaminy / ksylazyny, zwiększanie powinno odbywać się tylko za pomocą ketaminy, a nie ksylazyny, ze względu na okres półtrwania tych leków. 
Połączenie ketaminy ze środkami uspokajającymi i/lub zwiotczającymi mięśnie musi być przygotowane jako roztwór podstawowy, z którego można pobrać indywidualne dawki. Środki muszą być dokładnie odmierzone i rozcieńczone sterylnym roztworem soli fizjologicznej, aby zapewnić podanie zwierzętom odpowiednich dawek. Ponieważ ketamina jest substancją kontrolowaną, ilość użyta z butelek musi być odnotowana w "Dzienniku Kontrolowanych Leków", a mieszaniny muszą mieć indywidualne "Dzienniki Substancji Kontrolowanych". Przygotowując mieszaniny, dodawaj ketaminę powoli do butelki, ponieważ ma ona tendencję do pienienia się pod wpływem wstrzyknięcia z siłą. Do mieszaniny używa się sterylnej butelki o pojemności 20 ml z korkiem. Butelki muszą być odpowiednio oznakowane nazwą związków, datą zmieszania, datą ważności, numerem partii ketaminy (ponieważ jest to substancja kontrolowana) oraz sugerowaną dawką. Data ważności może być określona na podstawie daty wygaśnięcia składnika najwcześniej (w zależności od zasad/wytycznych zakładu/stanu). W celu dokładnego prowadzenia ewidencji ketaminy należy zważyć zarówno pustą, jak i napełnioną butelkę. Następnie masy muszą być zapisane na etykiecie mieszaniny oraz na indywidualnym arkuszu dziennika substancji kontrolowanej, który jest przygotowywany dla każdej butelki. Przechowuj mieszanki ketaminy w ciemnym miejscu o kontrolowanej temperaturze, aby utrzymać moc. 
<ol>
	<li>Przygotowanie koktajlu z gryzoni
	<ol>
		<li>Sprzęt do przygotowania roztworu znieczulającego obejmuje strzykawki o pojemności 3 cm3, strzykawkę o pojemności 12 cm3, igły 22 g x 1 ", 1,8 ml ketaminy do wstrzykiwań 100 mg / ml, 1,8 ml ksylazyny do wstrzykiwań 20 mg / ml, 0,6 ml acepromazyny do wstrzykiwań 10 mg / ml, 15,8 ml sterylnej soli fizjologicznej do wstrzykiwań oraz etykietę znieczulającą. </li>
		<li>Pobrać 15,8 ml sterylnego roztworu soli fizjologicznej i wstrzyknąć go do butelki. Użyj strzykawki o pojemności 12 ml i strzykawki o pojemności 3 cm3 i wyeliminuj pęcherzyki powietrza, aby uzyskać dokładne pomiary. </li>
		<li>Dodaj ketaminę, ksylazynę i acepromazynę do butelki. </li>
	</ol>
	</li>
	<li>Indukcja koktajlu z gryzoni
	<ol>
		<li>Ogólnie rzecz biorąc, koktajl gryzoni jest używany do znieczulenia myszy. Ze względu na różnice w reakcji na koktajl gryzoni u dorosłych szczurów, najlepiej stosować go u szczurów poniżej 5 tygodnia życia. Koktajl z gryzoni może być stosowany w połączeniu ze znieczuleniem wziewnym, szczególnie u szczurów. </li>
		<li>Koktajl gryzoni podaje się zwykle myszom według wagi, przy użyciu następującego obliczenia: (BW x 10) - 50 = mikrolitry koktajlu gryzoni do podania. Będzie się to różnić w zależności od odmiany, wieku i stanu zdrowia. </li>
		<li>Ten roztwór podaje się tylko dootrzewnowo. W przypadku wstrzyknięcia domięśniowego może wystąpić ciężka reakcja w tkance. </li>
	</ol>
	</li>
	<li>Przygotowanie ketaminy/ksylazyny 2:1
	<ol>
		<li>Sprzęt do przygotowania roztworu znieczulającego obejmuje 3 strzykawki cc, igły 22 g x 1", 10 ml ketaminy do wstrzykiwań 100 mg / ml, 5 ml ksylazyny do wstrzykiwań 20 mg / ml, sterylną butelkę 20 ml z korkiem i etykietę znieczulającą. </li>
		<li>Dodaj ketaminę i ksylazynę do butelki. </li>
	</ol>
	</li>
	<li>Indukcja
	<ol>
		<li>Ketamina/ksylazyna 2:1 jest stosowana do znieczulenia szczurów i może być stosowana w połączeniu ze znieczuleniem wziewnym. </li>
		<li>Ketamina/ksylazyna w stosunku 2:1 jest zwykle podawana począwszy od dawki 0,3 cm³ i zwiększana o 0,02 cm³ w miarę kolejnych zdarzeń znieczulających. Będzie się to różnić w zależności od odmiany, wieku i stanu zdrowia. </li>
		<li>Ketamina/ksylazyna w stosunku 2:1 jest podawana wyłącznie domięśniowo. </li>
	</ol>
	</li>
	<li>Przygotowanie mieszanki ketaminy/ksylazyny myszy
	<ol>
		<li>Ekwipunek Ketamina/ksylazyna Mouse Mix wymagany do przygotowania roztworu znieczulającego obejmuje 3 strzykawki cc, igły 22 g x 1", 3,6 ml ketaminy do wstrzykiwań 100 mg / ml, 0,4 ml ksylazyny do wstrzykiwań 20 mg / ml, 16 ml sterylnej soli fizjologicznej (0,9% NaCl), sterylną butelkę o pojemności 20 ml i etykietę znieczulającą. </li>
		<li>Dodaj ketaminę i ksylazynę do butelki, tworząc roztwór ketaminy do ksylazyny w stosunku 9:1. </li>
		<li>Dodaj sól fizjologiczną do butelki, otrzymując mieszaninę ketaminy/ksylazyny w stosunku 1:4 9:1 do soli fizjologicznej. </li>
	</ol>
	</li>
	<li>Indukcja ketaminy/ksylazyny Mouse Mix
	<ol>
		<li>Ketamina/ksylazyna Mouse Mix może być również stosowana w połączeniu ze znieczuleniem wziewnym. </li>
		<li>Mieszanka ketaminy/ksylazyny myszy jest zwykle podawana myszom w zależności od wagi, przy użyciu następującego obliczenia: (BW x 10) - 50 = mikrolitry mieszanki ketaminy/ksylazyny dla myszy, którą należy podać. Będzie się to różnić w zależności od odmiany, wieku i stanu zdrowia. </li>
		<li>Ketamina/ksylazyna Mouse Mix może być podawana dootrzewnowo. </li>
	</ol>
	</li>
</ol>
3. Ocena znieczulenia
Głębokość znieczulenia można ocenić, badając reakcję na różne bodźce. Dobrowolny ruch będzie wynikał z fizycznych bodźców ciała. Tabela 1 zawiera listę metod fizycznych stosowanych do oceny głębokości znieczulenia. 
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Metoda</td>
			<td>Procedura</td>
			<td>Odpowiedź</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Szczypta palca</td>
			<td>Wyprostuj nogę i odizoluj taśmę między palcami. Obszar ten jest mocno ściśnięty za pomocą paznokci lub atraumatycznych kleszczy. </td>
			<td>Pozytywny odruch jest wskazywany przez cofnięcie nogi lub wycofanie stopy. Zwierzę nie znajduje się na chirurgicznej płaszczyźnie znieczulenia, jeśli występuje ruch nóg lub ciała, wokalizacja lub wyraźne przyspieszenie oddychania. </td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Szczypta ogona</td>
			<td>Końcówka ogona jest ściskana palcami lub atraumatycznymi kleszczami. </td>
			<td>Pozytywna reakcja jest sygnalizowana drganiami lub ruchem ogona. Zwierzę nie znajduje się na chirurgicznej płaszczyźnie znieczulenia, jeśli występuje ruch ogona, wokalizacja lub wyraźne zwiększenie oddechów. </td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Szczypta w ucho</td>
			<td>Za pomocą palców lub atraumatycznych kleszczy uszczypnij czubek małżowiny usznej. </td>
			<td>Pozytywną reakcją jest potrząsanie głową lub ruch wąsów do przodu. Jeśli występuje ruch głowy, wąsy, wokalizacja lub wyraźne zwiększenie oddechów, zwierzę nie znajduje się na chirurgicznej płaszczyźnie znieczulenia. </td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Odruch powiekowy</td>
			<td>Opuszkiem palca dotknij przyśrodkowej kanty (wewnętrznego kącika) oka. </td>
			<td>Pozytywny odruch jest sygnalizowany mrugnięciem w odpowiedzi na dotknięcie powiek. Jeśli występuje ruch powiek, wąsów lub wyraźne przyspieszenie oddychania, zwierzę nie znajduje się na chirurgicznej płaszczyźnie znieczulenia. </td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Odruch rogówkowy</td>
			<td>Za pomocą aplikatora z bawełnianą końcówką delikatnie dotknij rogówki (gałki ocznej). </td>
			<td>Pozytywna odpowiedź jest sygnalizowana mrugnięciem. Jeśli występuje ruch powiek, wąsów lub wyraźne zwiększenie oddechów, zwierzę nie znajduje się na wystarczająco głębokiej płaszczyźnie znieczulenia chirurgicznego. </td>
		</tr>
	</tbody>
</table>
Tabela 1. Metody bodźców fizycznych do oceny głębokości znieczulenia. 2
Należy również stosować wskaźniki fizjologiczne, takie jak tętno, częstość oddechów, ciśnienie krwi, kolor błony śluzowej i czas napełniania naczyń włosowatych. Podczas gdy ogólne obserwacje mogą być przydatne do wykrywania zmian w częstości oddechów zwierząt, wykorzystania tętna lub ciśnienia krwi do oceny głębokości, wymagany jest specjalistyczny sprzęt. Jeśli dostępny jest elektrokardiograf, można zmierzyć częstość i siłę bicia serca. Do pomiaru ciśnienia krwi istnieje wiele urządzeń, które są montowane na ogonie lub nawet na całym ciele. Bodźce fizyczne opisane w tabeli 1 spowodują wzrost wszystkich trzech tych parametrów. 
Obserwuje się zmiany w kolorze błon śluzowych, oczu, uszu, ust, nosa, odbytu i - w mniejszym stopniu - łap i ogona. Obszary powinny być różowe, co wskazuje na prawidłowe oddychanie i czynność serca. Kiedy zwierzę przechodzi do znieczulenia w stadium IV, oddychanie ustaje, co powoduje sinicę - oznaczoną niebieskim lub szarym kolorem - na błony śluzowe i otaczającą skórę. 
Czas napełniania kapilar definiuje się jako czas potrzebny do powrotu koloru do zewnętrznego złoża kapilarnego po jego zblanszowaniu przez przyłożenie nacisku na obszar. Aplikator w sztyfcie lub palec jest dociskany do dziąseł, małżowiny usznej lub łożyska paznokci znieczulonych zwierząt. Liczba sekund potrzebna do powrotu blanszowanego obszaru do różowego koloru nie powinna przekraczać 1-2 sekund. Wydłużony czas napełniania sugeruje zmniejszenie częstości akcji serca lub siły skurczów serca, co wskazuje, że zwierzę może być zbyt głęboko znieczulone i bliskie śmierci. 
Ważne jest, aby wykorzystać kilka różnych parametrów do oceny głębokości znieczulenia. Używanie tego samego palca u nogi lub ucha do wielokrotnego szczypania spowoduje znieczulenie obszaru, a reakcja zostanie stłumiona i nie da dokładnej oceny głębokości znieczulenia. Użyj alternatywnych miejsc do oceny szczypania palców u nóg i uszu. Głębokość znieczulenia powinna być ponownie oceniana co 10-30 minut przez cały czas trwania zabiegu. 2
Badania wykazały, że u znieczulonego zwierzęcia występują zmiany krążeniowo-oddechowe. Podczas znieczulania lekami do wstrzykiwań zwierzęta doświadczają stabilnej częstości oddechów; Wykazują jednak zmienność pojemności minutowej serca. Doniesiono, że reakcja na środki znieczulające do wstrzykiwań różni się znacznie między różnymi szczepami, dlatego trudno jest ustandaryzować dawkę. 7 Środki wziewne mają tendencję do zmniejszania częstości oddechów, ale mają mniejszy wpływ na układ sercowo-naczyniowy. Ponieważ dawkę znieczulenia wziewnego można łatwo dostosować przez cały czas trwania zabiegu, często jest to preferowana metoda.

Właściwe stosowanie środków znieczulających do zabiegów chirurgicznych lub innych potencjalnie bolesnych zabiegów ma kluczowe znaczenie nie tylko dla dobrostanu zwierzęcia, ale także dla integralności danych naukowych zebranych podczas zabiegu. Istnieje wiele zmiennych, które wpływają na wybór odpowiedniego pułku anestezjologicznego. Głębokość znieczulenia musi być ściśle monitorowana, ponieważ każde zwierzę może inaczej reagować na lek. Dzięki zastosowaniu odpowiedniego znieczulenia i starannemu monitorowaniu, bolesne z...

indukcja i podtrzymanie znieczulenia

Źródło: Kay Stewart, RVT, RLATG, CMAR; Valerie A. Schroeder, RVT, RLATG. Uniwersytet Notre Dame, IN
Przewodnik dotyczący opieki nad zwierzętami laboratoryjnymi i ich wykorzystywania ("Przewodnik") stwierdza, że ocena i łagodzenie bólu są integralnymi elementami opieki weterynaryjnej nad zwierzętami laboratoryjnymi. 1 Definicja znieczulenia to utrata czucia lub czucia. Jest to dynamiczne zdarzenie polegające na zmianach głębokości znieczulenia w odniesieniu do metabolizmu zwierzęcia, stymulacji chirurgicznej lub zmian w środowisku zewnętrznym.

Indukcja i podtrzymanie znieczulenia

Source: Kay Stewart, RVT, RLATG, CMAR; Valerie A. Schroeder, RVT, RLATG. University of Notre Dame, IN
The Guide for the Care and Use of Laboratory Animals ...

Indukcja i podtrzymanie znieczulenia stanowi integralny element opieki weterynaryjnej nad zwierzętami laboratoryjnymi poddawanymi wszelkim zabiegom chirurgicznym. Celem znieczulenia jest odpowiednie unieruchomienie zwierzęcia i złagodzenie wszelkich odczuć bólowych. Oprócz indukcji wymagane jest precyzyjne i stałe monitorowanie, aby bezpiecznie utrzymać prawidłową głębokość znieczulenia przez cały czas trwania zabiegu. W tym filmie najpierw pokrótce omówimy poziomy znieczulenia gryzoni i do jakiego etapu należy dążyć. Następnie przyjrzymy się różnym metodom indukcji i utrzymania, różnym sposobom zapewnienia, że zwierzę jest zawsze w pożądanym stadium znieczulenia, a na koniec zajmiemy się kilkoma eksperymentami w świecie rzeczywistym, obejmującymi stosowanie różnych środków znieczulających do różnych celów. Zacznijmy od omówienia poziomów. Istnieją cztery etapy znieczulenia i cztery płaszczyzny w ramach etapu trzeciego lub etapu chirurgicznego. Podczas pierwszego etapu zwierzę staje się zdezorientowane. Etap drugi charakteryzuje się nieregularnym częstością oddechów i utratą odruchu prostowania. Na płaszczyźnie pierwszej etapu trzeciego odruchy powiekowe i połykania są nieobecne. Podczas drugiego lotu zatracają się odruchy krtaniowe i rogówkowe. Do tego momentu znieczulenie nie wywołało amnezji ani analgezji. To właśnie na trzecim planie amnezja i analgezja postępują od częściowej do całkowitej, a zwierzę jest w pełni znieczulone do zabiegu chirurgicznego. Płaszczyzna trzecia jest również oznaczana przez paraliż mięśni międzyżebrowych, co skutkuje oddychaniem przeponowym, czyli płytkim oddechem. Na płaszczyźnie czwartej zwierzę zostało przedawkowane i może szybko przejść do etapu czwartego, w którym dochodzi do całkowitego paraliżu zarówno mięśni międzyżebrowych, jak i przepony, co może spowodować zatrzymanie oddechu i ostatecznie doprowadzić do śmierci. Środki znieczulające są dostępne w postaci inhalacji lub do wstrzykiwań, a weterynarz musi zdecydować, czego użyć do wykonania zabiegu. Wybór ten opiera się na wielu aspektach, w tym: zakresie i czasie trwania zabiegu, gatunku i odmianie, wieku i stanie fizjologicznym zwierzęcia. Klasa powszechnie stosowanych wziewnych środków znieczulających obejmuje związki takie jak izofluran, sewofluran i desfluran. Związki te pozwalają na łatwą kontrolę głębokości znieczulenia. Istnieje kilka opcji w sprzęcie, z których można wybierać do podawania wziewnych środków znieczulających. Jednym z wyborów jest słoik dzwonowy, który powinien być używany pod maską - a nie na stole - aby uniknąć narażenia personelu na gazy znieczulające. Zmontuj słoik za pomocą ceramicznej lub plastikowej perforowanej platformy, tworząc przestrzeń między dnem słoika a platformą. Następnie, nosząc nieprzepuszczalne rękawiczki, nasącz wacik środkiem znieczulającym i umieść go pod platformą tak, aby spoczywał na dnie słoika. Następnie natychmiast zabezpiecz pokrywę, aby zapobiec wydostawaniu się oparów znieczulających. Aby umieścić zwierzę, przesuń pokrywę na bok, wprowadź zwierzę i natychmiast je zabezpiecz. Następnie obserwuj aktywność i oddechy, aby określić głębokość znieczulenia i wystawić zwierzę na działanie środka wziewnego. Należy pamiętać, że platforma służy jako bariera i zapobiega bezpośredniemu kontaktowi zwierzęcia z płynnym środkiem znieczulającym. Alternatywą dla dzbanka jest komora indukcyjna używana w połączeniu z precyzyjnym waporyzatorem podłączonym do butli z tlenem. Pierwszym krokiem jest upewnienie się, że waporyzator jest napełniony odpowiednią ilością płynnego środka znieczulającego. Następnie sprawdź system oczyszczania gazów odlotowych. Jeśli jest to powszechnie stosowany system pasywny, zważyć kanister, aby określić, czy jest on nadal skuteczny. Ogólnie rzecz biorąc, wzrost o pięćdziesiąt gramów powyżej masy początkowej jest punktem, w którym kanister jest zużywany. Kolejnym krokiem jest montaż komory indukcyjnej. Upewnij się, że wejście pochodzi z parownika, a wyjście jest do systemu oczyszczania gazów odlotowych. Aby rozpocząć, umieść zwierzę w komorze indukcyjnej i zabezpiecz pokrywę. Gdy zwierzę znajdzie się w komorze, najpierw uruchom przepływ tlenu z szybkością 1 litra na minutę, a następnie dostosuj ustawienie parownika precyzyjnego do poziomu indukcji 3-4 % dla izofluranu. Podobnie jak słoik dzwonowy, wystaw zwierzę na działanie środka znieczulającego, aby uzyskać efekt. Gdy zwierzę jest w pełni znieczulone, przepłucz komorę tlenem, wyłączając izofluran przed delikatnym usunięciem zwierzęcia. Ma to na celu zapobieżenie narażeniu personelu na gazy anestezjologiczne. Inną metodą indukcji znieczulenia jest stożek na nos lub maskę na twarz, również podłączona do waporyzatora precyzyjnego. Ponieważ jednak gazy anestezjologiczne mają nieprzyjemny zapach, zwierzęta mogą sprzeciwiać się maskowaniu w celu indukcji. Ponadto istnieje również ryzyko spowodowania uduszenia z powodu zbyt mocnego chwytania. Dlatego preferowaną metodą jest użycie pudełka indukcyjnego lub słoika dzwonowego w celu wywołania znieczulenia, a następnie konserwacji za pomocą stożka nosowego. Najczęściej montaż jest taki, że stożek i komora indukcyjna są połączone z tym samym waporyzatorem z przełącznikiem pomiędzy nimi, aby przełączyć dostarczanie pary znieczulającej z komory indukcyjnej na stożek nosowy i odwrotnie. Po znieczuleniu zwierzęcia w komorze zabezpiecz jego twarz w stożku i przełącz przełącznik na rurce, aby przekierować przepływ gazu do stożka nosowego. Monitorować oddech i po upewnieniu się, że zwierzę jest zrelaksowane, zmniejszyć środek znieczulający do poziomu utrzymania 0,5 - 1,5%. Nałóż również maść okulistyczną na oczy, aby zapobiec wysuszeniu rogówki. W przypadku środków znieczulających do wstrzykiwań, mieszanina ketaminy i innych środków uspokajających lub zwiotczających mięśnie, w tym ksylazyny i/lub acepromazyny. Z użyciem tych związków można przygotować różne kombinacje. Zobacz poniższy tekst, aby zapoznać się z najczęściej używanymi współczynnikami. Należy pamiętać, że ketamina jest substancją kontrolowaną i dlatego użyta ilość musi być odnotowana w rejestrze kontrolowanych leków, a mieszaniny muszą mieć swoje indywidualne dzienniki substancji kontrolowanych. W zależności od gatunku, wieku i stanu zdrowia zwierzęcia dobiera się mieszaninę i dawkę środka znieczulającego, a roztwór można wstrzykiwać dootrzewnowo lub domięśniowo. Zwykle znieczulenie iniekcyjne i wziewne stosuje się w połączeniu w celu uzyskania znieczulenia chirurgicznego. Teraz, gdy wiesz, jak wywołać znieczulenie, dowiedzmy się o ocenie głębokości znieczulenia, którą należy monitorować co 10-30 minut, aby upewnić się, że zwierzę nie zostanie uszkodzone podczas zabiegu. Istnieje kilka metod, aby to zrobić u gryzoni. Powszechnie stosowaną metodą jest uszczypnięcie palca u nogi. Wyprostuj nogę zwierzęcia i odizoluj taśmę między palcami. Następnie mocno ściśnij obszar za pomocą paznokci lub atraumatycznych kleszczy. Pozytywny odruch jest wskazywany przez cofnięcie nogi lub wycofanie stopy. Inną metodą jest szczypanie ogona wykonywane na końcu ogona. Pozytywną reakcję demonstruje drganie lub ruch ogona. Możesz także uszczypnąć czubek małżowiny usznej, a jeśli występuje drżenie głowy lub ruch wąsów do przodu, zwierzę nie znajduje się w chirurgicznej płaszczyźnie znieczulenia. Aby sprawdzić głębokość znieczulenia, można również dotknąć kantu przyśrodkowego lub wewnętrznego kącika oka, aby wywołać odruch powiekowy - sygnalizowany mrugnięciem w odpowiedzi na dotknięcie powiek. Nawet jeśli występuje ruch powiek, wąsów lub wyraźne zwiększenie oddechu, zwierzę nie znajduje się w chirurgicznej płaszczyźnie znieczulenia. Na koniec można sprawdzić odruch rogówkowy, dotykając rogówki palcem w rękawiczce lub aplikatorem z bawełnianą końcówką. Pozytywna odpowiedź jest sygnalizowana mrugnięciem. Ważne jest, aby zmieniać się między miejscami, aby ocenić głębokość znieczulenia. Używanie tego samego palca u nogi lub ucha do wielokrotnego szczypania spowoduje znieczulenie obszaru, a reakcja zostanie stłumiona i nie da dokładnej oceny głębokości znieczulenia. Oprócz tych metod oceny bodźców fizycznych należy również monitorować wskaźniki fizjologiczne, w tym tętno, częstość oddechów, ciśnienie krwi, kolor błony śluzowej i czas napełniania naczyń włosowatych. Podczas gdy ogólne obserwacje mogą być przydatne do wykrywania zmian w częstości oddechów, aby wykorzystać tętno do oceny głębokości, można użyć specjalistycznego sprzętu, takiego jak elektrokardiograf. Do pomiaru ciśnienia krwi istnieje wiele urządzeń, które można zamontować na ogonie, a nawet na całym ciele. Kolor błon śluzowych, oczu, uszu, ust, nosa, odbytu, łap i ogona może również wskazywać na głębokość znieczulenia. Obszary te powinny być różowe, co sugeruje odpowiednie oddychanie i tętno. Aby sprawdzić czas napełniania kapilary, naciśnij małżowinę uszną znieczulonych zwierząt i policz liczbę sekund potrzebnych, aby zblanszowany obszar powrócił do różowego koloru. Nie powinno to trwać dłużej niż 1 do 2 sekund. Wydłużony czas napełniania sugeruje zmniejszenie częstości akcji serca lub siły skurczu serca, co wskazuje, że zwierzę może być zbyt głęboko znieczulone i bliskie śmierci. Po wyjęciu zwierzęcia ze znieczulenia nie powinno ono być zwracane do obiektu trzymania do czasu wyzdrowienia ze znieczulenia, chyba że jest stale monitorowane w obszarze pomieszczenia. Teraz, gdy poznaliśmy zasady i procedury indukcji i konserwacji znieczulenia gryzoni, przyjrzyjmy się niektórym z częstych zastosowań środków znieczulających w dzisiejszych badaniach biomedycznych. Prawdopodobnie najczęstszym zastosowaniem znieczulenia gryzoni jest przed i w trakcie operacji. Na przykład w tym przypadku naukowcy chcieli opracować model udaru mózgu spowodowanego tworzeniem się skrzepów. Aby to osiągnąć, wywołali znieczulenie u myszy, a następnie przewiercili czaszkę, aby stworzyć cienkie okienko. I kiedy zwierzę było jeszcze pod wpływem środków uspokajających, naukowcy wstrzyknęli światłoczuły barwnik do krążenia. Następnie wywołali fotoaktywację za pomocą lasera przez przewierconą czaszkę, aby spowodować powstanie skrzepu w unaczynieniu czaszki. Innym przypadkiem, w którym wymagane jest znieczulenie gryzoni, jest przeprowadzenie analizy fizjologicznej. Na przykład naukowcy często używają elektrod EKG u znieczulonych zwierząt do monitorowania aktywności serca. Lub używają sond ultradźwiękowych do określenia szybkości ruchu przepony, aby dokładniej określić ilościowo częstość oddechów. Wreszcie, stosowanie znieczulenia jest obowiązkowe podczas przeprowadzania eksperymentów z przeżywalnością w macicy. Na przykład elektroporacja in utero - metoda, w której ciężarna kobieta jest znieczulana, wykonuje się nacięcie w celu odsłonięcia rozwijających się zarodków, a elektrody są używane do indukowania embrionalnego wychwytu komórkowego wstrzykniętego materiału genetycznego. Właśnie obejrzałeś film JoVE na temat podawania i podtrzymywania znieczulenia. Ponieważ znieczulenie gryzoni ułatwia wykonywanie tak szerokiego zakresu eksperymentów biologicznych, konieczne jest, aby każdy naukowiec posiadał umiejętność wywoływania i utrzymywania prawidłowej głębokości znieczulenia przez cały czas trwania eksperymentu. Jak zawsze, dziękujemy za oglądanie!

Education

JoVE Science Education

Basic Biology

Podstawy biologii

Lab Animal Research

Badania na zwierzętach laboratoryjnych

Rodents

Gryzonie

laboratory anesthesia and pain control

Laboratory anesthesia and pain control are important parts of veterinary care for research animals. The Guide for the Care and Use of Laboratory Animals says that pain assessment and pain relief must be part of that care. Anesthesia means the loss of feeling or sensation.

Laboratory Anesthesia and Pain Control

rodent handling and restraint techniques

Minimizing Stress in Mouse and Rat Handling

Mouse and rat handling can create stress, even when the procedure is brief. Cage changing and other noninvasive tasks can raise heart rate, blood pressure, and serum corticosterone levels. These changes may last for several hours. Restraint for injections and blood withdrawal can also affect the animals and may influence scientific data. Because of this, proper training is needed when working with mice and rats. The goal is to reduce the effect of handling on the animals as much as possible. <br...

basic care procedures

Caring for Research Mice and Rats

Research mice and rats need careful housing, feeding, and handling. These animals make up over 90% of the animals used for biomedical research, so their care can strongly affect experiment results. Both immunocompetent animals, which have a normal immune response, and immunocompromised animals need proper support during studies. Some research animals have weakened immune systems and need extra steps to stay healthy. Common examples include naturally occurring immunocompromised mice and mice...

fundamentals of breeding and weaning

Mouse and Rat Breeding Methods

Mouse and rat breeding methods are used in biomedical research to supply animals for laboratory studies. Many research facilities buy mice from commercial breeders, but some also breed mice and rats in-house. In-house breeding can reduce costs and give researchers more options for their studies. Breeding animals in the facility also lets researchers manage genetics and timing. They can plan pregnancies to match research needs and work with embryos and newborns when needed. Mice and rats can be...

rodent identification i

Mice and Rats: Ear Tags and Punch Codes

Proper identification of laboratory mice and rats is important in biomedical research. The right animal must be used for each procedure and for data collection. Clear identification helps keep research records accurate and reliable. This page focuses on permanent identification methods for mice and rats. These methods include ear tags, ear punch codes, microchip implantation, tail tattoos for adult mice, and toe tattoos for neonates. Temporary methods such as dyes and marking pens can also be...

rodent identification ii

Rodent ID Methods for Accurate Records

Accurate rodent identification supports reliable animal records and data collection. Research animal records may include simple cage cards or a detailed database with full information on each animal. Individual identification is the key part of keeping those records correct. Mice and rats can be identified by several methods. These include tattooing, microchip placement, and temporary identification methods. Each method serves a different need in research animal management. The procedure also...

compound administration i

Rodent Injection Routes and Restraint

Rodent injection routes and restraint methods are key parts of compound administration in mice and rats. When a substance must be injected into an animal, the delivery route and the amount of compound must be chosen with care. The right choice helps match the dose to the protocol. Several factors guide the route of administration. These include the pH of the solution, the volume needed for the desired dose, and the viscosity of the solution. Viscosity means how thick or resistant to flow a...

compound administration ii

Choosing the Right Route for Compound Delivery

Compound delivery is a key part of many animal studies. The route used to give the compound can change how it is absorbed. Careful planning helps make sure the compound is delivered correctly. The substance itself also matters when a route is chosen. Its pH, viscosity, and concentration can all affect which method is best. These properties help guide the choice of administration route in a study.

compound administration iii

Specialized Injection Routes in Mice and Rats

Specialized injection routes in mice and rats are sometimes used when standard compound administration methods are not enough. Some study protocols call for less common routes such as intradermal, intranasal, and intracranial injections. These methods are used in laboratory animals and require careful technique. Intradermal injections place a compound into the skin. Intranasal injections deliver a compound through the nose. Intracranial injections are given into the brain. Because these...

compound administration iv

Specialized Injection Routes in Rodents

Specialized injection routes in laboratory mice and rats include intracardiac, footpad, and retro-orbital administration. These methods are used when a protocol calls for a route that is less common than standard compound delivery methods. Each route requires specialized training to perform correctly. Intracardiac injections deliver into the heart, footpad injections target the paw area, and retro-orbital injections are given around the eye region. Because these procedures are more technical,...

blood withdrawal i

Rodent Blood Collection Methods

Blood collection in mice and rats is a common part of research studies. The method used depends on how much blood is needed, how often samples must be taken, the animal's health, and the technician's skill level. This topic includes three blood withdrawal methods: retro-orbital sinus bleeds, initial tail snip bleeds, and intracardiac bleeds. Each method requires general anesthesia, which means the animal is made unconscious before the procedure begins.

blood withdrawal ii

Rodent Blood Sampling Methods

Blood collection from mice and rats can be done with several methods. The choice depends on the restraint needed, how invasive the procedure is, and whether a general anesthetic is required. These factors help determine which method is best for a given analysis. One older method uses the retro-orbital sinus cavity, which is located behind the eye. This approach has been debated because it may cause tissue damage or even blindness. For that reason, facial vein and submandibular vein bleeding...

anesthesia induction and maintenance

Laboratory anesthesia and pain control are important parts of veterinary care for research animals. The Guide for the Care and Use of Laboratory Animals says that pain assessment and pain relief must be part of that care. Anesthesia means the loss of feeling or sensation.

considerations for rodent surgery 

Aseptic Steps in Rodent Survival Surgery

Aseptic technique is essential for rodent survival surgery. It is used to keep the surgical site as clean as possible and to reduce contamination during the procedure. This approach includes patient preparation, surgeon preparation, and sterilization of instruments and other supplies. It also depends on a clean, controlled environment. Careful planning before surgery helps set up these steps for success. During the operation, animals need close monitoring. After the surgery, postoperative...

diagnostic necropsy and tissue harvest

Rat Necropsy for Tissue Collection

Rat necropsy is a key step for collecting organs and tissues at the end of many animal studies. These final samples are used for data collection time points and later testing. Because the samples are used for analysis, the way they are taken can affect sample quality. Careful collection methods help preserve the organs and tissues for testing. The method of euthanasia, or the procedure used to humanely end the animal's life, can also affect sample quality. This article outlines proper necropsy...

sterile tissue harvest

Aseptic Organ Collection in Rats and Mice

Aseptic organ collection in rats and mice is used to keep harvested tissues free from contamination. The process is important when tissues will be used for cell and tissue cultures. It also supports later protein and RNA analysis, as well as metabolic profiling of tissues. The transcript connects this work to the 3 R's, which were introduced in 1959 by W.M.S. Russell and R.L. Burch in The Principles of Humane Experimental Technique. The 3 R's are replacement, reduction, and refinement in the...

early intervention and pain management

Wcześnie włączenie interwencji i zarządzanie bólem

Wszystkie procedury dotyczące zwierząt opisane tutaj muszą być przeprowadzane zgodnie z instytucjonalnymi wytycznymi etyki dotyczącymi zwierząt i muszą być zatwierdzone przez IACUC. Wszystkie procedury muszą przestrzegać zasad 3R – Zastępowania, Redukcji i Udoskonalania – i muszą być przeprowadzane przez wykwalifikowany personel.  Monitorowanie zwierząt pod kątem oznak bólu i udręki Rozpoznawanie wczesnych oznak bólu jest niezbędne w etycznych badaniach na zwierzętach. Zwierzęta są rutynowo...

humane euthanasia and confirmation of death in rodents

Ludzka eutanazja i potwierdzenie śmierci u gryzoni

Wszystkie procedury dotyczące zwierząt opisane tutaj muszą być przeprowadzane zgodnie z instytucjonalnymi wytycznymi dotyczącymi etyki eksperymentów na zwierzętach i muszą być zatwierdzone przez IACUC. Wszystkie procedury muszą przestrzegać zasad 3R—Zastępstwa, Redukcji i Ułatwienia—oraz muszą być wykonywane przez wyszkolonego personel. Humanitarne punkty końcowe u gryzoni to wcześniej określone kliniczne, behawioralne lub fizjologiczne wskaźniki, które sygnalizują, że zwierzę doświadcza...

habituation and positive reinforcement for rodent handling

Nawyk i pozytywne wzmocnienie w obsłudze gryzoni

Wszystkie procedury dotyczące zwierząt opisane tutaj muszą być przeprowadzane zgodnie z instytucjonalnymi wytycznymi dotyczącymi etyki w badaniach na zwierzętach i zatwierdzone przez IACUC. Wszystkie procedury muszą przestrzegać zasad 3R – Zamienności, Redukcji i Ułatwienia – i muszą być wykonywane przez przeszkolone personel. Przyzwyczajanie i pozytywne wzmacnianie to strategie ułatwienia, które pomagają zmniejszyć stres podczas rutynowych procedur obsługi i eksperymentalnych z gryzoniami. Te...

breeding management in rodent studies

Zarządzanie hodowla w badaniach na gryzoniach

Wszystkie procedury dotyczące zwierząt opisane tutaj muszą być przeprowadzane zgodnie z instytucjonalnymi wytycznymi etycznymi dotyczącymi zwierząt i muszą zostać zatwierdzone przez IACUC. Wszystkie procedury muszą przestrzegać zasad 3R—Zastępowania, Redukcji i Rafinacji—i muszą być przeprowadzane przez przeszkolony personel. Zarządzanie hodowlą wspiera 3R poprzez minimalizowanie niepotrzebnej produkcji zwierząt i zapewnienie, że generowana jest tylko liczba zwierząt wymagana do badania.

transport and acclimatization of rodents for research

Transport i aklimatyzacja gryzoni do badań

Wszystkie procedury dotyczące zwierząt opisane tutaj muszą być przeprowadzane zgodnie z instytucjonalnymi wytycznymi etycznymi dotyczącymi zwierząt i zatwierdzone przez IACUC. Wszystkie procedury muszą przestrzegać zasad 3R—Zastępowanie, Redukcja i Udoskonalenie—i muszą być wykonywane przez przeszkolone osoby. Transport gryzoni do badań wymaga procedur, które minimalizują stres i utrzymują dobrostan zwierząt podczas przemieszczania, aby zminimalizować wpływ na wyniki eksperymentalne. Klatki...

environmental enrichment for rodents

Wzbogacanie środowiska dla gryzoni

Wszystkie procedury dotyczące zwierząt opisane tutaj muszą być przeprowadzane zgodnie z instytucjonalnymi wytycznymi etyki zwierzęcej i zatwierdzone przez IACUC. Wszystkie procedury muszą przestrzegać zasad 3R – Zamienności, Redukcji i Ulepszenia – i muszą być wykonywane przez przeszkolony personel. Enrychment środowiskowy obejmuje obiekty i praktyki, które zachęcają do naturalnego zachowania, poprawiają samopoczucie psychologiczne i promują lepsze dobre samopoczucie u gryzoni laboratoryjnych.

rodents

Explore how anesthesia supports pain control in laboratory animals, including why pain assessment and relief are key parts of veterinary care.

Laboratory Anesthesia and Pain Control | JoVE K12

HS-LS1-3.

Kay Stewart

Valerie A. Schroeder Schroeder

University of Notre Dame

Overview

Levels of Anesthesia

Anesthesia Induction Procedures: Inhalation and Injection

Anesthetic Depth Assessment

Applications

Summary

Characteristics of Life

Biology is a natural science that studies life and living organisms, including their structure, function, development, interactions, evolution, ...

https://cloudfront.jove.com/files/media/science-education/science-education-thumbs/10647.jpg

Cell Structure

Background
Cells represent the most basic biological units of all organisms, whether it be simple, single-celled organisms like bacteria, or large, ...

Visualizing Onion and Cheek Cells
ExpandImmediately before the experiment, wash and peel onion bulbs for the class.
Remove the entire brown outer skin and ...

Visualizing Onion and Human Cells
ExpandIn this experiment you will prepare different types of cells from a plant and animal, onion and human ...

What are Cells?

Cell Diversity

The concept of a cell started with microscopic observations of dead cork tissue by Robert Hooke in 1665. Hooke coined the term &#34;cell&#34; based on the ...

Cytoplasm

The cytoplasm consists of organelles and a framework of protein scaffolds called the cytoskeleton suspended in an aqueous solution, the cytosol. The ...

The Nucleus

The nucleus is a membrane-bound organelle that acts as a control center in a eukaryotic cell. It contains chromosomal DNA, which controls gene expression ...

The Central Dogma

The DNA Helix

Nucleic Acids

DNA as a Genetic Template

Structure of a Gene

A gene is the fundamental unit of heredity. Every individual has two copies of each gene, one inherited from each parent. Although most people contain the ...

Chromosome Structure

Base-pairing and DNA Repair

What is Gene Expression?

A gene is a stretch of DNA that serves as the blueprint for functional RNAs and proteins. Since DNA is comprised&#160; of nucleotides and proteins are ...

RNA Structure

The basic structure of RNA consists of a string of ribonucleotides attached by phosphodiester bonds. Although most RNA is single-stranded, it can form ...

Types of RNA

Three main types of RNA are involved in protein synthesis: messenger RNA (mRNA), transfer RNA (tRNA), and ribosomal RNA (rRNA). These RNAs perform diverse ...

Transcription

Transcription is the synthesis of RNA from a DNA sequence by RNA polymerase. It is the first step in producing a protein from a gene sequence. ...

Translation

Translation is the process of synthesizing proteins from the genetic information carried by messenger RNA (mRNA). Following transcription, it constitutes ...

Ribosomes

Ribosomes translate genetic information encoded by messenger RNA (mRNA) into proteins. Both prokaryotic and eukaryotic cells have ribosomes. Cells that ...

Protein and Protein Structures

Proteins: From Genes to Degradation

From DNA to Protein

The flow of genetic information in cells from DNA to mRNA to protein is described by the central dogma, which states that genes specify the sequence of ...

Protein Folding

Proteins are chains of amino acids linked together by peptide bonds. Upon synthesis, a protein folds into a three-dimensional conformation, critical to ...

An Overview of Gene Expression

Gene expression is the complex process where a cell uses its genetic information to make functional products. This process is regulated at multiple ...

an-introduction-to-caenorhabditis-elegans

An Introduction to Caenorhabditis elegans

Caenorhabditis elegans is a microscopic, soil-dwelling roundworm that has been powerfully used as a model organism since the early 1970&rsquo;s.  It was ...

An Overview of Genetic Analysis

An organism&#8217;s physical traits, or phenotype, are a product of its genotype, which is the combination of alleles (gene variants) inherited from its ...

An Introduction to Cell Death

Necrosis, apoptosis, and autophagic cell death are all manners in which cells can die, and these mechanisms can be induced by different stimuli, such as ...

An Overview of Genetic Engineering

Genetic engineering &#8211; the process of purposefully altering an organism&#8217;s DNA &#8211; has been used to create powerful research tools and model ...

An Introduction to Cell Division

Cell division is the process by which a parent cell divides and gives rise to two or more daughter cells. It is a means of reproduction for single-cell ...

An Overview of Genetics and Disease

Many human diseases are associated with mutations or variations in genetic sequences. Some of these genetic variants are heritable, passed down from ...

an-introduction-to-cellular-and-molecular-neuroscience

An Introduction to Cellular and Molecular Neuroscience

Cellular and molecular neuroscience is one of the newest and fastest growing subdisciplines in neuroscience. By investigating the influences of genes, ...

Annexin V and Propidium Iodide Labeling

Staining with annexin V and propidium iodide (PI) provides researchers with a way to identify different types of cell death&#8212;either necrosis or ...

an-introduction-to-developmental-genetics

An Introduction to Developmental Genetics

Development is the complex process through which a single-celled embryo transforms into a multicellular organism. Developmental processes are guided by ...

Bacterial Transformation: Electroporation

The term &#x201C;transformation&#x201D; refers cellular ingestion of foreign DNA.  In nature, transformation can occur in certain types of bacteria.  In ...

an-introduction-to-molecular-developmental-biology

An Introduction to Molecular Developmental Biology

Molecular signals play a major role in the complex processes occurring during embryonic development. These signals regulate activities such as cell ...

bacterial-transformation-the-heat-shock-method

Bacterial Transformation: The Heat Shock Method

Transformation is the process that occurs when a cell ingests foreign DNA from its surroundings. Transformation can occur in nature in certain types of ...

an-introduction-to-saccharomyces-cerevisiae

An Introduction to Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces cerevisiae (commonly known as baker&rsquo;s yeast) is a single-celled eukaryote that is frequently used in scientific research.  S. ...

Cell Cycle Analysis

Cell cycle refers to the set of events through which a cell grows, replicates its genome, and ultimately divides into two daughter cells through the ...

An Introduction to Transfection

Transfection is the process of inserting genetic material, such as DNA and double stranded RNA, into mammalian cells. The insertion of DNA into a cell ...

Chromatin Immunoprecipitation

Histones are proteins that help organize DNA in eukaryotic nuclei by serving as &#8220;scaffolds&#8221; around which DNA can be wrapped, forming a complex ...

An Overview of Epigenetics

Since the early days of genetics research, scientists have noted certain heritable phenotypic differences that are not due to differences in the ...

community-dna-extraction-from-bacterial-colonies

Community DNA Extraction from Bacterial Colonies

Source: Laboratories of Dr. Ian Pepper and Dr. Charles Gerba - The University of Arizona
Demonstrating Author: Luisa Ikner
Traditional methods of analysis ...

Cytogenetics

Cytogenetics is the field of study devoted to chromosomes, and involves the direct observation of a cell&#8217;s chromosomal number and structure, ...

embryonic-stem-cell-culture-and-differentiation

Embryonic Stem Cell Culture and Differentiation

Culturing embryonic stem (ES) cells requires conditions that maintain these cells in an undifferentiated state to preserve their capacity for self-renewal ...

DNA Gel Electrophoresis

DNA gel electrophoresis is a technique used for the detection and separation of DNA molecules. An electric field is applied to a gel matrix comprised of ...

Enzyme Assays and Kinetics

Enzyme kinetics describes the catalytic effects of enzymes, which are biomolecules that facilitate chemical reactions necessary for living organisms. ...

DNA Ligation Reactions

In molecular biology, ligation refers to the joining of two DNA fragments through the formation of a phosphodiester bond.  An enzyme known as a ligase ...

explant-culture-for-developmental-studies

Explant Culture for Developmental Studies

Explant culture is a technique in which living cells or tissues are removed from an embryo for continued development outside of the organism. This ex vivo ...

DNA Methylation Analysis

Methylation at CpG dinucleotides is a chemical modification of DNA hypothesized to play important roles in regulating gene expression. In particular, the ...

Construct an explanation based on evidence for how the structure of DNA determines the structure of proteins which carry out the essential functions of life through systems of specialized cells.

HS-LS1-1.

Laboratory Anesthesia and Pain Control

Description

Transcript

Tags

More videos by Standards