Este artigo descreve um método para culminar e analisar os crescimentos de células epiteliais parieais glomerulares de glomeruli encapsulado isolados do rim do rato. Este método pode ser usado para estudar caminhos envolvidos na proliferação e migração de células epiteliais parietal.
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Artigo de método
Crescimento glomerular como um ensaio ex vivo para analisar caminhos envolvidos na ativação de células epiteliais parietal
Neste artigo
Resumo
Resumo
A ativação da célula epitelial parietal (PEC) é um dos fatores-chave envolvidos no desenvolvimento e progressão da glomerulosclerose. A inibição de vias envolvidas na ativação de células epiteliais parietal pode, portanto, ser uma ferramenta para atenuar a progressão de doenças glomerulares. Este artigo descreve um método para cultivar e analisar o crescimento das células epiteliais parietal do glomeruli encapsulado isolado do rim do rato. Após dissecar rins isolados de camundongos, o tecido é picado, e glomeruli são isolados por peneira. Glomeruli encapsulado são coletados, e glomeruli único são cultivados por 6 dias para obter crescimento glomerular de células epiteliais parietal. Durante esse período, a proliferação e migração de células epiteliais parietal pode ser analisada determinando o número celular ou a área superficial das células em crescimento. Este ensaio pode, portanto, ser usado como uma ferramenta para estudar os efeitos de uma expressão genética alterada em camundongos transgênicos ou nocautes ou os efeitos das condições culturais nas características e sinalização das células epiteliais parietal. Utilizando este método, podem ser estudadas caminhos importantes envolvidos no processo de ativação de células epiteliais parietal e, consequentemente, na glomerulosclerose.
Introdução
As doenças glomerulares são um importante grupo de distúrbios renais e representam uma das principais causas da doença renal em estágio terminal (ESRD). Infelizmente, as opções específicas de tratamento são limitadas e a progressão para a ESRD é inevitável. As doenças glomerulares são definidas pela presença de lesões glomerulares e podem ser agrupadas em doenças inflamatórias e não inflamatórias. Embora o insulto inicial seja diferente, estudos recentes têm demonstrado que um mecanismo celular comum leva à hiperplasia epitelial glomerular e, em últimainstância,à glomerulosclerose em todas as doenças glomerulares, independentemente da causa básica1,,2,,3,4.
Especificamente, foi demonstrado que as lesões glomeruloscleróticas são compostas principalmente de células epiteliais parietal ativadas5,6. Sob condições fisiológicas, as células epiteliais parietal são células epiteliais quiescentes planas que revestem a cápsula do Bowman do glomerulus. No entanto, qualquer lesão glomerular devido a mutações genéticas (por exemplo, citopatias específicas podocyte ou mitocondrial), inflamação ou hiperfiltração (por exemplo, causada pela redução da massa renal, hipertensão, obesidade ou mellitus diabético) pode desencadear a ativação de células epiteliais parietal. Células epiteliais parietal ativadas proliferam e depositam matriz extracelular que resulta na formação de crescentes celulares ou lesões escleróticas5,,7,,8. A progressão desses processos resulta na perda da função renal9. Portanto, a ativação de células epiteliais parietal é um fator-chave no desenvolvimento e progressão da glomerulosclerose tanto inflamatória quanto não inflamatóriaglomerular 1,,2,,3,,4,,10.
Os processos moleculares que mediam a ativação de células epiteliais parietal ainda são amplamente desconhecidos. Estudos recentes mostram que as células epiteliais parietal ativadas de novo expressAM CD44, um receptor que é importante para a ativação de diferentes caminhos envolvidos na proliferação e migração celular. Além disso, a inibição do CD44 mostrou-se inibir a ativação de células epiteliais parietal e atenuar a progressão da formação crescente e glomerulosclerose em modelos animais de doenças inflamatórias e glomerulares não inflamatórias11,,12.
Como a ativação de células epiteliais parietal é um ator-chave para o desenvolvimento da glomerulosclerose e formação crescente, a inibição dessas células poderia retardar a progressão de doenças glomerulares. A elucidação das vias moleculares que conduzem a ativação epitelial parietal pode levar ao desenvolvimento de intervenções terapêuticas específicas que atenuam a formação das lesões hiperplásticas e glomeruloscleróticas na doença glomerular.
Em modelos animais experimentais, é frequentemente difícil fornecer evidências para um efeito direto de uma expressão genética alterada (modelos de knock-out ou modelos de camundongos transgênicos) ou tratamento medicamentoso nas células epiteliais parietal. Em um camundongo knock-out convencional, as alterações in vivo observadas podem ser explicadas por mudanças diretas nas células epiteliais parietal. No entanto, uma vez que a expressão genética também é alterada em outros tipos de células dentro do mouse, não se pode excluir efeitos indiretos mediados por outros tipos de células. O desenvolvimento de camundongos cre-lox condicional impulsionados por promotores principalmente ativos em células epiteliais parietal forneceu uma solução em alguns casos13. No entanto, modelos transgênicos condicionais são complexos e, embora linhas mais condicionais se tornem disponíveis, para muitas das linhas convencionais de camundongos ou transgênicos ainda não há um substituto condicional.
Para estudar os efeitos diretos nas células epiteliais parietal, nosso grupo desenvolveu um ensaio ex vivo usando glomeruli encapsulado único isolado dos rins do rato para medir e analisar a proliferação e migração de células epiteliais parietal. Este método nos permitirá determinar efeitos específicos de células epiteliais parietal e encontrar caminhos responsáveis para a ativação de células epiteliais parietal e testar opções de tratamento para inibir essa ativação.
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Protocolo
Todos os experimentos em animais foram realizados de acordo com as diretrizes do Comitê de Ética Animal da Universidade Radboud Nijmegen.
NOTA: Ratos selvagens não tratados e saudáveis (TC) (n = 4) e camundongos cd44-/- (n = 4) foram sacrificados aos 12-16 semanas. Foram utilizados camundongos machos e fêmeas. Todos os ratos estavam no fundo C57Bl/6.
1. Dissecção do rim do rato
- Sacrificar camundongos saudáveis ou camundongos geneticamente alterados por luxação cervical.
- Dissecar os rins inteiros do rato diretamente depois de sacrificar os ratos. Para isso, realize uma laparotomia mediana usando tesoura abdominal, cortando a pele e, em seguida, os músculos abdominais. Retire o intestino e coloque-o ao lado do rato.
- Liberte os rins da conexão do tecido e retire o rim usando fórceps cirúrgicos, cortando a artéria renal, veia renal e ureter com tesoura.
- Remova as cápsulas renais dos rins segurando o rim com fórceps cirúrgicos e retire a cápsula usando outro par de fórceps.
- Coloque os rins em uma placa de cultura celular de 6 poços (2 rins/bem) preparado com 2 mL de solução de sal balanceada (HBSS) da Hanks por poço e coloque no gelo.
2. Isolamento de glomeruli do rim de rato
- Transfira os rins para uma placa de Petri de 100 mm e pique os rins em pequenos pedaços de 1-2 mm usando dois bisturis. Mantenha os pedaços de rim picados molhados usando 1-2 mL de HBSS.
- Coloque as peças de rim picadas em cima de uma peneira metálica de 300 μm e pressione o rim através da peneira usando um êmbolo de uma seringa de 20 mL. Enxágue repetidamente a peneira com HBSS no meio e colete o fluxo em uma placa de Petri limpa usando um tubo sorológico. Colete também tudo o que resta/gruda na parte inferior da peneira raspando-o com o bisturi e transfira-o para o fluxo coletado (homogeneizar o rim).
- Enxágüe o rim homogeneizar através de uma peneira de 75 μm com HBSS. Colete o fluxo através e, posteriormente, enxágue este fluxo através de uma peneira de 53 μm. Lave ambas as peneiras usando HBSS para remover todas as estruturas menores.
NOTA: Nesta etapa, o fluxo-though é apenas enxaguado, mas não pressionado através da peneira de 75 μm e 53 μm. Lavar com HBSS é necessário para remover detritos e estruturas menores nas peneiras. Portanto, normalmente 200-300 mL de HBSS são usados no total. - Colete as estruturas/materiais renais que permanecem na peneira de 75 μm e 53 μm lavando a superfície superior das peneiras com o meio de Águia modificado (DMEM) modificado de Dulbecco complementado com soro de bezerro fetal de 20% (SFC) e transfira o material para uma microplaca de apego ultra-baixa de 6 poços.
NOTA: Para lavar a superfície superior da peneira, enxágue a peneira em posição inclinada (>45°) e colete o material renal na borda da peneira. O material coletado é enriquecido para encapsulamento, bem como glomeruli decapsulado, mostrando apenas alguns fragmentos tubulares. Glomeruli encapsulado são muito pegajosos. Para coletar glomeruli único, por isso é importante evitar que glomeruli adere à superfície de uma placa de Petri ou placa de poço. Para evitar a adesão, use o meio com 20% de FCS e use placas de fixação ultra-baixas para esta etapa.
3. Cultivo de crescimento glomerular
- Leve a microplacão de fixação ultra-baixa para um microscópio de luz invertida e colete glomeruli encapsulado e/ou decapsulado único com uma pipeta de 20 μL. Evite a tubulação de outras estruturas e detritos. Depois de coletar um único glomerulus na ponta da pipeta, adicione um meio DMEM fresco sem material renal coletado na mesma ponta de pipeta a um volume de 20 μL.
- Transfira o glomerulus único com o meio DMEM de 20 μL para o centro de um poço de uma placa de cultura celular de 24 poços e incubar por 3h a 37 °C e 5% (v/v) CO2 para permitir a fixação do glomerulus ao centro do poço. Mova cuidadosamente a placa para evitar flutuar do glomerulus para os pensionistas do poço.
- Após a incubação de 3h, o glomerulus é anexado ao centro do poço. Adicione cuidadosamente 500 μL de meio basal endotelial (EBM) complementado com um kit de fator de crescimento contendo hidrocortisona, fator de crescimento endotelial humano, extrato cerebral bovino e sulfato-anfotericina de gentamicina B(Tabela de Materiais) e adicional de 5% (v/v) FBS e 1% (v/v) penicilina/estreptomicina (caneta/estreptomicina) para cada poço.
- Cultura o glomeruli único por 6 dias a 37 °C, 5% (v/v) CO2.
NOTA: Dentro de 6 dias, forma-se o crescimento composto por células epiteliais parietal. Se se pretende testar os efeitos de compostos ou drogas específicas nas células epiteliais parietais, deve ser adicionado ao meio dentro deste período de seis dias.
4. Análise da proliferação de células epiteliais parietal
- Analise o crescimento glomerular após 6 dias. Pegue imagens microscópicas usando um microscópio de luz invertida digital.
- Use um software de análise de imagem (por exemplo, ImageJ/FIJI) para determinar a área da superfície e o diâmetro do crescimento glomerular, e o número de células em crescimento ou glomeruli superando.
- Para determinar a área superficial do crescimento glomerular, abra o tif. arquivo do crescimento glomerular com barra de escala em ImageJ. Desenhe uma linha reta na barra de escala e determine a distância em pixels clicando em analisar e medir (por exemplo, 1 mm = 460 pixels).
- Determine a escala clicando em analisar,definir escala e digitar a distância conhecida em pixel (por exemplo, 460), digitar também a distância conhecida (por exemplo, 1) e a unidade de comprimento (por exemplo, 1 mm). Clique em ok.
- Determine quais resultados aparecerão na tabela de resultados clicando em analisar e, em seguida, definir medidas. Para determinar a área de superfície do crescimento glomerular, ative a área de opções e o rótulo do display. Clique em ok.
- Para determinar a área superficial do crescimento glomerular, desenhe uma seleção à mão livre em torno do crescimento glomerular. Clique em analisar e, em seguida, meça, uma tabela de resultado aparecerá no ImageJ mostrando a área de superfície de crescimento na escala determinada anteriormente (ver etapa 4.4, por exemplo, mm2).
5. Caracterização do crescimento da célula glomerular
NOTA: Para avaliar a composição celular do crescimento, a coloração da imunofluorescência para marcadores específicos de células é realizada nos crescimentos glomerulares em t = 6 dias.
- Remova cuidadosamente o meio e lave suavemente o glomeruli duas vezes usando soro fisiológico tamponado com fosfato (PBS).
- Fixar por 10 minutos à temperatura ambiente usando 2% (p/v) paraformaldeído (PFA) suplementado com 4% (w/v) sacarose em PBS e lavar cuidadosamente 2x usando PBS.
- Incubar com o anticorpo primário com concentração adequada(Tabela de Materiais) diluído em pbs-ovine serum albumin (BSA) 1% (v/v) para 1 h em temperatura ambiente.
- Remova a solução de anticorpos e lave cuidadosamente 3x com PBS.
- Incubar com anticorpo secundário(Tabela de Materiais) diluído em PBS-BSA 1% (v/v) no escuro por 45 min a temperatura ambiente.
- Lave cuidadosamente 3x com PBS e monte usando 1-2 gotas de meio de montagem aquosa com 4′,6-diamidino-2-fenilômado (DAPI) para visualizar núcleos e cobrir o poço com um deslizamento de cobertura redonda.
- Pegue imagens microscópicas usando um microscópio fluorescente.
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Resultados
Um diagrama sistemático do método para realizar o ensaio glomerular de crescimento é mostrado na Figura 1. A Figura 2A-D mostra crescimentos glomerulares de glomeruli encapsulado em diferentes pontos de tempo observados usando microscopia leve. Os crescimentos são mostrados nos dias 2, 4 e 6 (Figura 2B-D) na cultura após o isolamento glomerulus do rim do rato. Para v...
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Discussão
Usando o protocolo descrito neste artigo, pode-se usar glomeruli encapsulado único para avaliar a proliferação de células epiteliais parietal, que é uma consequência da ativação de células epiteliais parietal. Este modelo ex vivo nos permitirá estudar detalhadamente as vias moleculares, que estão envolvidas na ativação de células epiteliais parietal. O método descrito baseia-se no simples conceito de dissecção renal e peneira para isolar e cultura encapsulada glomeruli e comparar a proliferação e/ou migração de células e...
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Divulgações
Os autores não têm nada a revelar.
Agradecimentos
Esta pesquisa foi apoiada pela Dutch Kidney Foundation (grant 14A3D104) e pela Organização Holandesa de Pesquisa Científica (bolsa NWO VIDI: 016.156.363).
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Materiais
| Nome | Empresa | Número de catálogo | Comentários |
|---|---|---|---|
| Placa de cultura de células de 24 poços | Corning Costar | ||
| anti-CD31 | BD Pharmingen | Marcador de células endoteliais (concentração usada 1:200) | |
| anti-rato de galinha Alexa 647 | Thermo Fisher | ( concentração usada 1:200) | |
| DAPI-Fluoromount G | Southern Biotech | Meio de montagem contendo DAPI | |
| Microscópio digital de luz invertida | Westburg, EVOS fl microscópio | ||
| burro-anti-cabra Alexa 568 | Thermo Fisher | ( concentração usada 1:200) | |
| burro-anti-coelho Alexa 568 | Thermo Fisher | ( concentração usada 1:200) | |
| Meio de Eagle modificado de Dulbecco | Lonza | ||
| EBM Medium | Lonza | ||
| EBM-MV Kit de cotas simples | Lonza | contendo hidrocortisona, hEGF, GA-1000, FBS e BBE | |
| Soro fetal bovino | Lonza | ||
| Soro fetal de bezerro | Lonza | ||
| Microscópio fluorescente | Leica Microsystems GmbH | ||
| cabra-anti-sinaptopodina | Santa Cruz | Marcador de podócitos (concentração usada 1:200) | |
| Hanks'Balanced Salt Solution | Gibco | ||
| ImageJ software | FIJI 1.51n | ||
| placa de Petri | Sarstedt | tamanho 100 | |
| coelho-anti-claudina1 | Abcam | Marcador de células epiteliais parietais (concentração usada 1:100) | |
| coelho-anti-SSeCKS | Roswell Park Comprehensive Cancer Center, Buffalo, NY, EUA | gentilmente fornecido pelo Dr. E. Gelman, Marcador | |
| rat-anti-CD44 | BD Pharmingen | Marcador de células epiteliais parietais (concentração usada 1:200) | |
| bisturi | Dahlhausen | tamanho 10 | |
| Peneiras | Endecotts Ltd | tamanho 300 µ m, 75 e micro; m, 53 µ m, | |
| BD Plastipak | tamanho: 20 ml | ||
| Microplacas de Ultra-Baixo Anexo | Placas de 6 poços | Corning Costar |
Referências
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Reimpressões e permissões
