Artigo de método

Metodologia para testar agentes de controle e inseticidas contra o café Berry Borer Hypothenemus hampei

DOI:

10.3791/63694

⸱

23 de março de 2022

 ,  ,  , 
1Department of Entomology, National Coffee Research Center

Neste artigo

Resumo

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Foi desenvolvido um método utilizando frutas verdes de café (GFs) para testar a toxicidade de inseticidas contra o borer de café (CBB). Inseticidas ou substâncias tóxicas foram aplicadas a GFs desinfetados antes ou depois da infestação da CBB. Foram avaliadas a mortalidade, a repelência e a capacidade reprodutiva dos insetos, além de outros parâmetros.

Resumo

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Antes de recomendar inseticidas para tratar o borer de café (CBB) Hypothenemus hampei, é valioso saber a mortalidade e repelência desses inseticidas contra insetos adultos ou seu impacto na produção reprodutiva. No entanto, os métodos disponíveis atualmente avaliam apenas a mortalidade adulta, limitando a seleção de novos inseticidas com um modo de ação diferente. Neste trabalho, foram examinados diferentes métodos experimentais para identificar os diversos efeitos sobre a CBB em condições laboratoriais. Para isso, foram coletadas e desinfetadas frutas de café verde (GFs) por imersão na solução de hipoclorito de sódio seguida de irradiação de luz UV. Paralelamente, os adultos da CBB de uma colônia foram desinfetados pela imersão na solução de hipoclorito de sódio. Para avaliar a proteção das frutas (pré-infestação), as frutas foram colocadas em caixas plásticas, e os inseticidas foram aplicados. Em seguida, os adultos da CBB foram liberados a uma taxa de dois CBBs por GF. Os GFs foram deixados em condições controladas para avaliar a infestação e a sobrevida da CBB após 1, 7, 15 e 21 dias. Para avaliar a eficácia do inseticida após a infestação do CBB (pós-infestação), os adultos da CBB foram liberados para os GFs em uma razão de 2:1 para 3h a 21 °C. Frutas infestadas que mostram adultos da CBB com abdômen parcialmente expostos foram selecionadas e colocadas em racks de 96 poços, e os CBBs chatos nas frutas foram tratados diretamente. Após 20 dias, as frutas foram dissecadas, e as etapas biológicas da CBB dentro de cada fruta foram registradas. Os GFs serviram como substratos que imitam condições naturais para avaliar inseticidas tóxicos, químicos e biológicos contra o CBB.

Introdução

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

O borer de café (CBB), Hypothenemus hampei, foi detectado pela primeira vez em 1988 na Colômbia e desde então tornou-se a espécie de praga mais importante da cultura do café. As fêmeas da CBB deixam o fruto natal já fertilizado, buscando novos frutos guiados pelos produtos químicos voláteis que emitem 1,2. Um ciclo completo é cumprido dentro de 23 dias3 a uma temperatura de 25 °C. O ciclo começa com a fêmea fundadora penetrando na semente e colocando ovos no endosperm de frutas. As larvas fechadas comem a semente. Se os frutos forem dissecados neste momento, seria possível observar tanto a fêmea fundadora quanto sua prole. Após 14 dias, as larvas se tornam pupas-geralmente, o estágio pupae dura 5 dias. Na fase adulta, as fêmeas copulam com seus irmãos, e as fêmeas recém-fertilizadas voam para longe das frutas danificadas em busca de novas frutas de café para iniciar um novo ciclo4.

Tanto o processo de penetração quanto o resultado da alimentação larval prejudicam a semente do café, diminuindo a qualidade da bebida do café e reduzindo significativamente a receita; maiores que 5% de infestação em plantações de café é geralmente considerado o limiar econômico.

O controle da CBB baseia-se em uma estratégia integrada de manejo de pragas (IPM), incluindo controle cultural e práticas agronômicas, agentes biológicos naturais e o uso de inseticidas químicos, que requer condições de segurança e aplicação oportuna4.

Para avaliar novos inseticidas para o controle da CBB, são necessárias metodologias de baixo custo que permitam a obtenção de resultados rápidos. Tanto procedimentos laboratoriais quanto de campo estão atualmente em uso, incluindo dietas artificiais contendo café em que os inseticidas são incorporados 5,6, ou pulverização dos inseticidas no café pergaminho seco 7,8,9. Além disso, foram relatados experimentos realizados no campo utilizando galhos de cafeicultos cobertos com mangas entomológicas, 10,11; no entanto, esses métodos requerem trabalho intenso e longos períodos de avaliação.

Uma condição que se assemelha às condições naturais do campo, que também é rápida e barata, é o uso de frutas de café verdes ou maduras. No entanto, essas frutas devem ser mantidas em condições adequadas para o desenvolvimento da CBB, evitando alterações e contaminantes por microrganismos para manter sua qualidade e propriedades. Para isso, foram utilizados diferentes desinfetantes, bem como procedimentos envolvendo calor e radiação 7,9,12,13,14,15,16.

Além disso, os métodos de avaliação de inseticidas em relação à CBB exigem simulações de fêmeas adultas voando em busca de frutas ou penetrando nessas frutas17,18. Para isso, foram realizadas infestações artificiais de frutas no campo 8,11,19, embora esse processo seja intensivo em mão-de-obra e dependa das condições ambientais.

Aqui, descrevemos uma metodologia padronizada para avaliação de produtos que podem ter diferentes efeitos sobre a CBB em condições ambientais controladas que se assemelham às condições do campo.

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Protocolo

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

NOTA: Este protocolo aborda diferentes métodos para identificar diferentes efeitos sobre a CBB em condições laboratoriais.

1. Coleta de frutas

  1. Escolha GFs com uma idade de desenvolvimento de ~120-150 dias depois de florescer de árvores em uma plantação de café no início da manhã.

2. Desinfecção de frutas20

  1. Leve cerca de 300 GFs para o laboratório. Selecione GFs uniformemente dimensionados e saudáveis e retire os peduncles.
  2. Mergulhe os GFs em uma solução de sabão (2 mL de sabão líquido de lavagem de louça em 998 mL de água da torneira), seguido de esfregar para lavar os GFs. Em seguida, enxágue as frutas com água, trocando a água três vezes.
  3. Mergulhe os GFs em solução de hipoclorito de sódio de 0,5% (100 mL em 900 mL de água da torneira) e mexa em um agitador a 110 rpm por 15 min. Em seguida, enxágue os GFs com água mexendo em um agitador e trocando a água três vezes, a cada 10 minutos.
  4. Seque os GFs com toalhas de papel estéreis.
  5. Coloque os GFs em bandejas (33 cm x 25 cm x 2 cm) e irradie-os por 15 minutos, colocando os GFs a uma distância de 55 cm da fonte UV dentro de uma estação de fluxo horizontal laminar habilitada para UV.
  6. Durante o período de 15 minutos, a cada 5 minutos, mova os GFs para garantir a irradiação de toda a fruta.

3. Desinfecção de insetos21

  1. Use insetos CBB recém-emergido (no mesmo dia) para configurar os bioensagratos.
  2. Mergulhe os CBBs em 0,5% de solução de hipoclorito de sódio, agitando-os lentamente com uma escova por 10 minutos.
  3. Filtre os CBBs através de um pano de musselina e lave-os três vezes com água destilada estéril.
  4. Remova o excesso de água com toalhas de papel estéreis.

4. Avaliação de um produto com efeito protetor sobre as frutas (pré-infestação) (Figura 1)

  1. Use um grupo de GFs por unidade experimental. Geralmente, um grupo de 30 GFs são usados por unidade experimental.
  2. Coloque os GFs em caixas plásticas (unidade experimental).
  3. Aplique o produto de teste nas diferentes concentrações para avaliação. Realize a aplicação com uma unidade de pulverizador portátil. Aqui foram testadas emulsão alcaloides de 5% e 6%.
  4. Como controle, pulverize um grupo de GFs com água.
  5. Utilize pelo menos três repetições (unidade experimental) por tratamento, pulverizando uma após a outra.
  6. Em um capô estéril, solte dois adultos CBB por GFs (um total de 60 CBBs são introduzidos nas caixas plásticas). Depois de 30 min, cubra as caixas.
  7. Deixe as caixas plásticas com os GFs infestados em uma sala ou incubadora em condições controladas (escuras, 25 ± 2 °C, e umidade relativa 71% ± 5%).
  8. Após 1, 7, 15 e 21 dias, conte o número de frutas borer e insetos vivos e mortos fora das frutas em cada caixa.
  9. Em 20 dias pós-infestação, disseca cada GF sob um estereótipo, ampliação 10x.
  10. Conte o número de sementes saudáveis ou sementes danificadas pelos insetos em cada fruta.
  11. Conte os diferentes estágios biológicos da CBB22 observados e conte o número de insetos mortos em cada semente para determinar a mortalidade de insetos por unidade experimental.

5. Avaliação do efeito de um produto após a infestação da CBB (pós-infestação) (Figura 3)

  1. Use grupos de 200 frutas por tratamento.
  2. No capô asteril, solte adultos CBB (proporção 2:1 de adultos CBB para GFs) para os GFs anteriormente desinfetados, permitindo que a infestação prossiga por 3h a 21 °C.
  3. Examine os GFs. Após 3h, a maioria deve estar infestada, com o abdômen dos CBBs ainda exposto (posição A20), como mostrado na Figura 2.
  4. Selecione 46 GFs infestados (posição A) e coloque-os em racks de plástico de 96 poços (unidade experimental). Os frutos devem permanecer nesta posição para que o tratamento possa ser pulverizado diretamente na CBB perfurando a fruta.
  5. Pulverizar pelo menos três vezes (três racks) por tratamento, um após o outro, cobrindo os racks após 30 min.
  6. Deixe os racks com os GFs infestados em uma sala ou incubadora em condições controladas (escuro, 25 ± 2 °C, e umidade relativa 71% ± 5%).
  7. Após 20 dias, disseca os GFs sob um estereómico a 10x de ampliação.
  8. Conte o número de sementes saudáveis ou sementes danificadas pelos insetos em cada fruta.
  9. Conte os diferentes estágios biológicos da CBB22 e o número de insetos mortos em cada semente para determinar a mortalidade de insetos por unidade experimental.

6. Avaliação de um produto com efeito dissuasivo na CBB

  1. Siga os passos 4.1-4.6 delineados para avaliar um produto com efeito protetor sobre as frutas.
  2. Depois de liberar os adultos da CBB nas caixas plásticas, conte o número de CBBs que voam para longe das caixas e o número que infesta os GFs. Em seguida, siga os passos 4.7-4.11.
  3. Siga os passos 5.1-5.5 delineados para avaliação do produto após a infestação da CBB.
  4. Após pulverizar cada tratamento nos insetos na posição A, conte o número de CBBs que saíram do GF e/ou voaram para longe do GF. Em seguida, siga os passos 5.6-5.9.

7. Análise estatística

NOTA: As variáveis de resposta são percentuais de mortalidade ao longo do tempo e o percentual de sementes de café saudáveis não infestadas.

  1. Estime o desvio médio e padrão de cada variável de resposta para cada tratamento.
  2. Realize a análise de variância para cada variável de resposta com um modelo para um design completamente randomizado.
    NOTA: O teste de comparação de 5% de Dunnett é realizado para comparar os tratamentos com o controle absoluto (controle de água).
  3. Quando os tratamentos forem significativamente diferentes do controle absoluto, use um teste de diferença 5% menos significativa (LSD) para comparar os tratamentos.
  4. Avaliar o poder do teste; se for superior a 85%, os pressupostos de normalidade e homogeneidade das variâncias são atendidos.

figure-protocol-1
Figura 1: Procedimento para avaliação dos efeitos de pré-infestação de inseticidas na CBB. Etapas para avaliar os efeitos de pré-infestação de inseticidas no Hypothenemus hampei (CBB) utilizando frutas verdes (GFs). (A) Seleção de frutas. (B) Pulverização dos inseticidas nas frutas do café. (C) Infestação de frutas de café cbb a uma proporção de 2:1 CBB por GF. (D) Frutas infestadas. (E) Incubação das frutas em condições controladas. (F) Dissecção de frutas. (G) Contando a população da CBB dentro das sementes. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

figure-protocol-2
Figura 2: Processar a infestação da CBB das frutas do café. As frutas infestadas contêm adultos CBB com abdômen parcialmente exposto (posição A). Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

figure-protocol-3
Figura 3: Procedimento para avaliação dos efeitos posinfestation dos inseticidas na CBB. Etapas para avaliar os efeitos pós-infestação de inseticidas no CBB utilizando GFs. (A) Seleção de frutas. (B) Infestação das frutas com CBB em uma proporção de 2:1 CBB por GF. (C) Seleção de frutas infestadas. (D) Pulverização do inseticida nas frutas. (E) Incubação das frutas. (F) Dissecção de frutas. (G) Contando a população da CBB. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Resultados

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Os resultados mostraram que as fêmeas da CBB reconheceram os frutos e, dependendo das características da superfície da fruta e dos odores emitidos, as fêmeas da CBB começaram a penetrar ou dar os frutos dentro de 3h a 21 °C.

O efeito de um inseticida na CBB quando aplicado às frutas do café (procedimento de pré-infestação) após 24h e ao longo do tempo é mostrado na Figura 4. Os dois inseticidas (emulsão alcaloide a 5% e 6%) causaram alta mortalidade por insetos no...

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Discussão

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Neste protocolo, a desinfecção dos frutos, bem como dos insetos, são passos críticos. Quando as frutas do campo são utilizadas em laboratório, elas frequentemente apresentam alta contaminação e desidratação, uma vez que microrganismos e ácaros estão presentes na epiderme 7,15,16. Portanto, o uso de frutas ou insetos que não são desinfetados causará a morte de insetos devido à contaminação causada por microrganismos, como bactéri...

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Divulgações

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Nenhum dos autores tem conflitos de interesse para declarar.

Agradecimentos

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Os autores agradecem à Federação Nacional dos Cafeicultores da Colômbia, aos assistentes do Departamento de Entomologia (Diana Marcela Giraldo, Gloria Patricia Naranjo), à Estação de Experimentos Naranjal e a Jhon Félix Trejos.

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Copo com bico, forma baixa 500mL MARCA PP
Shaker de BancadaNew Brunswick Scientific Innova 4000 Incubator Shaker
Sabonete líquido para lavar louça-AXIONColgate-PalmoliveAXION
Hood; Estação de Fluxo Laminar HorizontalTerra Universal Aço revestido a pó, 1930 mm L x 1118 mm P x 1619 mm A, 120 V (https://www.terrauniversal.com/hood-horizontal-laminar-flow-station-9620-64a.html)
Insetos CBBBIOCAFE(http://avispitas.blogspot.com/p/biocafe.html).
Toalhas de papel branco multidobráveisFamilia73551
Unidade de pulverização Preval Preval MerckZ365556-1KThttps://www.sigmaaldrich.com/CO/es/product/sigma/z365556?gclid=Cj0KCQiAweaNBhDEARIsAJ
5hwbfZOy1TWGj6huatFtRQt
AzOyHe5-oBiKnOUK2T1exuuk
WwJLdvxkvsaAjoYEALw_wcB
Racks reversíveis 96-Wellheathrowscientific HEA2345Ahttps://www.heathrowscientific.com/reversible-racks-96-well-i-hea2345a
lâminas de bisturi N 11MerckS2771-100EA
Bisturi lida com N3MerckS2896-1EA
Hipoclorito de SódioA empresaclorox Clorox
Microscópio EstéreoZeissStemi 508 https://www.zeiss.com/microscopy/int/products/stereo-zoom-microscopes/stemi-508.html
BR87826

Referências

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Mendesil, E., et al. Semiochemicals used in host location by the coffee berry borer, Hypothenemus hampei. Journal of Chemical Ecology. 35 (8), 944-950 (2009).
  2. Jaramillo, J., et al. Coffee berry borer joins bark beetles in coffee klatch. PLoS ONE. 8 (9), 74277(2013).
  3. Giraldo-Jaramillo, M., Garcia, A. G., Parra, J. R. Biology, thermal requirements, and estimation of the number of generations of Hypothenemus hampei (Ferrari, 1867) (Coleoptera: Curculionidae) in the state of São Paulo, Brazil. Journal of Economic Entomology. 111 (5), 2192-2200 (2018).
  4. Benavides, P., Góngora, C., Bustillo, A. IPM Program to Control Coffee Berry Borer Hypothenemus hampei, with Emphasis on Highly Pathogenic Mixed Strains of Beauveria bassiana, to Overcome Insecticide Resistance in Colombia. IntechOpen. , (2012).
  5. Martínez, C. P., Echeverri, C., Florez, J. C., Gaitan, A. L., Góngora, C. E. In vitro production of two chitinolytic proteins with an inhibiting effect on the insect coffee berry borer, Hypothenemus hampei (Ferrari) (Coleoptera: Curculionidae) and the fungus Hemileia vastatrix the most limiting pests of coffee crops. AMB Express. 2, 1-11 (2012).
  6. Padilla, B. E., Acuña, Z., Velásquez, C. S., Rubio, G. J. D. Inhibitors of [alpha]-amylases from the coffee berry borer Hypothenemus hampei in different plant species. Revista Colombiana de Entomología. 32 (2), 125-130 (2006).
  7. Alvarez, J. H., Cortina, H. A., Villegas, J. F. Methods to evaluate antibiosis to Hypothenemus hampei Ferrari in coffee under controlled conditions. Cenicafé. 52 (3), 205-214 (2001).
  8. Arcila, A., Duarte, A. F., Villalba, D. A., Benavides, P. New Product in the Integrated Management of the Coffee Berry Borer in Colombia. National Coffee Research Center (Cenicafé). , Available from: https://biblioteca.cenicafe.org/handle/10778/477 (2014).
  9. Jaramillo, J., Montoya, E., Benavides, P., Góngora, C. Beauveria bassiana and Metarhizium anisopliae for the control of coffee brocade in fruits on the ground. Revista Colombiana de Entomología. 41, 95-104 (2015).
  10. Bastidas, A., Velásquez, E., Benavides, P., Bustillo, A., Orozco, C. Evaluation of preformulated Beauveria bassiana (Bálsam) Vuillemin, for the control of the coffee berry borer. Agronomia. 17, 44-61 (2009).
  11. Villalba-Gault, D., Bustillo, A., Chaves Cordoba, B. Evaluation of insecticides for the control of the coffee berry borer in Colombia. Cenicafe. 46, 152-163 (1995).
  12. Bustillo, A. E., Orozco, J., Benavides, P., Portilla, M. Mass production and use of parasitoids for the control of the coffee berry borer in Colombia. Cenicafe. 47 (4), 215-230 (1996).
  13. Celestino, F. N., Pratissoli, D., Machado, L. C., Santos Junior, H. J. G. D., Mardgan, L., Ribeiro, L. V. Adaptation of breeding techniques of the coffee berry borer [Hypothenemus hampei (Ferrari). Coffee Science. 11 (2), 161-168 (2016).
  14. Domínguez, L., Parzanese, M. Ultraviolet light in food preservation. Argentine Foods. 52 (2), 70-76 (2012).
  15. Jaramillo, J., Chabi-Olaye, A., Poehling, H. M., Kamonjo, C., Borgemeister, C. Development of an improved laboratory production technique for the coffee berry borer Hypothenemus hampei, using fresh coffee berries. Entomologia Experimentalis et Applicata. 130 (3), 275-281 (2009).
  16. Pérez, J., Infante, F., Vega, F. E. Does the coffee berry borer (Coleoptera: Scolytidae) have mutualistic fungi. Annals of the Entomological Society of America. 98 (4), 483-490 (2005).
  17. Benavides, P., Gil, P., Góngora, C., Arcila, A. Integrated pest management. Cenicafe. Manual of the Colombian coffee grower: Research and technology for the sustainability of coffee growing. Manizales: FNC: Cenicafé. 3, 179-214 (2013).
  18. Bustillo, P. A review of the coffee berry borer, Hypothenemus hampei (Coleoptera: Curculionidae: Scolytinae), in Colombia. Revista Colombiana de Entomología. 32 (2), 101-116 (2006).
  19. Arcila, A., Benavides, P., Mejia, J. New Chemical Control Alternative for the Integrated Management of the Coffee Berry Borer. National Coffee Research Center (Cenicafé). , Available from: https://biblioteca.cenicafe.org/handle/10778/557 (2015).
  20. Tapias, L., Martinez, C., Benavides, P., Gongora, C. Laboratory method to evaluate the effect of insecticides on the coffee berry borer. Cenicafé. 68 (2), 76-89 (2017).
  21. Bustillo, A. E., Marín, P. How to reactivate the virulence of Beauveria bassiana to control the coffee berry borer. Manejo Integrado de Plagas. 63, (2002).
  22. Constantino, L. M., et al. morphological and genetic aspects of Hypothenemus obscurus and Hypothenemus hampei (Coleoptera: Curculionidae: Scolytinae). Revista Colombiana de Entomología. 37 (2), 173-182 (2011).
  23. Estrela, C., et al. Mechanism of action of sodium hypochlorite. Brazilian Dental Journal. 13 (2), 113-117 (2002).
  24. Diffey, B. L. Solar ultraviolet radiation effects on biological systems. Physics in Medicine and Biology. 36 (3), 299-328 (1991).
  25. BIOCAFE. , Available from: http://avispitas.blogspot.com/p/biocafe.html (2022).
  26. Bustillo, A. E., et al. Integrated Management of the Coffee Berry Borer: Hypothenemus hampei Ferrari in Colombia. , Available from: https://biblioteca.cenicafe.org/hangle/10778/848 (1998).
  27. Portilla, R. Development and evaluation of an artificial diet for the rearing of Hypothenemus hampei. Cenicafé. 50, 24-38 (1999).
  28. Portilla, R. M., Streett, D. A. New techniques for automated mass production of Hypothenemus hampei on the modified Cenibroca artificial diet. Cenicafé. 57, 37-50 (2006).

Acesso restrito. Inicie sessão ou comece um teste para visualizar este conteúdo.

Reimpressões e permissões

Solicitar permissão para reutilizar o texto ou as figuras deste artigo JoVE

Solicitar permissão

Etiquetas

Efic cia de InseticidasFrutos de Caf VerdeMortalidade de InsetosM todo de BioensaioDesinfec o de FrutosTratamento P s infesta oAvalia o de Entomopat genosAvalia o de Danos s SementesResist ncia de Insetos

Artigos relacionados