Quantificação de anticorpos autorreativos em camundongos após encefalomielite autoimune experimental

Resumo

A encefalomielite autoimune experimental (EAE) é um modelo animal de esclerose múltipla (EM), que compartilha com a doença humana uma resposta autoimune humoral robusta. Aqui, relatamos um protocolo ELISA simples e flexível para quantificar autoanticorpos no soro de camundongos imunizados com EAE.

Resumo

A encefalomielite autoimune experimental (EAE) é um modelo de doença que recapitula o distúrbio autoimune esclerose múltipla (EM) em níveis histopatológicos e moleculares. A EAE é induzida pela imunização de animais experimentais por meio de injeção subcutânea de peptídeos curtos de mielina juntamente com adjuvantes específicos para aumentar a resposta imune. Como a contraparte humana, os camundongos EAE desenvolvem lesões desmielinizantes, infiltração de células imunes no sistema nervoso central (SNC), ativação da glia e lesão neuronal. Um corpo consistente de evidências também apóia um papel mecanicista para a disfunção das células B na etiologia da EM e da EAE. As células B podem servir como células apresentadoras de antígenos, bem como uma fonte primária de citocinas pró-inflamatórias e autoanticorpos. Na EAE, os anticorpos são gerados contra os peptídeos de mielina que foram empregados para induzir a doença. Foi demonstrado que esses autoanticorpos mediam a perda de mielina ou a reativação de células T patogênicas no SNC. Este artigo descreve um protocolo eficiente baseado em ELISA para quantificar autoanticorpos no soro de camundongos C57BL/6J imunizados com o peptídeo glicoproteína 35-55 de oligodendrócitos de mielina (MOG35-55). O método proposto serve como uma ferramenta poderosa para investigar a especificidade e a magnitude da resposta humoral aberrante no contexto da desmielinização autoimune.

Introdução

A esclerose múltipla (EM) é uma doença autoimune crônica do sistema nervoso central (SNC) caracterizada por infiltração focal de células imunes no parênquima cerebral, quebra das bainhas de mielina que envolvem os axônios, ativação da glia e perda neuronal¹. Além do papel bem estabelecido das células T patogênicas, várias linhas de evidência destacaram o envolvimento das células B na mediação da resposta autoimune contra o SNC. As células B sofrem expansão clonal no cérebro da EM e anticorpos contra componentes da mielina foram detectados em lesões desmielinizadas ^2,3. A ativação seletiva de células B periféricas no início da doença foi recentemente documentada, sugerindo um papel putativo para esse compartimento de células imunes também no início da doença⁴. O sucesso das terapias de depleção de células B, como anticorpos monoclonais anti-CD20, corrobora ainda mais a conexão mecanicista entre o funcionamento aberrante das células B e a desmielinização autoimune ^5,6. Do ponto de vista molecular, as células B podem contribuir para a doença por meio da apresentação de autoantígenos, secreção de citocinas pró-inflamatórias e produção de anticorpos autorreativos.

Vários modelos animais foram desenvolvidos para recapitular características específicas do fenótipo complexo da EM. Dentre eles, a encefalomielite autoimune experimental (EAE) é o paradigma in vivo mais amplamente utilizado e depende da imunização de animais experimentais com peptídeos curtos derivados de proteínas de mielina, como a glicoproteína de oligodendrócitos de mielina (MOG) e a proteína básica de mielina (MBP)⁷. Animais imunizados com EAE desenvolvem uma patologia desmielinizante que se assemelha à SM em muitos aspectos, incluindo uma resposta humoral robusta contra o peptídeo encefalitogênico⁸. Por esse motivo, os estudos de EAE têm sido fundamentais para dissecar a função das células B e autoanticorpos no contexto da doença. Por exemplo, foi demonstrado que anticorpos específicos para MOG isolados de pacientes com EM podem agravar o curso clínico em modelos de EAE⁹. Notavelmente, o resíduo de prolina na posição 42 em MOG humano mostrou-se crítico para determinar a patogenicidade do autoanticorpo¹⁰. Mais recentemente, descobriu-se que os autoanticorpos específicos para MOG promovem a doença não apenas mediando a perda de mielina, mas também aumentando a reativação de células T autorreativas no SNC¹¹.

Considerando a importância das respostas de anticorpos na autoimunidade do SNC, este artigo apresenta um protocolo baseado em ELISA para medir eficientemente os níveis séricos de anticorpos autorreativos em camundongos C57BL/6J EAE imunizados com o peptídeo MOG35-55. Na primeira parte do protocolo, será descrito o método de coleta de soro por punção intracardíaca. Posteriormente, serão detalhados os procedimentos para configurar o ensaio ELISA e adquirir os dados. Por fim, será discutida a análise e interpretação dos dados.

Protocolo

Todos os procedimentos envolvendo camundongos foram realizados de acordo com as diretrizes experimentais aprovadas pelo Comitê Institucional de Cuidados e Uso de Animais da East Carolina University (IACUC). Camundongos fêmeas C57BL/6J do tipo selvagem entre 8 e 10 semanas de idade foram usados neste estudo. Os animais foram obtidos de uma fonte comercial (ver Tabela de Materiais). A EAE foi induzida após relatórios publicados anteriormente 12,13,14.

1. Coleta de soro

1. Eutanasiar o camundongo experimental por asfixia com CO₂ ou overdose de isoflurano no ponto de tempo necessário (seguindo protocolos aprovados institucionalmente) após induzir EAE via imunização MOG35-55.
   NOTA: O número total de camundongos e os pontos de tempo para a coleta de soro podem variar de acordo com o experimento específico.
2. Depois que a ausência de sinais vitais for confirmada pelo pinçamento do dedo do pé ou da cauda, coloque o camundongo em uma posição de decúbito dorsal em uma bandeja de dissecção e fixe os membros na posição com alfinetes ou fita adesiva. Oriente o corpo do rato para a fonte de luz LED (consulte a Tabela de Materiais) para iluminar o tórax do animal.
3. Pulverize o pelo do camundongo com etanol a 70% e faça uma incisão na linha média de 3-4 cm ao longo do abdômen, da pelve ao xifóide, usando a tesoura dissectorial, tomando cuidado para evitar quaisquer órgãos e vasos importantes (Figura 1A-C). Para facilitar o procedimento, use a pinça para agarrar a pele sobre o processo xifóide.
4. Corte o diafragma lateralmente e, em seguida, corte a caixa torácica anteriormente em ambas as bordas laterais usando a tesoura de mola, parando antes de atingir o esterno na linha média (Figura 1D). Dobre a aba da costela que foi criada sobre a cabeça do mouse para expor o coração (Figura 1E).
   NOTA: Cortar o esterno deve ser evitado, pois isso danificará as principais artérias torácicas adjacentes ao osso e reduzirá o volume de sangue que pode ser coletado.
5. Insira uma agulha de 25 G conectada a uma seringa de 1 mL no ventrículo esquerdo e colete o sangue puxando suavemente o êmbolo para trás (Figura 1F). Para facilitar a punção da agulha, segure suavemente o coração contra uma pinça.
   NOTA: Se o sangue não aparecer imediatamente na seringa, a agulha deve ser girada lentamente e um ângulo diferente deve ser testado. No entanto, esforços devem ser feitos para colocar a agulha corretamente na primeira tentativa para evitar a criação de orifícios desnecessários no coração por onde o sangue pode vazar.
6. Transfira o sangue para um tubo estéril de 1,5 mL e deixe-o coagular por 30 minutos em temperatura ambiente. Remover o coágulo por centrifugação a 2000 × g durante 20 min a 4 °C. Colete o sobrenadante, que representa a fração sérica, e armazene alíquotas de uso único em tubos criogênicos a -80 °C para testes futuros.

2. Ensaio ELISA

1. Ressuspenda o peptídeo MOG35-55 liofilizado (consulte a Tabela de Materiais) em água para obter um estoque de 10 mg / mL. Antes de iniciar o experimento, dilua o estoque para 10 μg / mL em tampão de revestimento (consulte a Tabela de Materiais) e pipete 100 μL / poço da solução final em uma placa de 96 poços. Selar a placa com uma película adesiva para evitar a evaporação e incubar a placa durante a noite a 4 °C.
   NOTA: Pelo menos 2 poços devem ser calculados para cada amostra e 2 poços adicionais também devem ser incluídos para um controle em branco.
2. Paralelamente, revestir o mesmo número de alvéolos com 100 μL/alvéolo de albumina de soro bovino (BSA) dissolvido em tampão de revestimento na concentração de 10 μg/ml. Esses poços adicionais servirão como controles de fundo.
   NOTA: Recomenda-se revestir com BSA os poços de controle, pois os tampões de revestimento e bloqueio têm composições diferentes. Observe que outros peptídeos encefalitogênicos (como PLP139-151 ou MBP84-104) podem ser usados como antígenos irrelevantes em alternativa à BSA.
3. No dia seguinte, lave a placa 3 vezes com 200 μL/poço de solução salina tampão fosfato suplementada com 0,05% de Tween 20 (PBS-T). Em seguida, adicionar 100 μL/poço de uma solução de bloqueio feita de BSA a 3% em PBS (sem Tween 20) e incubar a placa selada por 1 h a 37 °C em um forno de hibridização.
4. Lave a placa 3 vezes com 200 μL/poço de PBS-T. Diluir cada amostra de soro 1:100 em solução de bloqueio e adicionar 100 μL/alvéolo aos alvéolos revestidos com MOG35-55 e BSA. Adicione o mesmo volume de solução de bloqueio aos poços designados como brancos. Incubar a placa selada durante 2 h à temperatura ambiente, com agitação constante (250 rpm).
5. Lave a placa 3 vezes com 200 μL/poço de PBS-T. Dilua o anticorpo secundário conjugado com HRP (1:2000, consulte a Tabela de Materiais) em uma solução feita de 0,2% de BSA em PBS-T e adicione 100 μL/poço a todos os poços. Incubar a placa selada durante 1 h à temperatura ambiente, com agitação constante (250 rpm).
6. Lave a placa 3 vezes com 200 μL/poço de PBS-T. Adicione 100 μL / poço de substrato de 3,3 ', 5,5' tetrametilbenzidina (TMB) (consulte a Tabela de Materiais) a todos os poços e incube no escuro por 1-5 min, monitorando o desenvolvimento de uma cor azul.
   1. Pare a reação adicionando 100 μL / poço de solução de parada (consulte a Tabela de Materiais) e meça a densidade óptica (OD) em cada poço usando um leitor de placas ajustado em um comprimento de onda de 450 nm.
      NOTA: O substrato TMB deve ser equilibrado à temperatura ambiente por 30-60 minutos antes de adicioná-lo aos poços.

3. Análise dos dados

1. Preencha uma planilha do Excel com os valores de OD lidos da placa. Calcule a média dos valores de DO obtidos de poços duplicados (revestidos com MOG35-55 e BSA) para cada amostra.
2. Para cada amostra, subtrair o valor médio dos alvéolos revestidos com BSA do valor dos alvéolos revestidos com MOG35-55. Os valores corrigidos de fundo resultantes serão proporcionais à concentração de anticorpos anti-MOG35-55 nas diferentes amostras de soro.
   NOTA: Os poços em branco devem resultar em valores corrigidos em torno de 0.
3. Aplicar um teste estatístico não paramétrico, como o teste U de Mann-Whitney, para comparar os valores médios de DO entre duas condições experimentais. Inclua pelo menos 3 amostras independentes para cada condição.

Resultados

Para demonstrar a robustez do presente ensaio ELISA, o método foi testado em amostras de soro isoladas de uma coorte de camundongos fêmeas C57BL/6J 20 dias pós-imunização (dpi) com 100 μg de peptídeo MOG35-55 em adjuvante de Freund completo (CFA) seguindo um protocolo de indução EAE validado 12,13,14. Os animais também receberam 400 ng de toxina pertussis nos dias 0 e 2. Amostras de soro de animais simulados imunizados com tudo,...

Discussão

Aqui, um protocolo simples e eficiente baseado em ELISA foi relatado para quantificar com precisão a resposta humoral em um modelo animal relevante de patologia de EM. Este método foi recentemente empregado para descrever o novo papel da proteína ataxina-1 no controle dos níveis séricos de autoanticorpos no paradigma MOG35-55/C57BL6J EAE¹². Nesse sentido, vários fatores devem ser levados em consideração, a fim de obter resultados consistentes e biologicamente significativos com esse método.

Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo

Nome	Empresa	Número de catálogo	Comentários
Seringas de 1 mL	BD Biosciences	309628
tubos de microcentrífuga de 1,5 mL	Fisher	05-408-129
Agulhas de 25 G	BD Biosciences	305122
substrato de 3,3',5,5'-tetrametilbenzidina (TMB)	Thermo Fisher	N301	Armazenar em 4 ° C
Selos adesivos	Thermo Fisher	AB0558
Albumina de soro bovino (BSA)	Sigma	A7906	Armazene em 4 ° C
C57BL/6J camundongos fêmeas	O Laboratório Jackson 000664		Animais entre 8 e 10 semanas de idade devem ser usados para experimentos EAE
Tubos criogênicos	Fisher	10-500-25
Tesoura		Fisher S111022
Tesoura de dissecção	Ferramentas de ciências finas	14082-09
Tampão de revestimento ELISA	BioLegend	421701	Armazene a 4° C
Excel software	Microsoft		Analysis planilha
Fórceps	Fine Science Tools	11152-10
Goat Anti-Mouse IgG, Human ads-HRP	SouthernBiotech	1030-05	Loja em 4 ° C
Fonte de luz LED	Fisher	AMPSILED21
Leitor de microplacas	Fisher	14-377-575
Biologia molecular grau água	Corning	46-000-Cl
Mouse MOG35-55 peptídeo	EZBiolab	cp7203	Armazene a -80 ° C
Pipeta multicanal	Axygen	AP-12-200-P
Noyes tesoura de mola	Ferramentas Fine Science	15011-12
Nunc MaxiSorp Placas de 96 poços	BioLegend	423501
Agitador orbital	Fisher	88-861-023
Forno	VWR	445-0024
Tampão fosfato salino (PBS)	Thermo Centrífuga	Fisher 14190144
	Solução Fisher	75002441
Stop	Thermo Fisher	N600
Tween 20	Bio-Rad	1706531