Name: rodent id methods for accurate records
Uploaded: 2015-07-17T17:24:54.000Z
Duration: 14 min 12 s
Channel: JoVE

1. Татуировка на хвосте
Татуировки на хвосте легко читаются без необходимости брать животное в руки. 
<img alt="Figure 1" src="/files/ftp_upload/10182/10182fig1.jpg"> 
Рисунок 1. Татуировка на хвосте у взрослых мышей
<ol>
	<li>Подготовьте тату-оборудование в соответствии с инструкциями производителя. Потребуется небольшое количество чернил. Черный краситель следует использовать для мышей-альбиносов или крыс, а зеленый краситель – для пигментированных мышей или крыс. </li>
	<li>Подготовьте животных к идентификации. 
	ПРИМЕЧАНИЕ: Чтобы свести к минимуму опасения или стресс, татуировка хвоста должна выполняться в процедурном кабинете, а не в зоне содержания животных.
	<ol>
		<li>Соответствующим образом удерживайте животное для нанесения татуировки, чтобы движения были минимальными. </li>
		<li>Отлученных от груди крыс удерживают с помощью пластиковой чашки с насечкой, при этом край чашки закреплен под болтами на платформе для татуировки, а хвост проходит через выемку. </li>
		<li>Взрослых мышей можно удерживать с помощью ограничителя чашки, при этом хвост туго вытягивается из отверстия, а фланец чашки удерживается на месте с помощью платформы или другого устройства. </li>
		<li>Очистите хвост небольшим количеством разбавленного очистителя тканей, нанесенного тампоном с ватным наконечником. Взрослые крысы обычно имеют накопки и мусор на хвосте, которые необходимо очистить перед нанесением татуировки. Мыльно-водный скраб для хвоста удалит большую часть грязи и мусора. Хорошо просушите хвост, прежде чем продолжить. </li>
		<li>Нанесите тканевое масло на кожу с помощью ватного тампона непосредственно перед нанесением татуировки. Тканевое масло необходимо для минимизации повреждения тканей за счет размягчения кожи и смазки иглой для татуировки. Кроме того, масло растворяет любую грязь, не удаленную в процессе очистки, и предотвращает появление чернил на нетатуированной коже. </li>
	</ol>
	</li>
	<li>Нанесите татуировку.
	<ol>
		<li>Окуните кончик иглы в пигмент при выключенной машинке.</li>
		<li>Поднесите кончик иглы к месту татуировки с помощью пистолета, активируемого ножной педалью. </li>
		<li>Делайте короткие, ровные мазки в одном направлении. Цифры и буквы должны быть вытатуированы таким образом, чтобы они были построены сегментами с минимальными углами и кривыми (когда это возможно). </li>
		<li>Проникните иглой достаточно глубоко в дерму для постоянного отложения пигмента. Изменение звука активированной иглы может помочь различить глубину. </li>
		<li>Подойдите к коже иглой под углом 90o для адекватного осаждения пигмента. </li>
	</ol>
	</li>
	<li>Чистка и уход после татуировки
	<ol>
		<li>Промокните (не вытирайте) готовую татуировку от излишков пигмента бумажным полотенцем. </li>
		<li>Наличие крови на татуировке или бумажном полотенце указывает на то, что татуировка была сделана слишком глубоко, и поэтому вряд ли будет постоянной. </li>
		<li>Укрепите тонкие участки татуировки символов дополнительным пигментом. Символы усилены пигментом, нанесенным параллельно, но не поверх уже нанесенного пигмента. </li>
		<li>Чтобы добавить дополнительный пигмент, опустите кончик иглы в резервуар с красителем через каждые два символа для мышей и каждый символ для крыс. </li>
		<li>Причинами выцветания татуировок являются недостаточное количество пигмента, татуировки, сделанные слишком поверхностно, татуировки, сделанные слишком глубоко, неподходящий угол наклона иглы к коже, использование тупых или крючковатых игл или татуировка, сделанная слишком быстро. </li>
		<li>Тщательно очищайте тату-оборудование после каждого использования в соответствии с инструкциями производителя. </li>
	</ol>
	</li>
</ol>
2. Татуировка пальцев ног новорожденных
Экспериментальные протоколы могут потребовать генотипирования новорожденных уже в первый день, что делает необходимым постоянную идентификацию этих щенков. Использование татуировки на пальцах ног позволяет идентифицировать животных до тех пор, пока они не станут достаточно большими, чтобы их можно было пометить ушами или проколоть уши. 
<img alt="Figure 2" src="/files/ftp_upload/10182/10182fig2.jpg"> 
Рисунок 2. Правильная техника фиксации для нанесения татуировки новорожденной мыши. Ланцет имеет зеленый краситель на кончике. 
<ol>
	<li>Сдерживайте отлученных от груди щенков.
	<ol>
		<li>Положите новорожденного в руку на марлевую салфетку. Расположите ступню между большим пальцем и сгибом указательного пальца, чтобы обнажить выбранный палец ноги или пальцы ног для нанесения татуировки. </li>
		<li>Держите стопу близко к пальцам ног так, чтобы носок имел за собой твердую поверхность, предотвращающую его изгиб. </li>
		<li>Не перекручивайте ногу при постановке стопы. Пристегнутые щенки могут покачиваться, но не обязательно слышать вокализацию. </li>
	</ol>
	</li>
	<li>Подготовьте оборудование.
	<ol>
		<li>Выберите ланцет для животных Goldenrod диаметром 4,5 мм. </li>
		<li>Нанесите небольшое пятнышко зеленой пасты для татуировки на непористую поверхность; Хорошо подходит алюминиевая фольга. </li>
		<li>Окуните в пасту для татуировки только кончик ланцета. </li>
		<li>Используйте только небольшое количество пасты. </li>
	</ol>
	</li>
	<li>Нанесите татуировку.
	<ol>
		<li>Проткните нужный палец лапы ланцетом Goldenrod в соответствии с идентификационным кодом. </li>
		<li>Проколите кожу, чтобы ввести пасту в кожу, оставив след. </li>
		<li>Проткните одно и то же место три раза, чтобы обеспечить правильное проникновение. </li>
		<li>Избегайте настолько глубоких протыканий, чтобы палец ноги не кровоточил; Это может привести к более тусклой татуировке. </li>
	</ol>
	</li>
	<li>Чистка и уход после татуировки
	<ol>
		<li>Аккуратно промокните пятно впитывающей салфеткой/полотенцем, чтобы удалить излишки пасты. </li>
		<li>Не пытайтесь смыть излишки пасты со стопы или тела. </li>
		<li>Верните животное в клетку. </li>
		<li>Когда кормящим щенкам делают татуировку, желательно также сделать татуировку на матери. Это может предотвратить чрезмерную реакцию на пасту на щенках, что может привести к чрезмерному уходу за татуировкой. </li>
		<li>Используйте новый ланцет для каждого помета. </li>
		<li>Татуировки должны быть верифицированы на следующий день после процедуры. Повторите татуировку, если точки тусклые или не видны. Если точки видны на следующий день после нанесения татуировки, они должны оставаться видимыми в течение всей жизни животного. </li>
	</ol>
	</li>
</ol>
3. Татуировка на пальцах ног взрослых крыс и мышей
Когда на выводке новорожденных делается татуировка, рекомендуется сделать татуировку и матери, чтобы паста на ее детенышах не была для нее чуждой. 
<ol>
	<li>Усмирение животного.
	<ol>
		<li>Удерживайте животное с помощью пластикового конуса или ограничителя из плексигласа, который обеспечивает доступ к задним лапам. </li>
		<li>Вытяните ногу из удерживающего устройства. </li>
		<li>Расположите ногу между большим пальцем и сгибом указательного пальца, чтобы обнажить выбранный палец или пальцы ног для нанесения татуировки</li>
		<li>Держите стопу близко к пальцам ног так, чтобы за пальцем ноги была твердая поверхность, предотвращающая сгибание пальца ноги. </li>
		<li>Не перекручивайте ногу при постановке стопы. Взрослые, которых сдерживают, могут попытаться отвести ногу. </li>
	</ol>
	</li>
	<li>Подготовьте оборудование.
	<ol>
		<li>Выберите ланцет для животных Goldenrod 5 мм. </li>
		<li>Нанесите небольшое пятнышко зеленой пасты для татуировки на непористую поверхность; Хорошо подходит алюминиевая фольга. </li>
		<li>Окуните в пасту для татуировки только кончик ланцета. </li>
		<li>Используйте только небольшое количество пасты. </li>
	</ol>
	</li>
	<li>Нанесите татуировку.
	<ol>
		<li>Проткните нужный палец лапы ланцетом Goldenrod в соответствии с идентификационным кодом. </li>
		<li>Проколите кожу, чтобы ввести пасту в кожу, оставив след. </li>
		<li>Проткните одно и то же место три раза, чтобы обеспечить правильное проникновение. </li>
		<li>Избегайте настолько глубоких протыканий, чтобы палец ноги не кровоточил; Это может привести к более тусклой татуировке. </li>
	</ol>
	</li>
	<li>Чистка и уход после татуировки
	<ol>
		<li>Аккуратно промокните пятно впитывающей салфеткой/полотенцем, чтобы удалить излишки пасты. </li>
		<li>Не пытайтесь смыть излишки пасты со стопы или тела. </li>
		<li>Верните животное в клетку. </li>
		<li>Используйте новый ланцет для каждого животного. </li>
		<li>Татуировки должны быть верифицированы на следующий день после процедуры. Повторите татуировку, если точки тусклые или не видны. Если точки видны на следующий день после нанесения татуировки, они должны оставаться видимыми в течение всей жизни животного. </li>
	</ol>
	</li>
</ol>
4. Микрочипирование
Вживление RFID-чипа является широко используемым методом идентификации животных. 
<ol>
	<li>Загрузите микрочип в аппликатор или выберите предварительно загруженный шприц. </li>
	<li>Удерживайте животное с помощью удерживающей трубки из плексигласа, которая позволяет захватывать кожу через плечи. </li>
	<li>Наденьте тент на кожу, создав карман. </li>
	<li>Поместите иглу через кожу, скос вверх и параллельно позвоночнику, и направьте его в сторону хвоста. </li>
	<li>Извлеките микрочип подкожно. </li>
	<li>Извлеките иглу и сожмите кожу в месте инъекции. Это предотвращает вывод микрочипа за иглой из кожи. Продолжайте оказывать давление, чтобы обеспечить гемостаз при любом кожном кровотечении. </li>
	<li>Извлеките животное из удерживающего устройства и отсканируйте чип для подтверждения идентификационного кода. </li>
</ol>
<img alt="Figure 3" src="/files/ftp_upload/10182/10182fig3.jpg"> 
Рисунок 3. Размещение микрочипов у взрослых крыс. 
5. Временная идентификация мышей
Для временной идентификации мышей можно использовать нетоксичные красители и маркеры животных. 
<ol>
	<li>Задержите мышь так, чтобы область между лопатками была доступна для отметин на шерсти. </li>
	<li>Нанесите маркер, пятно или полоску краски на шерсть в этой области. Эта область используется для того, чтобы животное не могло удалить метку во время груминга. </li>
	<li>Периодически проверяйте маркировку, если вы используете ее в качестве единственного идентификатора более нескольких дней. </li>
	<li>Хвост также можно использовать в течение короткого времени. Тем не менее, животное может удалить с него отметину во время груминга. </li>
</ol>
6. Временная идентификация крыс
<ol>
	<li>Задержите крысу так, чтобы место нанесения красителя или маркера было легко доступно. В некоторых случаях, когда нужна только полоска или точка, животное не нужно будет удерживать, а позволит свободно передвигаться по клетке. </li>
	<li>Обычно выполняется ручное удержание путем захвата хвоста и удержания его в напряженном положении во время проведения идентификации. </li>
	<li>Капризным животным можно проводить временную иммобилизацию с помощью ингаляционных анестетиков. </li>
	<li>Периодически проверяйте маркировку, если используете этот метод в качестве единственного идентификатора более нескольких дней. </li>
</ol>

При выборе подходящего метода идентификации необходимо учитывать множество факторов. Каждый метод имеет преимущества и недостатки, которые необходимо учитывать применительно к экспериментальным потребностям. В то время как затраты должны быть взвешены наряду с другими факторами, простота техники и уровень дискомфорта для животных должны быть основными соображениями. 4,5

Идентификация грызунов ii

Источник: Кей Стюарт, RVT, RLATG, CMAR; Валери А. Шредер, RVT, RLATG. Университет Нотр-Дам, Индиана
Учет животных должен вестись точно, чтобы обеспечить правильный сбор данных. Записи варьируются от хранения информации на карточках клеток до наличия подробной базы данных со всей соответствующей информацией о каждом животном. Основным компонентом делопроизводства является индивидуальная идентификация подопытных животных. Существует множество методов, подходящих для идентификации мышей и крыс. В этом видео описываются процедурные методы нанесения татуировки, установки микрочипов и методы временной идентификации, а также исследуются преимущества каждого из них.

Идентификация грызунов II

Source: Kay Stewart, RVT, RLATG, CMAR; Valerie A. Schroeder, RVT, RLATG. University of Notre Dame, IN
Animal records must be accurately maintained to ...

Education

JoVE Science Education

Basic Biology

Основы биологии

Lab Animal Research

Исследования на лабораторных животных

Rodents

Грызуны

Rodent Identification II

rodent id methods for accurate records

Accurate rodent identification supports reliable animal records and data collection. Research animal records may include simple cage cards or a detailed database with full information on each animal. Individual identification is the key part of keeping those records correct.

Mice and rats can be identified by several methods. These include tattooing, microchip placement, and temporary identification methods. Each method serves a different need in research animal management.

The procedure also compares the benefits of each identification option. Tattooing and microchips provide lasting identification, while temporary marks are useful when short-term labeling is needed. Choosing the right method helps match the recordkeeping system to the animal and the study.

Rodent ID Methods for Accurate Records

rodent handling and restraint techniques

Minimizing Stress in Mouse and Rat Handling

Mouse and rat handling can create stress, even when the procedure is brief. Cage changing and other noninvasive tasks can raise heart rate, blood pressure, and serum corticosterone levels. These changes may last for several hours. Restraint for injections and blood withdrawal can also affect the animals and may influence scientific data. Because of this, proper training is needed when working with mice and rats. The goal is to reduce the effect of handling on the animals as much as possible. <br...

basic care procedures

Caring for Research Mice and Rats

Research mice and rats need careful housing, feeding, and handling. These animals make up over 90% of the animals used for biomedical research, so their care can strongly affect experiment results. Both immunocompetent animals, which have a normal immune response, and immunocompromised animals need proper support during studies. Some research animals have weakened immune systems and need extra steps to stay healthy. Common examples include naturally occurring immunocompromised mice and mice...

fundamentals of breeding and weaning

Mouse and Rat Breeding Methods

Mouse and rat breeding methods are used in biomedical research to supply animals for laboratory studies. Many research facilities buy mice from commercial breeders, but some also breed mice and rats in-house. In-house breeding can reduce costs and give researchers more options for their studies. Breeding animals in the facility also lets researchers manage genetics and timing. They can plan pregnancies to match research needs and work with embryos and newborns when needed. Mice and rats can be...

rodent identification i

Mice and Rats: Ear Tags and Punch Codes

Proper identification of laboratory mice and rats is important in biomedical research. The right animal must be used for each procedure and for data collection. Clear identification helps keep research records accurate and reliable. This page focuses on permanent identification methods for mice and rats. These methods include ear tags, ear punch codes, microchip implantation, tail tattoos for adult mice, and toe tattoos for neonates. Temporary methods such as dyes and marking pens can also be...

rodent identification ii

Accurate rodent identification supports reliable animal records and data collection. Research animal records may include simple cage cards or a detailed database with full information on each animal. Individual identification is the key part of keeping those records correct. Mice and rats can be identified by several methods. These include tattooing, microchip placement, and temporary identification methods. Each method serves a different need in research animal management. The procedure also...

compound administration i

Rodent Injection Routes and Restraint

Rodent injection routes and restraint methods are key parts of compound administration in mice and rats. When a substance must be injected into an animal, the delivery route and the amount of compound must be chosen with care. The right choice helps match the dose to the protocol. Several factors guide the route of administration. These include the pH of the solution, the volume needed for the desired dose, and the viscosity of the solution. Viscosity means how thick or resistant to flow a...

compound administration ii

Choosing the Right Route for Compound Delivery

Compound delivery is a key part of many animal studies. The route used to give the compound can change how it is absorbed. Careful planning helps make sure the compound is delivered correctly. The substance itself also matters when a route is chosen. Its pH, viscosity, and concentration can all affect which method is best. These properties help guide the choice of administration route in a study.

compound administration iii

Specialized Injection Routes in Mice and Rats

Specialized injection routes in mice and rats are sometimes used when standard compound administration methods are not enough. Some study protocols call for less common routes such as intradermal, intranasal, and intracranial injections. These methods are used in laboratory animals and require careful technique. Intradermal injections place a compound into the skin. Intranasal injections deliver a compound through the nose. Intracranial injections are given into the brain. Because these...

compound administration iv

Specialized Injection Routes in Rodents

Specialized injection routes in laboratory mice and rats include intracardiac, footpad, and retro-orbital administration. These methods are used when a protocol calls for a route that is less common than standard compound delivery methods. Each route requires specialized training to perform correctly. Intracardiac injections deliver into the heart, footpad injections target the paw area, and retro-orbital injections are given around the eye region. Because these procedures are more technical,...

blood withdrawal i

Rodent Blood Collection Methods

Blood collection in mice and rats is a common part of research studies. The method used depends on how much blood is needed, how often samples must be taken, the animal's health, and the technician's skill level. This topic includes three blood withdrawal methods: retro-orbital sinus bleeds, initial tail snip bleeds, and intracardiac bleeds. Each method requires general anesthesia, which means the animal is made unconscious before the procedure begins.

blood withdrawal ii

Rodent Blood Sampling Methods

Blood collection from mice and rats can be done with several methods. The choice depends on the restraint needed, how invasive the procedure is, and whether a general anesthetic is required. These factors help determine which method is best for a given analysis. One older method uses the retro-orbital sinus cavity, which is located behind the eye. This approach has been debated because it may cause tissue damage or even blindness. For that reason, facial vein and submandibular vein bleeding...

anesthesia induction and maintenance

Laboratory Anesthesia and Pain Control

Laboratory anesthesia and pain control are important parts of veterinary care for research animals. The Guide for the Care and Use of Laboratory Animals says that pain assessment and pain relief must be part of that care. Anesthesia means the loss of feeling or sensation.

considerations for rodent surgery 

Aseptic Steps in Rodent Survival Surgery

Aseptic technique is essential for rodent survival surgery. It is used to keep the surgical site as clean as possible and to reduce contamination during the procedure. This approach includes patient preparation, surgeon preparation, and sterilization of instruments and other supplies. It also depends on a clean, controlled environment. Careful planning before surgery helps set up these steps for success. During the operation, animals need close monitoring. After the surgery, postoperative...

diagnostic necropsy and tissue harvest

Rat Necropsy for Tissue Collection

Rat necropsy is a key step for collecting organs and tissues at the end of many animal studies. These final samples are used for data collection time points and later testing. Because the samples are used for analysis, the way they are taken can affect sample quality. Careful collection methods help preserve the organs and tissues for testing. The method of euthanasia, or the procedure used to humanely end the animal's life, can also affect sample quality. This article outlines proper necropsy...

sterile tissue harvest

Aseptic Organ Collection in Rats and Mice

Aseptic organ collection in rats and mice is used to keep harvested tissues free from contamination. The process is important when tissues will be used for cell and tissue cultures. It also supports later protein and RNA analysis, as well as metabolic profiling of tissues. The transcript connects this work to the 3 R's, which were introduced in 1959 by W.M.S. Russell and R.L. Burch in The Principles of Humane Experimental Technique. The 3 R's are replacement, reduction, and refinement in the...

early intervention and pain management

Раннее вмешательство и управление болью

Все процедуры, связанные с животными, описанные здесь, должны проводиться в соответствии с институциональными этимическими рекомендациями по работе с животными и утверждены IACUC. Все процедуры должны следовать принципам 3R—Замена, Сокращение и Усовершенствование—и должны выполняться обученным персоналом.  Мониторинг животных на наличие признаков боли и дистресса Распознавание ранних признаков боли важно для этичных исследований на животных. Животные систематически мониторируются с...

humane euthanasia and confirmation of death in rodents

Гуманная эвтаназия и подтверждение смерти у грызунов

Все процедуры с животными, описанные здесь, должны проводиться в соответствии с институциональными этикическими рекомендациями по работе с животными и одобрены IACUC. Все процедуры должны следовать принципам 3R — Замены, Снижения и Усовершенствования — и должны выполняться квалифицированным персоналом. Гуманные конечные точки у грызунов — это предварительно определенные клинические, поведенческие или физиологические показатели, которые сигнализируют о том, что животное испытывает значительную...

habituation and positive reinforcement for rodent handling

Привыкание и положительное подкрепление для работы с грызунами

Все процедуры с животными, описанные здесь, должны проводиться в соответствии с институциональными этимическими руководящими принципами по работе с животными и должны быть одобрены IACUC. Все процедуры должны соответствовать принципам 3R—Замена, Снижение и Усовершенствование—и должны выполняться обученным персоналом. Привыкание и положительное подкрепление являются стратегиями усовершенствования, которые помогают уменьшить стресс при рутинной обработке и экспериментальных процедурах у грызунов.

breeding management in rodent studies

Управление разведением в исследованиях на грызунах

Все процедуры с животными, описанные здесь, должны проводиться в соответствии с институциональными этимическими рекомендациями по работе с животными и должны быть одобрены IACUC. Все процедуры должны следовать принципам 3R – Замена, Сокращение и Усовершенствование – и должны выполняться обученным персоналом. Управление разведением поддерживает 3R, минимизируя ненужное производство животных и обеспечивая, чтобы было получено только то количество животных, которое требуется для исследования.

transport and acclimatization of rodents for research

Перевозка и акклиматизация грызунов для исследований

Все процедуры с животными, описанные здесь, должны проводиться в соответствии с институциональными этимическими рекомендациями по работе с животными и утверждаться IACUC. Все процедуры должны следовать принципам 3R—Замена, Снижение и Улучшение—и должны выполняться обученным персоналом. Перевозка грызунов для исследований требует процедур, которые минимизировали стресс и поддерживали благополучие животных во время перемещения, чтобы минимизировать влияние на результаты экспериментов.

environmental enrichment for rodents

Обогащение среды для грызунов

Все описанные здесь процедуры с животными должны проводиться в соответствии с институциональными руководящими принципами по этике в отношении животных и должны быть одобрены IACUC. Все процедуры должны соответствовать принципам 3R—Замена, Сокращение и Усовершенствование—и должны выполняться обученным персоналом. Обогащение окружающей среды включает объекты и практики, которые способствуют естественному поведению, улучшают психологическое благополучие и способствуют повышению комфорта...

rodents

Learn how mice and rats are identified for research records using tattooing, microchips, and temporary marks, and see why accurate ID supports data collection.

Rodent ID Methods for Accurate Records

Description

Transcript