Name: rodent injection routes and restraint
Uploaded: 2015-07-24T15:42:00.000Z
Duration: 15 min 5 s
Channel: JoVE

K12 Standards

new-york-state-science-learning-standards

New York State Science Learning Standards

High School

Life Science

Structure and Function

HS-LS1-2.

Compound Administration I

1. Deri altı enjeksiyon
<ol>
	<li>Fareyi tek elle tutma yoluyla manuel olarak kısıtlayın. Kavrandıktan sonra, farenin bir masa veya başka bir güvenli yüzey üzerinde durmasına izin verin. Farenin gövdesine baskı uygulamaktan kaçındığınızdan emin olun. </li>
	<li>Farenin solunumu tehlikeye atabilecek aşırı ağırlığını önlemek için elinizin topuğunu masanın üzerine koyun. Fareler ayrıca ticari bir cihazda da kısıtlanabilir. Sıçanlar için ticari bir kısıtlama cihazı kullanmak en iyisidir. </li>
	<li>Cildi kavrayın ve bir cilt çadırı oluşturmak için yukarı doğru çekin. Bir kısıtlama cihazı kullanılıyorsa, cildi üstteki yuvadan kavramak için forseps gerekebilir. </li>
	<li>İğneyi omurgaya paralel olarak, çadırın deri kıvrımının tabanında baştan uzağa doğru yerleştirin. Farenin kafatası kemiği çok ince olduğundan, kafatasına delinme olasılığını önlemek için iğneyi kafadan uzağa yönlendirin. Sıçanlar başlarını geri çekme eğilimindedir, bu da enjeksiyonun boyun kaslarına yerleştirilmesine neden olabilir. </li>
	<li>Cilde yumuşak bir kayma sağlamak için iğne eğimini yukarı doğru yerleştirin. İğnenin cildi kavrayan parmakların altına sokulduğuna dikkat edin. Biyolojik olarak tehlikeli maddeleri enjekte ederken güvenliği artırmak için cilt forseps ile kavranır ve böylece iğne batması yaralanmaları olasılığı ortadan kaldırılır. </li>
	<li>Doğru yerleştirilip yerleştirilmediğini kontrol etmek için pistonu geri çekin. Şırınganın içine hava çekilirse, iğnenin ucunun cilt altına yerleştirilmediğini ve geri çekilmesi ve yeniden konumlandırılması gerekeceğini gösterir. Piston geri çekildiğinde geri basınç varsa, iğnenin doğru yerleştirildiğini ve enjeksiyonun devam edebileceğini gösterir. </li>
	<li>Maddeyi sabit bir hareketle yavaşça enjekte edin. Enjeksiyon maddesinin kaybını önlemek için, enjeksiyondan sonra duraklayın, iğneyi cilt altında hafifçe döndürün ve iğneyi çekerken cildi enjeksiyon bölgesinde sıkıştırın. </li>
</ol>
<img alt="Figure 1" src="/files/ftp_upload/10198/10198fig1.jpg"> 
Şekil 1. Farelerde deri altı enjeksiyonu. 
2. İntraperitoneal enjeksiyon
<ol>
	<li>Farelerde bu enjeksiyon tekniği için tek elle manuel kısıtlama yöntemi kullanılır. Eli, farenin dönmesini önlemek için boynunda yeterince yükseğe yerleştirilecek şekilde ayarlayın. </li>
	<li>Boynun ensesindeki gevşek cildi başparmak ve işaret parmağı arasında kavrayın. </li>
	<li>Gevşek cildi ikinci, üçüncü ve dördüncü parmaklar ile başparmağın tabanı arasına sırt boyunca sabitleyerek veya kuyruğu üçüncü ve dördüncü parmaklar arasına yerleştirerek arka kısımları stabilize edin. </li>
	<li>Sıçandaki IP enjeksiyonu, biri sıçanı dizginlemek ve diğeri enjeksiyonu gerçekleştirmek için iki kişi gerektirir.
	<ol>
		<li>Boynun her iki yanındaki işaret ve orta parmakları ve sırttaki avuç içi kullanarak fareyi omuzların üzerinden kavrayın. Başparmak ve üçüncü ve dördüncü parmaklar, ileri veya geri hareketi önlemek için göğsü çevrelemelidir. Boynun her iki yanındaki parmakların konumu, farenin başını çevirmesini engeller. </li>
		<li>Fareyi kaldırın ve ventral karın bölgesini ortaya çıkarmak için çevirin. </li>
		<li>Ayakları ve kuyruğu güvenli bir şekilde kavrayarak ve vücuttan uzağa uzatarak arka kısımları sabitleyin. </li>
	</ol>
	</li>
	<li>Fareyi veya fareyi, karnı ortaya çıkaracak ve yukarı baktığından emin olacak şekilde konumlandırın. </li>
	<li>Bağırsakların öne düşmesine izin vermek için hayvanı başı aşağı bakacak şekilde yaklaşık 30°'lik bir açıyla eğin. </li>
	<li>Enjeksiyon yer işaretleri aşağıdaki gibidir:
	<ol>
		<li>Enjekte edilecek alan, kalçanın üst kısmında (yandan yana) vücut boyunca yatay olarak uzanan hayali bir çizgi ile kraniyal olarak sınırlanır. </li>
		<li>Orta hat, zıt yönlerde büyüyen saçların buluştuğu yer olarak kabul edilen medial sınırdır. Tüysüz hayvanlarda, orta hat, ksifoidden anüse kadar düz bir çizgide uzanır. </li>
		<li>Yan sınır, erkekte kalçanın üst kısmından prepusa kadar, kadında ise kalçanın üst kısmından meme başlarını takip eden bir çizgidir. </li>
		<li>Bu, güvenli enjeksiyon için üçgen bir alan sağlar. </li>
	</ol>
	</li>
	<li>Yer işaretlerine bir makalenin enjeksiyonu
	<ol>
		<li>Omurgaya dik bir iğneyi, orta hattın dışına, yukarıda anlatıldığı gibi üçgene sokun. İğnenin vücut düzlemine 90° açıyla yerleştirilmesi, karnın her iki tarafını kullanarak güvenli enjeksiyon yapılmasını sağlar. Bu, enjeksiyon bölgelerinin değiştirilmesine izin vererek doku travmasını en aza indirdiği için özellikle çoklu enjeksiyonlarda önemlidir. </li>
		<li>İğne 90°'lik bir açıyla yerleştirildiğinde, karın içine "patlar" ve derinliğin daha kolay belirlenmesini sağlar. Bu aynı zamanda iğnenin doğru şekilde konumlandırıldığına dair görsel ve dokunsal bir işarettir. </li>
		<li>İdrar kesesi, bağırsak veya vasküler yapılar içinde değil, periton boşluğu içine yerleştirilmesini sağlamak için şırıngayı aspire edin. </li>
		<li>Makalenin skrotal keseye uygulanmasını önlemek için erkek fareye kaudal olarak enjekte etmekten kaçının. Travmayı önlemek için dişinin emziğine enjekte etmekten kaçının. </li>
	</ol>
	</li>
</ol>
<img alt="Figure 2" src="/files/ftp_upload/10198/10198fig2.jpg"> 
Şekil 2. Farelerde intraperitoneal enjeksiyon için yer işaretleri. 
3. Kas içi enjeksiyon
<ol>
	<li>Fareler ve sıçanlar için bu tekniğin kısıtlanması ya iki kişi ya da bir kısıtlama tüpünün kullanılmasını gerektirir. Burada açıklanan, bir kısıtlama cihazı kullanan tek kişilik bir yöntemdir.
	<ol>
		<li>Hayvanı emniyet tertibatına yerleştirin. </li>
		<li>Hayvan tüpe girdikten sonra, hayvanı arka ayakları tüpün dışında olacak şekilde konumlandırmak için kuyruğu kavrayın. </li>
		<li>Bacağı uzatmak ve boğulmanın bükülmesini önlemek için uyluk kemiğinin kraniyal kısmındaki yan deriyi kavrayın. </li>
		<li>Enjeksiyon yapılırken cihazın stabilizasyonunu sağlamak için emniyet cihazını, hayvanın başı aşağı bakacak şekilde masanın üzerinde duracak veya teknisyenin vücuduna doğru bakacak şekilde masanın üzerinde yatacak şekilde yerleştirin. </li>
		<li>Enjeksiyon işaretleri aşağıdaki gibidir: hem fare hem de sıçan bacağı, arka bacaktaki en büyük kas kütlesini içeren gluteal kaslar (kaudal uyluk kasları) ile küçüktür; Arka bacaktaki en büyük ikinci kas kütlesi gastroknemiustur (baldır kası). Enjeksiyon bacağın kaudal yönünden yapılır.
		<ol>
			<li>Femurun arkasındaki gluteal kas kütlesini bulun. Kemik palpe edilebilir ve büyük kas kolayca hissedilir. </li>
			<li>Bacağın orta çizgisinin arka yönden kanca noktasından kuyruğa kadar uzandığına dikkat edin. Saç, yan ve iç yüzeylerden zıt yönlerde uzadığı için genellikle bir araya geldiği bir çıkıntıya sahiptir. </li>
			<li>Enjeksiyonlar, orta hattan uyluğun yan yönüne doğru yapılır. Bu, bacağın medial yüzeyinde bulunan sinirlere ve kan damarlarına zarar verme olasılığını azaltır.</li>
			<li>Gastroknemius içine yapılan enjeksiyonlar posterior yönden ve lateral safen venin yeri dikkatlice dikkate alınarak yapılır. </li>
		</ol>
		</li>
		<li>Yer işaretlerine bir makalenin enjeksiyonu
		<ol>
			<li>İğneyi, yukarıda tarif edildiği gibi, gluteal kas için maksimum 5 mm ve gastroknemius için maksimum 3 mm derinliğe kadar orta hattan uyluk kemiğine dik olarak sokun. </li>
			<li>Kas travmasını önlemek için, iğnenin dokudaki dış hareketi önlenmelidir. Şırınga, enjeksiyonu gerçekleştirmek için elin yeniden konumlandırılmasını gerektirmeyecek şekilde tutulmalıdır. </li>
			<li>Bir kan damarına değil, kas içine yerleştirilmesini sağlamak için şırıngayı aspire edin. </li>
			<li>Malzemeyi sabit, akıcı bir hareketle enjekte edin. Kasın yavaş genişlemesine izin verecek şekilde hızlı bir şekilde enjekte etmeyin. Hızlı enjeksiyon doku travmasına neden olur. </li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
<img alt="Figure 3" src="/files/ftp_upload/10198/10198fig3.jpg"> 
Şekil 3. Sıçanlarda gluteal kas içine intramüsküler enjeksiyon. 
4. Kuyruk damarı kullanılarak intravenöz enjeksiyon
<ol>
	<li>Hayvanın kısıtlanması, hayvanın anestezi altında mı yoksa uyanık mı olduğuna bağlıdır.
	<ol>
		<li>Tüysüz veya çıplak hayvanlar hariç, bilinçli fareler veya sıçanlar için silindirik bir kısıtlama tüpü kullanın. Tüysüz hayvanların yağlı doğası nedeniyle, derileri sert plastiğe yapışma eğiliminde olduğundan, onları akrilik tutuculardan yeniden konumlandırmak ve çıkarmak zordur. Böylece esnek bir plastik koni kullanılır. </li>
		<li>Diğer enjeksiyon cihazları arasında ışıklı platformlar, ısıtmalı platformlar ve farenin kesinlikle kuyrukta gerginlik ile koni içinde tutulduğu sert plastik koniler bulunur. </li>
		<li>Anestezi uygulanmış farelerin kısıtlamaya ihtiyacı olmayabilir. </li>
		<li>Kuyruk damarlarının vazodilatasyonunu sağlamak için tüm vücudu veya sadece kuyruğu ısıtın.
		<ol>
			<li>Tüm vücudu orta üzerine ayarlanmış bir elektrikli ısıtma yastığı veya sirkülasyonlu bir su battaniyesi ile ısıtın. </li>
			<li>Hayvanı, ısı kaynağına sarılmış emniyet tertibatına yerleştirin. </li>
			<li>Hayvanı yakından gözlemleyin ve kan damarları genişler genişlemez onu ısı kaynağından çıkarın. Tüm vücut ısınması, bir kafese yönlendirilmiş bir ısı lambası kullanılarak da sağlanabilir. Bir ısı lambası kullanırken, aşırı ısınmaları kolay olduğu için hayvanlar yakından gözlemlenmelidir. </li>
			<li>Tüm vücut ısınması mümkün olmadığında, kuyruğun tek başına ısıtılması, ısıtılmış bir havludan, sıcak su şişesinden ılık kompresler kullanılarak veya kuyruğu ılık suya batırarak elde edilebilir. Sıcak su şişeleri, ısıtılmış havlular ve ılık suyun sıcaklık kontrolleri olmadığı için kuyruğun yanmasını önlemek için dikkatli olunmalıdır. Isı kaynaklarının başlangıçta aşırı ısınması yaygın bir durumdur. Bu ısı kaynakları da hızlı bir şekilde soğur. </li>
		</ol>
		</li>
		<li>Doku yağının kullanılması, damarların görselleştirilmesini arttırmanın başka bir yoludur.
		<ol>
			<li>Pamuk uçlu bir aplikatörü doku yağına batırın ve yağı, stabilizasyon için kavranan kuyruğun bir kısmından iyice uzağa uygulayın. Doku yağı, damarların daha net bir şekilde belirginleşmesine neden olur. </li>
			<li>Formülasyonunda cildin ısınmasına ve buharlaşma ile vazodilatasyona neden olan bir kimyasal içeren ticari olarak temin edilebilen toksik olmayan yağlar vardır. Bu yağlar uygulanır ve birkaç dakika sonra damarlar göründüğünde fazla yağ bir pamuk yardımıyla silinir. </li>
			<li>Tüm yağlar kuyruğu tutmayı zorlaştırabilir. </li>
			<li>Yağlar kullanılırken, damarların görüntülenmesinden hemen sonra enjeksiyon yapılmalıdır. </li>
		</ol>
		</li>
		<li>Enjeksiyon yer işaretleri aşağıdaki gibidir:
		<ol>
			<li>Yanal kuyruk damarları kuyruğun yanlarında bulunur. Kuyruğun dorsal ve ventral orta hatları boyunca uzanan ve enjeksiyon amaçlarına uygun olmayan damarlar da vardır. </li>
			<li>Kısıtlayıcıdaki hayvan, enjeksiyon kolaylığı için yanal damarlar yukarı bakacak şekilde döndürülebilir. Alternatif olarak, damarları enjeksiyon için daha kabul edilebilir bir konuma getirmek için kuyruk döndürülebilir. </li>
			<li>Gemiler çok yüzeyseldir. Kuyruğun tabanına ulaştıkça daha yüzeysel hale gelirler. </li>
		</ol>
		</li>
		<li>Bir eşyanın kuyruk damarına enjekte edilmesi beceri gerektirir. Kan damarına travmayı önlemek için, iğnenin yabancı hareketi önlenmelidir. Şırınga, enjeksiyonu gerçekleştirmek için elin yeniden konumlandırılmasını gerektirmeyecek şekilde tutulur.
		<ol>
			<li>Kuyruğu, damar görünecek ve gergin tutulacak şekilde konumlandırın. Kuyruğa aşırı gerginlik uygulamayın, aksi takdirde damar gerilebilir ve kan akışı azalabilir. </li>
			<li>İğneyi mümkün olduğunca distal olarak doğrudan damarın üzerine yerleştirin. </li>
			<li>Hafif bir baskı uygulayın ve iğneyi omurlara paralel olarak kuyruğa kaydırın. İğne damarı keseceği için iğneyi aşağı doğru açılandırmaktan kaçının. İğne, lümene en az 2 mm ilerletildiği için damar içinde görünür olmalıdır. </li>
			<li>Damarın yırtılmasını önlemek için malzemeyi yavaş, akıcı bir hareketle enjekte edin. </li>
			<li>Enjeksiyon sırasında kuyruğa özellikle dikkat edin. Kaba düzgün bir şekilde yerleştirilirse, kaba akan enjeksiyon malzemesi hiçbir direnç göstermeden hissedilir. Kan enjeksiyon materyali tarafından dışarı itilirken kan damarı ağarmalıdır. </li>
			<li>İğne damarda değilse, enjekte edilirken güçlü bir direnç olacaktır. Kuvvet enjekte edilirse, malzeme deri altı boşluğunu dolduracak ve kuyruk balonlaşacaktır. İntravenöz olarak enjekte edilmek üzere tasarlanmış materyal çevre dokulara yakıcı olabileceğinden hemen durun. İğneyi geri çekin ve kuyrukta daha kraniyal olarak başka bir enjeksiyon deneyin. </li>
			<li>Başarılı bir enjeksiyondan sonra, iğneyi geri çekin ve hayvanı kafese geri göndermeden önce iyi bir hemostaz sağlamak için enjeksiyon bölgesine baskı uygulayın. </li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
<img alt="Figure 4" src="/files/ftp_upload/10198/10198fig4.jpg"> 
Şekil 4. Farelerde kuyruk damarı enjeksiyonu.

Madde uygulaması, hayvanları kullanan deneysel protokollerin ortak bir bileşenidir. Bir teslimat yolu seçerken, hayvanlara doz vermekten sorumlu kişilerin teknik yeterliliği, hayvanın boyutu, sıvının viskozitesi ve uygulanacak miktar dahil olmak üzere birçok faktör göz önünde bulundurulmalıdır. Bu faktörlerin dikkatli bir şekilde değerlendirilmesi, hayvanın refahını ve deneyin genel sonucunu artıracaktır.

bileşik yönetim i

Kaynak: Kay Stewart, RVT, RLATG, CMAR; Valerie A. Schroeder, RVT, RLATG. Notre Dame Üniversitesi, IN
Birçok araştırma protokolü, bir maddenin bir hayvana enjekte edilmesini gerektirdiğinden, maddenin veriliş yolu ve miktarı doğru bir şekilde belirlenmelidir. Fare ve sıçanda çeşitli uygulama yolları vardır. Hangi yolun kullanılacağı, enjekte edilecek maddenin birkaç faktörü tarafından belirlenir: çözeltinin pH'ı, istenen dozaj için gereken hacim ve çözeltinin viskozitesi. Bir madde yanlış uygulanırsa ciddi doku hasarı meydana gelebilir. Bu video, en sık kullanılan enjeksiyon yolları için çeşitli kısıtlama yöntemlerine ve teknik ayrıntılara bakmaktadır.

Bileşik Yönetim I

Source: Kay Stewart, RVT, RLATG, CMAR; Valerie A. Schroeder, RVT, RLATG. University of Notre Dame, IN
As many research protocols require that a substance ...

Bileşik uygulaması genellikle bir hayvan çalışmasının ayrılmaz bir bileşenidir ve bileşiğin doğru ve insancıl bir şekilde verilmesini sağlamak için birçok faktörün değerlendirilmesi gerekir. İki ana uygulama yolu, sindirim sistemi yoluyla enteral ve sindirim sistemi dışında parenteraldir. Temel fark, eğer bileşik enteral yolla verilirse, kan dolaşımına girmeden ÖNCE hepatik metabolizmaya uğrar. Oysa, intravenöz veya intramüsküler gibi herhangi bir parenteral yolla, madde karaciğerden bu ilk geçişi atlar ve genellikle daha yüksek bir biyoyararlanım ile sonuçlanır. Bileşik uygulama serisinin bu ilk videosunda, genel olarak uygulama yolunun seçimini etkileyen faktörleri tartışarak başlayacağız. Ardından, SC veya SubQ olarak kısaltılan deri altı, intraperitoneal veya IP, intramüsküler veya IM ve intravenöz AKA IV dahil olmak üzere en yaygın parenteral enjeksiyon yöntemlerini gözden geçireceğiz. Herhangi bir bileşik uygulama prosedürünü önceden oluşturmadan önce akılda tutulması gereken birkaç şeyi gözden geçirerek başlayalım. İlk adım, enjekte edilecek çözeltiyi veya süspansiyonu hazırlamaktır ve madde hazırlama için ilk temel husus sterilitedir. Patojenlerin hayvana girmesini önlemek için, enjeksiyon malzemesinin yanı sıra kullanılacak iğne ve şırıngaların da steril olması önemlidir. İkinci husus fizyolojik uyumluluktur. İster enteral ister parenteral olarak uygulansın, bir doz çözeltisi, bileşiğin uygun şekilde emilmesi ve doku hasarının önlenmesi için fizyolojik olarak uygun pH'a tamponlanmalıdır. Üçüncü faktör, iğne seçiminde kritik bir rol oynayan enjeksiyon eşyasının viskozitesidir. Genellikle, fareler ve sıçanlar için parenteral uygulama prosedürlerinde 20 ila 30 gauge iğne kullanılır. Bu iğnelerin göbekleri genellikle tanımlama kolaylığı için renk kodludur. Solüsyon, bu iğnelerden en az birinden geçecek kadar akışkanlığa sahip olmalıdır. Çözüm birden fazla çözümden geçebiliyorsa, genel olarak seçim mümkün olan en küçük ölçüdür. Bir sonraki faktör, şırınga seçimini etkileyen uygulama hacmidir. İğnelere benzer şekilde, doğru derecelerle doğru dozlama için gereken mümkün olan en küçük şırınga seçilmelidir. İğne ölçüsü ve uygulama hacmi de rotaya ve uygulanan hayvanın türüne, boyutuna ve yaşına bağlıdır. Bu videoda tartışılan rotalarla ilgili değerleri gözden geçirmek için aşağıdaki Tablo 1'e bakın. Son önemli husus, her uygulama yoluna göre önemli ölçüde değişen ve en uygun yöntemin seçilmesinde rol oynayabilen emilim oranıdır. Şimdi, rutin olarak kullanılan enjeksiyon yöntemlerinin kendine özgü özelliklerinden bahsedelim. SC veya SubQ Enjeksiyonu, malzemeyi cilt katmanları ile kas arasına, cildin kaldırılmasıyla oluşturulan sanal bir alana yerleştirir. Bu, daha büyük hacimlerin güvenli enjeksiyonuna izin verir, ancak absorpsiyon oranı diğer yollardan daha yavaştır ve daha kalıcı bir etki sağlar. IP uygulaması sırasında, bileşik doğrudan periton boşluğuna enjekte edilir. Bu, büyük hacimli çözelti sunmak için kullanılan başka bir yaygın yöntemdir. Bir IP enjeksiyonu parenteral uygulama olarak kabul edilse de, emilim mekanizması aslında oral dozlamaya daha benzerdir. Bir IM enjeksiyonu, bir bileşiği doğrudan gluteal veya gastroknemius kasına iletir. Enjekte edilen bir madde IM, kas dokusu içindeki bol sayıda damar nedeniyle hızla emilir ve bu da bazı durumlarda tercih edilen bir yol haline getirebilir. Kasta yanlış veya tekrarlanan enjeksiyon, felç veya kas nekrozu ile sonuçlanan sinir hasarına neden olabilir. Son olarak, hayvanın kuyruk damarına bir IV enjeksiyonu, madde doğrudan dolaşım sistemine sokulduğu için en etkili uygulama yoludur. Bileşiğin, kuyruğun yanlarında bulunan lateral kaudal kuyruk damarlarından birine enjekte edilmesi gerektiğini unutmayın. Kuyruğun ventral orta hattı boyunca uzanan ve enjeksiyon amaçları için uygun olmayan bir damar vardır. Artık arka planı tartıştığımıza göre, SC enjeksiyonlarından başlayarak prosedürleri öğrenelim. Fareler için, hayvanı kuyruğundan alın ve tel çubuk kapak gibi başka bir güvenli yüzeyde dinlenmesine izin verin. Ardından, boynunun etrafındaki deriyi kaldırarak bir çadır oluşturarak hayvanı elle kısıtlayın. Daha sonra, hayvanı arka ayakları yüzeye dayanacak şekilde masanın üzerine koyun ve hayvanın nefes almasını tehlikeye atabilecek aşırı ağırlığı önlemek için elinizin topuğunu masanın üzerine koyun. Enjekte etmek için, enjekte edilecek çözelti ile şırıngayı alın ve kafatasına delinme olasılığını önlemek için iğneyi omurgaya paralel ve kafadan uzağa yönlendirin. Ardından, iğneyi eğimi yukarı bakacak şekilde yerleştirin, bu da cilde yumuşak bir kayma sağlar. İğnenin doğru yerleştirilip yerleştirilmediğini kontrol etmek için pistonu geri çekin. Piston geri çekildiğinde geri basınç varsa, iğne doğru konumdadır. Pistona hava çekilirse, iğnenin yeniden konumlandırılması gerekecektir. İğnenin doğru şekilde yerleştirildiğini onayladıktan sonra, sabit bir hareketle yavaşça enjekte edin. Enjeksiyondan sonra duraklayın ve enjeksiyon malzemesinin kaybını önlemek için iğneyi derinin altında hafifçe döndürün. Ardından, enjeksiyon bölgesinde cildi sıkıştırın ve iğneyi geri çekin. Aynı yöntem sütten kesilen sıçanlarda da kullanılabilir. Yetişkin sıçanlar için, önce hayvanın, bu koleksiyonun "Taşıma ve Kısıtlamanın Temelleri" videosunda tartışılan bir cihaz kullanılarak kısıtlanması gerekir. Daha sonra, SC enjeksiyonu farelerde olduğu gibi gerçekleştirilebilir. Daha sonra, bir IP enjeksiyonunun nasıl gerçekleştirileceğini öğreneceğiz. Farelerde, yine "Taşıma ve Kısıtlamanın Temelleri" videosunda anlatılan hayvanı manuel olarak dizginlemek için iki elle kısıtlama tekniğini kullanın. Baskın olmayan elinizin, hayvanın dönmesini önlemek için boynunda yeterince yükseğe yerleştirildiğinden emin olun. Kuyruğu üçüncü ve dördüncü parmakların arasına yerleştirerek veya cildi kalan parmaklar ile başparmağın tabanı arasına sıkıca sabitleyerek arka kısmı sabitleyin. Ardından, hayvanı karnını açıkta bırakacak şekilde konumlandırın. Hayvanı başı 30'da aşağı bakacak şekilde eğin? bağırsakların öne düşmesine izin vermek için açı. Enjeksiyon dönüm noktası şu şekilde özetlenebilir: kalçanın üst kısmında, yandan yana doğru vücut boyunca yatay olarak uzanan hayali bir çizgi çizin. Ardından, zıt yönlerde büyüyen saçların buluştuğu çizgi boyunca medial sınırı veya orta çizgiyi çizin. Son olarak, erkeklerde kalçaların üstünden prepusa kadar uzanan ve kadınlarda meme başlarını takip eden bir çizgi olan yan sınırı hayal edin. Bu, güvenli IP enjeksiyonu için üçgen alan sağlar. Tartışacağımız bir sonraki yöntem IM enjeksiyonudur. Hem fareler hem de sıçanlar için bu teknikte kısıtlama, iki kişi veya bir kısıtlama tüpünün kullanılmasını gerektirir. Burada, bir kısıtlama cihazı kullanan tek kişilik yöntemi açıklayacağız. İlk olarak, hayvanı tüpe yerleştirin ve arka ayakları dışarıda olacak şekilde, hayvanı konumlandırmak için kuyruğu çekin. Daha sonra, bacağı uzatmak ve boğulmanın bükülmesini önlemek için uyluk kemiğinin kraniyal kısmındaki kanadın derisini kavrayın. Ardından, enjeksiyon bölgesinin görselleştirilmesine izin vermek için kısıtlama cihazını konumlandırın. Gluteal dönüm noktasını tanımlamak için, femurun arkasındaki gluteal kas kütlesini bulun. Kemik palpe edilebilir ve büyük kas kolayca hissedilir. Kanca noktasından kuyruğa kadar uzanan orta çizgiye dikkat edin. Yan ve iç yüzeylerden gelen saçların bir araya geldiği çıkıntının zıt yönlerde büyüdüğünü sıklıkla görebilirsiniz. Tipik olarak, enjeksiyonlar orta hattan yan tarafa doğru yapılır. Gastroknemius baldır kasıdır ve bu kas içine enjeksiyon da en iyi şekilde arka yönden yapılır. Gluteal kas için, bulunan yer işaretinde, iğneyi maksimum yaklaşık 5 mm derinliğe kadar yerleştirin. Kas hasarını önlemek için enjeksiyon sırasında şırıngayı yeniden konumlandırmaktan kaçının. Ardından, yerleşimin bir kan damarı değil, kas içinde olduğundan emin olmak için aspire edin. Ve son olarak, materyali yavaş ve sabit bir şekilde enjekte edin, çünkü hızlı enjeksiyon doku travmasına neden olacaktır. İğneyi, yerleştirme ile aynı rotayı takip ederek dikey bir şekilde çıkarın. Gastroknemius kası için, iğneyi maksimum 3 mm derinliğe kadar batırın ve enjeksiyonu gluteal kas ile aynı şekilde gerçekleştirin. Son olarak, kemirgenlerin kuyruk damarlarında IV enjeksiyonunun nasıl yapıldığını öğrenelim. Aynı yöntem hem fareler hem de sıçanlar için geçerlidir. Hayvanı silindirik bir emniyet tüpüne yerleştirin ve yaklaşık 2-5 dakika ORTA olarak ayarlanmış bir elektrikli ısıtma yastığı kullanarak hayvanın tüm vücudunu ısıtın. Kan damarları genişleyene kadar hayvanı ısıtmaya devam edin, bu gözle görülür şekilde daha büyük olur. Unutmayın, lateral kaudal kuyruk kuyruk damarları kuyruğun yanlarında bulunur. Ventral orta hatta bulunan arter enjeksiyon amaçları için uygun değildir. Emniyet tertibatını döndürün ve kuyruğu, yanal kuyruk damarları yukarı bakacak ve gergin tutulacak şekilde konumlandırın. Aşırı gerginlik uygulamayın, aksi takdirde damar gerilebilir ve kan akışı azalabilir. İğne eğimini mümkün olduğunca distal olarak doğrudan kan damarının üzerine yerleştirin ve iğneyi omurgaya paralel kuyruğa kaydırmak için hafif bir baskı uygulayın. Malzemeyi yavaş, akıcı bir hareketle enjekte edin ve kan enjeksiyon malzemesi tarafından dışarı itilirken damarın beyazladığına dikkat edin. İğne damara düzgün bir şekilde yerleştirilmezse, enjeksiyon sırasında güçlü bir direnç olacaktır ve kuvvetle enjekte ederseniz, malzeme deri altı boşluğunu dolduracak ve kuyruk balonlaşacaktır. İntravenöz olarak enjekte edilmek üzere tasarlanmış materyal çevredeki dokulara yakıcı olabileceğinden hemen durun. İğneyi geri çekin ve kuyrukta daha kraniyal olarak başka bir enjeksiyon deneyin. Başarılı bir enjeksiyondan sonra, iğneyi geri çekin ve hayvanı kafese geri göndermeden önce iyi bir hemostaz sağlamak için enjeksiyon bölgesine baskı uygulayın. Artık yaygın enjeksiyon yöntemlerine aşina olduğunuza göre, bu uygulama yollarının ilaç dağıtımı dışındaki bazı uygulamalarına bakalım. Birkaç deneyde, enfeksiyonu incelemek için farelere spesifik bir patojen enjekte edilir. Burada, araştırmacılar lezyonlara neden olan antibiyotiğe dirençli bakterileri tanıtmak için deri altı yolunu kullandılar ve bu lezyonların boyutu patojenin virülansı için bir okuma görevi gördü. Çeşitli bilim adamları, sistemik doğumu takiben kök hücrelerin dağılımını ve hayatta kalmasını incelemekle ilgilenmektedir. Bu çalışmada, araştırmacılar multipl skleroz hayvan modelinde genetik olarak etiketlenmiş nöral kök hücrelerin kuyruk damar enjeksiyonunu gerçekleştirdiler ve enjekte edilen hücrelerin omurilik ve beyin bölgelerine dağılımını belirlediler. Başka bir deneyde, araştırmacılar floresan etiketli miyoblastları bir kas distrofisi hayvan modelinde kas içine enjekte ettiler. Bunu takiben, kök hücrelerin başarılı bir şekilde implantasyonunu analiz etmek için biyolüminesans gerçekleştirildi. Son olarak, hayvan modelleri oluşturmak için enjeksiyonlar da kullanılabilir. Bu bilim adamları, daha sonra karaciğer hastalığının gelişimini incelemek için kullanılacak bir karaciğer fibrozu hayvan modeli oluşturmak için erkek Wistar sıçanlarında güçlü bir karaciğer toksini olan Dimetilnitrozamin'in intraperitoneal enjeksiyonunu gerçekleştirdiler. JoVE'nin yaygın olarak kullanılan parenteral enjeksiyonları tartışan bileşik uygulama konusundaki ilk bölümünü izlediniz. Unutmayın, en uygun dağıtım yolu, enjekte edilen çözeltinin pH'ı, hacmi ve viskozitesi dahil olmak üzere çeşitli faktörlere dayanmaktadır. Ve her tekniğin, deneysel ihtiyaçlarla ilgili olarak dikkate alınması gereken avantajları ve dezavantajları vardır. Her zaman olduğu gibi, izlediğiniz için teşekkürler!

Education

JoVE Science Education

Basic Biology

Temel Biyoloji

Lab Animal Research

Laboratuvar Hayvanı Araştırmaları

Rodents

Kemirgenler

rodent injection routes and restraint

Rodent injection routes and restraint methods are key parts of compound administration in mice and rats. When a substance must be injected into an animal, the delivery route and the amount of compound must be chosen with care. The right choice helps match the dose to the protocol.

Several factors guide the route of administration. These include the pH of the solution, the volume needed for the desired dose, and the viscosity of the solution. Viscosity means how thick or resistant to flow a liquid is. These details help determine which injection route is most suitable.

Correct technique is important because poor administration can cause severe tissue damage. The video also shows the restraint methods used for these common injection routes. It focuses on the technical steps needed for mouse and rat injections.

Rodent Injection Routes and Restraint

rodent handling and restraint techniques

Minimizing Stress in Mouse and Rat Handling

Mouse and rat handling can create stress, even when the procedure is brief. Cage changing and other noninvasive tasks can raise heart rate, blood pressure, and serum corticosterone levels. These changes may last for several hours. Restraint for injections and blood withdrawal can also affect the animals and may influence scientific data. Because of this, proper training is needed when working with mice and rats. The goal is to reduce the effect of handling on the animals as much as possible. <br...

basic care procedures

Caring for Research Mice and Rats

Research mice and rats need careful housing, feeding, and handling. These animals make up over 90% of the animals used for biomedical research, so their care can strongly affect experiment results. Both immunocompetent animals, which have a normal immune response, and immunocompromised animals need proper support during studies. Some research animals have weakened immune systems and need extra steps to stay healthy. Common examples include naturally occurring immunocompromised mice and mice...

fundamentals of breeding and weaning

Mouse and Rat Breeding Methods

Mouse and rat breeding methods are used in biomedical research to supply animals for laboratory studies. Many research facilities buy mice from commercial breeders, but some also breed mice and rats in-house. In-house breeding can reduce costs and give researchers more options for their studies. Breeding animals in the facility also lets researchers manage genetics and timing. They can plan pregnancies to match research needs and work with embryos and newborns when needed. Mice and rats can be...

rodent identification i

Mice and Rats: Ear Tags and Punch Codes

Proper identification of laboratory mice and rats is important in biomedical research. The right animal must be used for each procedure and for data collection. Clear identification helps keep research records accurate and reliable. This page focuses on permanent identification methods for mice and rats. These methods include ear tags, ear punch codes, microchip implantation, tail tattoos for adult mice, and toe tattoos for neonates. Temporary methods such as dyes and marking pens can also be...

rodent identification ii

Rodent ID Methods for Accurate Records

Accurate rodent identification supports reliable animal records and data collection. Research animal records may include simple cage cards or a detailed database with full information on each animal. Individual identification is the key part of keeping those records correct. Mice and rats can be identified by several methods. These include tattooing, microchip placement, and temporary identification methods. Each method serves a different need in research animal management. The procedure also...

compound administration i

Rodent injection routes and restraint methods are key parts of compound administration in mice and rats. When a substance must be injected into an animal, the delivery route and the amount of compound must be chosen with care. The right choice helps match the dose to the protocol. Several factors guide the route of administration. These include the pH of the solution, the volume needed for the desired dose, and the viscosity of the solution. Viscosity means how thick or resistant to flow a...

compound administration ii

Choosing the Right Route for Compound Delivery

Compound delivery is a key part of many animal studies. The route used to give the compound can change how it is absorbed. Careful planning helps make sure the compound is delivered correctly. The substance itself also matters when a route is chosen. Its pH, viscosity, and concentration can all affect which method is best. These properties help guide the choice of administration route in a study.

compound administration iii

Specialized Injection Routes in Mice and Rats

Specialized injection routes in mice and rats are sometimes used when standard compound administration methods are not enough. Some study protocols call for less common routes such as intradermal, intranasal, and intracranial injections. These methods are used in laboratory animals and require careful technique. Intradermal injections place a compound into the skin. Intranasal injections deliver a compound through the nose. Intracranial injections are given into the brain. Because these...

compound administration iv

Specialized Injection Routes in Rodents

Specialized injection routes in laboratory mice and rats include intracardiac, footpad, and retro-orbital administration. These methods are used when a protocol calls for a route that is less common than standard compound delivery methods. Each route requires specialized training to perform correctly. Intracardiac injections deliver into the heart, footpad injections target the paw area, and retro-orbital injections are given around the eye region. Because these procedures are more technical,...

blood withdrawal i

Rodent Blood Collection Methods

Blood collection in mice and rats is a common part of research studies. The method used depends on how much blood is needed, how often samples must be taken, the animal's health, and the technician's skill level. This topic includes three blood withdrawal methods: retro-orbital sinus bleeds, initial tail snip bleeds, and intracardiac bleeds. Each method requires general anesthesia, which means the animal is made unconscious before the procedure begins.

blood withdrawal ii

Rodent Blood Sampling Methods

Blood collection from mice and rats can be done with several methods. The choice depends on the restraint needed, how invasive the procedure is, and whether a general anesthetic is required. These factors help determine which method is best for a given analysis. One older method uses the retro-orbital sinus cavity, which is located behind the eye. This approach has been debated because it may cause tissue damage or even blindness. For that reason, facial vein and submandibular vein bleeding...

anesthesia induction and maintenance

Laboratory Anesthesia and Pain Control

Laboratory anesthesia and pain control are important parts of veterinary care for research animals. The Guide for the Care and Use of Laboratory Animals says that pain assessment and pain relief must be part of that care. Anesthesia means the loss of feeling or sensation.

considerations for rodent surgery 

Aseptic Steps in Rodent Survival Surgery

Aseptic technique is essential for rodent survival surgery. It is used to keep the surgical site as clean as possible and to reduce contamination during the procedure. This approach includes patient preparation, surgeon preparation, and sterilization of instruments and other supplies. It also depends on a clean, controlled environment. Careful planning before surgery helps set up these steps for success. During the operation, animals need close monitoring. After the surgery, postoperative...

diagnostic necropsy and tissue harvest

Rat Necropsy for Tissue Collection

Rat necropsy is a key step for collecting organs and tissues at the end of many animal studies. These final samples are used for data collection time points and later testing. Because the samples are used for analysis, the way they are taken can affect sample quality. Careful collection methods help preserve the organs and tissues for testing. The method of euthanasia, or the procedure used to humanely end the animal's life, can also affect sample quality. This article outlines proper necropsy...

sterile tissue harvest

Aseptic Organ Collection in Rats and Mice

Aseptic organ collection in rats and mice is used to keep harvested tissues free from contamination. The process is important when tissues will be used for cell and tissue cultures. It also supports later protein and RNA analysis, as well as metabolic profiling of tissues. The transcript connects this work to the 3 R's, which were introduced in 1959 by W.M.S. Russell and R.L. Burch in The Principles of Humane Experimental Technique. The 3 R's are replacement, reduction, and refinement in the...

early intervention and pain management

Erken Müdahale ve Ağrı Yönetimi

Burada açıklanan tüm hayvan prosedürleri, kurumsal hayvan etiği yönergeleri doğrultusunda yürütülmeli ve IACUC tarafından onaylanmalıdır. Tüm prosedürler, 3R ilkeleri - Değiştirme, Azaltma ve Rafine Etme - çerçevesinde yürütülmeli ve eğitimli personel tarafından gerçekleştirilmelidir.  Hayvanları Ağrı ve Sıkıntı Belirtileri İçin İzleme Ağrının erken belirtilerini tanımak, etik hayvan araştırmaları için esastır. Hayvanlar, genel refahı yansıtan davranışsal, fiziksel ve fizyolojik parametreler...

humane euthanasia and confirmation of death in rodents

Kemirgenlerde İnsani Öldürme ve Ölüm Onayı

Burada açıklanan tüm hayvan prosedürleri, kurumsal hayvan etiği yönergeleri ve IACUC tarafından onaylanmış şekilde yürütülmelidir. Tüm prosedürler, 3R prensiplerini -Değiştirme, Azaltma ve Rafine Etme- takip etmeli ve eğitimli personel tarafından gerçekleştirilmelidir. Kemirgenlerde insancıl son noktalar, hayvanın önemli ağrı, sıkıntı veya sağlık durumu kötüleşmesi yaşadığını gösteren önceden tanımlanmış klinik, davranışsal veya fizyolojik belirtilerdir. Bu belirtilerin gözlendiği durumlarda,...

habituation and positive reinforcement for rodent handling

Kemirgenlerin Elle Çalışması için Alışkanlık Oluşturma ve Olumlu Takviye

Burada açıklanan tüm hayvan prosedürleri, kurumsal hayvan etiği yönergelerine uygun olarak yürütülmeli ve IACUC tarafından onaylanmalıdır. Tüm prosedürler, 3R ilkelerini –Değiştirme, Azaltma ve Rafine Etme– takip etmeli ve eğitimli personel tarafından gerçekleştirilmelidir. Alışma ve pozitif pekiştirme, kemirgenlerde rutin kullanım ve deneysel prosedürler sırasında stresi azaltmaya yardımcı olan rafine etme stratejileridir. Bu yaklaşımlar hayvan refahını iyileştirir, gönüllü işbirliğini teşvik...

breeding management in rodent studies

Kemirgen Çalışmalarında Üreme Yönetimi

Burada açıklanan tüm hayvan prosedürleri, kurumsal hayvan etiği yönergelerine uygun olarak yürütülmeli ve IACUC tarafından onaylanmalıdır. Tüm prosedürler, 3R—Değiştirme, Azaltma ve Rafine Etme—ilkelerine uymalı ve eğitimli personel tarafından gerçekleştirilmelidir. Üreme yönetimi, gereksiz hayvan üretimini en aza indirerek ve yalnızca bir çalışma için gereken hayvan sayısının üretilmesini sağlayarak 3R'leri destekler. Etkili üreme stratejileri, fazla hayvanları azaltmaya ve bilimsel hedefleri...

transport and acclimatization of rodents for research

Araştırma Amaçlı Kemirgenlerin Taşınması ve İklimlendirilmesi

Burada açıklanan tüm hayvan prosedürü, kurumsal hayvan etiği yönergeleri doğrultusunda yürütülmeli ve IACUC tarafından onaylanmalıdır. Tüm prosedürler, 3R ilkeleri—Değiştirme, Azaltma ve Rafine Etme—ilkelerine uygun olarak gerçekleştirilmeli ve eğitimli personel tarafından yapılmalıdır. Araştırma amacıyla kemirgenlerin taşınması, stresi en aza indirgemek ve deneysel sonuçlar üzerindeki etkiyi en aza indirgemek için hayvan refahını koruyan prosedürler gerektirir. Taşıma kafesleri, yeterli...

environmental enrichment for rodents

Kemirgenler İçin Çevre Zenginleştirme

Burada açıklanan tüm hayvan prosedürleri, kurumsal hayvan etiği yönergelerine uygun olarak yürütülmeli ve IACUC tarafından onaylanmalıdır. Tüm prosedürler, 3R'lerin-Yerine Koyma, Azaltma ve İyileştirme-ilkelerine uygun olarak gerçekleştirilmeli ve eğitimli personel tarafından yapılmalıdır. Çevresel zenginleştirme, laboratuvar kemirgenlerinde doğal davranışları teşvik eden, psikolojik refahı artıran ve daha iyi refahı destekleyen nesneler ve uygulamaları içerir. Çevresel zenginleştirme, kemirgen...

rodents

Learn how route of administration, dose, pH, volume, and viscosity guide mouse and rat injections, plus the restraint methods used to help prevent tissue damage.

Rodent Injection Routes and Restraint | JoVE K12

HS-LS1-3.

Kay Stewart

Valerie A. Schroeder

University of Notre Dame

Overview

Key Considerations for Compound Administration

Characteristics of Different Injection Techniques

Subcutaneous Injection

Intraperitoneal (IP) Injection

Intramuscular (IM) Injection

Intravenous (IV) Injection via the Tail Vein

Applications

Summary

Characteristics of Life

Biology is a natural science that studies life and living organisms, including their structure, function, development, interactions, evolution, ...

https://cloudfront.jove.com/files/media/science-education/science-education-thumbs/10647.jpg

Cell Structure

Background
Cells represent the most basic biological units of all organisms, whether it be simple, single-celled organisms like bacteria, or large, ...

Visualizing Onion and Cheek Cells
ExpandImmediately before the experiment, wash and peel onion bulbs for the class.
Remove the entire brown outer skin and ...

Visualizing Onion and Human Cells
ExpandIn this experiment you will prepare different types of cells from a plant and animal, onion and human ...

What are Cells?

Cell Diversity

The concept of a cell started with microscopic observations of dead cork tissue by Robert Hooke in 1665. Hooke coined the term &#34;cell&#34; based on the ...

Cytoplasm

The cytoplasm consists of organelles and a framework of protein scaffolds called the cytoskeleton suspended in an aqueous solution, the cytosol. The ...

The Nucleus

The nucleus is a membrane-bound organelle that acts as a control center in a eukaryotic cell. It contains chromosomal DNA, which controls gene expression ...

The Central Dogma

The DNA Helix

Nucleic Acids

DNA as a Genetic Template

Structure of a Gene

A gene is the fundamental unit of heredity. Every individual has two copies of each gene, one inherited from each parent. Although most people contain the ...

Chromosome Structure

Base-pairing and DNA Repair

What is Gene Expression?

A gene is a stretch of DNA that serves as the blueprint for functional RNAs and proteins. Since DNA is comprised&#160; of nucleotides and proteins are ...

RNA Structure

The basic structure of RNA consists of a string of ribonucleotides attached by phosphodiester bonds. Although most RNA is single-stranded, it can form ...

Types of RNA

Three main types of RNA are involved in protein synthesis: messenger RNA (mRNA), transfer RNA (tRNA), and ribosomal RNA (rRNA). These RNAs perform diverse ...

Transcription

Transcription is the synthesis of RNA from a DNA sequence by RNA polymerase. It is the first step in producing a protein from a gene sequence. ...

Translation

Translation is the process of synthesizing proteins from the genetic information carried by messenger RNA (mRNA). Following transcription, it constitutes ...

Ribosomes

Ribosomes translate genetic information encoded by messenger RNA (mRNA) into proteins. Both prokaryotic and eukaryotic cells have ribosomes. Cells that ...

Protein and Protein Structures

Proteins: From Genes to Degradation

From DNA to Protein

The flow of genetic information in cells from DNA to mRNA to protein is described by the central dogma, which states that genes specify the sequence of ...

Protein Folding

Proteins are chains of amino acids linked together by peptide bonds. Upon synthesis, a protein folds into a three-dimensional conformation, critical to ...

An Overview of Gene Expression

Gene expression is the complex process where a cell uses its genetic information to make functional products. This process is regulated at multiple ...

an-introduction-to-caenorhabditis-elegans

An Introduction to Caenorhabditis elegans

Caenorhabditis elegans is a microscopic, soil-dwelling roundworm that has been powerfully used as a model organism since the early 1970&rsquo;s.  It was ...

An Overview of Genetic Analysis

An organism&#8217;s physical traits, or phenotype, are a product of its genotype, which is the combination of alleles (gene variants) inherited from its ...

An Introduction to Cell Death

Necrosis, apoptosis, and autophagic cell death are all manners in which cells can die, and these mechanisms can be induced by different stimuli, such as ...

An Overview of Genetic Engineering

Genetic engineering &#8211; the process of purposefully altering an organism&#8217;s DNA &#8211; has been used to create powerful research tools and model ...

An Introduction to Cell Division

Cell division is the process by which a parent cell divides and gives rise to two or more daughter cells. It is a means of reproduction for single-cell ...

An Overview of Genetics and Disease

Many human diseases are associated with mutations or variations in genetic sequences. Some of these genetic variants are heritable, passed down from ...

an-introduction-to-cellular-and-molecular-neuroscience

An Introduction to Cellular and Molecular Neuroscience

Cellular and molecular neuroscience is one of the newest and fastest growing subdisciplines in neuroscience. By investigating the influences of genes, ...

Annexin V and Propidium Iodide Labeling

Staining with annexin V and propidium iodide (PI) provides researchers with a way to identify different types of cell death&#8212;either necrosis or ...

an-introduction-to-developmental-genetics

An Introduction to Developmental Genetics

Development is the complex process through which a single-celled embryo transforms into a multicellular organism. Developmental processes are guided by ...

Bacterial Transformation: Electroporation

The term &#x201C;transformation&#x201D; refers cellular ingestion of foreign DNA.  In nature, transformation can occur in certain types of bacteria.  In ...

an-introduction-to-molecular-developmental-biology

An Introduction to Molecular Developmental Biology

Molecular signals play a major role in the complex processes occurring during embryonic development. These signals regulate activities such as cell ...

bacterial-transformation-the-heat-shock-method

Bacterial Transformation: The Heat Shock Method

Transformation is the process that occurs when a cell ingests foreign DNA from its surroundings. Transformation can occur in nature in certain types of ...

an-introduction-to-saccharomyces-cerevisiae

An Introduction to Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces cerevisiae (commonly known as baker&rsquo;s yeast) is a single-celled eukaryote that is frequently used in scientific research.  S. ...

Cell Cycle Analysis

Cell cycle refers to the set of events through which a cell grows, replicates its genome, and ultimately divides into two daughter cells through the ...

An Introduction to Transfection

Transfection is the process of inserting genetic material, such as DNA and double stranded RNA, into mammalian cells. The insertion of DNA into a cell ...

Chromatin Immunoprecipitation

Histones are proteins that help organize DNA in eukaryotic nuclei by serving as &#8220;scaffolds&#8221; around which DNA can be wrapped, forming a complex ...

An Overview of Epigenetics

Since the early days of genetics research, scientists have noted certain heritable phenotypic differences that are not due to differences in the ...

community-dna-extraction-from-bacterial-colonies

Community DNA Extraction from Bacterial Colonies

Source: Laboratories of Dr. Ian Pepper and Dr. Charles Gerba - The University of Arizona
Demonstrating Author: Luisa Ikner
Traditional methods of analysis ...

Cytogenetics

Cytogenetics is the field of study devoted to chromosomes, and involves the direct observation of a cell&#8217;s chromosomal number and structure, ...

embryonic-stem-cell-culture-and-differentiation

Embryonic Stem Cell Culture and Differentiation

Culturing embryonic stem (ES) cells requires conditions that maintain these cells in an undifferentiated state to preserve their capacity for self-renewal ...

DNA Gel Electrophoresis

DNA gel electrophoresis is a technique used for the detection and separation of DNA molecules. An electric field is applied to a gel matrix comprised of ...

Enzyme Assays and Kinetics

Enzyme kinetics describes the catalytic effects of enzymes, which are biomolecules that facilitate chemical reactions necessary for living organisms. ...

DNA Ligation Reactions

In molecular biology, ligation refers to the joining of two DNA fragments through the formation of a phosphodiester bond.  An enzyme known as a ligase ...

explant-culture-for-developmental-studies

Explant Culture for Developmental Studies

Explant culture is a technique in which living cells or tissues are removed from an embryo for continued development outside of the organism. This ex vivo ...

Construct an explanation based on evidence for how the structure of DNA determines the structure of proteins which carry out the essential functions of life through systems of specialized cells.

HS-LS1-1.

Rodent Injection Routes and Restraint

Description

Transcript

Tags

More videos by Standards