Name: minimizing stress in mouse and rat handling
Uploaded: 2015-08-24T15:22:25.000Z
Duration: 15 min 57 s
Channel: JoVE

1. Tırmalama
Fareler çoğunlukla tırmalama tekniği kullanılarak kısıtlanır, ancak genç sıçanlar da bu yöntemle kısıtlanabilir. Yetişkin sıçanlar, daha kaslı bir boyun, daha az miktarda gevşek deri ve bu yönteme karşı isteksizlik nedeniyle bu teknikle dizginlemek daha zordur. 
<ol>
	<li>Tek elle kısıtlama yöntemi, en sık atimik çıplak, SCID ve bazı GEM suşları gibi çok sakin olan fare suşlarında kullanılır. Ancak bu yöntemle ısırılma riski daha yüksektir. Acemi hayvan bakıcıları, tek elle yöntemi denemeden önce iki elle kısıtlama tekniği konusunda rahat olmalıdır.
	<ol>
		<li>Hayvanı, tel çubuk, kafes üstü veya paspas gibi kavrayabilecekleri bir yüzeye yerleştirin.</li>
		<li>Kuyruğu baskın olmayan elin üçüncü ve dördüncü parmakları arasında tutun ve geriye doğru hafifçe çekiş uygulayın. Bu, hayvanın yüzeye tutunmasına neden olur ve vücudun gerilmesine ve uzamasına neden olur. </li>
		<li>Avuç içi hayvanın vücuduna bakacak şekilde elinizi çevirin. </li>
		<li>İşaret parmağı ve başparmağınızla kemirgeni omuzların üzerine sabitleyin. </li>
		<li>Başparmağınızı ve işaret parmağınızı yavaşça öne kaydırın ve kafatasının tabanına yerleştirin. Boynundaki gevşek cildi kavrayın ve hayvanı kaldırın. </li>
		<li>Sırt deriyi başparmağın tabanına sabitleyerek hayvanı sırt boyunca sabitlemek için orta parmağınızı kullanın. </li>
	</ol>
	</li>
	<li>İki elle emniyet
	<ol>
		<li>Hayvanı kavrayabilecekleri bir yüzeye yerleştirin. </li>
		<li>Baskın elinizle kuyruğu tabanda (vücudun 1-2 cm yakınında) tutun ve geriye doğru hafifçe çekiş uygulayın. Bu, hayvanın yüzeye tutunmasına neden olur ve vücudun gerilmesine ve uzamasına neden olur. </li>
		<li>Diğer elin işaret parmağı ve başparmağı ile kemirgeni omuzların üzerinden sabitleyin. </li>
		<li>Başparmağınızı ve işaret parmağınızı yavaşça öne kaydırın ve kafatasının tabanına yerleştirin. Boynundaki gevşek cildi kavrayın ve hayvanı kaldırın. </li>
		<li>Sırt deriyi başparmağın tabanına sabitleyerek hayvanı sırt boyunca stabilize etmek için kalan parmakları kullanın. </li>
		<li>Kuyruğu dördüncü parmağınızla avuç içine doğru sabitleyerek veya arka bacakların sağlam bir yüzeye dayanmasına izin vererek arka kısımları sabitleyin. </li>
	</ol>
	</li>
</ol>
<img alt="Figure 1" src="/files/ftp_upload/10221/10221fig1.jpg"> 
Şekil 1: Fareler için tek elle ve iki elle kısıtlama yöntemi
2. Eldivenler
İşleyicilerin fare ısırıklarından korunmak için giyebilecekleri çeşitli eldivenler mevcuttur. El becerisi kaybı nedeniyle genellikle farelerle çalışmak için uygun değildirler. Çoğu zaman, birçok eldiven tipinin dezavantajları avantajlarından daha ağır basar. 
<ol>
	<li>Pamuklu kanvas iş eldivenleri ısırmaya karşı dayanıklı değildir, ancak dişlerden ve tırnaklardan az miktarda koruma sağlar. Kürk üzerinde kolayca kaydıkları için iyi bir tutuş sağlamazlar.</li>
	<li>Kaliteli deri eldivenler ısırmaya karşı dayanıklıdır. Bununla birlikte, sertlikleri el becerisinde bir azalmaya neden olur. Derinin kalınlığı koruyucu olmasına rağmen dokunma keskinliğini ve el hareketliliğini azaltır. </li>
	<li>Zincir posta eldivenleri, hayvan bakıcısı için psikolojik bir güvenlik duygusu sağlar. Bununla birlikte, ağırdırlar ve çoğu farenin dişleri bağlantılar arasına girebilir. Ek olarak, bu eldivenler el becerisini azaltır ve yanlış kullanıldığında hem hayvan hem de işleyici için daha tehlikelidir. </li>
	<li>Evlerde bulaşık yıkamak için yaygın olarak kullanılan kauçuk yalıtımlı eldivenler, dokulu bir palmar yüzey sağlar ve kemirgenlerin tüyleri üzerinde güvenli bir tutuş sağlar. Esnek lateks yüzey, kemirgen kesici dişlerin delinmesine direnecek kadar kalın ve hayvanı hissedebilecek ve kontrol edebilecek kadar incedir. En büyük dezavantajı, lateks alerjisi olan kişiler için bir endişe kaynağı olan lateksten yapılmış olmalarıdır. Ayrıca, bu eldivenler ışıkta bozulur ve düzenli olarak değiştirilmeleri gerekir. </li>
</ol>
3. Vücut Kısıtlaması
<ol>
	<li>"T. rex tutuşu", sıçanlar için iki elle kullanılan bir kısıtlama yöntemidir.
	<ol>
		<li>Kavranabilecek bir yüzeye bir fare yerleştirin. </li>
		<li>Bir elinizle kuyruğun tabanını tutarak, diğer elinizi işaret ve orta parmaklar bölünmüş olarak yukarı ve sırtın üzerine getirin. </li>
		<li>İşaret parmağı başın bir tarafında ve orta parmağınız diğer tarafında olacak şekilde elinizi omzunuzun üzerine yerleştirin. Başın her iki yanındaki parmaklar, başın yan yana hareketini kısıtlar. </li>
		<li>Üçüncü parmak, dördüncü parmak ve başparmak ile vücudu ön ayakların arkasına sarın. Göğsü sıkıştırmaktan ve solunumdan ödün vermekten kaçınmak için özen gösterilmelidir. Bu tutuş, farenin elden ileri veya geri hareket etmesini önler. </li>
		<li>Arka ayaklara tutunarak veya tutmadan kuyruğun tabanını kavrayarak kuyruğu ve arka kısımları sabitleyin. </li>
		<li>Bu kısıtlama, daha büyük sıçanlarla ve kafaya erişim gerektiğinde iyi çalışır. </li>
	</ol>
	</li>
	<li>Ön bacak çapraz yöntemi, iki elle yapılan bir kısıtlama yöntemidir.
	<ol>
		<li>Hayvanı kavrayabilecekleri bir yüzeye yerleştirin. </li>
		<li>Baskın elinizle kuyruğu tabanda (vücudun 1-2 cm yakınında) tutun ve geriye doğru nazikçe çekiş uygulayın. Bu, hayvanın yüzeye tutunmasına neden olur ve vücudun gerilmesine ve uzamasına neden olur. </li>
		<li>Diğer elinizi arkadan arkaya getirin. </li>
		<li>Fareyi doğrudan omuzların arkasında, parmaklar bir tarafta ve başparmak göğsün diğer tarafında olacak şekilde kavrayın ve elinizi öne doğru kaydırın, böylece ön ayakları öne doğru itin. </li>
		<li>Ön ayaklar farenin çenesinin altından geçecek, fiziksel bir bariyer oluşturacak ve farenin başını parmaklara doğru hareket ettirmesini önleyecektir. </li>
		<li>Göğsü sıkıştırmaktan ve solunumdan ödün vermekten kaçınmaya dikkat edin. </li>
	</ol>
	</li>
</ol>
<img alt="Figure 2" src="/files/ftp_upload/10221/10221fig2.jpg"> 
Şekil 2: Sıçanları dizginlemek için T-rex kavrama ve ön ayak çapraz yöntemi
4. Kısıtlama cihazları
<img alt="Figure 3" src="/files/ftp_upload/10221/10221fig3.jpg"> 
Şekil 3: Broome tarzı sınırlama cihazı
<img alt="Figure 4" src="/files/ftp_upload/10221/10221fig4.jpg"> 
Şekil 4: Düz tabanlı kemirgen sınırlayıcı
<ol>
	<li>Sert cihazlar çeşitli tiplerde gelir ve genellikle kolayca dezenfekte edilebilen gözeneksiz malzemeden yapılır.
	<ol>
		<li>Broome tarzı kısıtlama, intravenöz enjeksiyonlar için kuyruğa erişim sağlamak üzere tasarlanmıştır. Cihazın tüm uzunluğu boyunca uzanan ve hayvanın önce kısıtlayıcının arka kısmına çekilmesine izin veren bir yuva ile inşa edilmiştir. Hayvanı yerinde tutmak için plastik bir burunluk yerleştirilir.
		<ol>
			<li>Vidayı gevşeterek burunluğu emniyet borusunun gövdesinden çıkarın. </li>
			<li>Hayvanı kuyruğun tabanından kavrayın ve kısıtlama borusunu, borunun uzunluğu boyunca uzanan yarık yukarı bakacak şekilde yönlendirin. Hayvanı önce emniyet tertibatının arka kısmına nazikçe çekin. </li>
			<li>Tüpün içine yerleştirilmesini kolaylaştırmak için hayvanı pürüzsüz bir yüzeye yerleştirmek genellikle avantajlıdır. </li>
			<li>Hayvan tüpün içine tamamen girdikten ve kapalı uca çekildikten sonra, açıklığı kapatmak için plastik burunluğu tüpün içine kaydırın. </li>
			<li>Burunluk düzeneğini, hayvanın burnu orta açıklıkta olacak şekilde yerleştirin. Burunluğu, hayvanın nefes alamayacağı kadar sıkı yerleştirmeyin. </li>
		</ol>
		</li>
		<li>Düz tabanlı kemirgen tutucu, kısıtlama cihazının üstünden ve altından erişime izin veren açıklıklara sahip yarım silindirdir. Hayvanı cihazın içinde tutmak için birkaç dereceli yuvadan birine sert bir plastik kapı yerleştirilmiştir.
		<ol>
			<li>Hayvanı kuyruğun tabanından baskın elinizle düz bir yüzeyde veya bir kafes üstünde tutun. </li>
			<li>Düz tabanlı emniyet borusunu diğer elinizle tutun ve açık ucu hayvanın kafasında masa/kafes üst yüzeyine 45°'lik bir açıyla gelecek şekilde açın. </li>
			<li>Bazı hayvanlar hemen tüpe girerken, diğerleri isteksizdir ve işleyicinin onları tüpe yönlendirmesini gerektirir. </li>
			<li>Tüpü hayvanın başının üzerine yerleştirin. Hemen hayvanın kıçına dokunun ve hayvanın geri çekilmesini önlemek için basıncı koruyun. </li>
			<li>Hayvan emniyet cihazına girdikten sonra, hayvanı emniyet cihazında tutmak için plastik kapıyı uygun yuvaya kaydırın. </li>
		</ol>
		</li>
		<li>Tüp tutucular, hava sirkülasyonu için delikler veya yarıklar içeren bir kapalı ucu olan Pleksiglas silindirlerdir. Bazıları geniş bir yuva ile modifiye edilirkas içi enjeksiyonlar, safen ve femur kan toplanması veya deri altı enjeksiyonlar için sırt yüzeyine erişim için bir arka uzuvun maruz kalmasını sağlamak için silindirin uzunluğunun yarısı.
		<ol>
			<li>Hayvanı kuyruğun tabanından baskın elinizle pürüzsüz bir yüzeyde veya bir kafes üstünde kavrayın. </li>
			<li>Emniyet borusunu diğer elinizle tutun ve açık ucu hayvanın kafasında masa/kafes üst yüzeyine 45°'lik bir açıyla gelecek şekilde açı verin. </li>
			<li>Bazı hayvanlar hemen tüpe girecektir. Diğer hayvanlar isteksizdir ve işleyicinin onları tüpe yönlendirmesini gerektirir. </li>
			<li>Tüpü hayvanın başının üzerine yerleştirin. Hemen hayvanın kıçına dokunun ve hayvanın geri çekilmesini önlemek için basıncı koruyun. </li>
			<li>Yönetilemeyen hayvanları tüpe tırmıklayın ve manuel olarak yönlendirin, böylece tutulan derinin tüpteki yarıktan kaymasına izin verin. </li>
			<li>Hayvan emniyet tertibatına girdikten sonra, hayvanın geri çekilmesini önlemek için açıklığı kapatmak gerekir. </li>
			<li>Prosedüre bağlı olarak, açıklık boyunca birkaç parmak yerleştirilir. </li>
			<li>Açıklığa büyük bir lateks eldiven doldurun. Eldivenler genellikle dokuludur ve Pleksiglas yüzeyi kavrar. </li>
			<li>Bazı kısıtlama tüpleri, bu stile veya boyuta özgü kapaklara sahip olacaktır. </li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
<img alt="Figure 5" src="/files/ftp_upload/10221/10221fig5.jpg"> 
Şekil 5: Tüp sınırlama cihazı
<ol start="2">
	<li>Esnek tutucular tek kullanımlık esnek plastik konilerdir. Şeffaf veya opak plastik olarak mevcutturlar. Plastik, hayvanı kısıtlama cihazından çıkarmadan enjeksiyonları gerçekleştirmek için bir iğnenin nüfuz etmesine izin verecek kadar incedir. Hem yetişkin hem de sütten kesilen farelere ve sıçanlara uyacak şekilde çeşitli boyutlarda gelirler.
	<ol>
		<li>Uzuvlara, kuyruğa ve diğer enjeksiyon bölgelerine erişim sağlamak için plastiği makasla kesin. </li>
		<li>Hayvan için uygun bir koni boyutu seçin. Koni, hayvanın kıçının 2-3 inç ötesine uzanacak kadar uzun olmalıdır. </li>
		<li>Hayvanı koninin içine yerleştirin
		<ol>
			<li>Koniyi açın ve üst yarısından kavrayın. </li>
			<li>Hayvanı baskın elinizle kuyruğun tabanından kavrayın, pürüzsüz bir yüzeye veya bir kafes üstüne yerleştirin. </li>
			<li>Emniyet konisini diğer elinizle tutun ve açık ucu hayvanın kafasında masa/kafes üst yüzeyine 45°'lik bir açıyla gelecek şekilde açı verin. </li>
			<li>Bazı hayvanlar hemen koniye girecektir. Diğer hayvanlar isteksizdir ve işleyicinin onları emniyet konisine yönlendirmesini gerektirir. </li>
			<li>Koniyi hayvanın başının üzerine yerleştirin. Hemen hayvanın kıçına dokunun ve hayvanın geri çekilmesini önlemek için basıncı koruyun. Koni açıklığının daha büyük çapı nedeniyle, hayvanların koniden çıkmak için dönme olasılığı çok daha yüksektir. </li>
			<li>Hayvan koniye girer girmez, açık ucu kavrayın ve hayvanı sonuna kadar zorlamak için kapatın. </li>
			<li>Plastiği kuyruğun bir tarafına katlayarak ve bağlayıcı klipsi katlanmış plastiğe uygulayarak, kuyruğu veya cildi sıkıştırmamaya dikkat ederek açıklığı sabitleyin. Alternatif olarak, plastiği kuyruğun etrafına eşit şekilde toplayın ve açıklığı sabitlemek için büküm bağını vücuda mümkün olduğunca yakın yerleştirin. </li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
<img alt="Figure 6" src="/files/ftp_upload/10221/10221fig6.jpg"> 
Şekil 6: Esnek sınırlayıcı
5. Belirli teknik prosedürler için kısıtlama yöntemleri
<ol>
	<li>İntraperitoneal enjeksiyonlar için ventral maruziyet gereklidir.
	<ol>
		<li>Tırmalama
		<ol>
			<li>Hayvanı tırmıklayın ve elinizi karın açıkta kalacak şekilde çevirin. </li>
			<li>Hayvanı, başı 30°'lik bir açıyla aşağı bakacak şekilde eğin. </li>
			<li>Dördüncü parmağınızı kullanarak kuyruğu avuç içine doğru sabitleyerek arka kısmı sabitleyin. </li>
			<li>Alternatif olarak, arka kısım, fazla deriyi sırt boyunca parmaklar ve başparmağın tabanı arasına sıkıştırarak hareketsiz hale getirilebilir. </li>
		</ol>
		</li>
		<li>T. rex kavrama ve ön ayak çapraz kısıtlama yöntemleri
		<ol>
			<li>Yukarıdaki tekniklerden herhangi birini kullanarak hayvanı (yalnızca sıçanlar) kavrayın. </li>
			<li>Serbest eliyle, her iki arka bacağınızı da kancanın üzerinde tutun ve kaudal olarak uzatın. </li>
			<li>Hayvanın ağırlığını elinizin avuç içi sırtında olacak şekilde destekleyin. </li>
			<li>Hayvanı, başı 30°'lik bir açıyla aşağı bakacak şekilde eğin. </li>
			<li>Enjeksiyonu ikinci bir kişi gerçekleştirir. </li>
		</ol>
		</li>
		<li>Sert kısıtlayıcı
		<ol>
			<li>Çoğu sert kısıtlama cihazı, hayvanın dik durmak için içgüdüsel olarak yuvarlanmasını engelleyemez. </li>
			<li>Sert bir tutucu kullanılıyorsa, hayvanı başı aşağı bakacak ve masaya dik olacak şekilde çevirin. </li>
		</ol>
		</li>
		<li>Esnek tutucu
		<ol>
			<li>Esnek bir plastik koni içine düzgün bir şekilde yerleştirildiğinde, hayvan dönemez veya etrafta dönemez. </li>
			<li>Hayvanı, karın içine erişime izin vermek için arka bacaklar yeterince ayrılacak şekilde konumlandırmaya özen gösterilmelidir. </li>
			<li>Hayvan sıkıştırıldığından, dalak, karaciğer, böbrek veya midenin delinmesini önlemek için enjeksiyonun ventral yüzeyde yeterince düşük olması zorunludur. </li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Deri altı boşluğuna yapılan enjeksiyonlar için dorsal maruziyet gereklidir.
	<ol>
		<li>Tırmalama
		<ol>
			<li>Hayvanı tırmıklayın ve arka ayaklarının sağlam, düz bir yüzeyde durmasına izin verin. </li>
			<li>Boyun ve omuzlar üzerinde bir deri çadırı oluşturmak için tırnağı kaldırın. </li>
			<li>Fareleri enjekte ederken elin ağırlığını masanın üzerine koyun. Farenin üzerine ağırlık koymak boğulmaya neden olabilir. </li>
			<li>Fareleri arka kısımda ağırlık ile yerinde tutun, ancak asla göğsü tutmayın. </li>
			<li>Maddeyi, hayvanın vücudundaki parmakların altındaki boşluğa enjekte edin. </li>
		</ol>
		</li>
		<li>Sert sınırlayıcılar
		<ol>
			<li>Hayvanı, cildi yukarı çekecek kadar büyük bir açıklığa sahip bir emniyet cihazına yerleştirin. </li>
			<li>Cildi kavramak için forseps kullanmak gerekebilir. </li>
			<li>Çoğu hayvan, kısıtlama döndürülmedikçe uygun duruşta kalır. </li>
			<li>Enjeksiyon tamamlandıktan sonra cildin açıklıktan çekilmesini önleyen bir hacim enjekte etmeyin. </li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Kas içi enjeksiyon için arka uzuvun kısıtlanması gereklidir; safen ven, femoral ven veya femoral arterden kan çekilmesi; ve ayak tabanına enjeksiyon.
	<ol>
		<li>Farelerin ve küçük sıçanların taranması (200 g'ın altında)
		<ol>
			<li>Hayvanı tırmıklayın ve elinizi karın açıkta kalacak şekilde çevirin. </li>
			<li>Ayağı parmakların arasına yerleştirerek arka ayağa erişin. </li>
			<li>Bu yöntem en iyi şekilde sadece ayak pedi enjeksiyonları için kullanılır. </li>
		</ol>
		</li>
		<li>T. rex kavrama veya ön bacak çapraz
		<ol>
			<li>Bu yöntem iki kişi gerektirir: biri vücudun kısıtlanması için, diğeri uzuvun kısıtlanması ve enjeksiyonun performansı için. </li>
			<li>Safen ven, femoral ven veya artere veya enjeksiyon için kaslara erişim için ayağı kavrayarak farenin arka bacağını uzatın. </li>
			<li>Ayak tabanının enjeksiyonu için bacağınızı kancanın hemen üzerinde tutun. </li>
		</ol>
		</li>
		<li>Sert sınırlayıcılar
		<ol>
			<li>Hayvanı önce bir emniyet tüpü kafasına yerleştirin. </li>
			<li>Kuyruğu ve arka kısımları tüpten geriye doğru nazikçe çekerek açığa çıkarın. </li>
			<li>Böğrün derisini kavrayarak ve dizini düz bir şekilde kilitleyerek bacağı hareketsiz hale getirin. Bu, fare veya sıçanda enjeksiyon için kuadriseps kasına erişim sağlar ve hayvanın kısıtlama cihazından çıkmasını önler. </li>
			<li>Büyük yuvaları olan cihazlarda, numune alma veya ayak pedi enjeksiyonu için kan damarlarına erişim için bacağı tüpün dışına yerleştirin. </li>
			<li>Düz uçlu parçalara sahip bu kısıtlama tüpleri, tüpün masanın üzerinde durmasına ve işlem sırasında cihazı stabilize etmesine izin verir. </li>
			<li>Hayvan bu şekilde güvence altına alındığından, tek bir teknisyen tarafından sıçanların enjeksiyonlarını veya kan örneklemesini yapmak mümkündür. </li>
		</ol>
		</li>
		<li>Esnek kısıtlama
		<ol>
			<li>Esnek plastik kısıtlamalar, uzuvların maruz kalmasına uyum sağlamak için açıklıklar kesilerek değiştirilebilir. </li>
			<li>Yapılan açıklıklar her hayvan için veya belirli prosedürler için özelleştirilebilir. </li>
			<li>Hayvan bu şekilde güvence altına alındığından, tek bir teknisyenin sıçanlara enjeksiyon veya kan örneklemesi yapması mümkündür. </li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
</ol>

Kafes değiştirme ve teknik prosedürler için rutin kullanım, deney hayvanları için bir stres nedenidir. Bu tür stres, hayvanın genel refahı için bir tehdit oluşturmasa da, fizyolojik parametrelerde araştırma verileri üzerinde olumsuz bir etkiye sahip olabilecek dalgalanmalara neden olabilir. Nitelikli personelin, uygun tekniklerin ve ekipmanın kullanılması stresin bir kısmını azaltabilir.

kemirgen taşıma ve kısıtlama teknikleri

Rodent Handling and Restraint Techniques

Kaynak: Kay Stewart, RVT, RLATG, CMAR; Valerie A. Schroeder, RVT, RLATG. Notre Dame Üniversitesi, IN 
Farelerin ve sıçanların minimum düzeyde ele alınmasının bile hayvanlar için stresli olduğu gösterilmiştir. Kafes değiştirme ve diğer noninvaziv prosedürler için kullanım, kalp atış hızında, kan basıncında ve serum kortikosteron seviyeleri gibi diğer fizyolojik parametrelerde bir artışa neden olur. Dalgalanmalar birkaç saate kadar devam edebilir. Enjeksiyonlar ve kan alımları için gerekli olan kısıtlama yöntemleri de bilimsel verileri potansiyel olarak etkileyebilecek fizyolojik değişikliklere neden olur. Hayvanlar üzerindeki etkileri en aza indirmek için farelerin ve sıçanların uygun şekilde ele alınması konusunda eğitim gereklidir. 1 Fareler ve sıçanlar, kısıtlama cihazlarıyla veya kimyasal maddelerle manuel olarak zaptedilebilir. Manuel yöntemler ve kısıtlama cihazlarının kullanımı bu yazıda ele alınmıştır. Tüm kısıtlama yöntemleri, hayvanları ev kafeslerinden kaldırma işlemini içerir.

Kemirgen Taşıma ve Kısıtlama Teknikleri

Source: Kay Stewart, RVT, RLATG, CMAR; Valerie A. Schroeder, RVT, RLATG. University of Notre Dame, IN
It has been demonstrated that even minimal handling ...

Kemirgenler, çeşitli bilimsel soruları araştırmak için yaygın olarak kullanılan model organizmalardır ve bu hayvanlar için minimum elleçlemenin bile stresli olduğu gösterilmiştir. Kafes değiştirme gibi basit görevlerin ele alınması, kalp atış hızında, kan basıncında ve serum kortikosteron seviyelerinde artışa neden olabilir ve bu dalgalanmalar birkaç saat devam edebilir. Yaygın enjeksiyon ve kan alma prosedürleri için gerekli olan kısıtlama yöntemleri de bilimsel verileri potansiyel olarak etkileyebilecek fizyolojik değişikliklere neden olabilir. Bu nedenle, hayvanlar üzerindeki bu etkileri en aza indirmek için farelerin ve sıçanların uygun şekilde ele alınması için eğitim gereklidir. Bu videoda, önce kemirgenlerle başa çıkmak için temel teknikleri gözden geçireceğiz ve daha sonra manuel teknikler ve kısıtlama cihazlarının kullanımını içeren yöntemler dahil olmak üzere kemirgen kısıtlama prosedürlerini tartışacağız. Kemirgen işlemenin temellerini tartışarak başlayalım. Yetişkin bir fareyi veya sıçanı hareket ettirmenin en yaygın yöntemlerinden biri, hayvanı kuyruğundan kaldırmaktır. Bunu yaparken kuyruğun kıçına yakın tabandan kavranması şarttır. Hayvan kuyruğunun ucundan kaldırılırsa, vücut ağırlığı nedeniyle deri çekilebilir ve kuyruk amputasyonu ile sonuçlanan bir yaralanmaya yol açabilir. Daha da önemlisi, bir hayvanı bir yerden başka bir yere taşımak hızlı ve istikrarlı bir şekilde yapılmalıdır. Hayvanı herhangi bir süre havada asılı bırakmak sadece sıkıntıya neden olmakla kalmaz, aynı zamanda hayvanın bükülmesine veya mücadele etmesine neden olarak muhtemelen kuyruğa zarar verir. Ayrıca, işleyici hayvanın altına elini koymamalıdır, çünkü güvenlik için onu kavramaya çalışabilir ve bu da bir ısırıkla sonuçlanabilir. Yetişkin kemirgenleri idare etmenin bir başka yöntemi de forseps kullanmaktır. Yaygın olarak kullanılan forseps türleri, bir yastık sağlamak için uçlarına kauçuk, plastik veya silikon boru yerleştirilmiş uzun pansuman forsepsleri veya dil forsepsleridir. Forseps, fareyi boynun tırnağında veya kuyruğun tabanında kavrayabilir. Forseps kullanımı, hayvandan hayvana çapraz kontaminasyonu en aza indirir ve her hayvan kafesi arasında eldiven değiştirmekten daha hızlı ve daha ucuzdur. Yeni başlayanların, fareleri forsepslerle ne kadar sıkı kavrayacakları konusunda, özellikle de nefes almayı engelleyebileceğinden, tırtıkta eğitmeleri gerekecektir. Forsepsleri kuyrukta kullanırken, yaralanmayı önlemek için forsepsleri kuyruğun tabanına yakın bir yere yerleştirmeye özen gösterilmelidir. Farklı hayvan gruplarının taşınması arasında %70 etanol içinde yüzleri aşağı bakacak şekilde saklamayı unutmayın. Ayrıca, hayvanları transfer etmek için gözeneksiz bir malzemeden yapılmış tüpler kullanılabilir. Bu tüpler, hayvanın barınması veya güvenli bir sığınak araması için bir kafese eklenebilir. Çoğu fare veya sıçan, kafesleri açıldığında tüplere isteyerek girer veya tüpe kolayca yönlendirilebilirler. Hayvan içerideyken, açık uçları avucunuz ve parmaklarınızla kapatın. Daha sonra, hayvanı ayrılmaya teşvik etmek için, tüpü yeni kafeste yavaşça yukarı doğru eğin. Hayvanlar bu kafes değiştirme yöntemine kolayca şartlandırılır, bu da hayvanları bir yerden başka bir yere taşımak için hızlı ve kolay bir süreç haline getirir. Bazı kurumlar, hayvanların, özellikle de farelerin, rutin kullanım sırasında bile vücutları tarafından kaldırılmasını tercih eder. Yetişkin sıçanlar göğüs kafesinin etrafında nazikçe kavranır, kaldırılır ve hızlı bir şekilde başka bir kafese yerleştirilir. Hayvanların erken yaşlardan itibaren bu kullanım yöntemine alışmaları önemlidir. Genç farelerle çalışırken, farenin sırtına bir el koymak, farenin kavramasına izin vererek işleyicinin avucuna atlamasına neden olur. Farenin kavrayıştan kıvranmasını önlemek için ikinci bir el gerekebilir. Yenidoğan fareler veya sıçanlarla kafesleri değiştirirken, yuvayı sağlam tutarken bunları çıkarmak genellikle gereklidir. Yuvayı ve yavruları kafesin altından yeni bir kafese almak için iki elinizi kullanın. Yavruları düşürmemek için parmaklarınızı birbirine yakın tutun. Yuva yeni bir kafese taşındıktan sonra, tüm yavruların mevcut olduğunu doğrulamak önemlidir. Alternatif olarak, yenidoğan kemirgenleri yuvalarında taşımak için plastik bir kepçe kullanılabilir. Bunu yaparken, yenidoğanların kıpırdamasını veya dışarı atlamasını önlemek için elinizi kepçenin üzerine koymanız önemlidir. Yavruların bireysel olarak ele alınmasıyla karşılaştırıldığında, tüm yuvayı kepçelemek hem yavrular hem de barajlar için daha az üzücüdür. Artık kemirgen kullanımının temellerini tartıştığımıza göre, kemirgen kısıtlaması için ayrıntılı prosedürleri inceleyelim. İlk olarak, bu hayvanları manuel olarak nasıl dizginleyeceğimizi ana hatlarıyla açıklayacağız. Fareler ve genç sıçanlar, tek elle veya iki elle kullanılan teknik kullanılarak kısıtlanabilir. Bununla birlikte, yetişkin sıçanlar için, T-rex kavrama veya ön ayak çapraz yöntemi kullanılarak tam vücut kısıtlaması tercih edilen tekniklerdir. İki elle kısıtlama yöntemini öğrenerek başlayalım. İlk olarak, hayvanı tel çubuk kapağı gibi kavrayabilecekleri bir yüzeye yerleştirin. Baskın elinizle kuyruğu tabanda tutun ve fareyi yavaşça geriye doğru çekin. Bu, hayvanın yüzeye tutunmasına ve vücudunun gerilmesine izin vermesine neden olur. Ardından, baskın olmayan işaret parmağınız ve başparmağınız kafatasının tabanına yerleştirilmiş olarak kemirgeni nazikçe sabitleyin ve hayvanı kaldırmak için boynundaki gevşek deriyi kavrayın. Hayvanı sırtı başparmağınızın tabanına dayanacak şekilde sabitlemek için kalan parmaklarınızı kullanın. Kuyruğu yüzük parmağınızla avucunuzun içine doğru sabitleyerek arka kısmı sabitleyebilirsiniz. Tek elle kısıtlama yöntemi için, hayvanı tekrar kavrayabileceği bir yüzeye yerleştirin. Kuyruğu baskın olmayan elinizin üçüncü ve dördüncü parmakları arasında tutun ve geriye doğru nazikçe çekiş uygulayın. İşaret parmağınız ve aynı elinizin baş parmağı ile kemirgeni omuzların üzerine sabitleyin. Baş parmağınızı ve işaret parmağınızı nazikçe öne kaydırın ve boynundaki gevşek deriyi kavrayın ve hayvanı kaldırın. Sırt deriyi başparmağınızın tabanına sabitleyerek hayvanı sırt boyunca sabitlemek için orta parmağınızı kullanın. Tartışacağımız üçüncü kısıtlama yöntemi, fareler için iki elle kullanılan bir kısıtlama yöntemi olan T-rex tutuşudur. İlk olarak, fareyi kavrayabileceği bir paspas gibi sağlam bir yüzeye yerleştirin. Bir elinizle kuyruğun tabanını tutarken, diğer elinizi işaret parmağınız ve orta parmağınız her iki tarafta bölünmüş olacak şekilde farenin omzunun üzerine koyun. Bu, yan yana baş hareketini kısıtlamak içindir. Baş stabilize edildikten sonra, orta ve yüzük parmakları ve başparmağınızla vücudu ön ayakların arkasından sarın. Hayvanın nefes almasını tehlikeye atmaması için göğsü sıkıştırmaktan kaçının. Son olarak, oral bir gavaj uygulamayı planlıyorsanız, arka ayaklara tutunmadan kuyruğun tabanını kavrayarak kuyruğu ve arka kısımları sabitleyin; veya niyet hayvanı enjekte etmekse, arka ayaklara tutunarak. Son olarak, ön bacak çapraz yöntemini kullanarak bir fareyi dizginlemek için, hayvanı kavrayabileceği bir yüzeye yerleştirin. Daha sonra baskın elinizle kuyruğu tabanda tutun ve hayvanın vücudunun uzaması için geriye doğru hafif bir çekiş uygulayın. Daha sonra, diğer elinizle, parmaklarınız bir tarafta ve başparmağınız göğsün diğer tarafında olacak şekilde hayvanı doğrudan omuzlarınızın arkasından kavrayın ve elinizi öne doğru kaydırın. Bu hareket, hayvanın ön ayaklarını çenesinin altından geçmeye zorlayacak ve hayvanın başını aşağı hareket ettirmesini engelleyen fiziksel bir bariyer oluşturacaktır. Nefes almada zorluğa yol açacak şekilde göğsü sıkıştırmaktan kaçınmaya özen gösterin. Artık manuel kısıtlama tekniklerini gözden geçirdiğimize göre, özel cihazlar kullanarak kemirgenleri nasıl dizginleyeceğimizi öğrenelim. Hakkında bilgi edineceğimiz ilk cihaz, Broome tarzı kısıtlama cihazıdır. Cihazın tüm uzunluğu boyunca uzanan bir yuvaya ve hayvanı yerinde tutmak için yerleştirilmiş plastik bir burunluğa sahiptir. Burunluğu çıkarmak için vidayı gevşeterek başlayın. Ardından, emniyet borusunu yarık yukarı bakacak şekilde yönlendirin. Hayvanı kuyruğun dibinden kavrayın ve hayvanı önce arka kısımları olmak üzere yavaşça emniyet tertibatına çekin. Hayvan içeri girdikten sonra, açılmasını önlemek için plastik burunluğu tüpün içine geri kaydırın. Burunluğu, hayvanın burnu açıklıkta ortalanacak şekilde yerleştirin. Hayvanın nefes alamayacağı kadar sıkı yerleştirmeyin. Emniyet tertibatına bir başka örnek, cihazın üstünden ve altından erişime izin veren açıklıklara sahip yarım silindir olan düz tabanlı kemirgen tutucudur. Ayrıca, hayvanı yerinde tutmak için sert bir plastik kapının yerleştirilebileceği yuvalara sahiptir. Bu kısıtlayıcıyı kullanmak için, baskın elinizle kemirgeni kuyruğun tabanından kavrayın ve pürüzsüz bir yüzeye yerleştirin. Diğer elinizi kullanarak, düz tabanlı emniyet borusunu, açık ucu hayvanın kafasında 45 derecede olacak şekilde tutun. yüzeye açı. Tüpü hayvanın başının üzerine yerleştirin ve hayvanın geri çekilmesini önlemek için hemen kıçına hafifçe vurun. Cihaza girdikten sonra, hayvanın konumunu sabitlemek için plastik kapıyı uygun yuvaya kaydırın. Tartışacağımız üçüncü cihaz türü tüp tutuculardır. Bunlar, hava sirkülasyonu için delikler içeren bir kapalı ucu ve açık ucunda bir yarık bulunan pleksiglas silindirlerdir. Bir tüp tutucu kullanmak için, hayvanı kavrayın ve pürüzsüz bir yüzeye yerleştirin. Daha sonra, tüpün açık ucunu hayvanın kafasına 45 ° C'ye yerleştirin. açı. Kemirgen tüpe girer girmez, geri çekilmesini önlemek için kıçına hafifçe vurun. Son olarak, Pleksiglas yüzeyi kavrayacak ve hayvanın tüpten çıkmasını önleyecek büyük bir lateks eldiven doldurarak açıklığı kapatın. Son olarak, farklı boyutlarda mevcut olan tek kullanımlık esnek plastik koniler olan esnek tutucuların nasıl kullanılacağını tartışacağız. Bir koni seçimi hayvan büyüklüğüne bağlıdır. İdeal olarak, hayvanın kıçından 2-3 inç öteye uzanacak kadar uzun olmalıdır. Önceki yöntemlerde olduğu gibi, hayvanı pürüzsüz bir yüzeye yerleştirin ve kısıtlama konisini 45'e yerleştirin. hayvanın başının üzerindeki açı. Hayvan koniye girer girmez, açık ucu kavrayın ve hayvanı sonuna kadar zorlamak için kapatın. Plastiği kuyruğun bir tarafına katlayarak ve katlanmış plastiğe bir bağlayıcı klips uygulayarak açıklığı sabitleyin, kuyruğu veya cildi sıkıştırmamaya dikkat edin. Kullanımın temellerini ve farklı kısıtlama tekniklerini tartıştıktan sonra, herhangi bir in vivo bilim insanı için bu prosedürleri anlamanın neden gerekli olduğunu gözden geçirelim. Bu temel işleme prosedürlerinin arkasındaki bilgi ve mantık, hayvan sağlığını korumanın merkezinde yer alır. Hayvanlar doğdukları andan itibaren, bilimsel amaçtan bağımsız olarak yapılması gereken tartım, muayene ve kafes değiştirme gibi basit, günlük faaliyetler için ele alınırlar. Kısıtlama prosedürleri, işaretleme amaçları için de yararlıdır. Örneğin, kulak delme gibi prosedürleri gerçekleştirmek için hayvanın tırmıklama ile zapt edilmesi gerekir. Öte yandan, sıçanlara bir mikroçip yerleştirirken, kalıcı olarak etiketlenebilmeleri için bir kısıtlama cihazı kullanılmalıdır. Son olarak, manuel kısıtlama yöntemleri, deri altı ve intraperitoneal uygulama gibi yaygın enjeksiyon prosedürleri için kullanılır. Ve kısıtlama cihazlarının bilgisi, enjeksiyon sırasında minimum hayvan hareketi gerektiren intravenöz uygulama yapılırken yararlıdır. JoVE'nin kemirgenler için temel kullanım ve kısıtlama tekniklerine girişini izlediniz. Bu prosedürler kendinden emin ve sağlam ama nazik bir dokunuş gerektirir. Geçici yaklaşımlar, işleyici ısırıklarına neden olabilirken, agresif kullanım kemirgenin yaralanmasına neden olabilir. Bu nedenle, bu teknikleri kapsamlı bir şekilde öğrenmek ve iddialı ama nazik bir tutuş dengesi bulmak önemlidir. Her zaman olduğu gibi, izlediğiniz için teşekkürler!

Education

JoVE Science Education

Basic Biology

Temel Biyoloji

Lab Animal Research

Laboratuvar Hayvanı Araştırmaları

Rodents

Kemirgenler

minimizing stress in mouse and rat handling

Mouse and rat handling can create stress, even when the procedure is brief. Cage changing and other noninvasive tasks can raise heart rate, blood pressure, and serum corticosterone levels. These changes may last for several hours.

Restraint for injections and blood withdrawal can also affect the animals and may influence scientific data. Because of this, proper training is needed when working with mice and rats. The goal is to reduce the effect of handling on the animals as much as possible.

Mice and rats can be restrained by hand, with restraint devices, or with chemical agents. This manuscript focuses on manual methods and restraint devices. Each restraint method begins with lifting the animal from its home cage.

Minimizing Stress in Mouse and Rat Handling

minimizing-stress-in-mouse-and-rat-handling

rodent handling and restraint techniques

Mouse and rat handling can create stress, even when the procedure is brief. Cage changing and other noninvasive tasks can raise heart rate, blood pressure, and serum corticosterone levels. These changes may last for several hours. Restraint for injections and blood withdrawal can also affect the animals and may influence scientific data. Because of this, proper training is needed when working with mice and rats. The goal is to reduce the effect of handling on the animals as much as possible. <br...

basic care procedures

Caring for Research Mice and Rats

Research mice and rats need careful housing, feeding, and handling. These animals make up over 90% of the animals used for biomedical research, so their care can strongly affect experiment results. Both immunocompetent animals, which have a normal immune response, and immunocompromised animals need proper support during studies. Some research animals have weakened immune systems and need extra steps to stay healthy. Common examples include naturally occurring immunocompromised mice and mice...

fundamentals of breeding and weaning

Mouse and Rat Breeding Methods

Mouse and rat breeding methods are used in biomedical research to supply animals for laboratory studies. Many research facilities buy mice from commercial breeders, but some also breed mice and rats in-house. In-house breeding can reduce costs and give researchers more options for their studies. Breeding animals in the facility also lets researchers manage genetics and timing. They can plan pregnancies to match research needs and work with embryos and newborns when needed. Mice and rats can be...

rodent identification i

Mice and Rats: Ear Tags and Punch Codes

Proper identification of laboratory mice and rats is important in biomedical research. The right animal must be used for each procedure and for data collection. Clear identification helps keep research records accurate and reliable. This page focuses on permanent identification methods for mice and rats. These methods include ear tags, ear punch codes, microchip implantation, tail tattoos for adult mice, and toe tattoos for neonates. Temporary methods such as dyes and marking pens can also be...

rodent identification ii

Rodent ID Methods for Accurate Records

Accurate rodent identification supports reliable animal records and data collection. Research animal records may include simple cage cards or a detailed database with full information on each animal. Individual identification is the key part of keeping those records correct. Mice and rats can be identified by several methods. These include tattooing, microchip placement, and temporary identification methods. Each method serves a different need in research animal management. The procedure also...

compound administration i

Rodent Injection Routes and Restraint

Rodent injection routes and restraint methods are key parts of compound administration in mice and rats. When a substance must be injected into an animal, the delivery route and the amount of compound must be chosen with care. The right choice helps match the dose to the protocol. Several factors guide the route of administration. These include the pH of the solution, the volume needed for the desired dose, and the viscosity of the solution. Viscosity means how thick or resistant to flow a...

compound administration ii

Choosing the Right Route for Compound Delivery

Compound delivery is a key part of many animal studies. The route used to give the compound can change how it is absorbed. Careful planning helps make sure the compound is delivered correctly. The substance itself also matters when a route is chosen. Its pH, viscosity, and concentration can all affect which method is best. These properties help guide the choice of administration route in a study.

compound administration iii

Specialized Injection Routes in Mice and Rats

Specialized injection routes in mice and rats are sometimes used when standard compound administration methods are not enough. Some study protocols call for less common routes such as intradermal, intranasal, and intracranial injections. These methods are used in laboratory animals and require careful technique. Intradermal injections place a compound into the skin. Intranasal injections deliver a compound through the nose. Intracranial injections are given into the brain. Because these...

compound administration iv

Specialized Injection Routes in Rodents

Specialized injection routes in laboratory mice and rats include intracardiac, footpad, and retro-orbital administration. These methods are used when a protocol calls for a route that is less common than standard compound delivery methods. Each route requires specialized training to perform correctly. Intracardiac injections deliver into the heart, footpad injections target the paw area, and retro-orbital injections are given around the eye region. Because these procedures are more technical,...

blood withdrawal i

Rodent Blood Collection Methods

Blood collection in mice and rats is a common part of research studies. The method used depends on how much blood is needed, how often samples must be taken, the animal's health, and the technician's skill level. This topic includes three blood withdrawal methods: retro-orbital sinus bleeds, initial tail snip bleeds, and intracardiac bleeds. Each method requires general anesthesia, which means the animal is made unconscious before the procedure begins.

blood withdrawal ii

Rodent Blood Sampling Methods

Blood collection from mice and rats can be done with several methods. The choice depends on the restraint needed, how invasive the procedure is, and whether a general anesthetic is required. These factors help determine which method is best for a given analysis. One older method uses the retro-orbital sinus cavity, which is located behind the eye. This approach has been debated because it may cause tissue damage or even blindness. For that reason, facial vein and submandibular vein bleeding...

anesthesia induction and maintenance

Laboratory Anesthesia and Pain Control

Laboratory anesthesia and pain control are important parts of veterinary care for research animals. The Guide for the Care and Use of Laboratory Animals says that pain assessment and pain relief must be part of that care. Anesthesia means the loss of feeling or sensation.

considerations for rodent surgery 

Aseptic Steps in Rodent Survival Surgery

Aseptic technique is essential for rodent survival surgery. It is used to keep the surgical site as clean as possible and to reduce contamination during the procedure. This approach includes patient preparation, surgeon preparation, and sterilization of instruments and other supplies. It also depends on a clean, controlled environment. Careful planning before surgery helps set up these steps for success. During the operation, animals need close monitoring. After the surgery, postoperative...

diagnostic necropsy and tissue harvest

Rat Necropsy for Tissue Collection

Rat necropsy is a key step for collecting organs and tissues at the end of many animal studies. These final samples are used for data collection time points and later testing. Because the samples are used for analysis, the way they are taken can affect sample quality. Careful collection methods help preserve the organs and tissues for testing. The method of euthanasia, or the procedure used to humanely end the animal's life, can also affect sample quality. This article outlines proper necropsy...

sterile tissue harvest

Aseptic Organ Collection in Rats and Mice

Aseptic organ collection in rats and mice is used to keep harvested tissues free from contamination. The process is important when tissues will be used for cell and tissue cultures. It also supports later protein and RNA analysis, as well as metabolic profiling of tissues. The transcript connects this work to the 3 R's, which were introduced in 1959 by W.M.S. Russell and R.L. Burch in The Principles of Humane Experimental Technique. The 3 R's are replacement, reduction, and refinement in the...

early intervention and pain management

Erken Müdahale ve Ağrı Yönetimi

Burada açıklanan tüm hayvan prosedürleri, kurumsal hayvan etiği yönergeleri doğrultusunda yürütülmeli ve IACUC tarafından onaylanmalıdır. Tüm prosedürler, 3R ilkeleri - Değiştirme, Azaltma ve Rafine Etme - çerçevesinde yürütülmeli ve eğitimli personel tarafından gerçekleştirilmelidir.  Hayvanları Ağrı ve Sıkıntı Belirtileri İçin İzleme Ağrının erken belirtilerini tanımak, etik hayvan araştırmaları için esastır. Hayvanlar, genel refahı yansıtan davranışsal, fiziksel ve fizyolojik parametreler...

humane euthanasia and confirmation of death in rodents

Kemirgenlerde İnsani Öldürme ve Ölüm Onayı

Burada açıklanan tüm hayvan prosedürleri, kurumsal hayvan etiği yönergeleri ve IACUC tarafından onaylanmış şekilde yürütülmelidir. Tüm prosedürler, 3R prensiplerini -Değiştirme, Azaltma ve Rafine Etme- takip etmeli ve eğitimli personel tarafından gerçekleştirilmelidir. Kemirgenlerde insancıl son noktalar, hayvanın önemli ağrı, sıkıntı veya sağlık durumu kötüleşmesi yaşadığını gösteren önceden tanımlanmış klinik, davranışsal veya fizyolojik belirtilerdir. Bu belirtilerin gözlendiği durumlarda,...

habituation and positive reinforcement for rodent handling

Kemirgenlerin Elle Çalışması için Alışkanlık Oluşturma ve Olumlu Takviye

Burada açıklanan tüm hayvan prosedürleri, kurumsal hayvan etiği yönergelerine uygun olarak yürütülmeli ve IACUC tarafından onaylanmalıdır. Tüm prosedürler, 3R ilkelerini –Değiştirme, Azaltma ve Rafine Etme– takip etmeli ve eğitimli personel tarafından gerçekleştirilmelidir. Alışma ve pozitif pekiştirme, kemirgenlerde rutin kullanım ve deneysel prosedürler sırasında stresi azaltmaya yardımcı olan rafine etme stratejileridir. Bu yaklaşımlar hayvan refahını iyileştirir, gönüllü işbirliğini teşvik...

breeding management in rodent studies

Kemirgen Çalışmalarında Üreme Yönetimi

Burada açıklanan tüm hayvan prosedürleri, kurumsal hayvan etiği yönergelerine uygun olarak yürütülmeli ve IACUC tarafından onaylanmalıdır. Tüm prosedürler, 3R—Değiştirme, Azaltma ve Rafine Etme—ilkelerine uymalı ve eğitimli personel tarafından gerçekleştirilmelidir. Üreme yönetimi, gereksiz hayvan üretimini en aza indirerek ve yalnızca bir çalışma için gereken hayvan sayısının üretilmesini sağlayarak 3R'leri destekler. Etkili üreme stratejileri, fazla hayvanları azaltmaya ve bilimsel hedefleri...

transport and acclimatization of rodents for research

Araştırma Amaçlı Kemirgenlerin Taşınması ve İklimlendirilmesi

Burada açıklanan tüm hayvan prosedürü, kurumsal hayvan etiği yönergeleri doğrultusunda yürütülmeli ve IACUC tarafından onaylanmalıdır. Tüm prosedürler, 3R ilkeleri—Değiştirme, Azaltma ve Rafine Etme—ilkelerine uygun olarak gerçekleştirilmeli ve eğitimli personel tarafından yapılmalıdır. Araştırma amacıyla kemirgenlerin taşınması, stresi en aza indirgemek ve deneysel sonuçlar üzerindeki etkiyi en aza indirgemek için hayvan refahını koruyan prosedürler gerektirir. Taşıma kafesleri, yeterli...

environmental enrichment for rodents

Kemirgenler İçin Çevre Zenginleştirme

Burada açıklanan tüm hayvan prosedürleri, kurumsal hayvan etiği yönergelerine uygun olarak yürütülmeli ve IACUC tarafından onaylanmalıdır. Tüm prosedürler, 3R'lerin-Yerine Koyma, Azaltma ve İyileştirme-ilkelerine uygun olarak gerçekleştirilmeli ve eğitimli personel tarafından yapılmalıdır. Çevresel zenginleştirme, laboratuvar kemirgenlerinde doğal davranışları teşvik eden, psikolojik refahı artıran ve daha iyi refahı destekleyen nesneler ve uygulamaları içerir. Çevresel zenginleştirme, kemirgen...

rodents

Learn how mouse and rat handling can affect stress, heart rate, and blood pressure, and explore manual restraint methods and devices used in labs.

Minimizing Stress in Mouse and Rat Handling

Description

Transcript

Tags