Translate this page to:
In JoVE (5)
- Principles of Surgery Nager für die New Surgeon
- Diagnose von Ekto-und Endoparasiten in Laborratten und Labormäusen
- Manuelle Restraint und Common Compound Verabreichungswege bei Mäusen und Ratten
- Diagnostic Necropsy und ausgewählte Gewebe und Probenentnahme bei Ratten und Mäusen
- Maus Sperma Kryokonservierung und Recovery mit der I · Cryo-Kit
Other Publications (5)
Automatic Translation
This translation into German was automatically generated.
English Version | Other Languages
Articles by Kathleen R. Pritchett-Corning in JoVE
Principles of Surgery Nager für die New Surgeon
Kathleen R. Pritchett-Corning, Guy B. Mulder, Yiying Luo, William J. White
Charles River, Research Models and Services
Bevor der Operation sollte ein neuer Chirurg eine Ausbildung in grundlegenden chirurgischen Techniken und Konzepte. Dieser Artikel wird grundlegende chirurgische Überlegungen mit einem Schwerpunkt auf Nagetiere zu präsentieren.
Diagnose von Ekto-und Endoparasiten in Laborratten und Labormäusen
Christina M. Parkinson1, Alexandra O'Brien1, Theresa M. Albers1, Meredith A. Simon1, Charles B. Clifford1, Kathleen R. Pritchett-Corning2,3
1Research Animal Diagnostic Services, Charles River, 2Research Models and Services, Charles River, 3Department of Comparative Medicine, University of Washington
Dieser Artikel beschreibt verschiedene Verfahren für das Screening von Ratten und Mäusen zu Endo-oder ectoparasitism erkennen. Mehrere diagnostische Assays gezeigt werden, sowohl die für den Einsatz von lebenden Tieren und denen, die nach Euthanasie der Tiere verwendet. Fotos zur Identitätsfeststellung von Ratte und Maus Parasiten Hilfe einbezogen werden.
Manuelle Restraint und Common Compound Verabreichungswege bei Mäusen und Ratten
Elton Machholz1, Guy Mulder2, Casimira Ruiz1, Brian F. Corning1, Kathleen R. Pritchett-Corning2
1Insourcing Solutions, Charles River, 2Research Models and Services, Charles River
Sicheres Arbeiten und menschlich mit Forschung Nager erfordert eine Kernkompetenz in der Handhabung und Zurückhaltung Methoden. Dieser Artikel wird die grundlegenden Prinzipien erforderlich, um sicher zu handhaben und effektiv zu verwalten Verbindungen an Mäusen und Ratten.
Diagnostic Necropsy und ausgewählte Gewebe und Probenentnahme bei Ratten und Mäusen
Christina M. Parkinson1, Alexandra O'Brien1, Theresa M. Albers1, Meredith A. Simon1, Charles B. Clifford2, Kathleen R. Pritchett-Corning2,3
1Research Animal Diagnostic Services, Charles River, 2Research Models and Services, Charles River, 3Department of Comparative Medicine, University of Washington
Dieser Artikel beschreibt die Verfahren für die Durchführung eine grundlegende Obduktion einer Maus oder Ratte, und die Sammlung der wichtigsten Organe, sowie eine größere Herausforderung Probe Typen aus für histologische, mikrobiologische und PCR Auswertung.
Maus Sperma Kryokonservierung und Recovery mit der I · Cryo-Kit
Ling Liu1, Steven R. Sansing1, Iva S. Morse1, Kathleen R. Pritchett-Corning2
1Genetically Engineered Models and Services, Charles River, 2Research Models and Services, Charles River
Hier zeigen wir den neu entwickelten I • Cryo-Kit für Mausspermien Kryokonservierung. Zwei-Zell-Stadium der Embryonalentwicklung mit aufgetauten Sperma wurde konsequent in 5 Mausstämme mit dem Einsatz dieses Kits verbessert. Über einen 1,5 Jahre Zeitraum wurden 49 genetisch veränderte Mauslinien durch Spermien Kryokonservierung mit dem I • Cryo-Kit archiviert und später erfolgreich durch IVF gewonnen.
Other articles by Kathleen R. Pritchett-Corning on PubMed
Zeitgenössische Prävalenz Von Infektionserregern in Labor-Mäuse Und Ratten
Laboratory Animals. Apr, 2009 | Pubmed ID: 19015179
Regelmäßige Health Screening von Nagetieren, die in der Forschung verwendeten ist wegen der Folgen der unerwünschten Infektionen erforderlich. Ein Faktor für das Risiko einer Infektion für jeden bestimmten Agent ist die Prävalenz; andere Faktoren gleich sind, ist ein weit verbreitete Agent wahrscheinlicher als ein seltener eine Forschungseinrichtung und führen zu Infektion eingebracht werden. Als Indikator für zeitgenössische Prävalenz in Labor-Populationen von Ratten und Mäusen war die Rate der positiven Ergebnisse in den Proben, die in einem großen kommerziellen Nagetier diagnostische Labor erhielt für dieses Papier zusammengestellt. Obwohl Proben Labor Nagetier Anbieter ausgeschlossen wurden, tabelliert Ergebnisse von Proben aus mehr als 500.000 Mäuse und 80.000 Ratten eingereicht über mehrere Jahre aus Pharma, Biotechnologie, akademischen und staatlichen Institutionen in Nordamerika und Europa, so dass sinnvolle Bestimmung, die die Agenten im Forschungsumfeld sind gegenüber, die Agenten selten sind. Bei Mäusen sind häufig erkannte Infektionserreger Maus Norovirus, Parvoviruses, Maus-Hepatitis-Virus, Rotaviren, Theilers murinen Enzephalomyelitis-Virus, Helicobacter spp., Pasteurella Pneumotropica und Pinworms. Bei Ratten enthalten häufig erkannte Infektionserreger 'Ratte Atemwege Virus', Parvoviruses, Ratte Theilovirus, Helicobacter spp., p. Pneumotropica und Pinworms. Eine risikobasierte Aufteilung der Gesundheitsberichterstattung Ressourcen sollten diese risikoreichen Agenten Frequenz und/oder Stichprobenumfang konzentrieren und weniger häufig für die verbleibenden, geringerem Risiko, infektiösen Agenten überwachen.
Euthanasie Von Neugeborenen Ratten Mit Kohlendioxid
Journal of the American Association for Laboratory Animal Science : JAALAS. Jan, 2009 | Pubmed ID: 19245746
Exposition gegenüber CO(2) ist eine übliche Methode, verwendet um Nagetiere in der biomedizinischen Forschung und Nagetier Produktion einschläfern. Der Zweck dieser Studie war die Länge der CO(2) Exposition benötigt, um die Neugeborene Ratten (0 bis 10 d alten) einschläfern bestimmt. 100 % Waren mehrere Gruppen von Ratten ausgesetzt CO(2) 5 bis 60 min. Nachdem CO(2) ausgesetzt waren wurden Ratten in Raumluft 20 min auf mögliche Wiederherstellung ermöglichen platziert. Kein Unterschied wurde gefunden, 1 Inzucht Belastung und 1 outbred Bestand an Ratten zu vergleichen. Zeit zum Tode variiert umgekehrt mit dem Alter der Tiere, so lange wie 35 min am Tag der Geburt erfordern. Die Zeit zum Tode sank stetig mit zunehmendem Alter, mit 100 % der Ratten nach 5 min CO(2) Exposition bei 10 d alt eingeschläfert. Erhöhen Sie der Zeitaufwand für 100 % Sterblichkeit sank um 3 min für jeden 1D im Alter zwischen 0 und 10 Tagen.
Zucht Und Gehäuse, Laborratten Und Mäuse Im Zimmer Betroffen Nicht Das Wachstum Oder Die Reproduktion Der Beiden Arten
Journal of the American Association for Laboratory Animal Science : JAALAS. Sep, 2009 | Pubmed ID: 19807969
Wenige Daten existieren über die Auswirkungen der langfristigen Gehäuse von Ratten und Mäusen in einem sekundären Gehäuse. Verlaufsdaten für Fortpflanzungsmedizin und Wachstum wurden für Mäuse und Ratten im öffnen-Spitze Käfige in entweder Einzel- oder Dual-Arten Barrier-Zimmer gepflegt verglichen. Diese Analyse enthalten Fortpflanzungsparameter (Abfall-Größe bei der Geburt, Abfall-Größe bei der Entwöhnung und Welpen fehlt bei der Entwöhnung) zusammengestellt aus 33 Kolonien von Mäusen, bestehend aus 500 zu 38.500 Zuchttiere und 28 Kolonien von Ratten in Höhe von 350 bis 4.600 Zuchttiere und repräsentative Stichproben aus 28 Kolonien jeder Art wurden für die Gewichtszunahme von Abstillen bis zum Erwachsenenalter analysiert. Vorhandensein oder Nichtvorhandensein der anderen Art war nicht statistisch signifikante Unterschiede bei Gewichtszunahme oder reproduktive Parameter zugeordnet. Diese Ergebnisse legen nahe, dass im selben Raum ohne negative Auswirkungen auf das Wachstum und die Vermehrung von beiden Arten Zucht Kolonien von Ratten und Mäusen mit demselben Gesundheitsstatus untergebracht werden kann.
Methode Der Futtermittel Präsentation Beeinflusst Das Wachstum Der Mongolische Rennmäuse (Meriones Unguiculatus)
Journal of the American Association for Laboratory Animal Science : JAALAS. Jan, 2010 | Pubmed ID: 20122314
Die Animal Welfare Verordnungen, die gesetzliche Anforderungen für die Pflege und Nutzung der Rennmäuse in Forschung und Tests zu definieren, und die Anleitung für die Pflege und Verwendung von Labortieren beschreiben Fütterungspraktiken für mehrere Arten von Nagetieren aber nicht mongolische Rennmäuse (Meriones Unguiculatus). Um zu untersuchen, ob die Methode der Futtermittel Präsentation betroffen Fortpflanzung und Wachstum der Rennmäuse, wir die Fortpflanzungsfähigkeit und Wachstumsrate der verglichen gefüttert Rennmäuse im Käfig-Stock, Trichter (J-Zubringer) oder Draht-Bar Käfig Deckel. Fortpflanzungsparameter 10 Brutpaare für jede Methode der Fütterung folgte für 63 d und Unterschied sich nicht zwischen Methoden. Um den Effekt der Gewichtszunahme bei juvenilen Rennmäuse Methode ernähren zu untersuchen, waren Gruppen von 80 männliche und 80 weibliche Weanling Rennmäuse pro Mahlzeit Methode gefüttert für 5 aufeinander folgenden Wochen nach dem absetzen und wöchentlich gewogen. Rennmäuse im Käfig-Stock und durch J-Anleger gefüttert waren deutlich schwerer als diejenigen mit eine Draht-Bar-Top gefüttert wurden. Unsere Ergebnisse zeigen, dass die Fütterung Rennmäuse mit J-Anleger oder auf dem Boden Käfig beide akzeptablen Praktiken sind.
Retinale Läsionen Und Anderen Potenziellen Störvariablen Okuläre Forschung in Inzucht Mäuse
Investigative Ophthalmology & Visual Science. Jun, 2012 | Pubmed ID: 22736716
