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Biology

大蛋白复合物结构质谱分析

Published: June 19, 2010 doi: 10.3791/1954

Summary

质谱法已被证明是一个有价值的工具,用于分析大型蛋白质复合物的。这种方法使多亚基组件组成,化学计量学和整体结构的见解。在这里,我们所描述的,一步一步,如何执行一个结构性的质谱分析,和特性的大分子结构。

Abstract

活细胞控制和调节生物过程,采取协调一致的行动,通过大量的蛋白质,自己组装成一个阵列的动态,多蛋白质复合 1 。为了获得各种细胞过程的机械理解,它是至关重要的,以确定这种蛋白复合物的结构,并揭示其组织结构如何决定其功能。多蛋白质复合物的许多方面,但是,难的特点,由于其异质性,非对称结构和动态。因此,新的方法所需的蛋白质组织的三级研究。

新兴的分析大分子复合物的结构生物学工具之一,是质谱(MS)2-5 。这种方法产生复杂的蛋白质组成,亚基的化学计量,和结构拓扑信息。 MS的权力来自其高灵敏度,作为一个结果,样品要求低,从而使内源性水平表达的蛋白质复合物的检查。另一个优点是分析速度,它允许实时反应监测。此外,该技术可以同时测量的特点共存的混合物中单独的人群。

在这里,我们描述了一个详细的协议结构MS分析大蛋白组件的应用程序。程序开始与纳流电喷雾电离(nESI)准备金涂层毛细管。然后,它继续与样品制备,强调一方面应与nESI兼容,并能保持复合物上的其他完好的缓冲液条件。然后,我们解释,一步一步,如何优化高质量测量的实验条件,并获得MS串联质谱图。最后,我们图表中的数据处理和分析,遵循的。而不是试图来描述蛋白质装配的每一个方面,这个协议是介绍了基本的MS程序,使非共价复合物的MS和MS / MS实验的表现。总的来说,我们的目标是提供的主要实验工具的知识,不了解结构MS领域的研究人员。

Protocol

第1部分:纳流电喷雾离子镀金毛细血管的制备

非共价复合物的分析通常是由纳流电喷雾电离(nESI)6,使用玻璃或石英毛细管已拉至一个精尖(〜1微米内径),并涂有导电材料(通常是黄金) 。这样的毛细血管提供现成的使用从商业来源(新目标或Proxeon);但是,它可以更具成本效益的准备他们在内部:

  1. 坚持两个带一个双面胶的培养皿中,相距2厘米的底部垫。垫的中心放置一个玻璃棒(8厘米× 5毫米)。胶粘剂垫将于毛细血管,玻璃棒将支持准备的毛细血管,不断突破(图1)的提示。
  2. 使用硼硅玻璃毛细管,1.0 mm外径× 0.78 mm内径(我们从华纳仪器使用500薄壁硼硅毛细血管包,猫没有。G100TF - 4)。插入一个毛细管进针拉马(我们从萨特仪器有限公司使用的P - 97型)。夹紧毛细管轻轻到位,并调整其位置,使其针拔取器的加热丝的中心所在。轻轻拧紧夹子,直到毛细管两端举行的公司。
  3. 拉毛细管,使用预定义的程序。每一个毛细管拉会带来两个决赛中,形毛细血管。拉马编程过程的试验和错误之一,直到获得一个可以接受的笔尖形状。我们使用下列程序:
    步骤 Vell 时间
    1 750 - 15 80
    2 700 - 15 50
    3 750 200 20 80
  4. 从仪器上取出拉的毛细血管和检查提示,丢弃任何变形或折断。使用钝镊子(我们使用从CK精密定位镊子),放置在培养皿中的毛细血管。基地应重视的毛细血管胶粘剂垫,上部尖朝上,靠在玻璃棒。
  5. 一旦培养皿满(约80毛细血管成一个直径10厘米的菜适合),插入黄金板块溅射镀膜机(我们使用的模型。EMS550,从环境管理体系)。确保的天然气供应,是根据制造商的指示选择,并激活一个预定义的涂层周期(我们使用氩气压力4磅,在5 × 10 -2毫巴,45毫安目前的真空压力,和涂时间3-6个周期,1分钟,直到毛细血管均匀的黄金)。

第2部分:样品制备

  1. 微摩尔浓度低的样品(1 - 20微米)。如果有必要,集中使用离心超滤装置(例如,Vivaspin赛多利斯,或NanoSep Pall公司)的样品。建议您验证设备膜蛋白复合物吸附,方可使用。
  2. 通常情况下,纯化的蛋白复合物的缓冲区或存储解决方案nESI,只有不稳定的解决方案可用于不兼容。因此,缓冲区的交流是必要的。盐,缓冲分子或任何其他非易失性的加合物,如甘油,数码地面电视服务,或EDTA的所有痕迹都将被删除,这关键的一步,决定了光谱的质量。通常情况下,使用醋酸铵水溶液,浓度在5毫米和1米之间,pH值在6-8。缓冲交换,可使用微量凝胶过滤柱(如微型生物自旋层析柱来自Bio - Rad)。此步骤可重复,以最小的稀释1-3倍(小于1.3每台设备 5倍),直到达到最大交换。如果这两个浓度和缓冲交流是必需的,这可能是一起做,用离心超滤(E,G.,从德国赛多利斯Vivaspin,或NanoSep从Pall公司)。

第3部分:高质量测量的校准质谱仪

多蛋白复合物进行实验,大部分是使用了纳米电四极杆 - 飞行时间(Q - TOF)仪器。建议您使用四极杆质量过滤器调整到低频率,使传输和质量分析离子与高m / z值7,8。这是还建议,添加到仪器的进气口7,8或袖子9中第一个离子指 ​​南,在第一个真空阶段,使压力控制。后者使优化的传输,和非常大的离子7-9脱溶剂。目前,商业ESI - TOF和Q - TOF仪器,可从几个制造商(例如,水域,SCIEX公司,布鲁克,或Agilent),可以修改相对容易和成本效益为母语的MS 应用 7,8, 。这是可能的,但是,使用标准TOF或QTOF配置LCT或QToF1(水域)等仪器获得配合物高达1 MDA的质谱,而不需要修改硬件 5 。

下面列出的协议进行了一个SYNAPT仪器(水域)。

  1. 纯净水,准备沪深100毫克/毫升的解决方案。 CSI是用于高质量校准,作为单独收取的盐集群(CSI)ñ +延长超过一个广泛的群众范围内,从393米/ Z以及超过10,000(图2)。
  2. 使用生硬的镊子,从培养皿和沪深解决方案的负载2μL涂层的毛细管进入毛细血管,使用的Eppendorf GeLoader提示。
  3. 插入毛细管持有人的毛细血管,并调整这样一种方式,提示是远离持有人的边缘约10毫米的毛细管。
  4. 手动滑动对毛细管的尖端解决方案,或使用一个自旋向下适配器。
  5. 置于光学显微镜下的毛细血管和修剪技巧,用锋利的AA型镊子。
  6. 将毛细管持有人的纳流ES接口。向后旋转XYZ阶段,以避免损坏毛细管,推入其激活的阶段。毛细管应放在第1 - 10毫米锥孔。
  7. 应用毛细管电压(1450至00年V)和纳流压力低(0.00-0.03栏),直到开始喷,然后尽量减少到最低值的纳流压力。
  8. 优化调整XYZ阶段的位置,毛细管电压,纳流压力,并脱溶剂气流量的信号强度。
  9. 要检测的CSI高峰系列宽的质量范围,应优化加速电压(我们使用下列参数:毛细管1.3-1.7千伏,样品锥,锥提取1-3 V 80 - 150V)。
  10. 为了优化高的质量离子的传输,这就需要温和的去溶剂化条件下,在最初的真空阶段为后盾压力源和分析仪之间,,应提高。这可以通过仔细地减少滚动泵源真空线的电导,部分关闭隔离阀(Speed​​iValve)。为了确定最佳点,后者应该做的,同时监测信号强度(我们通常使用3.0-6.5毫巴)的效果。
  11. 收集1次/秒扫描约30,在1000到15000米/ Z m / z为范围
  12. 收购完成后,校准的飞行时间,使用合适的校准表。

第4部分:完整的蛋白质复合物的质谱分析

  1. 载入您的样品,(第3部分,第2-5节),并启动喷雾。
  2. 喷雾的初步优化(第3部分,第6-9)开始,直到检测到的信号。电荷态的确切位置是蛋白依赖,但是,它可以预测,使用离子的质量和平均电荷态之间的关系从而:(Z AV)10 :Z AV = 0.0778√(M) ,其中m道尔顿复杂的质量。为了防止复杂的解离,不热离子源:开关加热器关闭,或保持温度低于40 ° C。
  3. 改变毛细管的位置,样品锥和提取电压,以最大限度地提高离子传输,并检查在光谱产生变化。一个可能的出发点可能是锥孔电压100伏,提取锥:1 V,毛细管电压为1.5 kV。优化这些参数,结合纳流压力。
  4. 为了提高脱溶剂,去掉残留的水和缓冲液成分,增加偏置电压和碰撞单元中的气体压力。这一步应该认真执行,以防止分解的复杂。典型的偏置电压10-100 V的范围内,用1-10毫升/分钟(图3)的陷阱气体流量。手动调节的RF设置和四极剖面可提高传输高质量离子。
  5. 调整陷阱和转让碰撞能量。通常情况下,需要更高的电压传输高质量离子(通常是10-30 V的范围内)。在这一点上,重要的是要避免碰撞诱导解离的复杂。
  6. 后一个稳定的信号是Reached,建议纳流压力和毛细管电压下降到最小值,同时保持了稳定的喷雾。

第5部分:串联质谱:游离蛋白复合物

  1. 已获得最佳的和稳定的信号后,选择一个母离子。设置质量中心和隔离宽度(我们一般用12的LM决议,航模的13至15号决议)。使用宽的质量范围检测高质量/低电荷分解产品。建议您设置的m / z范围内的最高水平,然后降低到所需的值。我们进一步建议叠加MS和MS / MS谱图,以验证所选择的母离子的隔离。
  2. 要执行的MS / MS,游离于母离子碰撞池的碰撞能量(CE)和压力增加。增加任何陷阱,或逐步转移行政长官在10 - 20V的步骤,和碰撞气体压力提高到0-5毫升/分钟(共同价值观)。最佳激活条件监视器中的光谱变化,直到达到。高活化能可能诱发的一个或多个完整复杂的亚基的解离,并澄清不同的亚基相互作用的亲和力。我们通常使用氩气作为一个陷阱/转移细胞的碰撞气体,虽然已使用较重的气体(如氙 SF 6)的好处,但是,这些气体比较昂贵11(图3)。
  3. 建议选择MS / MS分析一个以上的充电状态。在重叠组件的情况下,购置了一套串联质谱图,将有助于解决不同人群的负责系列。此外,高电荷态会更容易游离于相比,降低电荷态12。
  4. 除了完整复杂的特征,它会产生较小的解决方案subcomplexes,轻度变性条件下。 subcomplexes的MS和MS / MS分析的形式定义的复杂的亚基 13结构的基础上。亚基亚基相互作用的部分中断,逐渐添加有机溶剂(如甲醇,异丙醇或乙腈)的浓度为50%,或改变溶液的pH值,加入氨甲酸(浓度的4 %)。
  5. 要确定的亚基组成的复杂的个人群众,重要的是要变性条件下获得的频谱。这可以使用Zip提示一个25:75的水/乙腈比例 C 4(Millipore公司)作为洗脱溶剂的1%的甲酸,开展。

第6部分:数据处理与分析

  1. 数据进行离线分析,使用MS谱的谱分析程序。我们通常使用的MassLynx方案(水域)。
  2. 跨越广泛的m / z范围的光谱,我们建议的高与低的m / z地区应用平滑和质心参数不同的方案,以反映在这些地区的高峰决议的差异。
  3. 要确定充电系列和计算电荷态和群众,“手册”MassLynx功能可以应用。在复杂的质谱重叠组件的情况下,群众的手工计算可能会更容易。
  4. 为了方便这些分配过程,可能是额外的软件,例如:MAXENT谱反褶积14峰拟合和模拟15 SOMMS,和分配的组成和化学计量学和蛋白subcomplexes生成蛋白质相互作用网络13,16,17首脑会议。

第7部分:代表结果

图1
图1。准备金涂层纳米电毛细血管。
A.将两个双面胶带到培养皿中,相距2厘米。为了支持准备毛细血管,放置在垫中心玻璃棒(8厘米× 5 mm的)。棒的钝端的准备毛细血管胶粘剂垫,和精益的玻璃棒上的一角。 C.一旦培养皿中充满了黄金与毛细血管的准备,他们的外衣,直到黄金薄膜是均匀分布的毛细血管外表面沉积。

图2
图2。使用碘化铯离子的质量校准
沪深大monisotopic集群有它的首选校准质谱仪质谱分析高的复合。等距峰系列扩展到范围很广,远远超过m / z为393万。他们是assigNED单独收取的一般组成(CSI)N CS +盐集群。主要山峰之间的附加 ​​信号的系列双重和三重收取物种造成的; [(CSI)N CS2] 2 +和[(CSI)N CS3] 3 +分别。增加在最初的真空阶段压力检测高大规模集群至关重要。高质谱峰的压力的影响是在小组一个表现。 B。与压力分别为1.2和5.3,readbacks,C B扩大质谱。

图3
图3。纳流电的一个五聚体的外源凝集素的质谱。
A.一个外源凝集素的变异复杂的质量法( 定向进化18 LIB1 - B7所得)上升到3000至5000米/ Z的电荷态分布,但由于离子的不足,脱溶剂,峰广阔。比较显示面板a.和b.增加偏置电压从4V(A)(B)的峰宽至15V的效果。这在加速条件下的增加会导致残留的水和缓冲液成分剥离,产生了高度分辨谱。测得的质量(60240 ± 38大)对应一个五聚体复杂。C. 15充电状态,然后选择串联质谱分析(在B组以灰色阴影。)D。在碰撞能量的增加导致在1,664 m / z为中心的高电荷的单体,和一个精简的四聚体复合物的释放,范围在5000 - 8000米/ Z所有的光谱,获得一个解决方案,20微米的样本含有0.5M醋酸铵。

Discussion

为了获得高品质的光谱应注意的样品制备步骤,其中包括样品的浓度和缓冲交换。稀释的样本,将产生一个低信号,而高度浓缩的样品可以而粘稠,并阻止电针。此外,解决方案,如盐,甘油,洗涤剂,金属离子和还原剂(DTT或β-巯基乙醇)添加剂,往往坚持的外表面的蛋白质,并导致扩大峰。因此,为了实现良好的解决峰,这些组件应在尽可能低的浓度增加。

另一个关键参数是纳升级毛细管的位置,相对质谱仪口。寻找“甜蜜点”可能是对没有经验的用户具有挑战性的,不过,它显着影响光谱的质量。同样重要的是检查纳流毛细管前开始喷。墨滴的大小是一个尖端直径,这应该是〜1μm的的功能。小水滴会导致更有效的电离,因此将是有利的。验证,毛细血管内有没有气泡,可以阻止流动同样重要的是,和黄金涂层不剥离从收购过程中的毛细血管;若有,进一步修剪技巧。请记住,一个样品过量会增加优化MS条件,如毛细管电压,加速电压,压力,碰撞能量的可能性。

总体而言,在协议中所解释的程序已被用于确定大量的蛋白质复合物的成分,化学计量学和结构(见评论2,3,4)。 MDA的大型复合物, 核糖体的19 高度有序的病毒衣壳20-22,分析,确定底物结合的分子机器23-25 ​​日, 亚基相互作用网络的特性26,17,16,17,27,28作为但这种方法的价值的几个例子。

Disclosures

没有利益冲突的声明。

Acknowledgments

作者要感谢他们的严格审查,并为他们贡献的手稿沙龙组的成员。我们Morasha和Bikura方案,以色列科学基金会(批准号:1823至1807年和378/08),约瑟夫科恩密涅瓦生物膜研究中心,翟氏父子家庭研究员新科学家计划,亚伯拉罕的支持表示感谢索尼娅Rochlin基金会,欧胜家庭慈善信托基金的海伦和米尔顿答Kimmelman中心生物分子结构及组装;什洛莫和萨宾Beirzwinsky房地产; Meil​​德波顿Aynsley,和Karen暹粒,英国。我们非常感谢给我们的凝集素变种样本丹陶菲克和伊塔马尔Yadid。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
1-2 μL Volume Per capillary
1-20 μM Concentration Per complex
Aquanos volatile buffer such as ammonium acetate at pH= 6- 8 Typically 5 mM-1 M
Detergent (Minimal) Clusters of detergent molecules produce broad and unresolved peaks
Glycerol (Minimal, up to 5%) Adheres nonspecifically to proteins and, consequently, broad peaks are observed
Organic solvents (Up to 50%) Might denature proteins complexes
Acids (Up to 4%) Denature protein complexes
Salts (Minimal) Salt adducts lead to broad and unresolved peaks
DTT (Minimal) 1-2 μM can be present
Chelating agents (Minimal) Above 250 μM lead to extensive adduct formation

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References

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细胞生物学,40期,质谱,蛋白质复合物,非共价相互作用,结构生物学,nanoElectrospray,QTOF
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Kirshenbaum, N., Michaelevski, I.,More

Kirshenbaum, N., Michaelevski, I., Sharon, M. Analyzing Large Protein Complexes by Structural Mass Spectrometry. J. Vis. Exp. (40), e1954, doi:10.3791/1954 (2010).

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