Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Neuroscience

הכנה והתרבות של שמיעתית פרוסות עוף גזע המוח

Published: March 21, 2011 doi: 10.3791/2527
* These authors contributed equally

Summary

גזע המוח השמיעתית עוף מורכבת גרעינים אחראי לעיבוד צליל binaural. הכנה אחד פרוסה העטרה שומרת את כל המעגלים, בעוד גישה תרבותית מספק הכנה מיוחדת כדי לחקור את התפתחות מבנה ותפקוד עצבי השמיעה ברמה המולקולרית, התאית הרשת.

Abstract

גזע המוח השמיעתית עוף היא מערכת מבוססת מודל, שבו נעשה שימוש נרחב כדי ללמוד את האנטומיה והפיזיולוגיה של עיבוד שמיעתי בתקופות דיסקרטי הפיתוח 1-4, כמו גם מנגנוני קידוד הזמני במערכת העצבים המרכזית 5-7.

כאן אנו מציגים שיטה להכין עוף גזע המוח השמיעתית פרוסות כי ניתן להשתמש הפרוצדורות חריפה או פרוסות תרבות organotypic לטווח ארוך מניפולציות ניסיוני.

גזע המוח השמיעתית עוף מורכב angularis גרעין, זית magnocellularis, laminaris מעולה. גרעינים אלה אחראי לעיבוד צליל binaural חד ההכנות פרוסה העטרה לשמר את המעגלים כולו. בסופו של דבר, תרבויות פרוסה organotypic יכול לספק את ההזדמנות כדי לתפעל מספר פרמטרים התפתחותיים כגון הפעילות הסינפטית, ביטוי של מרכיבים טרום postsynaptic, ביטוי של רגישות להיבטים השליטה גן ביטוי ההפרש

גישה זו יכולה לשמש כדי להרחיב את הידע הכללי על התפתחות המעגל העצבי עידון, והתבגרות.

Protocol

1. הכנת שטח הביתור

  1. ברציפות נוזל השדרה בועה מלאכותית מוחין (ACSF) בתערובת של 95% O 2 / 5% CO 2 (pH שבין 7.2-7.4, osmolarity 295-310 mOsm / ליטר).
  2. בעוד ACSF מבעבעת, נקי עבודה עם שטח EtOH 70%. כמו כן לנקות את vibratome ואת להב חיתוך. יש לשטוף את הסכין עם מים מזוקקים (DH 2 O).
  3. המקום נקי כרית ספיגת נוזלים על ביתור שטח עם כלים לנתח המתאים.
  4. דבק לחסום אגר (40 מ"ג agarose / mL, 4%, כלומר ב DH 2 O) לשלב של החדר vibratome-חיתוך *.
    * טיפ: להכין אגר לפני לנתיחה. חנות מוכנות אגר בתוך צלחת פטרי מכוסה במקרר. Agarose שנרכשו EMD כימיקלים או Invitrogen.

2. הכנת 6-גם צלחות עם בינוני תרבות

  1. מתחת למכסה המנוע סטרילית, למלא היטב 1 לכל חיה של צלחת 6-היטב עם 1 מ"ל של מדיום תרבות לדגור על 35 ° C ו 5% CO 2.
  2. הכינו כמה שיותר קרום מוסיף תרבות הצורך ולמקם אותם בשכונה לשימוש מאוחר יותר.

3. בידוד של גזע המוח שמיעתית עוף

  1. מניחים ביצה תחת מקור אור בהיר על מנת לקבוע את חלל מלא באוויר הריק של העובר (בדרך כלל הצד גדול של הביצה).
  2. הפסקת פתוח בצד גדולות של ביצה חשיפת שק קרום. בצע פרוסה בקרום שק עם אזמל בעדינות להסיר את ראשו של העובר עוף.
  3. במהירות לערוף את הראש עם מספריים.
  4. המקום קצה סכין גילוח האחורי מעט אל בין העיניים. ביצוע חתך מקורי ל-הזנב קו האמצע דרך הגולגולת החלים רק לחץ קל *.
    * טיפ: הלחץ המופעל תלוי גיל העובר (כלומר, הצעיר = פחות, ישנים יותר =)
  5. דחף בעדינות הצידה עור ונוצות לחשוף את הגולגולת לאמת חתך קו האמצע.
  6. בלוק חלק מקורי של הגולגולת על ידי חיתוך בסכין גילוח. להב מיקום אחורי אל העיניים לחתוך במהירות דרך הגולגולת כולו ברקמת המוח *.
    * טיפ: לחץ חזק נדרשת להסיר לחלוטין קטע מקורי.
  7. הפוך את קו האמצע אל לרוחב חתכים עם מספריים קטנים באזור הזנב של הגולגולת, קדמית מעט שרירי הצוואר לעין משני צדי הראש. משוך ממנו הגולגולת רקמת לחשוף את המוח הקטן והמוח.
  8. להסיר בעדינות את המוח מבסיס הגולגולת על ידי חיתוך הרקמה מחוברת עם מספריים קטנים. לאחר כל רקמה נחתכת, המוח צריך לנוע בחופשיות מן הגולגולת *.
    * טיפ: ייתכן שיהיה עליך להפוך את הגולגולת (את המוח) לחתוך רקמות המצורפת.

4. הכנת המוח עבור בחותכו

  1. הוסר לאחר מהגולגולת, סיכת המוח למטה דרך tecta אופטיים.
  2. להסיר לחלוטין את המוח הקטן בעדינות על ידי חיתוך peduncles עם מספריים קטנים, לחשוף את רצפת החדר הרביעי.
  3. הסר את כל הרקמה הקרומית ואת כלי הדם מפני השטח של גזע המוח עם פינצטה ולבצע קיצוץ רוחבי דרך tecta אופטיים לבודד את גזע המוח.
  4. מניחים כמות קטנה של דבק סופר על הבמה vibratome מול לחסום את אגר (לכיוון הלהב vibratome).
  5. בעזרת פינצטה, בעדינות ובמהירות להרים את המוח על חוט השדרה וברקמות מקום על דבק סופר עם הצד מקורי למטה בצד הגבי כלפי ללהב vibratome *.
    * טיפ: דבק עודף צריכה להיספג עם קים, למחות או מסנן נייר לפני הצעד הבא.
  6. בעדינות יוצקים ACSF מחומצן לשלב vibratome *.
    * הערה: זה יכול להיות ACSF מבעבע ברציפות עם O 2 / CO 2. עם זאת, מבעבע של ACSF בהיקף כה קטן של תוצאות הפתרון בתנועה בלתי רצויות (ונזק אפשרי) על פרוסות המוח. אם מבוצע במהירות, כבר מחומצן ACSF מ דיסקציה היא מספקת.
  7. להב Vibratome צריכה להיות בזווית של 20-22 מעלות. התחל vibratome (תנודה צריך להיות מוגדר על אמפליטודה מקסימלית) ולעבור שלב לכיוון הלהב כך את החלק העליון של רקמת מקביל עם להב לפני חיתוך.
  8. לעבור במהירות להב כלפי רקמת המוח. האט משמעותית לקראת פשוט ליצור קשר עם להב רקמות.
  9. בגין חיתוך הרקמה בתנועה קדימה האיטי ביותר האפשרי. לאחר קטע דרך העטרה כולה של רקמה, להזיז בעדינות פרוסה מן הלהב בעזרת מברשת או זכוכית שבורה, ירה פיפטה מלוטש, מתאים בקצה אחד עם נורת גומי.
  10. בשלב התחתון של 300-500 צעדים מיקרומטר ו פרוסה שוב. חזור על הפעולה עד חתימות אנטומיים ניכרים ברקמת המוח. בשלב זה, גזע המוח פרוסת רקמה המכילה מבנים שמיעתי ב 200-1000 מיקרומטר עובי, בהתאם לגילו של צרכים רקמות ניסיוני.
  11. בזהירות לשמור על פרוסות שמיש הסדר של חיתוך, כלומר, פרוסה 1 st מייצג את אזור הזנב ביותר של המעגל (צליל בתדר נמוך עיבוד) וגם את הפרוסה האחרונה מייצגת את קטע מקורי ביותר (בתדירות גבוהה processing) *.
    * הערה: עבור מיקום של פרוסות לשימוש תרבות, עבור לפרק 6. עבור אחסון הפיזיולוגיה חוץ גופית, ראה בסעיף הבא.

5. פורסים אחסון עבור חוץ גופית פיזיולוגיה

  1. בהתאם לגיל העובר עוף ואת עובי של הפרוסה, כל חיה צריך לספק 1-6 פרוסות.
  2. בעדינות במקום פרוסות בודדים בתא באמצעות זכוכית מלוטשת אש פיפטה מצויד בקצה אחד עם נורת גומי. לשכת צריכים להיות ממוספרים. המקום רק פרוסה אחת לכל היטב, על מנת לשמור על כמה סגוליות tonotopic (למשל, פרוסת הזנב ביותר בתא 1 ואת פרוסת מקורי ביותר בתא האחרון). לשכת צריכים להיות מלאים ACSF ו מבעבע ברציפות בתערובת של 95% O 2 / 5% CO 2 (pH 7.4, osmolarity 295-310 mOsm / ליטר).
  3. אפשר פרוסות לאזן על ידי הצבת חדר לתוך אמבט חמים (36 מעלות צלזיוס) במשך שעה בערך 1.
  4. הסר קאמרית מן אמבטיה חמה ולאפשר לנוח בטמפרטורת החדר למשך שעה וחצי בערך.
  5. אחרי שעה וחצי בטמפרטורת החדר, פרוסות ניתנת להעברה מחדר מחזיק תא ~ 0.5 מ"ל הקלטה רכוב על מיקרוסקופ לניסויים אלקטרו.
  6. פרוסות יכול לשמש עד ~ 6 שעות לאחר הסרת מן האמבט החם.

6. הכנת תרבויות Slice Organotypic 8

  1. מיד לאחר הליך חיתוך (ראה סעיף 6) פרוסות להעביר עם ACSF 500 ~ μL באמצעות זכוכית מלוטשת אש פיפטה מצויד בקצה אחד עם נורת גומי לצלחת 48 היטב על קרח. פרוסה אחת לכל טוב *.
    * טיפ: Slices צריך להיות לפחות 300 מיקרומטר עד 1000 מיקרומטר עבה.
  2. לאחר פרוסות נאספו, להעביר את צלחת 48-היטב למכסה המנוע.
  3. הסרת 6-המכיל גם צלחת תרבות בינוני מתוך החממה ולהעביר אותו אל מכסה המנוע.
  4. רק לפני הנחת פרוסות מהמוח יחיד על ממברנות, מקום אחד מוסיף קרום מוכן (ראה סעיף 2.2) לתוך באר עם המדיום לתרבות. ודא שאין בועות אוויר נמצאים תחת קרום.
  5. בעזרת פיפטה כוס, העברת פרוסה ירידה של ACSF על הממברנה תרבות להסיר ACSF עודף עם micropipette. חזור עבור שאר פרוסות (מקסימום 4 פרוסות לכל ממברנה) *.
    * טיפ: ודאו פרוסות לא נוגעים זה בזה ופרוסות מקום מרכזי על הממברנה, כך שהם לא נוגעים שפת הממברנה.
  6. חזור על פרוסות המוח כמו רבים לפי הצורך *.
    * טיפ: אם התרבויות הם מניפולציה בשלב מאוחר יותר, זה יכול להיות יתרון להגביל את כמות ממברנות עד 3 לכל צלחת 6 גם כדי להפחית את הזמן התרבויות יוסרו מן החממה.
  7. שינוי התרבות בינוני 3 פעמים בשבוע מתחת למכסה המנוע: הסר בינוני ישן עם צינורית ואקום עם קצה סטרילית תוך הוספת קרום הוא הרים את הבאר עם זוג מלקחיים. הוסף 1 מ"ל של מדיום תרבות טרי גם בעוד להכניס קרום מורם מתוך הבאר. כאשר כל מדיום הוא שונה, לשים צלחת בחזרה לתוך החממה.

7. נציג תוצאות:

איור 1
באיור 1. המעגלים binaural של גזע המוח השמיעתית עוף. (א) סכמטי של קטע העטרה ו (BF) חוץ גופית תמונות פרוסת גזע המוח השמיעתית עוף. מעגל ב (א) מראה תשומות הגירוי מביא מתוך עצב השמיעה () לגרעין magnocellularis (NM) ואת גרעין angularis (NA). NM פרויקטים תשומות הגירוי הבילטרלי לגרעין laminaris (NL) על שני הצדדים של גזע המוח. הקלט מעכבות מן מעולה (בנו) פרויקטים olivary גרעין כדי NA, NM ו NL. חוץ גופית פרוסות (BF) הם תמונות רציפים (200 מיקרומטר אחד) הולך מן הזנב (ב) על מקורי (F) של גזע המוח השמיעתית עוף, המייצג את נמוך לתדר גבוה אזורים, בהתאמה. המעגלים אחראי על קידוד נכסים זמני של קול בשימוש בעיקר עבור לוקליזציה קול. בר סולם ב (B) = 500 מיקרומטר ו חל על תמונות (CF). חצים בנקודה (ד ') את שכבת התאים בגוף יחיד של NL.

איור 2
איור 2. נוירונים בתרבית לפתח נורמלי מאפייני התגובה פיזיולוגי. מעל כל השינויים מתח הממברנה בתגובה hyperpolarizing ו depolarizing השלבים הנוכחיים של חריפה (A & C) בתרבית רקמה על 4 (ב) ו -7 (ד) ימים בתרבות (DIC). הערה שינויים hyperpolarizing "לשקוע" מתח, ירידה חזקה הנוכחית כלפי חוץ, ועל אחת ירי AP כי לפתח דומה בגישה תרבות פרוסה לעומת רקמת הגיל המקבילה חריפה. זריקות נוכחי היו 200 ms, צעדים של הרשות 50-100. RMPs היו בין -55 ו -60 mV.

איור 3
איור 3. המבנה האנטומי של SLI תרבותCES. המחצית השמאלית של המוח השמיעתית של עוף E11 לאחר 7 ימים בתרבות (DIC). נוגדנים כנגד חלבון microtubule הקשורים 2 (MAP2), אשר מתרחשת סומה ו דנדריטים, מסומן בירוק. מקבץ של גרעין magnocellularis (NM) נוירונים האקסונים שלה מסומנים באדום דרך electroporation של dextran אלקסה לצבוע. שני NM וקו תא NL גלויים. Ipsilateral מסופי האקסון NM ניתן לראות מקרין על דנדריטים הגב NL (ראשי חץ לבן).

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

במשך כמה עשורים, להכנת פרוסה חריפה של גזע המוח עוף שימש ללמוד עיבוד שמיעתי 9, 10. גישה זו סיפקה כמות עצומה של חוץ גופית נתונים פיזיולוגיים על עיבוד binaural משני מצבים התפתחותיים בוגרת 4, 11, 12. הרבה ידוע על המעגל הזה מאוד מיוחדים ואת תפקיד גרעין כל משחק בעיבוד הזמני של 13 קולות, 14. למעשה, בטווח הקצר מניפולציות ניסיוני והשפעתם על המבנה והתפקוד של מעגל זה מאופיין היטב הוכיחו יתרון 15. מנקודת מבט ארוכת טווח התפתחותי עם זאת, מניפולציות כאלה אינם אפשריים וטכניקות כדי לטפל בבעיה זו הם ערובה. כאן אנו מציעים שיטה חדשנית המספקת את ההזדמנות כדי לחקור שאלות כאלה. בסופו של דבר, תרבויות פרוסה organotypic לספק את האפשרות לתמרן הפעילות הסינפטית, תקנות ערוץ מהותי, תגובות קולטן postsynaptic, ואת ההפרש ביטוי גנים ספציפיים על פני תקופות ארוכות התפתחותית. גישה זו תהיה נוספת לבנות על הידע הנרחב של המעגל שמיעתי עוף טוב לסייע למדענים בהבנת שאלות בסיסיות על פיתוח הנוירוביולוגי.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

אין ניגודי אינטרסים הכריז.

Acknowledgments

בהווה ובעבר חברי רובל מעבדה.

Materials

Name Type Company Catalog Number Comments
Chicken ACSF
NaCl Fisher Scientific M-11624 130 mM
NaHCO3 Fisher Scientific M-10576 26 mM
KCl Sigma-Aldrich P-9333 3 mM
NaH2PO4 Sigma-Aldrich S-8282 1.25 mM
Glucose Sigma-Aldrich G-7528 10 mM
MgCl2 Fisher Scientific M33-500 1 mM
CaCl2 Acros Organics 423525000 2 mM
Chicken culture medium (store at 4°C)
advanced minimum essential medium (with NEAA, sodium pyruvate at 110 mg/l, without L-glutamate) GIBCO, by Life Technologies 12492-013 48.00%
Earl’s balanced salt solution Sigma-Aldrich E-2888 24.00%
L-glutamine (200 mM) Sigma-Aldrich G-7513 1.00%
Glucose solution (200 g/l, sterile filtered) Sigma-Aldrich G-7528 2.75%
horse serum (heat inactivated, sterile filtered) Sigma-Aldrich H-1138 24.00%
Penicillin-streptomycin* Sigma-Aldrich P-0781 1.00 ml
* = Add to 100 ml culture medium if needed to prevent contamination
Specific equipment
Millicell-CM cell culture inserts PICMORG50 EMD Millipore
6-well plate 6 Well Cell Culture Cluster Corning
Incubator Forma Scientific CO2 Water Jacketed Incubator Forma Scientific

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Howard, M. A., Burger, R. M., Rubel, E. W. A developmental switch to GABAergic inhibition dependent on increases in Kv1-type K+ currents. J Neurosci. 27, 2112-2123 (2007).
  2. Kuba, H., Koyano, K., Ohmori, H. Development of membrane conductance improves coincidence detection in the nucleus laminaris of the chicken. J Physiol. 540, 529-542 (2002).
  3. Gao, H., Lu, Y. Early development of intrinsic and synaptic properties of chicken nucleus laminaris neurons. Neuroscience. 153, 131-143 (2008).
  4. Sanchez, J. T., Wang, Y., Rubel, E. W., Barria, A. Development of glutamatergic synaptic transmission in binaural auditory neurons. J Neurophysiol. 104, 1774-1789 (2010).
  5. Jackson, H., Hackett, J. T., Rubel, E. W. Organization and development of brain stem auditory nuclei in the chick: ontogeny of postsynaptic responses. J Comp Neurol. 210, 80-86 (1982).
  6. Rubel, E. W., Parks, T. N. Organization and development of brain stem auditory nuclei of the chicken: tonotopic organization of n. magnocellularis and n. laminaris. J Comp Neurol. 164, 411-433 (1975).
  7. Rubel, E. W., Smith, D. J., Miller, L. C. Organization and development of brain stem auditory nuclei of the chicken: ontogeny of n. magnocellularis and n. laminaris. J Comp Neurol. 166, 469-489 (1976).
  8. Stoppini, L., Buchs, P. A., Muller, D. A simple method for organotypic cultures of nervous tissue. J Neurosci Methods. 37, 173-182 (1991).
  9. Reyes, A. D., Rubel, E. W., Spain, W. J. Membrane properties underlying the firing of neurons in the avian cochlear nucleus. J Neurosci. 14, 5352-5364 (1994).
  10. Monsivais, P., Rubel, E. W. Accommodation enhances depolarizing inhibition in central neurons. J Neurosci. 21, 7823-7830 (2001).
  11. Lu, T., Trussell, L. O. Development and elimination of endbulb synapses in the chick cochlear nucleus. J Neurosci. 27, 808-8017 (2007).
  12. Kuba, H., Yamada, R., Fukui, I., Ohmori, H. Tonotopic specialization of auditory coincidence detection in nucleus laminaris of the chick. J Neurosci. 25, 1924-1934 (2005).
  13. Trussell, L. O. Cellular mechanisms for preservation of timing in central auditory pathways. Curr Opin Neurobiol. 7, 487-492 (1997).
  14. Trussell, L. O. Synaptic mechanisms for coding timing in auditory neurons. Annu Rev Physiol. 61, 477-496 (1999).
  15. Sorensen, S. A., Rubel, E. W. The level and integrity of synaptic input regulates dendrite structure. J Neurosci. 26, 1539-1550 (2006).

Tags

Neuroscience גיליון 49 הכנת פרוסה שמיעתי עוף גזע המוח תרבויות organotypic laminaris גרעין גרעין magnocellularis
הכנה והתרבות של שמיעתית פרוסות עוף גזע המוח
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Sanchez, J. T., Seidl, A. H., Rubel, More

Sanchez, J. T., Seidl, A. H., Rubel, E. W., Barria, A. Preparation and Culture of Chicken Auditory Brainstem Slices. J. Vis. Exp. (49), e2527, doi:10.3791/2527 (2011).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter