Summary
In questo documento vengono utilizzati dei metodi per la purificazione isolamento, e la rilevazione di esosomi, nonché le tecniche per l'analisi del loro contenuto molecolare. Questi metodi sono adattabili per l'isolamento exosome da supporti sia la cultura di cellule e fluidi biologici, e può al di là di analisi del contenuto molecolare essere utile anche per studi funzionali.
Abstract
Il campo di ricerca exosome è in rapida espansione, con un drammatico aumento in pubblicazioni negli ultimi anni. Queste piccole vescicole (30-100 nm) di origine endocitico sono stati proposti per funzionare come un modo per reticolociti per sradicare il recettore della transferrina, mentre maturando negli eritrociti 1, e sono stati in seguito chiamato esosomi. Esosomi si formano per gemmazione interna del tardo endosomi, producendo corpi multivescicolari (MVBs), e vengono rilasciati nell'ambiente da parte del MVBs fusione con la membrana plasmatica 2. Dal momento che la prima scoperta di esosomi, una vasta gamma di cellule hanno dimostrato di rilasciare queste vescicole. Esosomi sono state rilevate anche in diversi liquidi biologici, tra cui plasma, liquido di lavaggio nasale, nella saliva e nel latte materno 3-6. Inoltre, è stato dimostrato che il contenuto e la funzione di esosomi dipende dalla cellula di origine e le condizioni in cui sono prodotti. Una varietà di funzioni sono state demoniconcentrati per esosomi, come l'induzione di tolleranza nei confronti degli allergeni 7,8, l'eradicazione di tumori nei topi stabilita 9, l'inibizione e l'attivazione delle cellule natural killer 10-12, la promozione della differenziazione in cellule T regolatorie 13, la stimolazione della proliferazione delle cellule T 14 e induzione di apoptosi delle cellule T 15. Anno 2007 abbiamo dimostrato che esosomi rilasciati dai mastociti contengono RNA messaggero (mRNA) e microRNA (miRNA), e che l'RNA possono essere trasportati da una cellula all'altra attraverso esosomi. Nelle cellule del destinatario, l'mRNA spola da esosomi ha dimostrato di essere tradotta in proteine, il che suggerisce una funzione di regolamentazione del trasferimento RNA 16. Inoltre, abbiamo anche dimostrato che esosomi derivate da cellule cresciute in condizioni di stress ossidativo può indurre tolleranza contro lo stress ulteriore cellule riceventi e, quindi, suggerire una funzione biologica della navetta exosomal RNA 17. Terreni di coltura delle cellule e fluidi biologici contain una miscela di vescicole e sparso frammenti. Un metodo di isolamento di alta qualità per esosomi, seguita dalla caratterizzazione e identificazione dei esosomi e il loro contenuto, è dunque cruciale distinguere esosomi da vescicole e altre particelle. Qui vi presentiamo un metodo per l'isolamento di esosomi da entrambi terreno di coltura cellulare e fluidi corporei. Questo metodo di isolamento si basa sulla centrifugazione e ripetuti passaggi di filtrazione, seguito da un passo ultracentrifugazione finale in cui il esosomi sono pellet. Importanti metodi per identificare il esosomi e caratterizzano la morfologia exosomal e del contenuto proteico sono evidenziati, tra cui la microscopia elettronica, citometria a flusso e Western Blot. La purificazione del RNA totale exosomal si basa sulla cromatografia su colonna e la resa exosomal RNA e distribuzione delle dimensioni viene analizzato con un Bioanalyzer.
Protocol
1. Isolamento Exosome
- Crescere le cellule in mezzo con exosome senza siero. Pertanto, qualsiasi siero aggiunti al mezzo di coltura cellulare dovrebbe essere impoverito di esosomi da ultracentrifugazione a 120 000 xg per tutta la notte a 4 ° C prima dell'uso.
- Trasferire la sospensione di cellule di tubi conici.
- Centrifugare a 300 xg per 10 minuti a 4 ° C per agglomerare le cellule.
- Trasferire il surnatante per ultracentrifuga tubi e se non completamente pieno aggiungere PBS.
- Centrifugare il campione a 16 500 xg per 20 minuti a 4 ° C per rimuovere ulteriori cellule e detriti cellulari.
- Filtrare il surnatante con un filtro 0,2 micron per rimuovere le particelle più grandi di 200 nm.
- Trasferire il surnatante filtrato per tubi ultracentrifuga nuove e sigillare i tubi prima ultracentrifuga a 120 000 xg per 70 minuti a 4 ° C per far sedimentare il esosomi.
- Scartare il surnatante.
- Per massimo recupero exosome, risospendere il exosome arricchireed pellet ripetutamente in un piccolo volume (circa 3 x 50 ml) di un buffer adeguato. Questo buffer dipende dal esperimenti previsti a valle dopo l'isolamento exosome. Per esempio, tampone di lisi viene utilizzato per l'isolamento delle proteine e RNA, PBS viene utilizzato per la microscopia elettronica e di citometria a flusso e funzionale per gli studi medi possono essere preferiti.
Nota; esosomi possono anche essere isolate da fluidi corporei diversi, come il plasma, utilizzando la stessa procedura per i terreni di coltura delle cellule. Per fluidi viscosi, può essere necessario diluire il campione con PBS prima della centrifugazione e dalla filtrazione passo. In relazione alla velocità di centrifugazione per il punto 5 di cui sopra, può essere aumentato a 29 500 xg, e il ultracentrifugazione al punto 7 può essere esteso a 90 minuti 18.
Se il campione deve essere ulteriormente purificato il exosome pellet può essere quotata in un gradiente di saccarosio e il esosomi sarà principalmente si trovano nella frazione representing una densità di 1,13-1,19 g / ml 2.
2. Identificazione Exosome al microscopio elettronico
- Per ulteriori eliminare proteine contaminanti, risospendere il pellet exosome arricchito in PBS e ultracentrifuga a 120 000 xg per 70 minuti a 4 ° C a ri-pellet il esosomi.
- Prendete una piccola aliquota del campione per l'isolamento delle proteine e la misurazione delle proteine totali. Assicurarsi che solo una piccola parte del campione è lisati e utilizzato per la misurazione delle proteine e mantenere intatto il esosomi, risolto in PBS, separati o su ghiaccio a -80 ° C per ulteriori esperimenti.
- Mettere una goccia, circa 10 mg di proteina exosomal del esosomi intatto risospeso in PBS, su un Parafilm. Poi, con una pinza, delicatamente la posizione di una griglia di carbonio rivestito formvar nichel sopra ogni goccia per 30-60 minuti. Assicurarsi che la griglia è posizionato con il lato di fronte al calo rivestimento contenente esosomi.
- Luogo tre gocce, ogni microlitri 30, di PBS su tha Parafilm e lavare la griglia di posizionamento in sequenza la griglia sopra delle gocce di PBS, e utilizzare una carta assorbente in mezzo. Utilizzare la carta assorbente con delicatezza solo tenendolo vicino al lato della griglia, senza contatto con la superficie rivestita.
- Fissare il campione mediante deposito un calo del 2% paraformaldeide sul Parafilm e posizionare la griglia nella parte superiore della goccia per 10 minuti.
- Ripetere la fase di lavaggio di cui al punto 4, prima di immunostaining con un anticorpo appropriato. Gli anticorpi utilizzati sono anti-CD63 e anti-MHC di classe II. Microscopia elettronica può essere eseguita anche senza immunocolorazione come esosomi possono essere identificati esclusivamente in base alle dimensioni e morfologia. Tuttavia, si consiglia di valutare l', morfologia dimensioni e la presenza di una proteina di membrana per una convalida più conclusivo.
- Trasferire la griglia per un calo del 30 microlitri della anticorpo primario di scelta e incubare per 40 minuti. Lavare, ripetendo il punto 4, ma usare lo 0,1% di BSA in PBS invece di PBS solo.
- Ripetete il punto 7, ma con la nm-oro 10 anticorpo marcato secondario e lavare con PBS solo.
- Post-fissare il campione con l'aggiunta di un calo del 2,5% glutaraldeide al Parafilm e incubare la griglia nella parte superiore della goccia per 10 minuti. Ripetere il lavaggio al punto 4, ma utilizzano cinque gocce di acqua deionizzata invece di tre gocce di PBS.
- Contrasto con il campione con l'aggiunta di una goccia di acetato di uranile al 2% al Parafilm e incubare la griglia nella parte superiore della goccia per 15 minuti.
- Incorpora il campione con l'aggiunta di una goccia di metilcellulosa 0,13% e acetato di uranile 0,4% al Parafilm e incubare la griglia nella parte superiore della goccia per 10 minuti.
- Rimuovere il liquido in eccesso con delicatezza usando una carta assorbente, prima di posizionare la griglia su un foglio con il lato rivestito e lasciare asciugare per 5 minuti.
- Esaminare i preparativi con un microscopio elettronico o conservare le griglie in una scatola di griglia per il lavoro futuro.
3.Caratterizzazione Exosome mediante citometria di flusso
Come esosomi sono troppo piccoli per essere rilevato da apparecchiature con corrente di citometria a flusso, è necessario legare il primo esosomi di perle legate agli anticorpi (Figura 1). Queste sfere possono essere acquistati come un prodotto già pronto o fatto in laboratorio con l'anticorpo di scelta. A seconda della provenienza exosomal cellulari, gli anticorpi diversi possono essere accoppiati a perle che può essere sia di carattere magnetico o lattice. Al momento stiamo utilizzando anti-MHC di classe II o perle di rivestimento anti-CD63 per questa analisi.
- Per l'uso di "fatti in casa" perle legate agli anticorpi, usiamo 4 sfere di lattice micron rivestita con anticorpi anti-CD63. Lavare 25 microlitri 4 sfere di lattice micron (30 x 10 6 perline) due volte in 100 l MES buffer, 3 000 xg per 15-20 minuti e ridisciogliere il pellet in 100 microlitri di buffer MES. Preparare la miscela di anticorpi che contiene un volume uguale di 12,5 mcg anticorpi con lo stesso volume di tampone MES. Aggiungere ilperline alla miscela di anticorpi ed incubare in agitazione tutta la notte a temperatura ambiente. Lavare le perline anticorpi per tre volte con PBS (3 000 xg per 20 minuti) e sciogliere il precipitato in 100 ml di buffer di memoria (con una concentrazione finale di 300 000 perline / mL).
- Per ogni campione (ogni anticorpo), continuare con un volume pari a un minimo di 30 mg di proteina exosomal (del esosomi intatto risolto in PBS) per ~ 100 000 perle legate agli anticorpi.
- Incubare esosomi e perline, in un volume totale di 300 ml PBS, durante la notte a 4 ° C sotto movimento dolce.
- Blocco con l'aggiunta di 300 ml di 200 mM glicina e incubare per 30 minuti.
- Lavare i exosome-tallone complessi due volte in tampone di lavaggio (siero 1-3% in PBS), 600 xg per 10 minuti.
- Incubare la exosome-tallone complessi con 50 microlitri di anticorpi IgG a 4 ° C. Lavare i exosome-tallone complessi due volte in tampone di lavaggio come descritto al punto 5.
- Aggiungere 90 microlitri di buffer di lavaggio e 10 microlitrianticorpi di scelta (idealmente anti-CD9, anti-CD63 o anti-CD81) al exosome-tallone complessi e incubare per 40 minuti in movimento dolce. Lavare i exosome-tallone complessi due volte in tampone di lavaggio come descritto al punto 5.
- Aggiungere 300 microlitri di buffer di lavaggio e acquisire dati in citometria a flusso.
Come discusso in precedenza, perline diversi possono essere utilizzati, come sfere di lattice, come descritto nel protocollo o sfere magnetiche. Se grani magnetici sono utilizzati al posto, si prega di notare, che il protocollo è leggermente diverso. Il passo di blocco (punto 4) non è richiesto e il lavaggio viene effettuato inserendo il tubo in un supporto magnetico al posto di una centrifugazione.
Il buffer di memoria usato per la "casa" perle legate agli anticorpi, contengono glicina 0,1% e 0,1% di sodio azid in PBS, con un pH di 7,2.
Importante, assicurarsi di utilizzare il siero exosome impoverito per il tampone di lavaggio citometria a flusso (1-3% di siero in PBS), per evitare qualsiasiesosomi siero contaminare l'analisi.
Nota: durante l'esecuzione di caratterizzazione exosome utilizzando anticorpi perline accoppiate, è importante riconoscere che è solo una sottopopolazione specifica, specifico per l'anticorpo utilizzato, che è isolato e caratterizzato.
4. Rilevamento Exosome da Western Blot
Western Blot è un metodo ben definito e noi non entreremo nei dettagli per quanto riguarda il metodo stesso, ma attenzione sull'importanza di un isolamento delle proteine adatto prima della Western Blot e gli anticorpi diversi utilizzati.
- Sciogliere il exosome pellet nel buffer di lisi di proteine di scelta e di pipettaggio a fondo, seguito da vortice di miscelazione. Per ulteriori lisare il esosomi, sonicare il campione in un bagno d'acqua da 3 x 5 minuti con vortice di miscelazione in mezzo. Infine centrifuga il campione, 13 000 xg per 5 minuti a temperatura ambiente, e trasferire il surnatante in una nuova provetta Eppendorf.
- Misure le proteine totali con un metodo di scelta e carico di 20-50 mg di proteine per bene.
- Separino e trasferire le proteine con elettroforesi su gel e elettroblotting.
- Blocco e lavare la membrana prima di eseguire immunocolorazione contro le proteine arricchito in esosomi.
- Rilevare la proteina specifica chemiluminescenza, sistema di imaging digitale e software di analisi.
Poiché non vi sono marcatori exosome specifico, le proteine che si arricchiscono in esosomi, da tutte le diverse origini cellulari, sono comunemente usati per il rilevamento exosome. Si tratta di proteine come tetraspanins (ad esempio CD9, CD63 e CD81), citoscheletro proteina associata (ad es Ezrin) e le proteine coinvolte nella biogenesi multivescicolari (ad esempio Tsg101 e Alix). Altre proteine che sono comunemente rilevati in esosomi sono Flotillin, Hsc70 e proteine rab diversi, ecc Tuttavia, ci sono anche proteine specifiche delle cellule si trovano in esosomi come A33 (cellule epiteliali intestinali), CD3(Cellule T) e MHC di classe II (cellule presentanti l'antigene). Così, a seconda del tipo di cellula da quello che il esosomi vengono rilasciati dai marcatori per la rilevazione può variare.
Come altri compartimenti della cellula anche in grado di produrre vescicole, si raccomanda inoltre di determinare la presenza di proteine di questi compartimenti, come reticolo endoplasmatico (ad esempio calnexin e Grp78) e l'apparato di Golgi (ad esempio GM130). Così, la mancanza di queste proteine indica contaminazione scarse o nulle vescicole di altri compartimenti nel campione studiato.
5. Isolamento di exosomal RNA e l'RNA analisi
- Sciogliere il exosome pellet in tampone di lisi RNA di scelta e di eseguire l'estrazione dell'RNA. Diversi kit di isolamento dell'RNA può essere utilizzato a seconda esperimenti a valle, ma i metodi basati colonna fornisce campioni con uno spettro più ampio di RNA. Attualmente stiamo utilizzando miRCURY RNA Isolation Kit da Exiqon, ma altri kit può essere adatto a seconda della scdomanda ientific a portata di mano.
- Quando si esegue l'isolamento di RNA è importante lavorare in un ambiente privo di RNasi. Pertanto l'uso di acidi nucleici e priva di nucleasi puntali e pulire sia da banco e attrezzature esenti da inquinanti ed RNasi.
- Per l'isolamento di RNA, utilizzando miRCURY kit di purificazione dell'RNA, sciogliere il exosome pellet in 350 ml di soluzione di lisi ed eseguire vortice di miscelazione per 15 secondi.
- Aggiungere 200 ml di etanolo al 95% e vortice di miscelazione per 10 secondi.
- Inserire una colonna in un tubo di raccolta e trasferimento dei esosomi lisato alla colonna e centrifugare 1 minuto a 14 000 x g.
- Lavare tre volte con l'aggiunta di 400 ml di Wash Solution alla colonna contenente l'RNA exosomal e centrifugare per 1 minuto a 14 000 x g.
- Centrifugare la colonna per 2 minuti a 14 000 xg per assicurarsi che la colonna sia asciutta e collocare la colonna a secco in un RNasi-free provetta Eppendorf.
- Aggiungere 50 microlitri Elution Buffer alla colonna e centrifugare per 2 minuti a 200 xg, seguito da 1 minuto a 14 000 x g.
- Continuare con la isolato RNA o conservata in -80 ° C.
Per il rilevamento e l'analisi del RNA totale estratto exosomal, utilizzare un Agilent 2100 Bioanalyzer con l'RNA 6000 Nano Kit o RNA 6000 Pico. L'analisi mostra il rendimento exosomal RNA e distribuzione delle dimensioni.
6. Rappresentante Risultati
Esosomi sono troppo piccole per essere rilevate con i metodi disponibili citometria a flusso, e sono quindi collegato legate agli anticorpi perle prima di essere analizzati (Figura 1). Come exosome-tallone complessi in grado di aggregare la citometria a flusso scatter plot può contenere diverse popolazioni di singole, doppie e triple perline (Figura 2A). La freccia indica il singolo perle che vengono ulteriormente analizzate. Un CD63 positivo solo perline exosome popolazione rispetto al suo controllo isotipo è mostrato in Figura 2B.
e_content "> A causa delle piccole dimensioni delle esosomi, possono solo essere visualizzati direttamente con il microscopio elettronico, e non al microscopio ottico. tipiche caratteristiche morfologiche di esosomi hanno una forma rotonda e 30-100 nm vescicole membrana dimensioni. Nella Figura 3, microscopia elettronica fotografie mostrano esosomi immunostained (A) con oro-anticorpo marcato per CD63 (indicata dalla freccia) e non immunostained esosomi (B).Per determinare che le vescicole isolate sono davvero esosomi e per caratterizzare ulteriormente le proteine exosomal, Western Blot è comunemente usato. Figura 4 mostra l'assenza di calnexin, un marcatore reticolo endoplasmatico. Questo indica la contaminazione 'di vescicole dal reticolo endoplasmatico. Inoltre, la Figura 4 mostra la presenza di CD81 in esosomi, che è un tetraspanin comunemente arricchito in esosomi.
RNA cellulare sono presenti soprattuttos RNA ribosomiale (rRNA), visto come i due picchi importanti per la subunità 18S e 28S rRNA in un'analisi Bioanalyzer (Figura 5A). Tuttavia, l'RNA exosomal differiscono nella loro profilo come esosomi mancano i due picchi rRNA (18S e 28S) e sono arricchiti in RNA breve come mRNA e miRNA (Figura 5B).
Figura 1. A causa delle piccole dimensioni del esosomi (30-100 nm), non si può distinguere dal rumore di fondo e, quando analizzati con citometria a flusso. Pertanto, è necessario allegare a sfere legate agli anticorpi prima della esosomi vengono analizzati, che poi possono essere visualizzate dal laser.
Figura 2. Il exosome-perle complesso può aggregare con perline doppie e triple a vicenda e formano (A). La freccia sta dimostrando l'unico tallone-exo alcuni popolazione che è recintato e utilizzato per ulteriori analisi. Questa popolazione sarà direttamente a fronte di un controllo isotipico (grigio pieno di picco) per determinare la presenza di molecole di membrana delle esosomi. Esosomi CD63 positivo (nero punta aperta) sono mostrate nella figura B.
Figura 3. Microscopio elettronico di esosomi con la tipica morfologia e le dimensioni (40-80 nm) (A e B). La freccia in figura A indica la particella d'oro della anticorpo secondario, controllare che questo exosome hanno CD63 sulla superficie della membrana.
Figura 4. Risultati Western blot che mostra l'assenza della proteina reticolo endoplasmatico calnexin ma la presenza della proteina comunemente arricchito in esosomi, tetraspanin CD81.
Figura 5. Bioanalyzer risultati mostrano la presenza di RNA nelle cellule (A) e esosomi (B). Le frecce indicano la subunità 18S e 28S rRNA presenti nelle cellule. Come exosomal RNA virile contenere piccoli RNA rRNA poca o nessuna è identificata in esosomi.
Discussion
Quando si studia il contenuto molecolare e / o funzione di esosomi, è fondamentale utilizzare un metodo di isolamento di alta qualità che fornisce un rendimento adeguato e il grado più basso possibile di contaminazione. La metodologia descritta nel presente documento è un approccio ben definito esosomi per isolare e studiare il loro contenuto di RNA e la funzione biologica. Inoltre, l'importanza della caratterizzazione del esosomi isolato, da una combinazione di diversi metodi, tra cui la microscopia elettronica, citofluorimetria, e Western Blot, viene evidenziato.
Quando si isola esosomi, la prima fase di centrifugazione (300 xg) è usato per le celle a pellet che potrebbero essere presenti nella sospensione cellulare o il fluido biologico studiato. La centrifugazione secondo a 16 500 xg deve essere sufficientemente forte per pellet di cellule morte, più grandi detriti, corpi apoptotici e altri organuli. Dopo questo centrifugazione, alcuni protocolli includono una nano-filtrazione passo, ma alcuni investigators hanno escluso questo passaggio. Tuttavia, sottolineiamo l'importanza di frammenti di sradicare e vescicole più grandi di 200 nm e, pertanto consigliamo vivamente tra cui una fase di filtrazione. Se un isolamento più severi è necessario, a 100 nm, i filtri possono essere usati, ma è da notare che se i liquidi viscosi sono utilizzati, questi filtri possono facilmente ostruirsi e materiale exosomal è perduto. Inoltre, a 100 nm di filtrazione possono influenzare la morfologia del esosomi e inoltre se esosomi sono in larga scala potrebbero essere persi. Così, la 200 filtri nm sembra opportuno per l'isolamento exosome. Dopo la filtrazione, l'ultracentrifugazione obbligatoria a 120.000 xg viene utilizzato per far sedimentare il esosomi. Il esosomi può essere ulteriormente lavate con PBS, legati a microsfere legate agli anticorpi e lavata, o posta su un gradiente di saccarosio per rimuovere le proteine contaminazione. Tuttavia, questo può essere un processo risorsa molto lunghi che sostengono di non essere necessaria, soprattutto se il volume del campione di partenza è di piccole dimensioni e / o il contenuto di RNA of il esosomi è bassa, come misure supplementari in modo sostanziale diminuire la ulteriore materiale. Tuttavia, ancora una volta, la natura delle vescicole isolate dovrebbero essere provata dalla presenza e assenza di alcune proteine.
Fino ad oggi, nessun marcatore proteico assolutamente unica per esosomi è stato identificato per verificare che il campione contiene esosomi e nient'altro. Di conseguenza, una combinazione di metodi sono necessari per caratterizzare la esosomi, compresa la determinazione della dimensione e morfologia del esosomi al microscopio elettronico. Inoltre, la purezza del campione può essere determinata mediante microscopia elettronica, in quanto questo metodo in grado di fornire una panoramica del livello di contaminazione del campione, per esempio con vescicole più grandi, come microparticelle, corpi apoptotici o detriti cellulari. Inoltre, il contenuto proteico del esosomi può essere determinata mediante citometria di flusso e Western Blot, e la combinazione di questi due metodi si ottiene un'analisi sia della membrana legati (es. CD63 eCD81) e interiorizzato le proteine (ad esempio Tsg101 e Alix) del esosomi. Rilevamento di proteine arricchiti in esosomi, come CD63, Tsg101 e Alix, e l'assenza di proteine come la proteina calnexin reticolo endoplasmatico, è un'indicazione che il exosome arricchito pellet è davvero esosomi e vescicole non contaminare da altri compartimenti della cellula.
Il profilo del RNA che viene rilevato in esosomi è fondamentalmente diversa da quella del RNA presenti nelle cellule intatte. Così, l'RNA exosomal analizzato da Bioanalyzer o in gel a base di approcci di analisi di RNA non hanno le due cime per la subunità 18S e 28S rRNA, che sono importanti nell'analisi di RNA cellulare. Abbiamo quindi sostenere che l'accertamento di eventuali quantità significative di rRNA in un campione indica che l'RNA totale estratto non è di origine exosomal da solo, e quindi che il metodo di isolamento deve essere migliorata e di qualità assicurata.
Disclosures
JL è un co-proprietario di un brevetto relativo all'utilizzo di esosomi come vettori per il trasferimento di RNA nelle cellule.
Acknowledgments
Questo studio è stato finanziato dal Consiglio svedese della ricerca (K2008-57x-20 676-01-3).
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Optima L-90K Ultracentrifuge | Beckman Coulter Inc. | 65670 | |
| Quick-seal ultracentrifuge tubes | Beckman Coulter Inc. | Depending on the rotor used different tubes are needed. Ti70 (342414), Ti45 (345776) | |
| Quick-Seal Cordless Tube Topper kit | Beckman Coulter Inc. | 358312 | |
| Filtropur Syringe Filter, 0.20μm | Sarstedt Ltd | 83.1826.001 | For viscose fluids and/or large volumes, a Vacuum filtration system, 0.2 μm, from VWR International can be used instead (514-0600). |
| Formvar/carbon coated nickel grids | Ted Pella, Inc. | 1GN200 | |
| Mouse-anti-human CD63 | BD Biosciences | 556019 | Final conc: 0.05μg/μl |
| Isotype control; IgG1κ (MOPC 21) | Sigma-Aldrich | M9269 | Final conc: 0.05μg/μl |
| Anti-Mouse IgG Gold Conjugate, 10 nm | Sigma-Aldrich | G7777 | Final conc: 1% |
| LEO 912AB Omega Electron microscope | Carl Zeiss, Inc. | Or equivalent equipment. | |
| 4μm aldehyd/sulphate latex beads | Interfacial Dynamics | 12-4000 | |
| Antibody for coating of the latex beads | For example anti-CD63 from BD Bioscience (556019) | ||
| Intelli-Mixer RM-2L | ELMI | Or equivalent equipment. | |
| IgG from human serum | Sigma-Aldrich | I4506 | |
| Antibodies for detection | BD Biosciences | For example: PE anti-CD63 (556020)PE anti-CD9 (555372)PE anti-CD81 (555676) Isotype control (555749) | |
| BD FACSAria | BD Biosciences | ||
| Transsonic T 490 DH | ELMA | Or equivalent equipment. | |
| miRCURY RNA Isolation Kit | Exiqon A/S | 300110 | |
| Agilent 2100 Bioanalyzer | Agilent Technologies | G2939A |
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