Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Medicine

השרשה תוך גולגולתי עם 3D לאחר In vivo Bioluminescent הדמיה של gliomas Murine

Published: November 6, 2011 doi: 10.3791/3403

Summary

ההשתלה תוך גולגולתי של תאים לתוך GL261 C57BL / 6 עכברים מייצרת gliomas ממאיר לשחזר רבים מסימני ההיכר של multiforme glioblastoma האדם. השתמשנו GL261 התאים ביציבות להביע בלוציפראז כדי לאפשר לנו להשתמש

Abstract

Glioma העכבר 261 (GL261) מזוהה במערכת מודל vivo כי משחזר רבות מהתכונות של האדם multiforme glioblastoma (GBM). קו התא היה מושרה במקור על ידי הזרקה תוך גולגולתי של 3 cholantrene-מתיל לתוך C57BL / 6 זן עכבר syngeneic 1, ולכן המוסמכת immunologically C57BL / 6 עכברים ניתן להשתמש. בעוד אנו משתמשים GL261, פרוטוקול הבאים יכולים לשמש להשתלה וניטור של כל מודל העכבר תוך גולגולתי הגידול. GL261 היו תאים מהונדסים ביציבות להביע גחלילית בלוציפראז (GL261 לוק). אנחנו גם יצר את קו בהיר GL261-luc2 התא על ידי transfection יציב של הגן luc2 הביע מן האמרגן CMV. עכברים C57BL/6-cBrd/cBrd/Cr (גרסה של לבקנים C57BL / 6) מן המכון הלאומי לסרטן, פרדריק, MD שימשו כדי לחסל את הנחתה אור הנגרמת על ידי עור פרווה שחור. עם השימוש C57BL לבקן / 6 עכברים; בתחום ההדמיה vivo באמצעות ספקטרום IVIS in vivo imהזדקנות מערכת אפשרי מיום ההשתלה (Caliper מדעי החיים, Hopkinton, MA). GL261 לוק ו-GL261 luc2 שורות תאים הראו אותו בהתנהגות vivo כמו GL261 תאים ההורים. חלק מהתכונות היסטולוגית משותפת נוכח GBMs האדם מודל זה עכבר כוללים: נמק הגידול, pseudopalisades, neovascularization, פלישה, hypercellularity, ודלקת 1.

לפני ההשתלה החיות היו מורדמים בזריקה intraperitoneal של קטמין (50 מ"ג / ק"ג), xylazine (5 מ"ג / ק"ג) ו - עצירות (0.05 מ"ג / ק"ג), להציב מנגנון stereotactic ואת חתך נעשה עם אזמל על הגולגולת קו האמצע. Burrhole נעשה האחורי 0.1mm ל 2.3mm גבחת וגם בצד ימין של קו האמצע. מחט הוכנס לעומק של 0.4mm 3mm ומסוגר עד לעומק של 2.6mm. שני μl של GL261 לוק או GL261-luc2 תאים (10 7 תאים / מ"ל) היו חדורים במשך 3 דקות. Burrhole נסגרעם bonewax ואת החתך היה sutured.

בעקבות ההשתלה stereotactic התאים bioluminescent הם לגילוי מיום ההשתלה הגידול ניתן לנתח באמצעות תמונה 3D שחזור תכונה של המכשיר ספקטרום IVIS. בעלי חיים מקבלים זריקה תת עורית של 150μg luciferin / ק"ג משקל גוף 20 דקות לפני הדמיה. נטל הגידול לכמת באמצעות פליטת אור הגידול מתכוון לאורך זמן. נושאות גידולים בעכברים נצפו יומי כדי להעריך את התחלואה היו מורדמים כאשר אחד או יותר מהתסמינים הבאים נוכחים: עייפות אי ambulate, יציבה כפופה, אי החתן, אנורקסיה שגורם לאובדן> 10% ממשקל. גידולים ניכרו כל החיות על necropsy.

Protocol

1. תא תרבות

  1. הקו GL26 תא התקבל אגף טיפול סרטן אבחון (DCTD) המכון הלאומי לסרטן (NCI), פרדריק, מרילנד. כדי להקל על מדידה כמותית של גידול בקצב הצמיחה GL261 התאים נעשו bioluminescent באמצעות HT Lentiphos System (Clontech Laboratories, Inc, Mountain View, CA) עם Lenti X-HT אריזות מיקס (Clontech Laboratories, Inc) ו-FUW GL פלסמיד (מתנה נדיבה מהמעבדה של JB רובין, MD, PhD). תאים נשמרו ב בינוני השתנה Dulbecco של הנשר (DMEM) עם 10% טטרציקלין ללא עגל סרום עוברית (FCS; Clontech Laboratories, Inc). GL261 התאים היו גם transfected ביציבות עם luc2 הגן קידוד באמצעות pGL4.51 [luc2 / CMV / ניאו] וקטור (Promega קורפ, מדיסון, WI) ו FuGENE 6 מגיב transfection (רוש ומדע יישומי, אינדיאנפוליס, IN) התנאים הבאים שצוינו על ידי היצרן. הגן luc2 הוא גרסה קודון אופטימיזציה של גחלילית luciferase המספקת פלט אור גבוה באופן משמעותי מאשר הגן לוק סטנדרטי. Transfectants יציבה נבחרו ומתוחזק בתקשורת DMEM FCS המכיל 10% ו 100 מיקרוגרם / מ"ל ​​Geneticin (G418, Invitrogen קורפ, בקרלסבד, קליפורניה).
  2. לפני השתלת התאים בתרבית נקצרים על ידי trypsinzation, שטף פעם DMEM ללא בסרום resuspended ב DMEM ללא סרום בריכוז של 1 x 10 7 תאים / מ"ל.

2. ניתוח הגדרת 2

  1. בסביבה סטרילית נשמרת לאורך כל הניתוח, כולל כל המכשירים, ציוד כירורגי, כפפות, סדינים וכו '.
  2. עשרת שבוע C57BL/6-cBrd/cBrd/Cr הישן (C57BL לבקן / 6) עכברים נרכשים מן המכון הלאומי לסרטן על תוכנית הייצור פרדריק בעלי חיים והשתמשו במשקל ממוצע של 20 גרם (NCI, פרדריק, MD).
  3. בעלי חיים מורדמים בזריקה intraperitoneal של xylazine (5 מ"ג / ק"ג), קטמין (50 מ"ג / ק"ג) ו - עצירות (0.05 מ"ג / ק"ג). אלקמצוץ דואר נעשית על מנת להבטיח כי בעל החיים מספקת מרדים לפני הניתוח היא החלה. התנועה (גם אם קלה) של כל חלק של החיה היא אינדיקציה לירידה לרמה של הרדמה. בעלי חיים ניתנת מיד תוספת 3.3 מ"ג / ק"ג xylazine ו 26.6 מ"ג / ק"ג קטמין. טמפרטורת הגוף נשמרת באמצעות מנורה תחבושות סטריליות המכסה את הגוף.
  4. לאחר החיה הוא מורדם כראוי, הם ממוקמים על המיטה מרופד של headframe stereotactic (900 דגם קטן Stereotaxic בעלי חיים, דוד Kopf מכשירים) [איור 1].
  5. כמות קטנה (1 / 4 אינץ') של משחה AKWA דמעות חומר סיכה עיניים מוחל על הקרניות.
  6. בעלי חיים מובטחת במסגרת stereotactic ידי פתיחת הפה של החיה (על ידי הנחת האצבע המורה והאגודל סביב הלסת של החיה) וגלישה השיניים הקדמיות למעלה לתוך המגרעת בפריים stereotactic. מהדק היא הידקה כדי לאבטח את ראשו של בעל החיים לתוך האוזניות לוודא כי הראש דואר מיושר והעיניים מרוכזים, כדי לוודא זאת לא להפעיל כוח מופרז על ראשו של בעלי חיים.
  7. צינור 2 O הוא מודבק ליד הנחיריים של החיה. קצב זרימת החמצן הוא 0.5 ליטר / דקה.
  8. הגב התחתון והזנב הוא מודבק אל המיטה stereotactic נזהרים שלא להתפשר נשימה.
  9. האתר חתך ניתוחי מגולח. Povidine-יוד מקלות ספוגית משמשים לשטוף את האזור בין העיניים לחזור בשטח שבין האוזניים עם יוד, ולוודא יוד לא לטפטף לתוך העיניים של החיה.
  10. התאים מוכנים להשתלה רק לפני הניתוח והם מעורבים באופן תקופתי על מנת להבטיח שהם לא להתפשר.
  11. Μl 10, 50 מ"מ העולם Precision Instrument (WPI), בסרסוטה, פלורידה, מזרק עם מחט מד 26 משופעים טעון inoculum התא. אם התאים נראה בכבדות ביחד זה עשוי להיות נחוץ כדי לטעון מחדש את המזרק.
  12. מזרק 10 μl ממוקם אז אל UMP3-1 UltramicroPump מיקרו ההזרקה (WPI, בסרסוטה, פלורידה).

3. השרשה תוך גולגולתי 2

  1. החתך בעור נעשית באמצעות 15 גודל להב האזמל מלקחיים שיניים. חתך 10-15 מ"מ עשוי מ longitudinally בין העיניים של החיה, נע לכיוון האוזניים של החיה חשיפת גבחת (בצומת של התפרים sagittal ו העטרה בחלק העליון של הגולגולת). הקפד היטב לזהות את גבחת בשביל זה אפשר להתבלבל בקלות עם שטח הסינוס אשר הדיסטלי של גבחת [איור 2].
  2. אחרי החיה הוא מסומם הוא מקבל זריקה תוך incisional של 0.25% (2.5 מ"ג / מ"ל) bupivacaine.
  3. Burrhole עשוי 0.1 מ"מ האחורי כדי גבחת ו 2.3 מ"מ ימינה של קו האמצע על ידי לאט מסובב מד 16 ½ 1 אינטש מחט ביד, הפעלת לחץ מעט המחט תוך סיבוב עד הגולגולת היא חדרה והמוח חשוף.
  4. מחט מזרק מועבר לתוך העמדה באמצעות STE Microdriveמזרק בעל reotactic עד שזה נוגע רק פני השטח של המוח. מתוך עמדה זו, המחט היא מתקדמת לתוך המוח לעומק של 3 מ"מ והמשיך במקום במשך 3 דקות.
  5. המחט היא נסוגה 0.4 מ"מ לעומק כולל של 2.6 מ"מ מתחת לפני השטח של המוח, ליצור כיס קטן שבו התאים הם להיות חדורים. זה לא חובה, בשלב זה, לקחת תמונה רנטגן של המחט על החיה כדי להבטיח מיקום עומק נכונה.
  6. ההשעיה התא הוא החדיר מעל 3 דקות באמצעות מזרק מיקרו מוגדר בהיקף של 2000 NL (2 μL) עם קצב עירוי של 667 NL / דקה.
  7. המחט נשארת במקום במשך 2 דקות כדי למנוע דליפה מהאתר של אינפוזיה.
  8. המחט היא נסוגה לאט לחלוטין.
  9. Burrhole מתמלא שעווה העצם באמצעות מבתר פנפילד.
  10. החתך הוא sutured באמצעות 4-0 (1.5 מטרי) vicryl תפר לוודא שאין פערים גדולים נשארים בעור. Vicryl הוא חומר תפר כי להמיסs, ולכן התפרים לא צריך להיות מוסר כאשר החתך נרפא.
  11. לאחר הניתוח בעלי החיים ממוקמות בכלוב תחת מנורת חימום המוגדרת בגובה הנדרש כדי לחמם את המשטח התחתון של הכלוב עד 30 ° C. כאשר בעלי החיים נמצאים ער לחלוטין (לשפוט לפי התנועה נורמלי בכלוב) הם חזרו דיור קבוצה. איבופרופן אוראלי מתווסף מי השתייה שלהם במשך 5 ימים לאחר הניתוח. 100 מ"ג איבופרופן לילדים (100mg/5ml) מתווסף בקבוק סטנדרטי 473 מ"ל מים מכרסם. בעלי חיים הם נצפו יומי צילמו ומשקלו כל 3 ימים. שבועיים לאחר ההשתלה תצפית גדל ל פעמיים ליום. בעלי חיים מומתים כאשר הם מראים סימנים של ירידה בריאות הכולל יציבה כפופה, ניידות מופחתת והגוף נראה ירידה במשקל (≥ 20%). תסמינים אלה הם בתגובה פרסם לגידול והם reproducibly יופיעו כ 1 יום לפני מותו, בשל הגידול.

4. Vivo 3

  1. הפעל את [חיים תמונה] תוכנה.
  2. מערכת הדמיה IVIS מאותחל על ידי לחיצה על [אתחול מערכת IVIS] כפתור בצד הימני התחתון של לוח הבקרה.
  3. בחר את [זריח] מצב הדמיה בצד השמאלי העליון של לוח הבקרה.
  4. כדי לקבוע את הזמן האופטימלי של הדמיה לאחר ההזרקה luciferin מחקר הקינטית הכרחית [איור 3]. תיאור זה של גחלילית בלוציפראז;
    1. הזרק 10μl / g משקל הגוף של D-luciferin גחלילית (15mg/ml ב-PBS, Caliper מדעי החיים קטלוג XR-1001 או מוצר דומה מיצרן אחר) אל בעלי החיים, כמתואר להלן.
    2. חכה 3 דקות, ואז להרדים את העכבר על ידי הצבתו בתוך תא הגזים הרדמה (2% גז Isoflurane ב O 2).
    3. כבה את גז הרדמה לחדר ופתח את שסתום הרדמה ואת ואקום סעפת IVIS. מיד למקום בעלי חיים מסומםעל פלטפורמת הדמיה מבוקר טמפרטורה, מוודא נחיר של העכבר ממוקם כראוי סעפת גז ההרדמה. התמונה הראשונה צריך לקחת כ 5 דקות לאחר ההזרקה luciferin. עד 5 חיות ניתן הדמיה בבת אחת במכשיר ספקטרום IVIS. אם פחות מ -5 בעלי חיים יש הדמיה, ניתן לחבר את סעפת בשימוש (ים) כדי לחסוך על דלק isoflurane.
    4. המשך לקחת תמונות כל 3 דקות על ידי יצירת רצף של עד שעה כדי ליצור עקומת הקינטית לביטוי luciferin.
      1. לחץ על [הגדרת רצף] כפתור בלוח הבקרה.
      2. עורך רצף מופיע.
      3. בלוח הבקרה, ציין את ההגדרות עבור התמונה bioluminescent הראשון ברצף.
        1. מומלץ להתחיל עם binning בינוני.
        2. אנו ממליצים גם חשיפה אוטומטית על מנת לקבוע את זמן החשיפה האופטימלית.
        3. בחר את [עיכוב] כפתור בעורך ברצףnd לציין זמן עיכוב של 3 דקות בין כל רכישה.
      4. לחצו [הוסף] עורך את הרצף. הפרמטרים רכישת מתווספים אז אל השולחן.
      5. חזור על שלב 4 עבור כל תמונה ברצף.
    5. לאחר העקומה נוצר, בזמן הדמיה אופטימלית יכול להיקבע על ידי זוממים את עוצמת האות (אינטנסיביות) לעומת הזמן. בעלי חיים תמונה בזמן הגבוה in vivo פוטון לספור כדי לקבל את האות החזק ביותר והמדויק ביותר.
  5. ניסויים מוקדמים בשימוש הזרקת intraperitoneal (IP) של luciferin, לעומת זאת, זריקות ip מדי פעם הביא תוצאות לסירוגין מראה מעט פליטת אור אין בגידול. החוקרים שיערו כי חוסר אקראי פה ושם אות נבע משלוח של luciferin אל המעי או לאיברים פנימיים אחרים. לכן החלו להשתמש תת עורית (SC) luciferin זריקות וראינו שחזור הדמיה גדול [איור 3].
  6. עשריםדקות לאחר ההזרקה sc, בעלי החיים מורדמים ידי הצבתם בתא עם גז Isoflurane 2% O 2 עד שהם מגיבים.
  7. החיה הרדים (ים) מועברים לחדר ההדמיה. משחת עיניים אמור לשמש למחקר הקינטית בגלל האורך של הדמיה. זה לא נדרש לצורך הליכי הדמיה אחרים, כי הם קצרים משך.
  8. התמונה נרכשה על binning בינוני עם זמן חשיפה 5 דקות. אפשרות רכישת רכב עשוי לשמש גם.
  9. אם אות רווי ו / או להתעלף בכל binning בינוני, זמן binning או חשיפה יכול להיות מותאם.
  10. קבצים התוכנית והערות תמונה הבאים נשמרים בספרייה במחשב של המשתמש.

5. 3D Imaging 3

  1. לחץ על הכרטיסייה [הדמיה אשף] ב [הגדרת רצף] את החלון של לוח הבקרה.
  2. בחר את [פליטת אור] במצב הדמיה במסך אשף להתחיל הדמיה CLאיכס [הבא].
  3. ב "פליטת אור - DLIT" חלון אשף הדמיה, בחר [Firefly] בדיקה הכתב. הפליטה / עירור של הספקטרום גחלילית נבחר מקור יופיע עם שש בחירות לסנן המתאים להירכש.
  4. המסך האחרון יופיע עם ברירות מחדל הכוללות חשיפה אוטומטית רכישת פרמטרים של שדה של הגדרות ברירת מחדל צפה C. לעבוד טוב מאוד, עם זאת, הגדרות אלו ניתן לשנות במידת הצורך.
  5. לחץ על [הבא] וחלון עורך רצף יהיו מאוכלסים עם רצף של שישה אזורים ספקטרלית ב 20 ננומטר מסננים רחב (560 ננומטר, 580 ננומטר, 600nm, 620 ננומטר, 640 ננומטר, ו 660nm). לחצו על [רוכשת את רצף]. המסנן הראשון (560 ננומטר) יכלול דפוס אור מובנה באמצעות לייזר גלונומטר להקים הטופוגרפיה משטח.
  6. בחר את [פני טופוגרפיה] הכרטיסייה צבעים הכלי. החלקת פני השטח יכול להיות מיושם על התחשבות בכל זוויות חדות שנוצרו במהלך תהליך השיקום.החלקה מחדל נמוך מומלץ.
  7. לחץ על [יצירת] ואת תיבת לניתוח טומוגרפיה יופיע. צייר תיבת היבול הכולל את החיה כולה ולאחר מכן לחץ על [הבא].
  8. כלי סף יופיעו כמסיכה סגול על האזור הנבחר. המסכה צריכה להיות מוגדר באופן אוטומטי כדי להתאים את התמונה של החיה. במידת הצורך, להתאים את הסף של המסכה יותר כראוי להתאים את קווי המתאר של החיה.
  9. לחץ [סיום] ואת רשת משוחזר יופיע. שחזור לאחר מכן ניתן לשמור הכרטיסייה התוצאות.
  10. בעקבות הקמתה של הטופוגרפיה משטח של בעל החיים, המשך [DLIT 3D Reconstruction] נפתחת על הפלטה בכלי.
  11. בכרטיסייה [ניתוח] לבחור כל ששת אורכי גל כדי לבצע את השחזור. בטל תמונות הניב פיקסלים רווי או ספירת מתחת 600. עזוב הגדרות הכרטיסייה [פרמטרים] כברירת מחדל.
  12. בכרטיסייה [מאפיינים], "שרירים" אמור להיות רשום כבחירה ברירת המחדל עבורמאפיינים r רקמות, ו "Firefly" צריך להיות רשום ספקטרום המקור.
  13. לחץ [לשחזר] תחת הלשונית ניתוח, ואת שחזור 3D של פני השטח של בעלי חיים שיקום המקביל מקור האות להופיע [איור 4].
  14. כדי לקבוע את המיקום ואת עוצמת האות, בחר בלחצן Voxels בכרטיסייה כלים 3D של צבעים הכלי.
    1. צייר ריבוע סביב כל voxels יוצג מדידות השטף הכולל מוצג בתחתית הכרטיסייה את עוצמת הקול.
    2. לחץ על [מרכז מסה] כדי לזהות את מיקום האות של voxels שנבחר. העטרה, פרוסות sagittal ו transaxial של החיה יופיע ושימוש [הסמן תצוגה מדידה] המרחק בין פני השטח של החיה למרכז voxel ניתן למדוד.
  15. עיין במדריך תמונה חיה של תוכנה למשתמש לקבלת מידע נוסף על רישום משותף של אטלסים איברים ותכונות מתקדמות אחרות.

6. נתוניםnalysis 3

  1. לאחר התמונה היא רכשה והציל, לגשת לקובץ התוכנית על ידי לחיצה על הלחצן [עיון] ובחירת הקובץ.
  2. מידע התמונה ניתן למצוא תחת [הצג] → [מידע תמונה].
  3. עוצמת האות ניתן לכמת ידי בחירת אזור (ROI) כפתור ריבית [ROI כלים]. ודא את התמונה הוא ניתח תחת מצב [פוטון] על ידי בחירת "פוטון" ברשימה הנפתחת בפינה השמאלית העליונה של לוח הבקרה התמונה.
  4. בחר את [מדידת ההחזר על ההשקעה] כפתור מן הנפתחת "סוג" הרשימה. בחר את הצורה ROI של ריבית; האפשרויות כוללות עיגול, ריבוע, ו או רשת. כיסוי בכל תחומי בעוצמה על התמונה הנרכשת.
  5. עמדת ההחזר על ההשקעה נקבעת על ידי גרירת הבחירה בצורת החזר ההשקעה לאזור שמכיל את האות bioluminescent.
  6. עוצמת האות של ההחזר על ההשקעה מחושב על ידי לחיצה על [מדוד] כפתור. התווית ROI מציג את העוצמה. ההחזר על ההשקעה של יכול להיות מנוהל ונשמר USIng התוכנה תמונה חיים.

7. נציג תוצאות:

השתלת תא מוצלח ניכר כאשר התאים המושתלים אינם לזיהוי באמצעות ספקטרום IVIS ביום הניתוח. שני GL261 לוק ו-GL261 luc2 תאים לזיהוי, לעומת זאת, הגן luc2 יספק רמה גבוהה יותר של פליטת אור [איור 5]. תמונות שצולמו זמן קצר לאחר ההשתלה אולי לא ספציפית איתות על הכפות של החיה ואת האף אשר צריך להתעלם כרקע. אותות הממוקם באתר ההשתלה אמיתי האות יגדל עם הזמן [איור 6]. ירידת עוצמת האות ביום 6 ניתנת לשחזור וככל הנראה בשל אובדן של הגידול לקחת על ידי כמה מן התאים המושתלים. מדידות כמותיות של נטל הגידול ולייצר בכך שהם צריכים לעלות בהתמדה עד שהחיה בסופו של דבר נכנע למחלה. עם זאת, עקומות גדילה יהיה תלוי במידה רבה במצב של התאים המושתלים, או var ו קטין נמנע iability בהליך ההשתלה. במעבדה שלנו בחרה חיות תמונה מושתל כל שלושה ימים.

איור 1
באיור 1. אחרי העכבר הוא מורדם כראוי, היא ממוקמת בפריים stereotactic. ראש העכבר מאובטח באמצעות מהדק את הפה.

איור 2
באיור 2. לאחר העור הוא פתח את ציוני הדרך העיקריים הם זיהו אנטומי כולל לכלול את גבחת, את התפרים העטרה ועל sagittal. Burrhole עשוי 2.3mm בצד ימין של גבחת ידי לאט מסובב מד 16 ½ 1 מחט אינץ' עם כמות קטנה של לחץ עד הגולגולת היא חדרה והמוח חשוף.

איור 3
באיור 3. השוואה הקינטית של תת עורית (iles/ftp_upload/3403/3403fig3_1.jpg "alt =" Figure3.1 "/>) לעומת intraperitoneal ( Figure3.2 ) הזרקה luciferin בוצע כדי להדגים את התועלת של זריקה תת עורית luciferin כדי לזהות את הזמן האופטימלי הממשל הבא תמונה luciferin. שלוש דקות לאחר luciferin היה להזריק את העכבר היה מסומם, להציב מכשיר ספקטרום IVIS וצילמו כל 3 דקות עד שעה כל 6 דקות לאחר מכן כדי ליצור עקומה קינטית של פליטת אור. זה הוכיח כי תוואי תת עורית של luciferin הממשל היתה עדיפה על זריקה intraperitoneal בידיים שלנו, כי הזמן האופטימלי לתמונה חיות כ -25 דקות לאחר הזרקה luciferin כאשר GL261 לוק התאים היו בשימוש.

איור 4
איור 4. תצוגות מרובות של reconst 3 מימדיבבינוי של ההשתלה תוך גולגולתי של GL261-luc2 תאים שיתוף רשום עם שלד העכבר המוח.

איור 5
איור 5. ספירות פוטון המתקבל גידולים הנובעים GL261 לוק תאים vs-GL261 luc2 תאים. התוצאות הן ממוצע של 5 חיות.

איור 6
איור 6. גרף הצמיחה GL261 לוק תא הגידול C57BL לבקן / 6 העכבר. פליטת אור נמדדה כל 3 ימים ו זממו כמו לספור פוטון vivo לעומת ימים לאחר ההשתלה. תמונות להראות פליטת אור בנקודות זמן שונות. סוג צבע הוא אינדיקציה של פליטת אור (עוצמת פיקסל) אשר ביחס למספר תאים סרטניים (פס צבע מוצג מימין). אחרי החיה נכנעה למחלה במוח היה גזור ו luciferin נוספה מקומי כדי להשיג את מתאר לעצמי לשעבר vivoדואר שמוצג באיור הבלעה.

Discussion

Inoculum התא הוא החדיר בעומק של 2.6 מ"מ מפני השטח של המוח לאחר יצירת כיס 0.4 מ"מ. כדי להבטיח השמה עומק נכונה של המחט רנטגן ניתן לקחת באמצעות C-Arm או מכשיר דומה רנטגן תמונה הגברת, אך זו היא אופציונלית. סיבוכים של הניתוח עשוי להיווצר אם בעל החיים אינו מסומם כהלכה, ובנקודה בעלי חיים עשוי לעבור במהלך עירוי לתא. זה יכול לגרום דליפה של תערובת תאים או דימום מן המסלול מחט. דליפה של תאים מחוץ לרחם גורם צמיחה של תאים סרטניים. חשוב גם לא לנקב את החדר שבו ניתן לעשות אם burrhole עשוי המדיאלי מ"מ 2.3 המתואר בפרוטוקול 4. מיקום נכון של המחט התפשטות התא נבדק על ידי יציקת עכבר עם צבע 2 μl מתילן כחול לנתח את רקמת המוח כדי לבדוק את המיקום של הצבע רווי.

בפרוטוקול זה השתמשנו ספקטרום IVIS in vivo הדמיה המערכת tהוא חי תוכנה תמונה (v 4.0) מיועד לשימוש עם מכשיר זה. (Caliper מדעי החיים). כל השוואה במערכת הדמיה vivo ו כלי ניתוח התמונה ניתן להשתמש כדי להשיג תוצאות דומות. מערכות אלו מספקות כמה יתרונות על פני הדמיה המסורתית תהודה מגנטית (MRI) כדי לעקוב אחר הצמיחה של הגידול תוך גולגולתי ניסיוני. הברורה ביותר היא העלויות היחסית של 2 מכשירים - מכונות בבעלי חיים MRI הם הרבה יותר יקר בדרך כלל דורשים את שירותיו של טכנאי מיומן MRI. בשנת vivo הדמיה כגון מה שתואר כאן ניתן לעשות זאת על ידי משתמש הקצה. נתוני פליטת אור הוא כמותי, בעוד quantitation של נתוני ה-MRI היא גוזלת זמן מדויק במקצת. יתר על כן, בתמונות MRI להראות בצקת ודלקת בנוסף תאים סרטניים זה יכול להיות קשה להפריד בין הגידול אפקט הטיפול. מסיבות אלה השגת מדידות מדויקות של נפח הגידול הגובר יכול להיות אתגר. פליטת אור דורש ATPולכן רק תאים סרטניים חיים לתרום את הנתונים גודל הגידול. למרות זאת, יש כמה יתרונות על ה-MRI אם המכשיר זמין. תאים לא צריך להיות שסומנו בסמן bioluminescent להיות דמיינו ידי בדיקת MRI. היכולת לדמיין peri-tumoral בצקת עשוי להיות יתרון עבור חלק פרוטוקולי הניסוי. כוח של טכנולוגיות הן כי באמצעות אחד אינו מונע את השימוש של האחר, כך ניתן לקבל נתונים על הצמיחה של הגידול, כמו גם את נוכחותו של בצקת peri-tumoral ודלקת מן החי זהה כאשר שניהם זמינים טכנולוגיות החוקר.

Disclosures

גישה חופשית המאמר הזה הוא בחסות Caliper מדעי החיים.

Acknowledgments

ברצוננו להודות לד"ר יהושע ב 'רובין על המתנה הנדיבה של פלסמידים למערכת lentivirus וכן ראו Mahil עבור ההצעה מועיל על הכנת התאים GL261 לוק.

אנו מודים לתלמידים תמיכה גידול במוח מחקר (SSBTR), נוירולוגיות בארו קרן קרן וואלאס על תמיכתם הנדיבה.

ניסויים בבעלי חיים בוצעו בהתאם להנחיות והתקנות שנקבעו על ידי טיפול בבעלי חיים מוסדיים ועדת שימוש החולים סנט ג'וזף המרכז הרפואי.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
GL261-luc2 Bioware Ultra Caliper Life Sciences GL261-luc2
Dulbecco’s Modified Eagle Medium (DMEM) Invitrogen 10313039
Geneticin (G418) GIBCO, by Life Technologies 11811-023
Fetal Calf Serum (FCS) Invitrogen 26140079
Phospate Buffered Saline (PBS) Invitrogen 70011044
C57BL/6-cBrd/cBrd/Cr Mice National Cancer Institute
AKWA Tears Lubricant Opthalmic Ointment Akorn Inc 17478-062-35
Ketaset (ketamine hydrochloride) Wyeth Animal Health 11570775
Sedazine (xylazine hydrochloride) Wyeth Animal Health 10031894
Small Animal Stereotaxic Instrument Kopf Instruments 900
UltraMicroPump with SYS-Micro4 Controller World Precision Instruments, Inc. UMP3-1 If not available, it is possible to infuse manually
10μl syringe with 26 gauge beveled needle World Precision Instruments, Inc. SGE010RNS
Adison Forceps World Precision Instruments, Inc. 500092
Penfield Dissector Codman 65-1015
16g 1½ Precision Glide Needle BD Biosciences 305198
Surgical Blade Handle BD Biosciences 371030
Size 15 Blade BD Biosciences 371315
4-0 Vicryl Suture Ethicon Inc. VCP496G
Bone Wax Medline Industries DYNJBW25
Povidine-Iodine Swab Sticks Medline Industries MD93901
D-Luciferin Potassium Salt Caliper Life Sciences 122796
Forane (Isoflurane) Baxter Internationl Inc. 1001936060
OPMI Pentero Microscope Carl Zeiss, Inc. Any surgical microscope will suffice
Xenogen IVIS Spectrum with optional anesthesia system Caliper Life Sciences

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Candolfi, M. Intracranial glioblastoma models in preclinical neuro-oncology: neuropathological characterization and tumor progression. J Neurooncol. 85, 133-148 (2007).
  2. Stafford, P., Abdelwahab, M. G., do, K. im, Preul, Y., Rho, M. C., M, J., Scheck, A. C. The ketogenic diet reverses gene expression patterns and redudes reactive oxygen species levels when used as an adjuvant therapy for glioma. Nutr Metab. 7, (2010).
  3. Caliper Life Sciences, Inc. Living Image Software Version 4.0. VivoVision Systems. , (2010).
  4. Paxinos, G. The Mouse Brain in Stereotaxic Coordinates. , 2nd Ed, Academic Press. (2001).
  5. Jouanneau, E., Poujol, D., Gulia, S., Le, M. I., Blay, J. Y., Belin, M. F. Dendritic cells are essential for priming but inefficient for boosting antitumour immune response in an orthotopic murine glioma model. Cancer Immunol Immunother. 55, 254-267 (2006).

Tags

רפואה גיליון 57 glioma מודל העכבר פליטת אור in vivo הדמיה ההשתלה תוך גולגולתי
השרשה תוך גולגולתי עם 3D לאחר<em> In vivo</em> Bioluminescent הדמיה של gliomas Murine
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Abdelwahab, M. G., Sankar, T.,More

Abdelwahab, M. G., Sankar, T., Preul, M. C., Scheck, A. C. Intracranial Implantation with Subsequent 3D In Vivo Bioluminescent Imaging of Murine Gliomas. J. Vis. Exp. (57), e3403, doi:10.3791/3403 (2011).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter