Summary
Órgãos das plantas aéreas são protegidos pela cutícula, uma assembléia biopoliéster cera supramolecular. Apresentamos protocolos para monitorar a remoção seletiva de epi-e ceras intracuticular de cutículas dos frutos do tomateiro em escalas moleculares e micro por RMN de estado sólido e microscopia de força atômica, respectivamente, e para avaliar a capacidade de ligação cruzada de engenharia biopolyesters cuticulares.
Abstract
A cutícula, uma camada hidrofóbica protecção sobre as partes aéreas das plantas terrestres, funciona como uma barreira versátil defensiva para vários estresses e também regula o fluxo de água a partir do ambiente externo. 1 Um biopoliéster (cutina) e de cadeia longa de ácidos gordos ( ceras) formam o quadro estrutural principal da cutícula; a integridade funcional da camada cuticular depende da camada exterior 'epicuticular', bem como a mistura consistindo do biopolímero cutina e 'intracuticular dos ceras Nisto 2, nós descrevemos um protocolo global. para extrair ceras exaustivamente de tomate comercial (Solanum lycopersicum) cutículas de frutas ou para remover ceras e intracuticular seqüencialmente e, seletivamente, a partir do composto cutícula. O método de Jetter e Schaffer (2001) foi adaptado para a extracção por passos de ceras e intracuticular da cutícula fruta. 3,4 Para monitorizar oprocesso de remoção de cera seqüencial, de estado sólido polarização cruzada no ângulo mágico de fiação (CPMAS) 13 C espectroscopia de RMN foi utilizado em paralelo com microscopia de força atômica (AFM), oferecendo em nível molecular perfis estruturais dos materiais a granel, complementados por informações sobre a topografia microescala e rugosidade das superfícies cuticulares. Para avaliar as capacidades de ligação cruzada de cutículas desparafinados de cultivadas do tipo selvagem e de um único gene frutos de tomate mutantes, 13 MAS C RMN foi utilizado para comparar as proporções relativas dos alifático oxigenada (CHO e CH2O) porções químicas.
Desparafinação exaustiva por extracção de Soxhlet stepwise com um painel de solventes de diferentes polaridades proporciona um meio eficaz para isolar porções de cera com base nas características hidrofóbicas da sua alifáticos e constituintes aromáticos, preservando a estrutura química do biopoliéster cutina. A extração mecânica de ceras epicuticulares e Seleremoção de ceras ctive intracuticular, quando monitorizado por metodologias complementares físicas, proporciona um meio sem precedentes para investigar a montagem cutícula: esta abordagem revela que a organização supramolecular e integração estrutural de vários tipos de ceras, a arquitectura da matriz cutina cera, e do produto químico composição de cada constituinte. Além disso, de estado sólido 13 C RMN revela diferenças nos números relativos de CHO e 2 CH porções químicas O para tipo selvagem e mutante vermelhos maduros frutos de tomate. As técnicas de RMN oferecem ferramentas excepcionais para a impressão digital do estrutura molecular dos materiais cuticulares que são insolúveis, amorfo, e quimicamente heterogénea. Como técnica de imagem não invasivo superfície seletiva, AFM fornece um meio eficaz e direta para investigar a organização estrutural do conjunto cuticular na escala de comprimento nm m de.
Protocol
1. Isolamento enzimática de Tomate cutículas 5
- Coloque os tomates vários comerciais ou cultivadas em uma tigela. Descasque a pele dos frutos em grandes seções; descartar o pericarpo interior. Lave as peles de tomate com água desionizada e conservá-los sob água numa proveta.
- Prepara-se uma 50 mM, pH 4,0 tampão de acetato de sódio (a 31 ° C), colocando 1,22 g de trihidrato de acetato de sódio (M r. 136,08 g / mol) e 2,34 ml de ácido glacial acético (17,485 M) num copo, adicionando 200 ml de água desionizada, e, em seguida, ajustando o pH para 4,0 a 31 ° C. Prepara-se uma mistura contendo 4 ml de pectinase (EC 3.2.1.15; 10 U ml -1, TCI America), 0,2 g de celulase (CE 232.734.4; 1,3 unidades / mg de sólido, Sigma Aldrich), e 13 mg de NaN3, e, em seguida adicionar 196 ml de tampão acetato de sódio à mistura de enzima para obter 200 ml da enzima cocktail final. 5 mergulhar completamente a pele de tomate desenrolada do coquetel enzima e incubara 31 ° C durante 24 horas com agitação constante (G24 Ambiental Shaker; New Brunswick Scientific Co.).
- Colete as peles de tomate usando um coador de cozinha ou funil Büchner e lavá-los com água deionizada. Depois disso, colocá-los numa estufa de vácuo à temperatura ambiente durante uma hora. Preservar as peles de tomate seco em uma garrafa rotulada e tampado para procedimentos desparafinagem subseqüentes.
2. Desparafinação exaustiva por Soxhlet de extração 6
- O equipamento utilizado para desparafinação exaustiva consiste de uma fonte de calor (aquecimento manto e Variac controlador), balão de fundo redondo para um reservatório de solvente, extractor de Soxhlet, de vidro sinterizado dedal ou cartucho de extracção descartável, anti-ebulição fichas e um condensador (ver fig. 1). Note-se que o braço de sifão estreito (partes 6 e 7 na fig. 1) é muito delicado e propensos à ruptura, requerendo tratamento cuidadoso.
- Coloque 0,5-1 g de pele de tomate (obtido nopasso 1.) em um almofariz, e moer a amostra para um pó grosso com um pilão, a menos que as amostras são para ser usado para medições de AFM (Secção 5). Encher um dedal de vidro sinterizado ou descartáveis aproximadamente a meio caminho com a amostra e usar uma pinça para colocá-lo cuidadosamente na base da coluna de extracção.
- Fixe o condensador e envolvê-la com papel alumínio. Aquecer o solvente metanol (ACS grau), na presença de alguns anti-ebulição fichas até ferver suavemente e refluxos nas paredes do balão. Cobrir o reservatório de solvente com ambos lã de vidro e uma folha de alumínio. Verificar o processo durante uma hora, ajustando a tensão Variac de modo que o reservatório se acumula sobre uma gota por segundo e sifonagem ocorre dentro do aparelho de Soxhlet, quando o dedal está cheio.
- Continuar o processo de extracção durante 12 h, em seguida, baixar a manta de aquecimento e permitir que o aparelho para arrefecer. Remover o extractor e reservatório como uma única unidade de dispor de um solvente. Use tweezers para elevar o dedal para um pouco abaixo do gargalo da coluna de extracção, escorrer o excesso de solvente a partir dele, e colocar o dedal sobre uma superfície limpa. Inclinar a coluna de extracção para permitir sifão para o balão abaixo. Desconecte o frasco e despeje os resíduos em um recipiente de resíduos rotulados solvente.
- Repetir os passos 2.3 e 2.4 para os solventes sucessivas de polaridade progressivamente decrescente, por exemplo, clorofórmio e hexano durante 12 h em cada caso.
- Deixar a amostra cutina tomate para secar no interior do dedal, quer por sopro uma corrente de azoto gasoso sobre ele ou colocando-o num forno de vácuo à temperatura ambiente. Finalmente, a medição da massa da amostra seca e armazená-la à temperatura ambiente em um frasco com tampa selada com parafilme.
3. Isolamento seletivo de ceras epicuticulares e Intracuticular 3,4
- Em primeiro lugar, lavar tomates inteiros (um lote separado de tomate daqueles descritos na 1.) Com água destilada. Seque-os com paptoalhas er e Kimwipes, e coloque-tronco para baixo sobre um pedaço de papel alumínio.
- Pintar os tomates inteiros com 120% (w / w, a razão de massa) de solução aquosa de goma arábica em uma forma de cima para baixo e permitir que cerca de uma hora para a goma arábica para secar sobre a pele do fruto, deixando uma película fina. Retire-a usando uma pinça, tomando cuidado para não perfurar a pele do tomate. Repita o procedimento mais uma vez.
- Adicionar os filmes para frascos contendo 1:1 (v / v) de clorofórmio-água e misturar durante três minutos. Após agitação vigorosa e separação de fases, pipetar as frações clorofórmio e evaporar-los em frascos separados descobertos, deixando de cera epicuticular. Os tomates permanecerá fisicamente intacto. Mergulhar-los em clorofórmio, durante dois minutos à temperatura ambiente e recolher a cera intracuticular após evaporação do solvente. Agora, descascar os tomates e tratá-los enzimaticamente (com celulase e pectinase em tampão acetato de sódio) para remover celulose e pectina, respectivamente (tal como descrito no
- Se desejado, realizar desparafinação exaustiva sobre estas cutículas enzimaticamente isolado por extracção de Soxhlet (ver passo 2), utilizando três solventes de polaridade variável (metanol, clorofórmio e hexano, respectivamente).
4. Caracterização Molecular da cutina frutos de tomate por polarização cruzada Magia ângulo de giro de estado sólido de Ressonância Magnética Nuclear (CPMAS SSNMR) 6
- Coloque 4-6 mg de cutículas de tomate totalmente desparafinados (cutins) em 1,6 milímetros fastMAS zirconia rotor usando o fornecido pelo fornecedor de ferramentas de embalagem. (Ou terra cutículas tomate desparafinados ou peças muito pequenas de cutículas parcialmente desparafinados são adequados.) Certifique-se que a amostra é embalado de forma uniforme, mas não com muita força, no rotor. Depois de colocar a tampa de topo, pintar metade da tampa com uma caneta marcadora negro-de tinta para facilitar medições da velocidade de rotação.
- Ajustar o calços do espectrómetro de RMN para a largura de linha espectral mínimo a meia-altura-umnd calibrar o protão (1 H) e de carbono (13 C) 90 ° larguras de pulso utilizando um composto padrão, tais como adamantano.
- Usando glicina ou glutamina como compostos modelo, obter intensidade máxima do sinal através da otimização de todos os parâmetros (Hartmann-Hahn níveis de energia correspondentes, 1 H-13 C tempo de contato, heteronuclear 1 H força dissociação) dos polarização cruzada magia do ângulo de rotação (CPMAS) experimento. Para os espectros adquirido com uma frequência de 1 H 600 MHz, as condições recomendadas incluem 10 kHz ou 15 kHz frequência fiação, um atraso de 3-sec entre as aquisições, e protão heteronuclear SPINAL dissociação 7 a uma intensidade de campo magnético equivalente a uma frequência de 185 kHz.
- Insira o rotor cutina-embalados na sonda. Em seguida, coloque a sonda no ímã. Aumente a velocidade de centrifugação até 10 kHz gradualmente para verificar se a embalagem da amostra e estabilidade do rotor. Verificar a estabilidade final de fiação do rotor para dentro± 20 Hz.
- Ajuste a sintonia e harmonização capacitores da sonda iterativamente para atingir reflexão mínimo de energia, tanto de 1 H e 13 C RMN freqüências. Regule a temperatura experimental para 25 ° C (ou temperatura ambiente).
- Iniciar o pré-optimizado experimento CPMAS correspondente à condição de Hartmann-Hahn correspondente determinado na frequência de 10 kHz a fiação.
- Adquirir 4096 transientes, a condição do espectro com a linha (Lorentziana) exponencial ampliação de 50-100 Hz, e fazer uma transformada de Fourier para gerar um espectro de RMN de intensidade de sinal versus blindagem química (ppm).
- Referência a 13 química C turnos externamente usando o conjunto de adamantano em 38,4 ppm (-CH 2 - grupo) 8 como padrão.
- Aumentar a frequência do rotor de fiação a 15 kHz e repetir a medição CPMAS (passos 4.6-4.8) correspondente à condição de Hartmann-Hahn correspondente determinada nesta última frequência de girar.
- Repenas experiências CPMAS (passos 4.1-4.9) com amostras de cutícula naturais (ceroso) e parcialmente desparafinados de fruta.
5. Sondagem da superfície da cutícula de Tomate com Microscopia de Força Atômica (Digital Instruments Nanoscope IIIa; procedimentos irão variar entre os microscópios) 6
- Ligue o microscópio de varredura por sonda (SPM) (Fig. 2) e certifique-se que o interruptor de modo microscópio alternância é definida como a microscopia de força de contato Atômica (AFM) de modo.
- Manualmente levantar a cabeça SPM girando seus dois botões ajustáveis pelo usuário da frente. Separe o tipholder AFM a partir da cabeça SPM rodando o parafuso de aperto na parte de trás da cabeça.
- Use uma pinça para remover o cantilever AFM existente na tipholder, então, cuidadosamente, pegue um cantilever de nitreto de silício novo (AFM sonda) de seu pacote e instalá-lo no lugar do cantilever de idade. Utilizar um microscópio de luz para verificar que o recém-instalado cantilever AFM não é quebrada.
- Anexar ªe cutícula amostra de tomate (uma seção de cutícula tomate parcialmente desparafinados ~ 10 mm x 10 mm) para um disco de aço inoxidável (amostra puck) com fita dupla face. Utilizar um microscópio de luz para verificar que a superfície cutículas permanece plana e lisa após a colocação da amostra sobre a puck.
- Coloque o puck com a amostra de cutícula de tomate para a região magnética na parte superior do scanner SPM.
- Definir as dianteiras dois parafusos de ajuste manuais do scanner de alta rodando os botões; definir o parafuso de ajustamento motorizado de volta para aproximadamente o mesmo nível como os outros dois parafusos frontais. Certifique-se que todos os três parafusos são suficientemente elevadas para evitar a quebra da ponta do AFM quando colocar a tipholder na cabeça SPM.
- Reinserir o tipholder dentro da cabeça de SPM e fixá-lo apertando o parafuso de aperto na parte de trás da cabeça.
- Depois de ligar o laser, alinhar o ponto de laser sobre o cantilever AFM usando o central (y) e direita (x) botões de ajuste do laser sobre o topo da cabeça.Monitorar o feixe de laser reflectido sobre um pedaço de papel para posicionar o ponto de laser exactamente no final do cantilever de AFM.
- Ajustar a posição do espelho móvel iterativamente usando os botões de ajuste fotodetector para alcançar máxima do sinal (sinal SUM), garantindo assim que o feixe de laser reflectido está a ser recebido uniformemente pelos quatro quadrantes do fotodetector.
- Abaixar a ponta do AFM retraindo os parafusos de ajustamento manual frontal eo parafuso de ajustamento motorizado de trás do scanner SPM, visualmente o controlo da abordagem da ponta AFM em direcção à superfície da amostra com um microscópio invertido. Assegure-se que todos os três parafusos são ao mesmo nível, para evitar artefactos de imagem de uma amostra inclinada. Traga a ponta em direção à amostra, mas não tão perto que os toques de ponta ou rompe a superfície da amostra.
- Neste ponto, a luz laser refletida do cantilever AFM vai saltar fora do espelho móvel para o fotodetector. Para o modo de AFM contacto com um silinitreto de con AFM ponta, definir o sinal de saída (deflexão vertical) de voltagem para -2 V para um valor nominal V 0 eo sinal de DIFF (vertical / horizontal diferença) para 0 V, ajustando a posição do espelho.
- Usando o software Nanoscope, clique no ícone do microscópio e selecionar o perfil adequado (Contato modo AFM).
- Usando o "Controle de Configurações de digitalização de" painel, defina a taxa de varredura e por exemplo, tamanho da digitalização, 10 microns tamanho de digitalização e 2 Hz taxa de varredura.
- Permitir a ponta do AFM para envolver a superfície da amostra, clicando no ícone de envolver-dica. Ao controlar o parafuso de volta motorizada da base SPM, o programa irá agora baixar a ponta até que engata a superfície da amostra. O processo de digitalização será iniciado automaticamente uma vez que a ponta se envolveu com sucesso.
- Monitorar o processo de digitalização usando ambos os modos de imagem e alcance do software, ajustando parâmetros como referência, o ganho integral, ganho proporcional, tamanho da digitalização, velocidade de varredura, as linhas e as amostras por linha iterativamente para atingir o mais altoimagens de alta resolução. Inicie a digitalização com uma gama eixo z grande (escala de dados); então cuidadosamente reduzir o valor da escala de dados para observar o melhor contraste de características de superfície sobre a imagem. Minimizar a ocorrência de áreas brancas da imagem digitalizada, que indicam que a altura das características da superfície superior do intervalo eixo z disponível.
- Capturar a imagem para salvar o arquivo de dados, em seguida, processar os dados usando funções de nivelamento para remover artefatos na imagem devido à deriva do scanner vertical (Z), arcos de imagem, e deslocamento vertical entre linhas de varredura, 9, finalmente, calcular a rugosidade média. Depois de guardar os dados, retrair a ponta do AFM, invertendo a acção do motor de parafuso, controlado por computador que foi usado para acoplar-lo. O processamento de imagem pode ser realizada em modo off-line de análise de imagem e / ou utilizando um computador diferente.
- Use os botões da frente de fundo de metal cinza do titular dica para mudar as posições x e y da área de digitalização, em seguida, repita a medição em cinco loca amostrações para verificar a reprodutibilidade, substituindo o cantilever de AFM se a qualidade da imagem deteriora-se.
6. Os resultados representativos
A análise química do deslocamento 13 CPMAS C espectros de RMN (Fig. 3) identificou os grupos funcionais mais importantes presentes no cutícula de tomate exaustivamente desparafinados (cutina). As porções de carbono chave na biopoliéster cutina foram encontrados para ser alifáticos de cadeia longa (0-45 ppm), compostos alifáticos oxigenados (45-110 ppm), multiplicar-colados e aromáticos (110-160 ppm), e carbonilos (160-220 ppm). As porções oxigenados de alquilo (CHO + CH2O) desempenham um papel crucial no estabelecimento de ligações covalentes entre as unidades monoméricas do biopolímero cutina, formando assim a arquitectura molecular da matriz cutina. As diferenças na áreas dos picos relativos observados na região espectral entre 45 e 100 ppm sugerem que a cutina mutante tem uma proporção relativamente elevada de ligações cruzadas formando CHO Structura metades l em comparação com o tipo selvagem cutina; cuidadosas medições quantitativas utilizando polarização directa (DPMAS) RMN 5 métodos apoiar esta inferência (dados não mostrados).
CPMAS 13 C espectros de RMN também mostrou um pico de cera progressivamente a decrescer a 31 ppm (Fig. 4), indicando a remoção sequencial de epi e ceras intracuticular a partir do composto cutina cera, mantendo a arquitectura química principal do biopolímero cutina. Análise de imagem paralelo AFM (Fig. 5) revelou irregularidades de superfície devido à extracção por passos de epi e ceras intracuticular da cutícula de fruta, significando alterações na organização do conjunto cuticular.
. Figura 1 Soxhlet (fonte da imagem: Wikipedia).
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Figura 2. A) microscópio da sonda Scanning. B) cabeça SPM (adaptado do manual de treinamento fornecido pela AFM Instrumentos Digitais).
Figura 3. 150 MHz CPMAS 13 C espectro de RMN de exaustivamente desparafinados vermelhas cutículas tomate maduro da fruta (cutins) de tipo selvagem (M82) e mutante (CM15) mostram ressonâncias com deslocamentos químicos correspondentes aos grupos funcionais de um ácido hydroxyfatty reticulada baseado no poliéster e também algumas porções multiplicam ligados. Todos os espectros foram adquiridos com uma frequência de 10 kHz a fiação.
Figura 4. 150 MHz 13 CCPMAS espectros de RMN de comerciais vermelhas cutículas frutos maduros de tomate exibem alterações de composição após a remoção sequencial de ceras e intracuticular por extracção goma arábica mecânico e um two-dip minutos clorofórmio, respectivamente. Todos os espectros foram adquiridos com uma frequência de 15 kHz a fiação.
Imagens Figura 5. AFM e estimativas de rugosidade para o tomate parcialmente desparafinados comercial cutículas descrito na Figura 4, após a remoção progressiva de epicuticulares (esquerda) e intracuticular (à direita) ceras.
Discussion
Os protocolos aqui descritos permitem a caracterização molecular e microescala detalhada de um material vegetal complexo insolúvel sem a necessidade de decomposição química destrutiva. Para investigar a mistura do biopoliéster cutina com diversos lípidos (ceras) que controlam a organização estrutural do conjunto cuticular, 10 realizamos e monitorados procedimentos para a remoção seletiva de ceras epicuticulares e intracuticular de uma mistura heterogênea cuticular. De estado sólido 13 C RMN foi utilizado para medir a extracção de componentes de cera moleculares, e microscopia de força atómica serviu para examinar as alterações concomitantes na rugosidade da superfície. 6,11 Para comparar as capacidades de ligação cruzada de cutins de cultivada de tipo selvagem e único gene frutos de tomate mutantes, de estado sólido 13 C RMN foi também utilizada para estimar os números relativos de CHO e 2 CH porções O químicos.
Uma série de característica de projetos deste protocolo são notáveis. À medida que os materiais de cera englobar uma grande variedade de lipidos, tratando a cutícula de frutas com uma série de solventes com polaridades divergentes é essencial para alcançar desparafinação exaustiva. Além disso, o tempo de desparafinagem pode variar de 8 horas a 24 horas, dependendo da natureza das amostras cutícula. Para extrair ceras consistentemente a partir da cutícula fruto intacto, é imperativo para aplicar o revestimento adesivo uniforme para a superfície.
De estado sólido CPMAS 13 C RMN 12 é um método rápido para a identificação de qualitativa vários componentes estruturais de biopolímeros vegetais altamente heterogéneos e insolúvel conservando as suas características físicas nativas; 13 RMN solução de estado-tradicional também pode ser usado para caracterizar as misturas de cera extraídos. Se a estimativa quantitativa de grupos funcionais é desejada para os polímeros de plantas intactas, 5 de alta fidelidade de polarização direta magia ângulo de giro (DAMPs) 13 C RMN 5,14 deve ser utilizado como um método complementar. Quantificação precisa dos grupos funcionais requer cuidadosa otimização dos tempos de reciclagem, comprimentos de pulso de excitação, e no poder de dissociação heteronuclear 15. Dissociação O heteronuclear pode ser ajustado para uma intensidade de campo 1 H variando de 50 kHz a 185 kHz usando o TPPM 16 ou COLUNA 7 metodologias. Em adição a estes parâmetros, a sensibilidade das medições CPMAS depende do tempo de spin-lock e Hartmann-Hahn condição de correspondência. 15 Em lugar de CPMAS tradicionais, uma rampa de amplitude CP técnica (RAMP-CP) pode ser implementado para maximizar a cruz -polarização eficiência através da variação da amplitude 1 H linearmente (~ 20-50%) ou tangencialmente ao mesmo tempo manter a amplitude da força do campo 13 C constante durante o período de rotação de bloqueio-(ou vice-versa). 17,18 execução das medições CPMAS em um mínimo de duas ro diferentetor-fiação freqüências é imperativo distinguir bandas laterais fiação dos principais picos espectrais.
Medições simultâneas de AFM realizadas no modo de contato permitir imagens diretas do estado da superfície da cutícula com velocidades de digitalização de alta e alta resolução, 19, por exemplo durante a remoção sequencial de componentes cerosos. Operando AFM no aproveitamento (não-contacto) modo pode ser usado como uma alternativa para a caracterização da superfície de delicadas "leves" de materiais vegetais, evitando danos possível devido à laterais (cisalhamento) forças e raspagem da superfície da amostra. 5,20 Em ambos os casos , a aquisição seqüencial de várias imagens do mesmo ponto da superfície serve para identificar qualquer dano na superfície devido a "sonda de superfície interações" nas medidas de AFM. 6,21 Para reprodutibilidade ideal, sondas AFM com constantes de mola adequados para superfícies suaves cuticulares deve ser usado, constância e da temperatura e da umidade deve ser mantida. 6,15,20 22,23 para acompanhar a topografia da superfície destes conjuntos macromoleculares requintadamente complexos 1,2.
Disclosures
Não há conflitos de interesse declarados.
Acknowledgments
Este trabalho foi financiado pela National Science Foundation EUA concede # MCB-0741914 e 0843627-MCB; apoio de infra-estrutura adicional foi fornecida no City College de Nova York pelo National Institutes of Health 2 G12 RR03060-26 do Centro Nacional de Pesquisa de Recursos. Agradecemos o JKC Rose grupo no Departamento de Biologia Vegetal da Universidade de Cornell para a prestação de M82 (tipo selvagem) e CM15 (mutante) cutículas de tomate. Agradecemos ao Dr. Spyros Monastiriotis do grupo CCNY Engenharia Química do Prof Alexander Couzis por sua generosa ajuda com os experimentos de AFM. Agradecemos a Sra. Lauren Gohara de apoio design gráfico.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Sodium acetate trihydrate | Sigma-Aldrich | S8625-500G | |
| Pectinase | TCI America | P0026 | EC 3.2.1.15; 10 U ml-1, store in refrigerator |
| Cellulase | Sigma-Aldrich | C1184-100KU | EC232.734.4; 1.3 units/mg, store in refrigerator |
| Glacial Acetic acid | Sigma-Aldrich | A9967 | |
| Sodium azide | Sigma-Aldrich | S2002-100G | Extremely hazardous |
| Incubator/shaker | New Brunswick Scientific | Model No.G24 | MFG No.M1036-000G |
| Vacuum Oven | Precision Scientific | 31566 | |
| Variac Controller | |||
| Sintered glass thimble (85 mm/25mm) | VWR international | 89056 | |
| Disposable extraction thimble ( 80 mm/ 25 mm) | VWR international | 28320 | |
| Methanol | VWR international | EMD-MX0485-7 | |
| Glass wool | VWR international | RK20789 | |
| Aluminum foil | Fisher Scientific | 01-213-100 | |
| Tweezers | VWR international | 82027-452 | |
| Chloroform | VWR international | EM-CX1050-1 | |
| Hexane | Fisher Scientific | H302-4 | |
| Nitrogen gas | |||
| Parafilm | VWR international | 52858 | |
| Paper towels | VWR international | 89002-984 | |
| Kim wipes | VWR international | 21905-026 | |
| Gum arabic | Sigma-Aldrich | G9752 | |
| 1.6 mm fastMAS zirconia rotor | Varian Inc., Agilent | ||
| NMR spectrometer | Varian Inc., Agilent | standard bore magnet | |
| Glycine | Sigma-Aldrich | 50046 | Model compound for CPMAS |
| Glutamine | Sigma-Aldrich | 49419 | Model compound for CPMAS |
| Adamantane | Sigma-Aldrich | 100277 | To calibrate 90° pulse in NMR |
| Multimode Scanning Probe Microscope (Nanoscope IIIA) | Digital Instruments | ||
| Nanoscope software | Digital Instruments | Version 5.30r3sr3 (2005) | |
| AFM probe (Nonconductive silicon nitride tip) | Veeco Instruments, Inc. | Model NP-20 | |
| Light microscope | Digital Instruments | ||
| Magnetic puck | Digital Instruments | ||
| Double sided tape | VWR international | ||
| Fruit Peeler | |||
| Büchner funnel | VWR international | 89038 |
References
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