Summary
Recente ontwikkelingen in de 2-foton microscopie hebben real-time ingeschakeld
Abstract
Lymfeklieren (LNS) zijn secundaire lymfoïde organen, die strategisch liggen verspreid over het lichaam toe te staan voor het vangen en presentatie van vreemde antigenen van perifere weefsels naar de adaptieve immuunrespons te vullen. Naast elkaar tussen de aangeboren en adaptieve immuunreacties, de LN is een ideale plaats om immuun cel interacties 1,2 bestuderen. Lymfocyten (T-cellen, B-cellen en NK-cellen), dendritische cellen (DC) en macrofagen omvatten de bulk van beenmerg-afgeleide cellulaire elementen van het LN. Deze cellen zijn strategisch gepositioneerd in het LN om een efficiënte bewaking van de eigen antigenen en potentiële buitenlandse antigenen 3-5 mogelijk te maken. Het proces waarbij lymfocyten succes tegenkomen verwante antigenen is een onderwerp van intens onderzoek in de afgelopen jaren, en het gaat om een integratie van moleculaire contacten met inbegrip van antigeen-receptoren, adhesiemoleculen, chemokines, en stromale structuren zoals de fibro-reticulair netwerk 2,6-12 .
Voorafgaand aan de ontwikkeling van hoge-resolutie real-time in vivo fluorescentie beeldvorming, onderzoekers zich op statische beeldvorming, die biedt alleen antwoorden met betrekking tot morfologie, positie en architectuur. Hoewel deze vragen zijn van fundamenteel belang in ons begrip van het immuunsysteem van cel gedrag, heeft de beperkingen die inherent zijn met deze techniek niet toe analyse te ontcijferen lymfocyten mensenhandel en milieu aanwijzingen dat dynamische cel gedrag beïnvloeden. Onlangs heeft de ontwikkeling van intravitale twee-foton laser scanning microscopie (2P-LSM) heeft het mogelijk gemaakt de onderzoekers om de dynamische bewegingen en interacties van individuele cellen te bekijken binnen de live-LNS in situ 12-16. In het bijzonder, hebben wij en anderen gebruikt een techniek die afbeelding cellulaire gedrag en interacties binnen de knieholte LN, waar de compacte, dichte natuur in het voordeel van multiplex data-acquisitie biedt over een groot weefsel gebied met diverse weefsel sub-structuren 11,17-18 . Het iis belangrijk op te merken dat deze techniek extra voordelen ten opzichte van geëxplanteerd tissue imaging technieken, die verstoring van bloed, lymfe stroom, en uiteindelijk de cellulaire dynamiek van het systeem nodig heeft. Daarnaast geëxplanteerd weefsels hebben een zeer beperkt venster van de tijd waarin het weefsel blijft levensvatbaar voor de beeldvorming na explant. Met de juiste hydratatie en bewaking van het milieu van het dier omstandigheden kan de beeldvorming tijd aanzienlijk uit te breiden met deze intravitale techniek. Hier presenteren we een gedetailleerde methode voor het bereiden muis knieholte LN voor het verrichten van intravitale beeldvorming.Protocol
1. Mouse Holder Vergadering
- Overlay de cover van een 100-mm glas petrischaal op de top van een 100-mm plastic petrischaal deksel naar beneden. Het glas moet nauwelijks raken het middelpunt van de plastic schotel. Met behulp van het glas als een stencil, op te sporen van een merk op de plastic schotel.
- Gebruik een handboor (dat wil zeggen Dremel) om een gedeelte van een 100-mm kunststof schaal deksel op een halvemaanvormige platform te creëren te verwijderen. Deze halvemaanvormige plastic deksel zal dienen als ondersteuning van het bovenlichaam van de muis (figuur 1a). Boor twee gaten in de halvemaanvormige deksel op de gasmasker vast met een metalen twist das. Zet het plastic deksel aan de rand van het glas petrischaal met behulp van superlijm of een ander gelijkwaardig sterke lijm (Figuur 1b).
- Lijm de deksels van twee koepelvormige kap-PCR buizen (afgesneden het scharnier) 1 cm van elkaar in het midden van de onderste schaal ter verankering popliteale huidlappen.
2. Muis Voorbereiding
3. Chirurgie 4. 2-Photon Imaging Acquisition ** ** Deze chirurgische procedure kan ook nuttig zijn voor andere vormen van intravitale beeldvorming anders dan 2P-LSM. 5. Representatieve resultaten Diverse circulerende immuuncellen worden gerekruteerd voor de LN met verschillende snelheden na adoptieve overdracht. Voor CD4 + en CD8 + lymfocyten deze cellen gaan in de LN komen door de hoge endotheliale venule (HEV) minuten na de intraveneuze overdracht met grote aantallen aankomst in de knieholte LN na 2 tot 4 uur 6,17-18. Voor B cells, is een aanzienlijk aantal accumuleren na 8 24 uur 19. Geactiveerde DC's zou moeten beginnen te verschijnen in de drainerende knieholte LN 8 tot 16 uur na injectie 3,11,16-17 voetzool. Figuur 2a toont aan dat zelfs zonder andere bezienswaardigheden, structuren zoals B-cel follikels kan gemakkelijk worden onderscheiden door de ronde bolvormige cel accumulatie zichtbaar onder 2P-LSM 19. Met behulp van een endogene fluorescerende reporter zoals het ubiquitine-GFP splenocyten (figuur 2, aanvullende Video's 1 en 2), kan men volgen van deze lymfocyten migraties en gedragingen dagen tot een week onder niet-stimulerende fysiologische omstandigheden. Met multi-channel hoge gevoeligheid detectoren, is het mogelijk om het verwerven van een multiplex imaging dataset dat structurele informatie en interactie dynamiek omvat tussen meerdere cellulaire partners 17,19. Wanneer de chirurgische technieken goed worden uitgevoerd en de milieu-omstandigheden zorgvuldig gecontroleerd, lymphocytes moeten vertonen karakteristieke migratie snelheid, zoals aangetoond in figuur 2c, 2d en elders 13-14,16. Lymfocyten kunnen ook verschillen in de migratie snelheid, afhankelijk van de sub-regio's van de LN ondergaan beeldvorming vertonen, zal dat extra bezienswaardigheden, zoals de bloedvaten (zoals blijkt uit de introductie van schip kleurstoffen) te helpen om de algemene beeldkwaliteit (dat wil zeggen een goede temperatuurregeling te bepalen , minimale trauma aan LN, etc.) 3,6,20. Aanvullende Video 1. Intervalfilm intravitaal 2P-LSM afbeelden van een muis knieholte LN zoals beschreven in figuur 2. In totaal 1x10 7 lymfocyten werden geïsoleerd frOM een ubiquitine-GFP + donor muis en adoptief intraveneus overgebracht in een C57BL / 6 ontvanger muis 24 uur voor beeldvorming. Een reeks xy (750 urn x 750 urn) fluorescentiebeelden genomen via vaste z stapels (5 pm stappen 13 stappen) een xyz imaging stapel (750 urn x 750 pm x 65 m), die herhaald 20 seconden geven in totaal 60 minuten, zodat een xyzt imaging volgorde snelheid analyse (figuren 2c, 2d). Afspeelsnelheid = 450x. Schaal bar = 50 urn. Tijd stempel = min: sec. Klik hier om aanvullende video te bekijken . Aanvullende Video 2 ingezoomd-gezien de beeldvorming sequentie aanvullend Video 1 op de B-cel follikel -. T cel zone rand. Afspeelsnelheid = 450x. Schaal bar = 25 pm. Tijd stempel = min: sec. Clik hier om aanvullende video te bekijken.
Figuur 1. Bouw van een muis houder voor muis knieholte LN Imaging a) Schema's van de muis houder samenstel;. B) Representatieve intravitale muis voorbereiding; c) Voltooid muis houder montage; d) Close-up beelden van de knieholte LN na chirurgische blootstelling.
Figuur 2. Migratie analyse van GFP + lymfocytenin de knieholte LN. (a) 3D momentopname van 2P-LSM beeldvorming volgorde van de knieholte LN in een C57BL / 6 ontvanger muis adoptief overgedragen met 1x10 7 GFP + lymfocyten 1 dag voor beeldvorming. Dash lijn geeft de grens van B-cel follikels, (b) Tracks van lymfocytenmigratie gedurende 1 uur continu beeldvorming; c) Verdeling van de totale lymfocytenmigratie snelheid. Gemiddelde snelheid = 10,04 ± 4,26 micrometer / min (totaal van de geanalyseerde 15.125 tracks), d) Verschil cellulaire migratie snelheid verdeling van de cellen in de B-cel follikel (open balken met een gemiddelde snelheid = 8,79 ± 3,90 micrometer / min; in totaal 1.525 nummers geanalyseerd ) en T-cel-zone (gesloten bars met een gemiddelde snelheid = 13,77 ± 5,93 micrometer / min; totaal van de onderzochte 1250 nummers). Schaal bar = 50 urn.
Discussion
Recente ontwikkelingen in de hoge-resolutie in situ beeldvormende technieken, in het bijzonder 2P-LSM, gingen gepaard met een groeiende interesse in de studie van dynamische cellulaire gedrag in vivo. De 4D beeldverwerking techniek op de knieholte LN van een levende muis kunnen dergelijke analyses in het dynamisch gedrag van de immuuncellen in het ongestoorde weefsel micro-omgeving. Het gebruik van 2P-LSM met meerdere detectoren verspreid over het hele zichtbare spectrum maakt simultane beeldvorming het verzamelen van gegevens van meerdere celpopulaties. Dit kan nu worden bereikt door het gebruik van in vivo celspecifieke fluorescerende reporter muizen (bijv. ubiquitine-EGFP,-RFP of-eCFP) gecombineerd met het gebruik van adoptieve overdracht van differentieel gelabelde celpopulaties met organische fluorescente cellen kleurstoffen (bijv. CFSE , Snarf-1 en Cell Tracker Oranje) om cellulaire mechanismen en de functie te onderzoeken binnen de LN. Naast de directe waarneming van interacties tussen differentieel gevolgd cell populaties de multiplex imaging dataset verder analyse ondergaan met in de handel verkrijgbaar beeldverwerkingssysteem software programma's (bijvoorbeeld Imaris, Inc BitPlane) verder te ontrafelen cel gedrag en functie. Een breed scala aan mogelijkheden bestaan om te studeren cellulaire interactie mechanismen met behulp van deze in vivo en in silico technieken.
De belangrijkste beperking van de experimentele benadering hier beschreven de technische complexiteit inherent aan de operatie benadering. Deze techniek vergt zware training om vertrouwd te raken met de relevante anatomie en de precieze technische procedures en vaardigheden zoals vereist door dit protocol. Verdere complicerende factoren zijn onder meer de moeilijkheid bij het minimaliseren van weefselschade tijdens LN exploratie, het optimaliseren van weefsel stabiliteit tijdens beeldvorming, en het voorkomen van thermische en laser letsel aan de LN voor en tijdens de beeldvorming experimenteren. Storing van een van deze factoren zal resulteren in minder-dan-optimale lymfeocyte beweeglijkheid en zal daarom de correcte interpretatie van de resulterende imaging data-analyses.
Disclosures
De auteurs hebben niets te onthullen.
Acknowledgments
Dit werk wordt ondersteund door subsidies van NCI 1R01CA154656, NIAID 1R21AI092299, Cancer Research Institute, St. Baldrick's Foundation, Dana Foundation, Gabrielle's Angel Foundation, en Hyundai Motors van Amerika "Hope-on-Wheels"-programma.
Materials
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Isoflurane, USP | Baxter Internationl Inc. | NDC 10019-773-60 | |
Vetbond | 3M | 1469SB | |
Nair - hair removal lotion | Nair | ||
PBS, 1X | Cellgro | 21-040-CV | |
Heating pad | Watlow | ||
Heating Pad Controller | Watlow | ||
Air and O2 | Airgas | ||
Temperature probe | Harvard Apparatus | ||
Tweezers Dumont #5 | World Precision Instruments, Inc. | 14101 | |
Forceps, Graefe Iris, 7 cm curved | World Precision Instruments, Inc. | 14141 | |
Scissors | Roboz Surgical Instruments Co. | RS-5880 | |
Cover of 100x20 mm glass cell culture dish | Corning | 70165-102 | |
Cover of 100x20 mm polystyrene cell culture dish | Corning | 430167 | |
Betadine Solution (10% Povidine-Iodine Topical Solution) | Purdue Products L.P. | NDC 67618-150-08 |
References
- Bousso, P. T-Cell activation by dendritic cells in the lymph node: lessons from the movies. Nat. Rev. Immunol. 8, 675-684 (2008).
- Germain, R. N. Making friends in out-of-the-way places: how cells of the immune system get together and how they conduct their business as revealed by intravital imaging. Immunol. Rev. 221, 163-181 (2008).
- Huang, A. Illuminating the landscape of in vivo immunity: insights from dynamic in situ imaging of secondary lymphoid tissues. Immunity. 21, 331-339 (2004).
- Stefanova, I. Self-recognition promotes the foreign antigen sensitivity of naive T lymphocytes. Nature. 420, 429-434 (2002).
- Stefanova, I. On the role of self-recognition in T cell responses to foreign antigen. Immunol. Rev. 191, 97-106 (2003).
- Bajenoff, M. Fibroblastic reticular cells guide T lymphocyte entry into and migration within the splenic T cell zone. J. Immunol. 181, 3947-3954 (2008).
- Celli, S. Decoding the dynamics of T cell-dendritic cell interactions in vivo. Immunol. Rev. 221, 182-187 (2008).
- Mempel, T. R., Junt, T., von Andrian, U. H. Rulers over randomness: stroma cells guide lymphocyte migration in lymph nodes. Immunity. 25, 867-869 (2006).
- Worbs, T. CCR7 ligands stimulate the intranodal motility of T lymphocytes in vivo. J. Exp. Med. 204 (3), 489-495 (2007).
- Bajenoff, M. byways and breadcrumbs: directing lymphocyte traffic in the lymph node. Trends Immunol. 28, 346-352 (2007).
- Mempel, T. R. T-cell priming by dendritic cells in lymph nodes occurs in three distinct phases. Nature. 427, 154-159 (2004).
- Mempel, T. R. In vivo imaging of leukocyte trafficking in blood vessels and tissues. Curr. Opin. Immunol. 16, 406-417 (2004).
- Miller, M. J. Autonomous T cell trafficking examined in vivo with intravital two-photon microscopy. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 100, 2604-2609 (2003).
- Sumen, C., Mempel, T. R., Mazo, I. B., von Andrian, U. H. Intravital microscopy: visualizing immunity in context. Immunity. 21, 315-329 (2004).
- von Andrian, U. H., Mempel, T. R. Homing and cellular traffic in lymph nodes. Nat. Rev. Immunol. 3, 867-878 (2003).
- Bousso, P., Robey, E. Dynamics of CD8+ T cell priming by dendritic cells in intact lymph nodes. Nat. Immunol. 4, 579-585 (2003).
- Castellino, F. Chemokines enhance immunity by guiding naive CD8+ T cells to sites of CD4+ T cell-dendritic cell interaction. Nature. 440, 890-895 (2006).
- Halin, C. In vivo imaging of lymphocyte trafficking. Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 21, 581-603 (2005).
- Qi, H. Extrafollicular activation of lymph node B cells by antigen-bearing dendritic cells. Science. 312, 1672-1676 (2006).
- Germain, R. N. An extended vision for dynamic high-resolution intravital immune imaging. Semin. Immunol. 17, 431-441 (2005).