Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Neuroscience

Sprague-Dawley Sıçan nodoz Ganglionlar Enjeksiyon Bir Yöntem

Published: November 25, 2014 doi: 10.3791/52233

Protocol

Tüm prosedürler ve protokoller Chicago Illinois Üniversitesi Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Kurulu tarafından kabul edildi. Burada anlatılan deneyler akut hayatta olmayan deneyler ve göz merhemi hiçbir kullanımı vardı. Cerrahi aletler dihidro 2 O içinde% 70 etanol ile yıkanmış, zaman steril koşullar bakımı sadece oluşur Deneyin sonunda sıçanlar kurban edilmesi IV, ketamin / ksilazin doz aşımı ile meydana geldi.

Araçların ve Kimya 1. Hazırlık

  1. PBS içinde 0.05 M, 5-HT'nin HCI stok çözelti hazırlayın. Daha sonra 0.203 mM'lik nihai 5-HT konsantrasyonu PBS stoğu seyreltin.
  2. 20 ug / ul bir konsantrasyonda susam yağı içinde dronabinol seyreltin.
  3. (PE) -50 boru (ID 0.58 mm, OD 0.965 mm) polietilen 20 cm uzunluğunda kesin. Hortumun bir ucunda, makas ile konik ucu kesilmiş ve diğer kare sonunda, 23 gr iğneyi. 1 ml bu 23 g iğne iletişimeşırınga ve 50 u / ml heparin 0.3 ml ile doldurmak.
  4. 4-0 örgü ipek iplik dört adet kesilmiş ve yan ayarlanır.
  5. Dih 2 O.,% 70 etanol ile 2 kavisli Graefe forseps ve 3 mikro cerrahi makas kelepçeler sterilize

Femoral Ven 2. Kateterizasyon

Kateterizasyon Protokol Jespersen ark modifiye edilir. 21

  1. (10 mg / kg ila 100 mg / kg) intraperitoneal (ip), ketamin / ksilazin ile Sprague-Davvley sıçan anestezisi. Sıçan ayak Pinch ve anestezi uygun bir seviyede onaylamak için herhangi bir hareket gözlemlemek. Sol uyluk ventral ve boyun ventral Tıraş. Yerel Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Kurulu tarafından Gerekirse, kuruluğunu önlemek için göz merhemi uygulayın.
  2. Bir cerrahi gemide bir yatar pozisyonda Güvenli sıçan. Sol arka uyluk cilt kesip cerrahi makas kullanın.
  3. Forseps kullanarak, davranış künt dissectioyüzeysel kas n femoral ven ortaya çıkarmak. Femoral ven yaklaşık 2 konuları femoral arter ven ayrı ve yerleştirmek için forseps kullanın.
  4. Pull-up ven kan akışını durdurmak için kavisli Graefe forseps kullanın. 22 G şırınga iğnesi kullanarak, femoral ven delinme ve daha sonra damar içine PE-50 boru kesik ucunu.
  5. PE-50 boru şırınga pistonu geri çekilmesiyle doğru takılı olup olmadığını kontrol edin. Kan PE-50 boruları giren görülmelidir. 2 konuları kullanarak ven ve PE-50 tüp yaklaşık 2 düğümler.

3. IV İnfüzyon yoluyla Apnea 5-HT-kaynaklı

  1. Solunum ölçmek için sıçan etrafında bir piezoelektrik gerilme ölçer yerleştirin.
  2. Bilgisayarda amplifikatör yazılımı aracılığıyla elektronik amplifikatörü düzeyi ayarlarını değiştirme: yükseltmek (100x) ve bant geçiren filtre (1-10 Hz) suşu ölçer elde edilen solunum sinyalleri, at & # "highpas filtre" ayarlamak için8220;. Toplam Gain "için" 10 Hz, "ve girerek amplifikasyon set" 10 İlk Kazanç "için" "ve" 100 "" at "ac @ 1 HZ" ve "Düşük Geçişli Filtre.
  3. Bilgisayarınızdaki kayıt yazılımı aracılığıyla "Analog Giriş" açarak örnekleme hızı ayarlarını değiştirin. "1.000 Hz" ve en "örnek" bir analog-dijital dönüştürücü kullanarak (500 Hz örnekleme oranı) dijital ortama aktarmak için "1" (etkili örnekleme hızı 500 Hz) tarafından her kayıt noktası "atlamak", ve sonra sinyal kayıt kayıt yazılımı kullanarak.
  4. Kateterinden 1 ml şırınga çıkarın ve katetere 5-HT'nin 0.203 mM ile doldurulmuş bir 500 ul hassas cam şırınga yerleştirin.
  5. Bir infüzyon pompası içine 500 ul hassas cam şırınga yerleştirin. 63 ml / saatlik bir hızda 350 ul / 5-HT çözeltisi kg başına 12.5 mg / kg infüze. Bir görülür sıçan birden infüzyonu gerçekleştirin ve gözlemlemek apne,bilgisayar monitörü kaydedilen solunum sinyalleri (≥ 2.5 sn) nefes duraklama sa.
  6. Boyun cerrahisi ile devam etmeden önce, desen nefes izlemek ve sıçan ayak tutam ağrı refleks kontrol edin. Solunum düzensiz veya ayak tutam bir ağrı refleks varsa, IP ketamin / ksilazin yönetmek durumunda (100 mg / kg: 5 mg / kg) ve daha sonra anestezi uygun bir seviyede yeniden onaylayın.

4. Boyun Cerrahisi nodoz ganglionlar Açığa

  1. Bir cerrahi gemide bir yatar pozisyonda Güvenli sıçan. Boyun cerrahi makas kullanarak bir orta hat boyuna kesim olun.
  2. (Cerrahi sitenin açık bu kas tutmak için 2 mikro kelepçeler kullanarak) platizma kası üzerinde künt diseksiyon kullanarak, sternohyoideus ve omohyoideus kasları ortaya. Internal karotid arter ve dallarının biri, pterigopalatin arteri açığa bu kasları ayırın.
  3. O th boyunca sonra internal karotis arter boyunca çalışır ve gibi vagus siniri gözlemleyin e pterigopalatin arter. Glossofaringeal sinir (kranial sinir IX) ve spinal aksesuar sinir (kranial sinir XI) ile birlikte vagus siniri ve pterigopalatin arter, kafatasının dibinde arka yırtılmış foramen girmek nasıl gözlemleyin.
  4. Nodoz ganglion o arka yırtılmış foramen girmeden hemen önce vagus sinirinin bir şişlik olarak görüntülenir dikkat edin. Ayrıca farenks ve laringeal sinir dalları nodoz ganglion, sırasıyla, anterior ve posterior yönlerini dökülmek dikkat edin. 5
  5. Graefe forseps kullanarak, arterlerden vagus siniri ayırmak ve vagus sinirinin çevresine bir iplik parçası yerleştirin. Vagus sinirinin üzerinde hafif gerginlik uygulamak, ve enjekte ederken daha az direnç sağlamak için herhangi bir bağ dokusu nodoz ganglion temizlemek için iş parçacığı üzerinde bir kelepçe yerleştirin.
  6. Herhangi bir hasar nodoz ganglion yapıldığını onaylamak için 3. bölümde belirtildiği gibi 5-HT-kaynaklı apnesi tekrarlayın.
dronabinol ve itle "> 5. Intranodose Ganglionlar Enjeksiyon

  1. Susam yağı dronabinol 5 ul ucu kesik bir 35 ° bir ısmarlama 28 gr yarım inç şırınga iğnesi ile yapıştırılmış bir 10 ul gaz geçirmez hassas cam şırınga doldurun.
  2. Vagus sinirinin üzerinde hafif gerginlik uygulamak, ve bu kadar delinme değil nodoz ganglion özen delinme parçacığı üzerinde bir mikro kelepçe yerleştirin. Şırınga tüm içeriğini enjekte yavaş yavaş şırınga (≥ 60 sn) bastırın. Şırınga içeriğinin bazı ganglion sızıntı unutmayın.
  3. 3. bölümde belirtildiği gibi tekrarlayın apne 5-HT-kaynaklı.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Şekil 1, dronabinol ve intranodose gangliyon enjeksiyon öncesi ve sonrası apne uyarılması için 5-HT infüzyonu uygulanan sıçanlar örnek solunum kaydı temsil eder. 5-HT 5-HT bradikardi, hipotansiyon, apne ve Bezold-Jarisch refleks katkıda nodoz ganglionlar 3 reseptörlerini harekete geçirir. Dronabinol olan 11,17-19 Intranodose ganglion enjeksiyonları inhibitör CB reseptörleri aktive ya da allosterically 5-HT modüle (Şekil 1, üst panel) öncesinde ve sonrasında vagus sinirinin. 16,17,20,22 5-HT'nin neden olduğu uyarma inhibe 3 reseptörleri (Şekil 1, orta panel) 5-HT'nin boyun cerrahisi infüzyonu (Şekil 1 ,) kırmızı çizgi ile suçlanan piezoelektrik gerilme ölçer ile ölçülen karın hareketinin bir eksikliği olarak görülen bir apne yanıtı ortaya çıkarır. Dronabinol ve intranodose gangliyon enjeksiyonu (Şekil 1, alt panel) eklendikten sonra, IV, 5-HT, infüzyon meydana getirmemiştirBir apne yanıt. Araç kontrol sıçanlarının boğumlu ganglia içine susam yağı enjeksiyonu (veriler gösterilmemiştir) sonra, IV, 5-HT, infüzyon taban karşılaştırılabilir bir apne karşılığı ortaya çıkardı. 17

Şekil 1,
Şekil 1:. Öncesi ve vagus sinirleri nodoz ganglionlar içine 100 ug dronabinol 5 ul susam yağı enjeksiyonu sonrası akut 5-HT-indudced apne deneyler örnek kayıtları 17 Solunum kayıtları ameliyat sonrası, ameliyat (üst panel) önce alındı ​​( orta panel), ve boğumlu ganglion enjeksiyondan sonra (alt panel). Kırmızı çizgi apnesi neden IV 5-HT infüzyon belirtir. Araç kontrol sıçanlarının boğumlu ganglia içine susam yağı enjeksiyonu (veriler gösterilmemiştir) sonra, IV, 5-HT, infüzyon taban karşılaştırılabilir bir apne yanıtı ortaya çıkarmıştır. 17 Bu rakam Çalık ark modifiye edilmiştir. 17AU = keyfi birimler; RESP = solunum.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

nodoz ganglionlar içine nörokimyasalların başarılı enjeksiyon için kritik adımlar şunlardır: 1) belirlenmesi ve boğumlu ganglionlar kapalı bağ dokusu temizleme; 2) Enjeksiyon öncesinde nodoz ganglionlar bütünlüğünü teyit; 3) ve ince enjekte küçük bir iğne kullanarak, ama tamamen, boğumlu ganglionlar ile delme değil.

vagus siniri boyun ve karın birçok organ innervates ve bu merkezi sinir sistemi kalp hızı, kan basıncı, bronkopulmoner tahriş, ve gastrointestinal şişkinlik gibi önemli bilgileri aktarır. vagus sinirinin boğumlu ganglion amino asitler, aminler, nöropeptid ve diğer nörokimyasalların için reseptörlerin çeşitli bir dizi ihtiva etmektedir. Bu reseptörlere nörokimyasalların 1 Intranodose gangliyon enjeksiyonları vagus sinirinin aktivitesine değiştirmek için, 16,17 önce yapılmıştır ve periferik pharmacologi aydınlatmak için mükemmel bir deney modeli temsiluyku apnesi, gastroözofageal reflü hastalığı, ya da kronik öksürük gibi hastalıkları değiştirebilirsiniz vagus siniri üzerindeki etkileri cal. 2-4

Nodoz ganglianın göstermek için, boyun cerrahisi yapılır ve boyun kasları, iç karotid ortaya çıkarmak için ayrılır. vagus sinirleri internal karotis arterler ve pterigopalatin boyunca çalışan görülür. tek kutuplu vagus sinir hücre gövdeleri arka yırtılmış foramen'in de kafatası girmeden önce vagus sinirleri bir şişlik olarak görülen nodoz ve petrosal ganglionlar, bulunmaktadır. 5

Nodoz ganglionlar manipülasyonları nodoz ganglionlar ve vagus sinirleri ameliyat sırasında hasar görmemesine sürece bu önemlidir. Yanlış ve ham cerrahi teknik arterler ve diğer kranial sinirler ile birlikte nodoz ganglionlar ve sinir dalları, zarar verebilir. Bu protokol, vagus siniri stabilize edilmesi için, biz vagu hafif bir gerilim sağlamakipek iplik aracılığıyla s sinir mikro klibi eklenmiş. Bu yeterince daha zor nodoz ganglion içine enjekte yapmak olabilir herhangi bir bağ dokusu temizlemek için bize sağlar. Ayrıca, boğumlu ganglion 5-HT infüzyon yoluyla apne uyararak enjeksiyonu ile devam etmeden önce sağlam olduğunu onaylayın. Boğumlu ganglion içine enjekte etmek için, (28 g, OD 362 um) bir hassas cam şırıngaya bağlanmış iğneler ucuz küçük ölçü kullanılabilir. Enjeksiyon sitesi derinliği nodoz ganglionlar ile delme önlemek için yana bir endişe, şırınga eğimli uçları özel 35 ° daha dik açı ile yapılmış oldu. Bu cam mikropipetler kullanıldığı diğer mikro-enjeksiyon teknikleri farklı 8-10,14-16 cam mikropipet avantajı daha küçük bir uç çapı olan.; Ancak, camın kırılganlığına işlemi sırasında uç kırılma tehlikesi vardır. Ayrıca, pahalı ekipman değil, her laboratuar sahip olabilir cam mikropipet, çekme için gerekli. ısmarlama iğneler kırılma riski var, ve bunlar cam mikropipet (20-100 ul) göre daha büyük çaplı (362 mikron) 17 olsa, 8,9,14-16 iğneler nodoz ganglionlar için hala yeterli küçük enjeksiyonlar. Ayrıca, bu iğneler birçok deneyler için yeniden ve mikropipetler çekmek için kullanılan ekipmanların daha önemli daha az gider idi.

Nedeniyle boğumlu ganglia içine enjeksiyon için kullanılan özel iğne boyutu için, bu boğumlu gangliyon, eğer varsa, hasarı değerlendirmek için önemlidir. Nodoz ganglionlar zarar değerlendirilmesi bir yöntem nodoz ganglionlar histolojik işleme ve mikroskopi geçer. 6-9,13,15 vagal afferent fonksiyonunu değerlendirmek için, bu protokolde kullanılan ikinci yöntem arasındaki elektrofizyolojik veya davranışsal sonuçlarını karşılaştıran bir Deney ve kontrol enjeksiyon grupları. 14-17 Dronabinol enjeksiyonları c kıyasla 5-HT ile uyarılan apne azaltmak için gösterilmiştirontrol enjeksiyonlar, büyük çaplı özel iğneler bazı hasar varsa, dronabinol tarafından inhibe edildi hala yeterli fonksiyonel nodoz ganglion hücrelerinin olduğunu simgeleyen 17. Fonksiyonel sonuçlar (yani, apne) Bu protokolün önemli metrik beri Benzer şekilde, petrol dronabinol 5 ul difüzyon ölçüde miktarının gerekli değildir. Bu protokolde kullanılan hacim nodoz ganglionlar enjekte çözümün geniş yayılmasını garanti seçildi. Diğer benzer protokollarda, miktarlar aşırı derecede farklı değildi enjekte edildi ve 0.1 ila 3 ul arasında değişmiştir. 8,9,14-16 yağ dronabinol difüzyon ölçüde 5-HT ile uyarılan apne azaltmak için yeterli olmuştur. 17

Bu protokole Değişiklikler mümkündür. Nodoz ganglionlar hasar önleme bir zorunluluk, daha küçük ölçü iğneler (küçük 33 G) ise Birincisi, bu protokolde kullanılabilir. daha küçük bir GAU kullanarak dezavantajıge iğneler ise: 1) kolayca kırık veya eğilmiş olabilir; 2) bu iç çap, susam yağı gibi zor akışlı akışkanların enjeksiyon için izin vermek için yeterli değildir. Derinlik sitesi enjeksiyonu önemli Ayrıca, eğer, (45 ° kadar) daha dikey açı iğneler satın alınabilir. Ancak, daha dikey açı daha zor nodoz ganglionlar delinme yapacak. Boğumlu gangliyon Enjeksiyon sırasında, vagus sinirinin modifiye gerilim çeşitli boyutlarda mikro kelepçeler yerleştirilmesiyle değiştirilebilir. Vagus sinirleri / nodoz ganglionlar hasar daha küçük mikro kelepçeler kullanılarak, önlenebilir gerekiyorsa idealdir. Son olarak, nörokimyasallar içeren sıvıların enjeksiyon hacmi ve sıvının konsantrasyonu enjekte ile değiştirilebilir. Bu protokolde, 5 ul nodoz ganglionlar doyurmak için fazlasıyla yeterli oldu.

Bu protokolün önemli bir sınırlama nodoz ganglionlar ile delme olasılığıdır. Bu durum ortaya çıkarsa, o zaman nodoz ganglion sho bütünlüğü-onayı yenidencamiaların yapılabilir. Boğumlu gangliyon bütünlüğü teyit edilirse, o zaman boğumlu ganglion enjeksiyon tekrarlanabilir. Şüphe nodoz ganglionlar yaklaşık bütünlüğü varsa Ancak, yeni bir sıçanın daha sonra bir deney tamamlanması gerekmektedir. 17

nodoz ganglionlar üzerindeki reseptörlerin çeşitliliği artırmak veya afferent sinir aktivitesini inhibe edebilir. Artan kanıtlar afferent asla etkinlik, insan hastalıklarında önemli bir rol oynadığını düşündürmektedir. 2-4,23 Bu protokol afferent sinir aktivitesi üzerindeki etkisini incelemek için nodoz ganglion nörokimyasalların yerel yönetimin ucuz bir yöntem sağlar.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Acknowledgments

Bu çalışma Ulusal Sağlık Enstitüleri (Hibe 1UM1HL112856) tarafından desteklenmiştir.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
5-HT HCl MP Biomedicals 215376591 12.5 µg/kg per 350 µl/kg
Dronabinol (Marinol) 10 mg Capsules (80 µg/µl) AbbVie NDC 0051-0023-21 Dilute with sesame oil to 20 µg/µl
Sesame Oil Sigma-Aldrich S3547
Intramedic Polyethylene-50 BD 427411 Ordered from VWR (Cat. # 63019-047)
Graefe Forceps Roboz RS-5138 Two are needed
Johns Hopkins Bulldog Clamp Roboz RS-7441 Three are needed
Piezoelectric Strain Gauge Ambu 813255-100
Data Acquisition USB Subsystems DataWave Technologies
Sciworks Experimenter Software
CyberAmp Axon Instruments
Syringe, 500 µl, Model 1750 TLL Hamilton Company 81220
Syringe, 10 µl, Model 1801 RN 7659-01
Needle, 28 G, Small Hub RN 7803-02 Point Style 4, Angle 35, Length 0.5 in

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Zhuo, H., Ichikawa, H., Helke, C. J. Neurochemistry of the nodose ganglion. Prog. Neurobiol. 52 (2), 79-107 (1997).
  2. Carley, D. W., Radulovacki, M. Pharmacology of vagal afferent influences on disordered breathing during sleep. Respir. Physiol. Neurobiol. 164 (1-2), 197-203 (2008).
  3. Kuo, P., Holloway, R. H. Beyond acid suppression: new pharmacologic approaches for treatment of GERD. Curr. Gastroenterol. Rep. 12 (3), 175-180 (2010).
  4. Maher, S. A., Dubuis, E. D., Belvisi, M. G. G-protein coupled receptors regulating cough. Curr. Opin. Pharmacol. 11 (3), 248-253 (2011).
  5. Greene, E. C. Anatomy of the rat. , Hafner. (1963).
  6. Li, Y., Wu, X., Zhou, S., Owyang, C. Low-affinity CCK-A receptors are coexpressed with leptin receptors in rat nodose ganglia: implications for leptin as a regulator of short-term satiety. Am. J. Physiol. Gastrointest. Liver Physiol. 300 (2), 217-227 (1152).
  7. Powley, T. L., et al. Vagal afferent innervation of the lower esophageal sphincter. Auton. Neurosci. 177 (2), 129-142 (2013).
  8. Neuhuber, W. L. Sensory vagal innervation of the rat esophagus and cardia: a light and electron microscopic anterograde tracing study. J. Auton. Nerv. Syst. 20, 243-255 (1987).
  9. Rogers, R. C., Nasse, J. S., Hermann, G. E. Live-cell imaging methods for the study of vagal afferents within the nucleus of the solitary tract. J. Neurosci. Methods. 150 (1), 47-58 (2006).
  10. Wan, S., et al. Presynaptic melanocortin-4 receptors on vagal afferent fibers modulate the excitability of rat nucleus tractus solitarius neurons. J. Neurosci. 28 (19), 4957-4966 (2008).
  11. Verberne, A. J., Lewis, S. J., Jarrott, B., Louis, W. J. Bezold-Jarisch reflex is inhibited by excitotoxin-induced destruction of vagal primary afferent neurons. Eur. J. Pharmacol. 139 (3), 365-367 (1987).
  12. Lewis, S. J., et al. Excitotoxin-induced degeneration of rat vagal afferent neurons. Neuroscience. 34 (2), 331-339 (1990).
  13. Wallick, D. W., Dunlap, M. E., Stuesse, S. S., Thames, M. D. Denervation of vagal cardiopulmonary receptors by injection of kainic acid into the nodose ganglia in dogs. Auton. Neurosci. 102 (1-2), 85-89 (2002).
  14. Muroi, Y., et al. Selective inhibition of vagal afferent nerve pathways regulating cough using Nav 1.7 shRNA silencing in guinea pig nodose ganglia. Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 304 (11), 1017-1023 (2011).
  15. Kollarik, M., et al. Transgene expression and effective gene silencing in vagal afferent neurons in vivo using recombinant adeno-associated virus vectors. J. Physiol. 588 (21), 4303-4315 (2010).
  16. Zhang, Z., Zhang, C., Zhou, M., Xu, F. Activation of opioid mu-receptors, but not delta- or kappa-receptors, switches pulmonary C-fiber-mediated rapid shallow breathing into an apnea in anesthetized rats). Respir. Physiol. Neurobiol. 183 (3), 211-217 (2012).
  17. Calik, M. W., Radulovacki, M., Carley, D. W. Intranodose ganglion injections of dronabinol attenuate serotonin-induced apnea in Sprague-Dawley rat. Respir. Physiol. Neurobiol. 190, 20-24 (2014).
  18. Yoshioka, M., Goda, Y., Togashi, H., Matsumoto, M., Saito, H. Pharmacological characterization of 5-hydroxytryptamine-induced apnea in the rat. J. Pharmacol. Exp. Ther. 260 (2), 917-924 (1992).
  19. Kopczynska, B., Szereda-Przestaszewska, M. 5HT2 and 5HT3 receptors' contribution to modeling of post-serotonin respiratory pattern in cats. Life Sci. 75 (19), 2281-2290 (2004).
  20. Fan, P. Cannabinoid agonists inhibit the activation of 5-HT3 receptors in rat nodose ganglion neurons. J. Neurophysiol. 73 (2), 907-910 (1995).
  21. Jespersen, B., Knupp, L., Northcott, C. A. Femoral arterial and venous catheterization for blood sampling, drug administration and conscious blood pressure and heart rate measurements. J. Vis. Exp. (59), (2012).
  22. Barann, M., et al. Direct inhibition by cannabinoids of human 5-HT3A receptors: probable involvement of an allosteric modulatory site. Br. J. Pharmacol. 137 (5), 589-596 (2002).
  23. Bonaz, B., Picq, C., Sinniger, V., Mayol, J. F., Clarencon, D. Vagus nerve stimulation: from epilepsy to the cholinergic anti-inflammatory pathway. Neurogastroenterol. Motil. 25 (3), 208-221 (2013).

Tags

Nörobilim Sayı 93 nörobilim boğumlu ganglion vagus siniri EMG serotonin apne genioglossus kannabinoidler
Sprague-Dawley Sıçan nodoz Ganglionlar Enjeksiyon Bir Yöntem
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Calik, M. W., Radulovacki, M.,More

Calik, M. W., Radulovacki, M., Carley, D. W. A Method of Nodose Ganglia Injection in Sprague-Dawley Rat. J. Vis. Exp. (93), e52233, doi:10.3791/52233 (2014).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter