Protocol
הערה: נהלי שימוש בדג זברה אושרו על ידי הטיפול בבעלי חיים המוסדי של קליפורניה בסן פרנסיסקו וועדת שימוש.
1. הכנת כלים
- הכנס סיכת פרטים קטנה לבעל סיכה ומהדק את הסיכה.
- בעזרת מלקחיים טיפ נאה, לכופף בזהירות את קצה הפין כדי ליצור וו קל.
- למניפולציה וייצוב של העובר במהלך פציעה, תכופף את הקצה של מד 28 ½ מחט אינץ 'רכובה על מזרק אינסולין באמצעות צבת מחט-האף.
2. הכנת עוברי דג הזברה לפגיעה
- הגדרת זוגות רבייה דג הזברה ולאסוף ביצים במי ביצה (60ug / מלחי אקווריום מ"ל) כפי שהוצג קודם 22.
- להוסיף 0.003% N-Phenylthiourea (PTU) למים ביצה כאשר הם עובר כ -8 שעות לאחר הפריה (hpf) כדי למנוע melanization.
- עובר dechorionate שתי פוסט יום הפריה (DPF) לפני הניסוי באמצעות מלקחיים טיפ נאה.
- להרדים את העוברים עם 0.02% חומצה שנאגרו 3-aminobenzoic (Tricaine) כ 10 דקות לפני מניפולציות.
3. כלי מכניים פגיעה של עוברים
- העבר את העוברים בהרדמה לשקופית דיכאון בסטראו לנתח באמצעות pipet העברה.
- בצד החלק הקצר של מחט המזרק כדי לתפעל את העובר עם היד הדומיננטית, למקם את העובר בצד שלה עם משטח הגחון מול מן המחט.
- מקם את הפינים הפרטים הקטנים עם הקצה מחודד ישירות על משטח הגחון של הדגים האחוריים לפתיחה ואברי המין. מקם את הפינים פרטים הקטנים בזווית קלה, כך שהקצה המעוגל הוא מסוגל לחדור מבעד periderm ישירות לוריד הזנב (איור 1 </ Strong>).
- שימוש במחט המזרק כדי לתפעל את העובר, לנקב את וריד הזנב עם סיכת הפרטים הקטנה על ידי הקשה על העובר לסיכה להתחבר הסיכה לתוך הווריד מעט.
- שימוש במחט המזרק, למשוך את העובר מפיני הפרטים הקטנים כדי ליצור קרע קטן בכלי.
הערה: פגיעה מוצלחת תגרום לדימום מיידי מהווריד.
4. ניתוח של עצירת דימום
- בחר עוברים רק עם בעליל תאי דם להליך זה.
- הכן להתחיל את הטיימר בהקדם סיכת הפרטים הקטן היא משכה מהספינה.
- להפעיל את הטיימר בהקדם איבוד דם יכול להיות דמיין מהפצע. כאשר איבוד דם מהפצע מפסיק, לעצור את שעון העצר ולהקליט זמן כולל שזמן דימום. אם הקרישה היא עכבות, להקליט את הזמן כאשר יש כבר לא נראה תאי דם במחזור.
5. ניתוח של ריפוי פצעים
- העברת קופהבעלי חיים לא-פגיעה על מנות הדמיה זכוכית תחתונה למיקרוסקופיה.
- הסר את רוב המים הביצה.
- מכסה את העוברים ב.3-1.2% התכה נמוכה המומסים agarose במי ביצה, מחוממים לבין 42 ו -45 מעלות צלזיוס ותוספת של 0.02% Tricaine.
- עוברי עמדה על צדם באמצעות מלקחיים.
- לאחר agarose מתקרר, למלא את הצלחת עם Tricaine 0.02% במי ביצה.
- לרכוש תמונות באמצעות brightfield, epifluorescence, או confocal.
- הסר עובר מן agarose באמצעות מלקחיים ולהעביר חזרה למי ביצה.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
פגיעת כלי מכאנית בוצעה על 2 DPF עוברים (איור 2 א - ג). תוצאות פציעה בתגובת קרישה מהירה ואמינה, כפי שנמדדו על ידי זמן הפסקת דימום (איור 2 ד). כדי לקבוע אם או לא הבדלים בתגובת הקרישה ניתן היו למדוד, הירודין נוגד הקרישה היה מנוהל לעוברים על ידי הזרקה לתוך Duct של קיביה מייד לפני פציעתם (5-10 NL של יחידה 1 לμl הירודין מומס במים) (ל הפגנה של זריקות לDuct של קיביה, ראה מאמר יופיטר קודם 23) 24. הממשל של הירודין לפני פציעה גרם לעלייה משמעותית בדימום פעמים לעומת שליטה ברכב (איור 2 ד).
עדות לניזק ספינה וקרישה ניתן לראות מייד לאחר פציעה באמצעות קווים מהונדסים לאנדותל (kdrl: egfp) ותאי דם אדומים (gata1a: DsRed 25,26. תמונות נרכשו ברצף כל 5 דקות לתקופה 12 שעות באמצעות epifluorescence. נציג עדיין תמונות מוצגות ברחבי שלבים שונים של תיקון פצע (איור 3). באמצעות שילוב של התערבות ההפרש לעומת זאת (DIC) ומיקרוסקופ פלואורסצנטי, ניתן למדוד פרמטרים שונים של תיקון פצע. כדי לקבוע אם או לא תיקון פצע אחרי דפוס לשחזור פני ניסויים, הזמן מחדש את זרימת דם נמדד ב -4 קבוצות של דגים. פגיעת כלי הביאה תגובה אמינה סטריאוטיפית של 253 ± 16 דקות להקמתה מחדש של זרימת דם בכלי הפצוע (n = 4-5 דגים בכל ניסוי, ממוצע ± SEM).
איור 1: תרשים של עובר 2 DPF מראה מיקום של פינים פרטים קטנים לPerf orming פגיעה מכאנית של וריד הזנב (CV). תא דם מוצל באפור.
איור 2: פעמים דימום ניתן למדוד באופן חזותי לאחר פגיעה מכאנית סטילס מוידאו בזמן אמת של פגיעת כלי דג הזברה על 2 DPF עוברים.. תמונות מוצגות בעת פציעה (), במהלך איבוד דם מהפצע פעיל (B), ולאחר ההפסקה של איבוד דם (C). כל הזמנים שצוינו הם בשניות. עוברים מכוונים רוחבי עם קדמי במשטח עליון וגחון מול לשמאל. בר סולם 100 מיקרומטר. מנהל של הירודין נוגד הקרישה הוביל לעלייה משמעותית בזמני דימום לעומת שליטה ברכב (D) (p <0.0001, מבחן t).pg "target =" _ blank "> לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.
איור 3:. לדמיין פגיעה מכאנית ותיקון באמצעות סמנים מהונדסים סטילס מtimelapse DIC ומיקרוסקופ פלואורסצנטי לאחר פציעת הכלי באמצעות סמנים להאנדותל של כלי דם (kdrl: egfp) ותאי דם אדומים (gata1a: DsRed) ב 2 DPF עוברים. תמונות הראו פער בכלים והצטברות מקומית דם אדום תא (t = 25), תיקון חלקי עם זרימה הוקם מחדש דם (t = 210), ושחזור של מבנה נורמלי כלי (t = 615) מלא כנראה. זמן מצויינים בדקות. עוברים מכוונים רוחבי עם קדמי במשטח עליון וגחון מול לשמאל. * מציין את המיקום של אב העורקים הגב. הפציעה (ראש החץ) שיבש את הווריד וחלק ממקלעת הזנב הזנב. Scaleבר 25 מיקרומטר.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
דג הזברה שימשה בהצלחה כמודל לסוגים שונים של פצעים כולל פציעת לייזר 13-15, פקקת מושרה לייזר 16, ופצע 10 אפיתל. אנו מדווחים על שיטה של פציעה מכאנית שהיא פשוט לביצוע ומייצר פציעה מבוקרת במודל in vivo כי הוא נוח מאוד למיקרוסקופיה בזמן אמת. תוצאות פציעה בתגובה לעצרת דם מהירה וניתן למדידה ותכנית תיקון פצע שחזור שניתן לנטר באמצעות מיקרוסקופ וידאו וtimelapse.
האנטומיה שלהם פשוטה והסטריאוטיפית של כלי דם, המאפשרת פגיעה לשחזור באתר מוגדר ומיקרוסקופי נגיש, ואת הנוכחות של רוב כלי דם וסוגי hematopoietic תא להפוך את עוברי דג הזברה שימושיים במיוחד ללימוד תגובות לפציעה. עם זאת, אין לי עוברי דג הזברה לימפוציטים פונקציונליים בשבועות הראשונים של התפתחות 5,6, מה שהופך את רוב ap המערכת זוpropriate ללימוד התרומה של חסינות מולדת בדלקת ותיקון. נכון לעכשיו, במגוון רחב של דג הזברה מהונדס קיים עם סמנים לתאים וחלבונים המשתתפים בהיווצרות קריש דם, קרישה, דלקת, ותיקון פצע, כולל קווים שתווית טרומבוציטים, פיברינוגן, אריתרוציטים, כדוריות דם לבנות והאנדותל של כלי דם 17,21,25- 31. כלים אלה ואחרים צריכים לעשות את זה אפשר לעקוב אחר התהליכים מעורבים בעצירת דימום ותיקון בפירוט משמעותי.
פגיעה מכאנית משלימה פציעת לייזר לחקר עצירת הדימום בדג זברה. בעוד פגיעה הנגרם לייזר הייתה בשימוש כבר שנים כדי לעורר היווצרות קרישי דם בעוברי דג הזברה ומודלים של עכברים, מנגנונים שבאמצעותם פגיעת לייזר מפעילה קרישה והפעלת thrombocyte / טסיות דם אינן ידועות במלואם 16,32. פגיעה מכאנית מספקת שיטה רלוונטית מבחינה פיזיולוגית לגרימת קרישה על ידי הפרת כלי דם ו, ככל הנראה,רקמות גורם תלוי ייזום של מפל קרישה. הממצא שטיפול הירודין גדל באופן משמעותי פעמים דימום לאחר פציעה מצביע על כך שמודל זה הוא תרומבין תלוי. פגיעה מכאנית בנוסף משלימה פציעת לייזר על ידי מתן לתת הזדמנות למעקב תיקון כלי הפרעה מספקת של כלי דם. מחקרים קודמים השתמשו בהצלחה פגיעה מכאנית על ידי חתך אזמל ולנקב מחט להראות הבדלים בדימום פעמים בתנאים של מניפולציה תרופתית וגנטית 19,33. פציעת סיכת פרטים הקטנה ששמשה במודל הנוכחי עשויה להשלים מודלים פציעה אחרים על ידי מתן פגיעה לשחזור יותר בשל הגודל הקטן ומוגדר של הפצע שהיא מייצרת ועל ידי מתן הזדמנות ללמוד recanalization כלי ותיקון טוב יותר.
אפיתל פצע בדג הזברה הוכיח להיות מודל רב עוצמה ללימוד דלקת ופצע תיקון 10. היכולתלהציג את פציעה של כלי דם מספקת הזדמנות להעריך תיקון של יותר פצעים מורכבים בהגדרות בי הפיברין מספק מטריקס, thrombi ופסולת זמניים נמחקים, וכלי להתחדש. כתהליכים אלה להשתתף בתיקון רקמות נורמלי ובדלקת אקוטית וכרונית ופתולוגיה של כלי הדם, בשיטה זו אמורה לעזור לדגמן היבטים של מחלה אנושית במערכת שבה ניתן לנטר התנהגויות סלולריות בזמן אמת במודל חיה שלם.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Materials
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Minutia Pins | Fine Science Tools | 26002-10 | Tip diameter 0.0125 mm, rod diameter 0.1 mm |
Pin Holder | Fine Science Tools | 26016-12 | |
Dumont #5 Fine Tip Forceps | Fine Science Tools | 11254-20 | |
Glass Depression Slide | Aquatic Eco-Systems | M30 | |
Low Melting Agarose | Lonza | 50081 | Preheated to 42 º C |
N-Phenylthiourea (PTU) | Sigma Aldrich | P7629 | |
3-aminobenzoic acid (Tricaine) | Sigma Aldrich | E10521 | |
Hirudin | Sigma Aldrich | H7016 | |
Glass bottom imaging dishes | Mattek | P35G-1.5-14-C | |
Dissecting microscope | Olympus | SZH10 | |
Fluorescence microscope | Zeiss | Axio Observer | |
Aquarium salts | Instant Ocean | ||
Insulin syringe with 28.5 G needle | Becton Dickinson | 329461 |
References
- Gore, A. V., Monzo, K., Cha, Y. R., Pan, W., Weinstein, B. Vascular development in the zebrafish. Cold Spring Harb Perspect Med. 2 (5), a006684 (2012).
- Boatman, S., et al.
Assaying hematopoiesis using zebrafish. Blood Cells Mol Dis. 51 (4), 271-276 (2013). - Ellett, F., Lieschke, G. J. Zebrafish as a model for vertebrate hematopoiesis. Curr Opin Pharmacol. 10 (5), 563-570 (2010).
- Liu, J., Stainier, D. Y. Zebrafish in the study of early cardiac development. Circ Res. 110 (6), 870-874 (2012).
- Traver, D., et al. The zebrafish as a model organism to study development of the immune system. Adv Immunol. 81, 253-330 (2003).
- Lieschke, G. J., Trede, N. S.
Fish immunology. Curr Biol. 19 (16), R678-R682 (2009). - Lesley, R., Ramakrishnan, L. Insights into early mycobacterial pathogenesis from the zebrafish. Curr Opin Microbiol. 11 (3), 277-283 (2008).
- Oehlers, S. H., et al. A chemical enterocolitis model in zebrafish larvae that is dependent on microbiota and responsive to pharmacological agents. Dev Dyn. 240 (1), 288-298 (2011).
- Gemberling, M., Bailey, T. J., Hyde, D. R., Poss, K. D. The zebrafish as a model for complex tissue regeneration. Trends Genet. 29 (11), 611-620 (2013).
- LeBert, D. C., Huttenlocher, A.
Inflammation and wound repair. Semin Immunol. , (2014). - Henry, K. M., Loynes, C. A., Whyte, M. K., Renshaw, S. A. Zebrafish as a model for the study of neutrophil biology. J Leukoc Biol. 94 (4), 633-642 (2013).
- Niethammer, P., Grabher, C., Look, A. T., Mitchison, T. J. A tissue-scale gradient of hydrogen peroxide mediates rapid wound detection in zebrafish. Nature. 459 (7249), 996-999 (2009).
- Rosenberg, A. F., Wolman, M. A., Franzini-Armstrong, C., Granato, M. In vivo nerve-macrophage interactions following peripheral nerve injury. J Neurosci. 32 (11), 3898-3909 (2012).
- Otten, C., Abdelilah-Seyfried, S. Laser-inflicted injury of zebrafish embryonic skeletal muscle. J Vis Exp. (71), e4351 (2013).
- Matrone, G., et al. Laser-targeted ablation of the zebrafish embryonic ventricle: a novel model of cardiac injury and repair. Int J Cardiol. 168 (4), 3913-3919 (2013).
- Jagadeeswaran, P., Carrillo, M., Radhakrishnan, U. P., Rajpurohit, S. K., Kim, S.
Laser-induced thrombosis in zebrafish. Methods Cell Biol. 101, 197-203 (2011). - Vo, A. H., Swaroop, A., Liu, Y., Norris, Z. G., Shavit, J. A. Loss of fibrinogen in zebrafish results in symptoms consistent with human hypofibrinogenemia. PLoS One. 8 (9), e74682 (2013).
- Liu, Y., et al. Targeted mutagenesis of zebrafish antithrombin III triggers disseminated intravascular coagulation and thrombosis, revealing insight into function. Blood. , (2014).
- Jagadeeswaran, P., Liu, Y. C. A hemophilia model in zebrafish: analysis of hemostasis. Blood Cells Mol Dis. 23 (1), 52-57 (1997).
- Jagadeeswaran, P., Gregory, M., Day, K., Cykowski, M., Thattaliyath, B. Zebrafish: a genetic model for hemostasis and thrombosis. J Thromb Haemost. 3 (1), 46-53 (2005).
- Lin, H. F., et al. Analysis of thrombocyte development in CD41-GFP transgenic zebrafish. Blood. 106 (12), 3803-3810 (2005).
- Rosen, J. N., Sweeney, M. F., Mably, J. D. Microinjection of zebrafish embryos to analyze gene function. J Vis Exp. (25), (2009).
- Benard, E. L., et al. Infection of zebrafish embryos with intracellular bacterial pathogens. J Vis Exp. (61), (2012).
- Jagadeeswaran, P., Sheehan, J. P.
Analysis of blood coagulation in the zebrafish. Blood Cells Mol Dis. 25 (3-4), 3-4 (1999). - Jin, S. W., Beis, D., Mitchell, T., Chen, J. N., Stainier, D. Y. Cellular and molecular analyses of vascular tube and lumen formation in zebrafish. Development. 132 (23), 5199-5209 (2005).
- Traver, D., et al. Transplantation and in vivo imaging of multilineage engraftment in zebrafish bloodless mutants. Nat Immunol. 4 (12), 1238-1246 (2003).
- Lawson, N. D., Weinstein, B. M. In vivo imaging of embryonic vascular development using transgenic zebrafish. Dev Biol. 248 (2), 307-318 (2002).
- Renshaw, S. A., et al. A transgenic zebrafish model of neutrophilic inflammation. Blood. 108 (13), 3976-3978 (2006).
- Hall, C., Flores, M. V., Storm, T., Crosier, K., Crosier, P. The zebrafish lysozyme C promoter drives myeloid-specific expression in transgenic fish. BMC Dev Biol. 7, 48 (2007).
- Ellett, F., Pase, L., Hayman, J. W., Andrianopoulos, A., Lieschke, G. J. mpeg1 promoter transgenes direct macrophage-lineage expression in zebrafish. Blood. 117 (4), e49-e56 (2011).
- Gray, C., et al. Simultaneous intravital imaging of macrophage and neutrophil behaviour during inflammation using a novel transgenic zebrafish. Thromb Haemost. 105 (5), 811-819 (2011).
- Bellido-Martin, L., Chen, V., Jasuja, R., Furie, B., Furie, B. C. Imaging fibrin formation and platelet and endothelial cell activation in vivo. Thromb Haemost. 105 (5), 776-782 (2011).
- Bielczyk-Maczynska, E., et al. A loss of function screen of identified genome-wide association study Loci reveals new genes controlling hematopoiesis. PLoS Genet. 10 (7), e1004450 (2014).