Introduction
omeostasi energetica e la digestione degli alimenti nei mammiferi dipendono da una corretta funzione pancreatica. Il pancreas adulto è composto da due principali compartimenti cellulari: il esocrina e il sistema endocrino. Cellule esocrine, comprese le cellule acinari che producono e secernono enzimi digestivi e le cellule dei dotti che trasportano questi enzimi per l'intestino, comprendono oltre l'80% della massa pancreatica totale 1. Cellule endocrine, che includono le cellule beta produttrici di insulina e glucagone cellule alfa producono, sono organizzati nelle isole di Langerhans che sono incorporati nel tessuto esocrino e secernono ormoni per regolare i livelli di glucosio nel sangue 2.
Cellule pancreatiche acquisiscono il loro destino differenziata attraverso una altamente regolamentato, processo a più gradi 3. L'evidenza suggerisce che spunti estrinseci forniti da neuronale, endoteliali e cellule mesenchimali guidare la differenziazione delle cellule del pancreas e la proliferazione in tha embrione 3, 4, 5. Un esempio è il requisito dell'aorta per la specifica dei primi precursori pancreatici 6. Più tardi in fase di sviluppo, le cellule endoteliali sono stati mostrati a svolgere un ruolo centrale nello sviluppo di entrambe le cellule endocrine e esocrine del pancreas e di promuovere la differenziazione delle cellule beta 4, 6, 7. Cellule mesenchimali hanno dimostrato di sostenere la sopravvivenza e l'espansione di progenitori pancreatici comuni, principalmente attraverso la secrezione del fattore di crescita FGF10 8, 9. Abbiamo inoltre dimostrato che queste cellule supportano la proliferazione di endocrine ed esocrine precursori, nonché di cellule differenziate (comprese le cellule acinari e beta) nel pancreas embrionale 5. Recentemente, cellule mesenchimali sono stati ulteriormentedimostrato che regolano il differenziamento cellule endocrine 10.
Nell'adulto, funzione delle cellule beta e massa sono stati mostrati dipendere cellule nel loro microambiente, tra neuronale, immunitario, e le cellule endoteliali, nonché periciti 11, 12, 13. Durante la ferita, le cellule endoteliali sono stati mostrati a reclutare le cellule immunitarie al pancreas per promuovere la replicazione delle cellule beta 13. Le cellule endoteliali sono state ulteriormente mostrati per produrre componenti della matrice extracellulare (ECM) per sostenere l'espressione di insulina e beta-cellule funzione 14. Abbiamo recentemente dimostrato l'esigenza di pericytes isolotto per la funzione delle cellule beta 11. Infine, le cellule dello stroma pancreatica sono stati mostrati per regolare la progressione di adenocarcinoma del dotto pancreatico (PDAC) 15, 16. Tuttavia, l'identità di spunti estrinseci che guidano lo sviluppo del pancreas, la funzione, e tumorigenesi sono in gran parte sconosciuti.
Identificare spunti forniti dalle cellule del microambiente del pancreas richiede caratterizzare i geni e le proteine espresse da queste cellule. Questo dipende isolare queste cellule dal pancreas per effettuare l'espressione genica e proteomica e / o stabilire linee cellulari. Qui, vi proponiamo un metodo per isolare le cellule mesenchimali del microambiente del pancreas utilizzando tessuti digestione enzimatica e fluorescenza-attivato cell sorting (FACS) di entrambi cellule immunofluorescently-etichettati o cellule che esprimono proteine fluorescenti. Questo protocollo è stato eseguito con successo per isolare e analizzare proteina fluorescente gialla (YFP) esprimente cellule mesenchimali del embrionale, neonatale e adulta del pancreas 5, 17.
Materials
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Collagenase P | Roche | 11213865001 | |
DNase | Sigma-Aldrich | D5025-15KU | The effective units should be at least 2,000 unitz/mL protein |
Hanks’ Balanced Salt solution (HBSS) | Sigma-Aldrich | H6648 | |
Fetal Bovine Serum (FBS) | Biological Industries | 04-127-1A | |
EDTA | Biological Industries | 01-862-1A | |
Sodium Azide | Sigma-Aldrich | S2002 | |
Goat IgG serum | Sigma-Aldrich | G9023 | |
DAPI | Sigma-Aldrich | D9542 | |
RNAse inhibitor | Invitrogen | N8080119 | |
Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) | Invitrogen | 11965092 | |
L-Glutamine | Biological Industries | 03-020-1B | |
Penicillin-streptomycin | Biological Industries | 03-031-1B | |
Dulbecco’s Phosphate Buffered Saline (PBS) | Sigma-Aldrich | D8537 | Without Calcium Chloride and Magnesium Chloride |
1.5 mL tubes | Sarstedt | 72 690 | |
15 mL conical tube | Corning | 430052 | |
Round Bottom Polystyrene 5 mL tube | Corning | 352008 | FACS tube. Make sure tube is compatible with the flow cytomter to be used, as there are slight differences in required tubes between brands |
5 mL tube with 35 μm cell strainer Snap Cap | Corning | 352235 | FACS tube |
70 μm cell strainer | Miltenyi Biotec | 130-098-462 | |
Heating block with agitation | Eppendorf | ThermoMixer C | |
Centrifuge | ThermoFisher | Heraeus Megafuge 40R | |
Steromicroscope | Nikon | SMZ 745 | |
Cell sorter | BD Biosciences | FACSAria IIu | |
flow cytometer | Beckman Coulter | Gallios |
References
- Gu, G., Dubauskaite, J., Melton, D. A. Direct evidence for the pancreatic lineage: NGN3+ cells are islet progenitors and are distinct from duct progenitors. Development. 129 (10), 2447-2457 (2002).
- Cabrera, O., Berman, D. M., Kenyon, N. S., Ricordi, C., Berggren, P. -O., Caicedo, A. The unique cytoarchitecture of human pancreatic islets has implications for islet cell function. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 103 (7), 2334-2339 (2006).
- Gittes, G. K. Developmental biology of the pancreas: a comprehensive review. Developmental biology. 326 (1), 4-35 (2009).
- Villasenor, A., Cleaver, O. Crosstalk between the developing pancreas and its blood vessels: An evolving dialog. Seminars in cell & developmental biology. , 1-8 (2012).
- Landsman, L., Nijagal, A., et al. Pancreatic mesenchyme regulates epithelial organogenesis throughout development. PLoS Biology. 9 (9), e1001143 (2011).
- Lammert, E., Cleaver, O., Melton, D. Induction of pancreatic differentiation by signals from blood vessels. Science. 294 (5542), 564-567 (2001).
- Pierreux, C. E., Cordi, S., et al. Epithelial: Endothelial cross-talk regulates exocrine differentiation in developing pancreas. Developmental biology. 347 (1), 216-227 (2010).
- Golosow, N., Grobstein, C.
Epitheliomesenchymal interaction in pancreatic morphogenesis. Developmental biology. 4, 242-255 (1962). - Bhushan, A., Itoh, N., et al. Fgf10 is essential for maintaining the proliferative capacity of epithelial progenitor cells during early pancreatic organogenesis. Development. 128 (24), 5109-5117 (2001).
- Larsen, B. M., Hrycaj, S. M., Newman, M., Li, Y., Wellik, D. M. Mesenchymal Hox6 function is required for mouse pancreatic endocrine cell differentiation. Development. 142 (22), 3859-3868 (2015).
- Sasson, A., Rachi, E., et al. Islet pericytes are required for beta-cell maturity. Diabetes. 65 (10), 3008-3014 (2016).
- Stanley, S. A., Kelly, L., et al. Bidirectional electromagnetic control of the hypothalamus regulates feeding and metabolism. Nature. 531 (7596), 647-650 (2016).
- Brissova, M., Aamodt, K., et al. Islet microenvironment, modulated by vascular endothelial growth factor-A signaling, promotes β cell regeneration. Cell metabolism. 19 (3), 498-511 (2014).
- Nikolova, G., Jabs, N., et al. The vascular basement membrane: a niche for insulin gene expression and Beta cell proliferation. Developmental cell. 10 (3), 397-405 (2006).
- Rhim, A. D., Oberstein, P. E., et al. Stromal elements act to restrain, rather than support, pancreatic ductal adenocarcinoma. Cancer cell. 25 (6), 735-747 (2014).
- Özdemir, B. C., Pentcheva-Hoang, T., et al. Depletion of carcinoma-associated fibroblasts and fibrosis induces immunosuppression and accelerates pancreas cancer with reduced survival. Cancer cell. 25 (6), 719-734 (2014).
- Russ, H. A., Landsman, L., et al. Dynamic Proteomic Analysis of Pancreatic Mesenchyme Reveals Novel Factors That Enhance Human Embryonic Stem Cell to Pancreatic Cell Differentiation. Stem cells international. 2016, 6183562 (2016).
- Gout, J., Pommier, R. M., et al. Isolation and Culture of Mouse Primary Pancreatic Acinar Cells. Journal of Visualized Experiments. (78), e50514 (2013).
- Verzi, M. P., Stanfel, M. N., et al. Role of the homeodomain transcription factor Bapx1 in mouse distal stomach development. Gastroenterology. 136 (5), 1701-1710 (2009).
- Tribioli, C., Frasch, M., Lufkin, T. Bapx1: an evolutionary conserved homologue of the Drosophila bagpipe homeobox gene is expressed in splanchnic mesoderm and the embryonic skeleton. Mech Dev. 65 (1-2), 145-162 (1997).
- Hecksher-Sorensen, J., Watson, R., et al. The splanchnic mesodermal plate directs spleen and pancreatic laterality, and is regulated by Bapx1/Nkx3.2. Development. 131 (19), 4665-4675 (2004).
- Walmsley, G. G., Rinkevich, Y., Hu, M. S. Live Fibroblast Harvest Reveals Surface Marker Shift In Vitro. Tissue Engineering Part C: Methods. , (2014).
- Morris, J. P., Greer, R., et al. Dicer regulates differentiation and viability during mouse pancreatic cancer initiation. PloS one. 9 (5), 95486 (2014).
- Miyatsuka, T., Matsuoka, T. -A., et al. Chronological analysis with fluorescent timer reveals unique features of newly generated β-cells. Diabetes. 63 (10), 3388-3393 (2014).
- Sneddon, J. B., Borowiak, M., Melton, D. A. Self-renewal of embryonic-stem-cell-derived progenitors by organ-matched mesenchyme. Nature. 491 (7426), 765-768 (2012).
- Guo, T., Landsman, L., Li, N., Hebrok, M. Factors expressed by murine embryonic pancreatic mesenchyme enhance generation of insulin-producing cells from hESCs. Diabetes. 62 (5), 1581-1592 (2013).
- Olive, K. P., Jacobetz, M. A., et al. Inhibition of Hedgehog signaling enhances delivery of chemotherapy in a mouse model of pancreatic cancer. Science. 324 (5933), 1457-1461 (2009).
- Raz, Y., Erez, N. An inflammatory vicious cycle: Fibroblasts and immune cell recruitment in cancer. Experimental cell research. 319 (11), 1596-1603 (2013).