Summary
该方案描述了从非贴壁/间充质乳腺上皮细胞中纯化，定量和表征细胞外囊泡（EVs）/外来体的方法，并使用它们将乳腺形成能力转移到乳腺上皮细胞。衍生自茎状乳腺上皮细胞的EVs /外来体可以将该细胞特性转移到摄入EV /外来体的细胞中。
Abstract
细胞可以通过外来体，含有蛋白质，脂质和核酸的〜100-nm胞外囊泡（EVs）进行通信。非贴壁/间充质乳腺上皮细胞（NAMEC）衍生的细胞外囊泡可以通过差异超速离心从NAMEC培养基中分离。基于它们的密度，EV可以通过110,000×g的超速离心纯化。可以使用连续密度梯度进一步分离来自超速离心的EV制剂，以防止可溶性蛋白质的污染。然后可以使用纳米颗粒跟踪分析进一步评估纯化的EV，其测量制剂中囊泡的大小和数量。尺寸范围为50至150nm的细胞外囊泡是外来体。 NAMEC衍生的EVs /外来体可以通过乳腺上皮细胞摄取，可以通过流式细胞术和共焦显微镜检测。一些乳腺干细胞性质（ 如乳腺形成能力）可以通过来自NAMEC的EVs /外来体从茎状NAMEC转移到乳腺上皮细胞。分离的原代EpCAM hi / CD49f细胞乳腺上皮细胞在移植到小鼠脂肪垫后不能形成乳腺，而EpCAM lo / CD49f基底乳腺上皮细胞在移植后形成乳腺。通过EpCAM hi / CD49f细胞乳腺上皮细胞摄取NAMEC衍生的EVs /外来体允许它们在移植到脂肪垫中之后产生乳腺。衍生自干样乳腺上皮细胞的EVs /外来体转移到EpCAM hi / CD49f细胞乳腺上皮细胞的乳腺形成能力。
Introduction
外来体可以通过在细胞之间转移膜和细胞质蛋白，脂质和RNA来介导细胞交流1 。已经证明外来体介导的通信涉及许多生理和病理过程（ 即抗原呈递，耐受性发展2和肿瘤进展3 ）。外来体通常具有与释放它们的源细胞相似的内容。因此，外来体可以从源细胞携带特定的细胞特性，并将这些性质转移到摄取它们的细胞中。
外来体是50至150纳米的双层膜囊泡，并呈现特异性标记（ 例如 CD9，CD81，CD63，HSP70，Alix和TSG101）。因此，外来体必须通过不同方面的各种方法来表征。透射电子显微镜可用于观察膜囊泡如外来体4,5 。纳米粒子跟踪分析（NTA）和动态光散射分析（DLS）用于测量纯化外来体的大小和数量4 。可以通过密度梯度验证外来体的脂质膜含量。染色体标志物，例如CD9，CD81，CD63，HSP70，Alix和TSG101,6,7可以通过Western印迹法测定。
乳腺基底细胞在植入脂肪垫时具有产生乳腺的能力，而腔细胞不能8,9,10 。因此，乳腺基底细胞也称为乳腺再生单位。通过使用乳腺基底细胞和腔细胞模型，可以检测EVs /外来体在不同细胞群体之间转运细胞特征的能力。这个工作证明了通过使用源自乳腺基底上皮细胞的EVs /外来体将腺体形成能力从乳腺基底上皮细胞转移到乳腺腔上皮细胞的方法。乳腺上皮细胞摄取基底细胞分泌的EV /外来体后获得基础细胞特性，然后形成乳腺。
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Protocol
所有涉及动物的研究均符合动物保护机构委员会批准的方案。
细胞外囊泡/外来体分离和鉴定
- 培养乳腺上皮基底细胞NAMEC4，用500mL MCDB 170，pH 7.4 + 500mL DMEM / F12与碳酸氢钠（0.2438％）制备的新鲜无血清培养基; EGF（5 ng / mL）;氢可替康（0.5μg/ mL）;胰岛素（5μg/ mL）;牛垂体提取物（BPE;35μg/ mL）;和GW627368X（1μg/ mL）。
- 用血细胞计数器计数细胞后，在第0天将1.2×10 6个细胞在每15cm培养皿中的12mL培养基中种植4天4 。
- 培养4天后，使用台式离心机将培养基以300×g离心5分钟。将上清液转移到锥形管（ 图1 ）。
- 离心上清液在台式离心机中以2,000 x g进行20分钟。将上清液转移到超速离心管中，留下死细胞和细胞碎片（ 图1 ）。
- 在4℃下以10,000xg离心上清30分钟。将上清液转移到新的超速离心管（ 图1 ）。
- 在4℃下将上清液以110,000xg离心60分钟。去除上清液并将EV /外来物质沉淀重悬于PBS中（ 图1 ）。
- 在4℃下将上清液以110,000xg离心60分钟。去除上清液。重悬于PBS中的EV /外来体颗粒（ 图1 ）。将从240-480 mL NAMEC条件培养基中分离的沉淀物重悬于100μL。
- 用BCA蛋白测定法测定EV悬浮液的蛋白质浓度。确保浓度在20-40μg/ 100μL左右。储存于-20°C进一步分析。
- 通过纳米粒子跟踪分析（NTA）测量EVs /外来体的浓度和大小，如Gardiner 等人先前所述。 11 。用PBS稀释EVs /外来体（20μg/100μL）至NTA分析10,000倍。
注意：NTA分析的结果反映了分析的囊泡的数量和大小。 - 用透射电子显微镜（TEM）对EV /外来体进行成像，如Lin 等人 4所述。
2.使用密度梯度的外来体纯化
- 将来自步骤1.7的110,000g沉淀物重悬于40％（w / v）碘克沙醇的PBS（2mL）中。按照在PBS（每次2mL）中的30％，20％，10％和5％（w / v）碘克沙醇的等分试样依次覆盖混合物，以在超速离心管中形成密度梯度。
- 将混合物在4℃下以200,000xg离心8小时。
- 收集每个梯度分数（10分）附件; 1 mL /分），从管顶部移液。
- 通过SDS-PAGE 12和Western印迹分析每个级分中exosome标记物（ 如 CD81，CD9，CD63和Tsg101）的存在。将每个级分的50μL悬浮液加到含有0.1％（w / v）SDS的10％凝胶上，并用凝胶电泳分离各部分的蛋白质。
- 将蛋白质从凝胶转移到PVDF膜，并在4℃下将膜与抗外来体标记物（ 例如 CD81，CD9，CD63和Tsg101）和内脏蛋白GAPDH孵育过夜（ 表材料 ）。
注意：结果确定含有外来体的部分。
细胞外囊泡/外来体标签
- 将20μl胞外蛋白/100μL的步骤1.7获得的EVs /外来体悬浮于10μM羧基荧光素琥珀酰亚胺基二乙酸酯（CFSE）中。准备一个平行样本公司仅以相同的方式处理CFSE和PBS，作为后续EV /外来物吸收测定的阴性对照。将混合物在37℃下放置30分钟。
- 将EVs /外来体悬挂在50倍体积的PBS中，并在4℃下以110,000xg离心悬浮液60分钟。去除上清液并将EV /外来物质沉淀重悬于PBS中。重复步骤3.2一次。
- 将EVs /外来体悬浮在PBS中，浓度为20μg的外来蛋白/100μL，然后在将EV /外来体添加到细胞之前通过0.22μm膜过滤EV /外来体。
细胞外囊泡/外来体摄取测定
- 为了制备培养基，将500mL的MCDB 170，pH 7.4 + 500mL的DMEM / F12与碳酸氢钠（0.2438％）混合; EGF（5 ng / mL）;氢可替康（0.5μg/ mL）;胰岛素（5μg/ mL）;和BPE（35μg/ mL） 4 。将人乳腺上皮HMLE细胞置于6孔培养皿中（1×10 6个/ sup>细胞/孔），EV / exosome处理前一天。将2μg/ mL CFSE荧光标记的EVs / exosome（在步骤3.3中获得）添加到HMLE细胞的培养基中2-6小时。用平行制剂处理阴性对照组的HMLE细胞，如步骤3.1所述。
- 孵育2至6小时后，在室温下用4mL PBS洗涤细胞两次。
- 用0.25％胰蛋白酶分离细胞10分钟，并将细胞重新悬浮在含有0.2％FBS的PBS中。使用荧光细胞分析仪测量细胞中荧光强度的EV /外来体摄取。使用共聚焦显微镜对用EVs /外来体处理的细胞或阴性对照进行成像。
注意：细胞中的绿色荧光是由EV /外来体吸收引起的。有关显微镜设置， 请参见图6的图例。
5.分离原代小鼠乳腺上皮细胞
- 使用剪刀从12周龄的女性C57BL / 6小鼠解剖数目2,3,4和5个乳腺（ 图2 ），并使用剃须刀将腺切成小块（2mm）。
- 进一步解离乳腺浆液（10只小鼠）在37℃，60分钟搅拌120毫升DMEM / F12含0.2％胶原酶IV，0.2％胰蛋白酶，5％FBS，5微克/毫升庆大霉素和1x pen-strep。
- 通过在350×g离心10分钟从混合物中沉淀上皮组织。
- 将上清组织悬浮于4mL含有0.1mg / mL DNA酶I的DMEM / F12中，室温5分钟。加入6mL DMEM / F12至最终体积10 mL。
- 将悬浮液在室温下以400xg离心10分钟，弃去上清液。
- 将沉淀重悬于10mL DMEM / F12中。离心机悬挂，当速度达到400 x g时，刹车。丢弃上清液。
注意：通过击打制动器，上皮组织被迅速沉淀下来，而成纤维细胞作为单细胞仍然停留在上清液中。 - 重复5.6和5.7 5-7次。将一滴悬浮液添加到血细胞计数器中，然后在每次离心后在显微镜下检查来自有机体混合物的成纤维细胞的清除（ 图3 ）。
- 将含有1x ITS，5％FBS，50μg/ mL庆大霉素，10ng / mL EGF和1×pen-strep的DMEM / F12，在步骤5.1中获得的明胶包被的培养皿中的组织样品放置48小时。
- 48小时后，用不含FBS的新鲜培养基替换培养基，去除培养物中的浮游细胞（含有ITS，50μg/ mL庆大霉素，10ng / mL EGF和1x pen-strep的DMEM / F12）。
- 确认单层乳腺上皮细胞在3天内迁移并从附着的上皮组织中生长出来。
原代小鼠基底/乳腺上皮细胞分离
- 3天培养后，用具有蛋白水解和胶原酶活性的天然酶混合物分离小鼠原代乳腺细胞20分钟。用PBS中的5％FBS中和酶活性。
- 在室温下将悬浮液以450×g离心10分钟，弃去上清液。将细胞沉淀重悬于5mg / mL分散液中20分钟。用PBS中的5％FBS中和酶活性。
- 在室温下将悬浮液以450×g离心10分钟，弃去上清液。
- 用浓度为10 7个细胞/ mL的稀释的0.2％FBS将细胞重新悬浮于100μLPBS中抗CD49f和抗EpCAM抗体在黑暗中1小时。
- 用PBS洗涤细胞，然后在黑暗中将细胞与荧光团缀合的第二抗体在冰上孵育30分钟。
- 用0.2％FBS洗涤并重新悬浮在PBS中的细胞。
- 将细胞分选器4上的EpCAM hi / CD49f细胞乳腺上皮细胞分选。
细胞外囊泡/外来体治疗
- 将来自步骤6.7的明胶包被的6孔培养皿（2×10 5个细胞/孔）上的分选的EpCAM hi / CD49f细胞乳腺上皮细胞种子，然后用PBS或2μg/ mL NAMEC衍生的EVs /外来体在步骤1.7中获得。
- 为了确保EVs /外来体在长期培养处理中的生物学功效，每隔两天用含有PBS或2μg/ mL NAMEC衍生的EVs /外来体的新鲜培养基代替细胞培养基。不要分开鼠标prima在10天的治疗期间的腔细胞。
8.脂肪垫注射乳腺上皮细胞
- 麻醉3周龄雌性C57BL / 6小鼠与异氟烷2-3％吸入。
- 把麻醉的老鼠放在背上。用剃刀/发乳去除中腹部的毛皮，并用70％酒精和聚维酮碘的三个交替周期清洁手术部位。
- 用剪刀沿腹侧胸腹部区域穿过皮肤进行1.5厘米的垂直切口，然后交替暴露右侧和左侧第 4 个乳房脂肪垫。
- 用剪刀去除腺体实质，清除每个脂肪垫。找到脂肪垫中的淋巴结，然后取出淋巴结下方的整个腺体实质。
注意：三分之二的脂肪垫应该保持在原位。 - 用天然酶混合物（参见材料表 ）与蛋白水解a分离从步骤7.2获得的细胞nd胶原酶活性10分钟。用PBS中的5％FBS中和酶活性。
- 在室温下将悬浮液以450×g离心10分钟，弃去上清液。用血细胞计数器计数细胞，并将细胞悬浮在PBS中，浓度使得15μL含有所需的细胞剂量（10 4 -10 2细胞/垫）。
- 使用连接到27G针的100μL玻璃注射器将15μL乳腺上皮细胞悬液注入脂肪垫。
- 对另一侧的脂肪垫重复步骤8.4-8.7。
- 用伤口夹闭合皮肤。
乳腺全身
- 细胞注射后8周用CO 2加颈椎脱位来安乐死小鼠（步骤8.7）。
- 使用剪刀从胸部区域到腹股沟区域的皮肤层进行垂直切口，然后暴露右侧和左侧4 号乳房脂肪垫去除第4 个乳腺（ 图2 ）。
- 在玻璃显微镜载玻片上涂抹脂肪垫，并在室温下用Kahle固定剂（4％甲醛，30％EtOH和2％冰乙酸）固定脂肪垫。
注意：Kahle的固定剂是刺激性的。在化学品罩中执行此步骤。 - 在250mL 70％EtOH中洗涤脂肪垫15分钟，然后在250mL的dH 2 O中洗涤5分钟。在室温下用胭脂红明矾（1g胭脂红和2.5g硫酸铝钾）在500mL dH 2 O中染上脂肪垫。
- 用250mL 70％EtOH洗涤脂肪垫15分钟，250mL 95％EtOH洗涤15分钟，加入250mL 100％EtOH 15分钟。
- 清洁二甲苯中的脂肪垫数天，并在脂肪垫变透明时停止二甲苯培养。
注意：二甲苯是一种刺激性。在化学品罩中执行此步骤。 - 装载幻灯片wi使用数字幻灯片扫描仪拍摄图像（2,400 dpi）的脂肪垫。
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Representative Results
由于已经显示阻断PGE 2 / EP 4信号传导从乳腺基底样干细胞4引发EV /外来体释放，这项工作提出了从乳腺上皮基底细胞（NAMEC）培养物中分离诱导的EVs /外来体的方法。由于NAMECs在无血清培养基中培养，所以不存在来自血清13的预先存在的EV /外来体。对于在含有血清的培养基中培养的细胞，培养基中预先存在的外来体必须通过超速离心在110,000 xg进行预清洗，然后使用培养基培养源细胞以收集EV /外来体5 。来自4天诱导的NAMEC条件培养基的EVs /外来体可以通过差速超速离心从110,000xg沉淀中分离， 如图1所示 。隔离泡囊的数量和大小在110,000 xg皮尔可以使用纳米粒子跟踪分析（NTA）来测量。通过差速超速离心分离的110,000g沉淀级分主要含有〜100nm囊泡（ 图4A ）;这对应于文献中报道的外来体（50-150nm）的大小。此外，TEM分析显示，110,000g NAMEC条件培养基的级分含有丰富的膜囊泡（ 图4B ）。虽然微分超速离心可以产生合理的纯外来体，但使用密度梯度的以下纯化步骤进一步消除污染物（ 如蛋白聚集体） 5 。在密度梯度中，外来体由于囊泡中的脂质含量而漂浮在梯度中，而蛋白质聚集体（如果有的话）停留在梯度的底部。收集梯度的每一部分用于检测外来体生产者（ 例如， CD81，CD63，CD9和TSG101 图5 ）。可以用PBS稀释含有外来体的级分，并进行200,000×g超速离心以分离外来体。将分离的外来体沉淀物在PBS中洗涤一次，然后重悬浮于PBS中并储存在-20℃进行进一步分析。
在测量乳腺上皮细胞HMLE细胞的非茎对应物的NAMEC衍生的EVs /外来体摄取之前，EVs /外来体必须用荧光染料（ 例如羧基荧光素琥珀酰亚胺酯（CFSE））标记。在同一标签程序中处理仅含有CFSE但不含EV /外来体的平行样品。该样品是用于以下EV /外来物吸收测定中的阴性对照，以反映微量残留游离CFS的作用E染料。将HMLE细胞用CFSE标记的NAMEC衍生的EVs /外来体或阴性对照培养2-6小时，然后进行流式细胞术。与未处理的HMLE细胞相比，用阴性对照培养的HMLE细胞表达略高于CFSE信号的水平（ 图6A ，红线对橙线），其反映了残留的残留游离CFSE引起的CFSE信号的背景水平EV /外来体标记过程。此外，与阴性对照处理的HMLE细胞相比，用CFSE标记的NAMEC衍生的外来体培养的HMLE细胞表达10倍高的CFSE信号（ 图6A ，蓝线对红线），其由特异性摄取的CFSE标记的EV /外来体。通过共聚焦显微镜观察也可以通过HMLE细胞摄取CFSE标记的NAMEC衍生的EVs /外来体。虽然阴性对照处理的HMLE细胞不显示CFSE信号，但NA的摄取在CFSE标记的EV /外来体处理的细胞中，在共聚焦显微镜下，用CFSE信号可以观察到由HMLE细胞产生的MEC衍生的EVs /外来体（ 图6B ）。
为了评估NAMEC衍生的EVs /外来体是否可以将乳腺基质细胞的乳腺形成能力转移到乳腺腔细胞，首先分离小鼠乳腺腔细胞，以便分析小鼠中的乳腺形成。从12周龄小鼠分离小鼠乳腺上皮细胞。将乳腺切成小块，并用胶原酶和胰蛋白酶进一步解离。分离的上皮组织和成纤维细胞可以通过差速离心分离，如步骤5.7和5.8所述。在每次离心过程中，管底部的沉淀物应主要含有上皮组织，成纤维细胞和单细胞应漂浮于上清液吨。与在差速离心之前含有上皮组织和成纤维细胞的混合物相比（ 图3 ，上图），六轮离心清除了混合物中大多数成纤维细胞和单细胞（ 图3 ，下图）。
使用具有蛋白水解和胶原分解酶活性和分散酶的天然酶混合物进一步解离上皮组织的乳腺上皮细胞（ 图7 ）以产生悬浮液中的单细胞。通过细胞表面CD49f和EpCAM的表达分选单细胞悬液可以分离乳腺腔细胞（EpCAM hi / CD49f lo ），乳腺基底细胞（EpCAM lo / CD49f hi ）和非上皮细胞（EpCAM - ）（ 图8 ）。
hi / CD49f细胞乳腺上皮细胞与来自NAMEC的EVs /外来体培养10天，并且每两天更换新鲜的EV /外来体和培养基。在EV /外来体处理后，将乳腺腔细胞植入小鼠的第 4乳腺脂肪垫（ 图2 ）。 8周后，分离脂肪垫并染色以分析乳腺形成（ 图9 ）。用诱导的NAMEC衍生的EVs /外来体的治疗允许腔细胞获得乳腺形成能力4 。 NAMEC衍生的，EV /外来体处理的乳腺腔细胞在小鼠脂肪垫中形成乳腺（ 图9 ）。
图1：外分泌图示r通过微分超离心从细胞培养培养基中的囊泡/外来体纯化方法。指示每次离心的速度和长度。在第一次离心分离后，将上清液保留下一步。离心110,000×g后，保留颗粒，弃去上清液。 请点击此处查看此图的较大版本。
图2：小鼠乳腺解剖学。小鼠有五对乳腺，数字1-5表示，位于皮肤下面的脂肪垫（红色）中。 请点击这里查看更大的版本是数字
图3：差异离心之前和之后的上皮组织和脂肪垫细胞的混合物的图像。从血细胞计数器取离子离心之前和之后，分离的脂肪垫细胞混合物的明亮图像。箭头：上皮组织。箭头：成纤维细胞和单细胞。刻度棒= 0.5 mm。 请点击此处查看此图的较大版本。
图4：NAMEC110,000 xg颗粒组分的囊泡尺寸和浓度分析。 NAMEC培养基的110,000g颗粒级分为col选择并进行（ A ）纳米粒子跟踪分析（NTA）和（ B ）透射电子显微镜（TEM）。比例尺= 1μm。 请点击此处查看此图的较大版本。
图5：检测密度梯度分数中的外来体。外来体标志物CD81，CD9，CD63和Tsg101和持家基因GAPDH的Western印迹分析显示含有外来体的20％碘克沙醇馏分。 请点击此处查看此图的较大版本。
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图6：通过流式细胞术和共聚焦显微镜检测细胞外囊泡/外来体摄取。在HMLE细胞中测量EV /外来体摄取。将CFSE标记的，NAMEC衍生的EVs /外来体和阴性对照加入指定的培养物中6小时。孵育后，对细胞进行处理 （ A ）流式细胞术和（ B ）共聚焦显微镜。 CFSE（绿色;激发/发射（nm）：492/517;显微镜激光线：488）荧光强度反映EV /外来体摄取。细胞核用DAPI（蓝色;激发/发射（nm）：358/461;显微镜激光线：405）染色，质膜用质膜染色（红色;激发/发射（nm）：649/666）染色;显微镜激光线：633;参见表格材料 ）。共焦物镜：HCX PL APO 63x / 1.40-0.60油。刻度棒=20μm。ad / 55736 / 55736fig6large.jpg“target =”_ blank“>请点击此处查看此图的较大版本。
图7：附着上皮组织的图像。由细胞形成的乳腺上皮细胞的明亮图像从附着的上皮组织中迁移和生长。刻度棒=100μm。 请点击此处查看此图的较大版本。
图8：通过表面EpCAM和CD49f对原代小鼠乳腺上皮细胞进行分选。将从12周龄小鼠的脂肪垫分离的小鼠乳腺上皮细胞进行细胞分类ING。小鼠乳腺腔细胞富集在EpCAM hi / CD49f lo群体中，用蓝色圆圈标记; EpCAM lo / CD49f hi群体中富含基底细胞，标有红色圆圈。非上皮细胞用图中黑盒标记。 请点击此处查看此图的较大版本。
图9：原代小鼠乳腺细胞乳腺形成。用PBS或来自NAMEC的EVs /外来体在细胞培养物中处理初级小鼠EpCAM hi / CD49f细胞，持续10天，并植入3周龄小鼠的清除脂肪垫中。 8周后将小鼠安乐死并进行尸检，以分析乳腺形态通货膨胀。比例尺= 0.75厘米。 请点击此处查看此图的较大版本。
| 百分比 | EpCAM的小额信贷机构 | CD49f的MFI | |
| 乳腺腔细胞 | 0.437 | 4.57 x 10 4 | 8183 |
| （EpCAM hi / CD49f lo ） | |||
| 乳腺基底细胞 | 0.09 | 5452 | 2.23 x 10 4 |
| （EpCAM lo / CD49f hi ） | |||
| 非上皮细胞（EpCAM - ） | 0.309 | 53 | 4619 |
表1：图8中描述的人群的百分比和平均荧光强度（MFI）。
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Discussion
外来体通常携带释放它们的细胞的特征，并且释放的外来体的量可以由刺激诱导4 。可以收集细胞的培养基并进行差异超速离心用于EV /外来物质收集（ 图1 ）。目前对于分离EV /外来体的理想方法目前尚无普遍的共识。这里使用的最佳方法已经由下游应用14确定 。超速离心是分离EV /外来体的相对快速的方法，可以保护EV /外来体的生物活性。然而，通过超速离心分离的囊泡通常含有EVs的混合物，其包含通过从细胞膜发芽产生的内体室和/或囊泡产生的外来体。
通过用NTA分析囊泡的大小（ 图4A 15 。
虽然差异超速离心可用于纯化外来体，但应使用密度梯度来进一步从110,000 xg分离级分5中的外来体囊泡中去除蛋白质聚集体的污染例如 CD81，CD63，CD9和TSG101,6,7）。通过分析密度梯度部分中exosome标记物的存在，可以用〜20％的碘克沙醇鉴定出部分中的外来体（ 图5 ）。应检查多个外来体标记物以鉴定密度梯度中的外来体，因为每个外来体群可表达不同的外来体标记物16 。
可以使用荧光染料标记的EVs /外来体来测量细胞对EVs /外来体的吸收。可以通过流式细胞术测量摄取标记的EVs /外来体的细胞数（ 图6A ）。确认荧光从标记的EVs /外来体摄取而不是游离染料的摄取引起细胞的荧光，使用显微镜在细胞中检查荧光的图案。共焦显微镜显示EV /外来体处理细胞中的荧光图案是点状的（ 图6B右图）。点状信号可能来自标记的EV /外来体，而不是自由荧光。细胞中的点状信号可以用结构化照明超分辨率显微镜进一步分析，其在85nm处具有最高分辨率4,17。超分辨率显微镜可以证实点状信号是来自〜100nm的中空囊泡，其类似于外来体4 。这些结果表明，NAMEC衍生的外来体可以在培养物中被乳腺上皮细胞摄取。
NAMEC衍生的EVs /外来体经常携带分子（ 例如，蛋白质和miRNA）对某些细胞的特性至关重要1 。这表明NAMEC衍生的EVs /外来体可以将NAMECs的性质（ 如乳腺形成能力）转移到其上皮细胞对应物上。由于人乳腺上皮细胞不能在小鼠脂肪垫18,19 中异质形成乳腺，所以可以使用小鼠原代乳腺上皮细胞检查腺体形成能力的转移。可以从6周龄的小鼠中分离出不形成乳腺的小鼠原代乳腺EpCAM hi / CD49f细胞腔细胞（ 图7和图8 ）。从小鼠脂肪垫分离的细胞可以分为三组（ 即 EpCAM hi / CD49f腔细胞，EpCAM lo / CD49f hi基底细胞和EpCAM非上皮细胞），通过检查levec表面EpCAM和CD49f（ 图8 ）。 EpCAM lo / CD49f当基底细胞移植到脂肪垫中时，可以在脂肪中形成乳腺，但EpCAM hi / CD49f细胞不能4 。因此，EpCAM hi / CD49f细胞群可用于检测诱导的NAMEC衍生的EVs /外来体转移乳腺形成能力的能力。分离的EpCAM hi / CD49f腔细胞可以在EV /外来体治疗中保持培养7-10天4 。应该注意的是，保持原代乳腺上皮细胞在体外更长时间可以减弱细胞的活力。
将EV /外来体处理的乳腺腔细胞植入清除的脂肪垫中以分析乳腺形成能力。用于植入的小鼠的脂肪垫必须在3周龄时清除。一个3周龄时，乳腺上皮细胞被限制在乳头和脂肪垫的淋巴之间的区域。脂肪垫中的乳腺上皮可以通过在3周龄时去除乳头和淋巴之间的区域来清除。在清除脂肪垫后立即植入乳腺腔细胞，并且可以在植入后8周分析植入细胞的腺体形成。 NAMEC衍生的EVs /外来体对乳腺腔细胞转移乳腺形成能力的影响可以通过腔细胞和EV /外来体处理的腔细胞的腺体形成来评估（ 图9 ）。来自NAMEC的诱导的EVs /外来体具有乳腺基底上皮细胞 - 腺体形成能力的性质，并且从NAMEC摄取诱导的EV /外来体的腔细胞可以通过EVs /外来体获得NAMEC的性质。这项工作证明了分子负责EV /外来体介质的证据乳腺形成能力的转移存在于EVs /外来体4的脂筏中。
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Disclosures
作者没有什么可以披露的。
Acknowledgments
这项工作得到了国家卫生研究机构（05A1-CSPP16-014，HJL）和科技部（MOST 103-2320-B-400-015-MY3，HJL）的资助。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| MCDB 170 | USBiological | M2162 | |
| DMEM/F12 | Thermo | 1250062 | |
| Optima L-100K ultracentrifuge | Beckman | 393253 | |
| SW28 Ti Rotor | Beckman | 342204 | |
| SW41 Rotor | Beckman | 331306 | |
| NANOSIGHT LM10 | Malvern | NANOSIGHT LM10 | for nanoparticle tracking analysis (NTA) |
| Optiprep | Sigma-Aldrich | D1556 | 60% (w/v) solution of iodixanol in water (sterile). |
| CD81 antibody | GeneTex | GTX101766 | 1:1,000 in 5% w/v nonfat dry milk, 1x TBS, 0.1% Tween 20 at 4 °C, overnight |
| CD9 antibody | GeneTex | GTX100912 | 1:1,000 in 5% w/v nonfat dry milk, 1x TBS, 0.1% Tween 20 at 4 °C, overnight |
| CD63 antibody | Abcam | Ab59479 | 1:1,000 in 5% w/v nonfat dry milk, 1x TBS, 0.1% Tween 20 at 4 °C, overnight |
| TSG101 antibody | GeneTex | GTX118736 | 1:1,000 in 5% w/v nonfat dry milk, 1x TBS, 0.1% Tween 20 at 4 °C, overnight |
| GAPDH | GeneTex | GTX100118 | 1:6,000 in 5% w/v nonfat dry milk, 1x TBS, 0.1% Tween 20 at 4 °C, overnight |
| CFSE (carboxyfluorescein succinimidyl diacetate ester) | Thermo | V12883 | |
| FACSCalibur | BD Biosciences | fluorescence cell analyzer | |
| collagenase Type IV | Thermo | 17104019 | |
| trypsin | Thermo | 27250018 | |
| ITS | Sigma-Aldrich | I3146 | a mixture of recombinant human insulin, human transferrin, and sodium selenite |
| accutase | ebioscience | 00-4555-56 | a natural enzyme mixture with proteolytic and collagenolytic enzyme activity |
| dispase | STEMCELL | 7913 | 5 mg/mL = 5 U/mL |
| anti-CD49f antibody | Biolegend | 313611 | 1:50 |
| anti-EpCAM antibody | Biolegend | 118213 | 1:200 |
| FACSAria | BD Biosciences | cell sorter | |
| carmine alum | Sigma-Aldrich | C1022 | |
| human mammary epithelial cells (HMLE cells, NAMECs) | gifts from Dr. Robert Weinberg | ||
| permount | Thermo Fisher Scientific | SP15-500 | |
| sodium bicarbonate | Zymeset | BSB101 | |
| EGF | Peprotech | AF-100-015 | |
| Hydrocoritisone | Sigma-Aldrich | SI-H0888 | |
| Insulin | Sigma-Aldrich | SI-I9278 | |
| BPE (bovine pituitary extract) | Hammod Cell Tech | 1078-NZ | |
| GW627368X | Cayman | 10009162 | |
| 15 cm culture dish | Falcon | 353025 | |
| table-top centrifuge | Eppendrof | Centrifuge 3415R | |
| ultracentrifuge tube | Beckman | 344058 | |
| PBS (Phosphate-buffered saline) | Corning | 46-013-CM | |
| BCA Protein Assay | Thermo Fisher Scientific | 23228 | |
| Transmission Electron Microscopy | Hitachi | HT7700 | |
| gelatin | STEMCELL | 7903 | |
| 10 cm culture dish | Falcon | 353003 | |
| 6-well culture dish | Corning | 3516 | |
| female C57BL/6 mice | NLAC (National Laboratory Animal Center | ||
| FBS (Fetal Bovine Serum) | BioWest | S01520 | |
| gentamycin | Thermo Fisher Scientific | 15710072 | |
| Pen/Strep | Corning | 30-002-Cl | |
| DNase I | 5PRIMER | 2500120 | |
| isofluorane | Halocarbon | NPC12164-002-25 | |
| formaldehyde | MACRON | H121-08 | |
| EtOH (Ethanol) | J.T. Baker | 800605 | |
| glacial acetic acid | Panreac | 131008.1611 | |
| aluminum potassium sulfate | Sigma-Aldrich | 12625 | |
| Xylene | Leica | 3803665 | |
| 0.22 μm membranes | Merck Millipore | Millex-GP | |
| AUTOCLIP Wound Clips, 9 mm | BD Biosciences | 427631 | |
| AUTOCLIP Wound Clip Applier | BD Biosciences | 427630 | |
| CellMask™ Deep Red | Thermo Fisher Scientific | C10046 | plasma membrane stain |
References
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