Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Medicine

マウスの消化管吻合の作成

Published: January 17, 2019 doi: 10.3791/58742

Summary

吻合部リークまたは手術後の内訳は、術後合併症と死亡率の主要な原因です。結腸吻合を作成するための手術は、吻合部の治癒のメカニズムを研究するため信頼性が高く、再現性のある方法です。

Abstract

腸管吻合は、一般科目と創発的操作に実行されます。それでも、吻合部リークは大腸手術の非常に恐れられていた合併症、外科的吻合の 26% までの死亡率 39% まで患者このようなリークをされていると発生する可能性が。現在、吻合部治癒の分子機構の詳細データの少なさが残っています。予防戦略と吻合部リークのための治療法を工夫することは、適切な吻合部の治癒のよりよい理解によって大幅増強する。

マウスモデルはマウスの吻合が他の動物と比較して人間のケースに臨床的に最も似ている以前の研究が示したように最適です。我々 は結腸吻合術吻合部治癒のさらなるイラストは、マウスで簡単に再現できるマウスモデルを提供しています。

Introduction

腸の外科的吻合の高い恐ろしい合併症は吻合部の内訳や漏れです。腹腔内に管腔内内容の流出を引き起こす、腹部敗血症; に迅速につながる生命脅かすとすることができますは、吻合部のリーク衝撃率 0.3% から 5.5% 次の小腸吻合に変わるや結腸吻合1,226% と 0.5% の間に上昇します。次のリークの死亡率は、敗血症と腹腔内汚染3の死に急速な進行の迅速な発症のための 39% と高いことができます。予防戦略と治療現在、十分に理解されていない病態に基づいています。

現在、吻合部の治癒は、しばしば比較より広く研究皮膚創傷治癒には比較的貧しいファクシミリをあると証明します。癒しに一連の lag phase で始まる重複のフェーズで発生します。腸吻合の作成後 0-4 日間遅れ相は細胞の残骸の傷を消去する急性炎症反応によって定義されます。次に、3-4 日間で、線維芽増殖とコラーゲンの産生が fibrophasia 相を象徴します。最後に、10 日後コラーゲンリモデ リングの長期間は成熟フェーズと呼ばれます。コラーゲンが堆積4まで縫合吻合部の強度は非常に低く、外科的に置かれたステープルの外因性のサポートに依存することが重要です。役割を理解し、タイミング各吻合部創傷治癒および吻合部の故障を予知する解明のサロゲート マーカーと同様に、マクロファージなどによる炎症性細胞型の関与に果たしている腸の壁の層または成功の可能性があります。罹患率、死亡率、およびコロンの操作5医療費を大幅に削減します。

マウスのモデルは模倣人間吻合6で役に立つ以前の研究で示されています。マウスの結腸吻合モデル、特にコーメンによって記述方法の例は人気、実績のある、よく研究しながら7、これらのモデルを支持する盲または昇順 colocolonic 吻合技術8。人間の患者の以前の研究では、回盲部、colocolonic、解剖学的位置の変化でさらに実験モデルの必要性を強調、大腸吻合間リーク率に有意差を示しています。通常の吻合部創傷治癒の9に必要な細胞メカニズムを解明するのではなく、意図的に吻合部のリークを作成するモデルの開発を目指しているを追加、一般に使用されるメソッド。ラット モデルは過去に試行されているが、吻合部裂開の料金やリーク (すなわち、膿瘍形成) 人間およびマウス6,7有意の兆候があります。さらに、ラットよりマウスより遺伝子組み換え実験線があります。これはラットのモデルを吻合部モデルのより少なく有用になります。さらに、ブタとイヌのモデルは、マウスモデル6,7よりも少ない臨床調査があった。

吻合部の創傷治癒10 の過少申告の機構をさらに調査する必要があります促進するマウスモデルにおける大腸吻合の作成のため安全、技術的に簡単な簡単かつ迅速に再現可能な手順を提案します。.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

次のプロトコルは、オクラホマ大学健康科学センター施設動物ケアおよび使用委員会 (IACUC) によって承認されているし、研究の動物の使用に関するすべての制度的倫理的なガイドラインに準拠しています。さらに、動物実験に関する制度、州および連邦の規制に従ってすべての実験を行った。

注: このプロトコルの 72 に 12 週齢で女性と男性コンジェニックで飼育された C57BL6/J マウスを使いました。この手順で使用されるすべてのマウスは、ローカルのバイオームに適応する操作の前に、少なくとも 1 週間の私たちの非バリア施設で保たれました。操作の時間供給する動物、経口機械的腸管もプロシージャ前に直腸洗浄を使いました。

1) 吻合の作成

  1. オートクレーブ手術用器具、生理食塩水灌漑解決を暖めるし、70% のエタノールで手術表面を徹底的に掃除します。
  2. 麻酔を誘導して、気化器に接続されている誘導ボックスにマウスを配置します。マウスを鎮静するまで 1-2 L/分で 2-3% イソフルランを提供します。
  3. 低体温症を防ぐために、加熱パッドなど、地球温暖化のデバイスに動物を配置します。
  4. 1 つを皮下注入術前抗菌薬予防投与のエンロフロキサシンの 10 mg/kg の線量 0.1 mg/kg ブプレノルフィン (30 g マウス 3 μ g) の術後鎮痛のための時間投与量と 1 つの時間。
    注: 術前・術後の抗生物質がこの操作に必須ではないが制度のガイドラインや動物ケアおよび使用委員会私たちの施設での使用をお勧めします私たちの機関で。
  5. マウスの鼻周り麻酔の鼻の円錐形を配置します。操作の間慎重に動物の呼吸を監視し、必要に応じて麻酔の流量を調整します。1 分あたり 30 40 呼吸で呼吸を維持します。
  6. 腹部の全体の皮膚の表面から毛を削除するのに後脱毛剤にバリカンを使用します。徹底的に水または 70% エタノールで湿らしたガーゼで脱毛のエージェントを削除します。動物を徹底的に乾燥させます。
  7. 腹部を準備中、前に加熱パッドやマウスが手術中にシフトすることを防ぐために各脚の終わりに手術面にマウスの手足をテープします。クロルヘキシジンと腹部を消毒します。剃毛エリアの端に髪の毛と同様、全体の剃毛エリアが含まれます。マウス (図 1 a) に滅菌ドレープを置きます。
    1. ドレープ、前に準備中の腹部を公開するドレープに卵形または長方形の小窓をカットします。
      注: ウィンドウがマウスの腹部全体を公開する必要があります、手足、尻尾、頭、胸郭をカバーします。私たちの操作 (図 1 b) 4 × 3 cm2ウィンドウをカットします。
    2. プロシージャ (図 1) の間に直腸へのアクセスを許可するように、卵形または長方形窓に向かって下端からのドレープの正中線に沿って小さなスリットを作る。
  8. 皮膚切開を行います。下腹部の正中線に沿って起動し、剣を縦にハサミで皮膚を切開します。皮膚のみを切開し、腹壁筋肉 (図 2 a) を切断しないでください。
  9. 腹壁の正中線を鉗子でつかんで持ち上げて腹部の内容から。世話をしないように腹腔内構造物を傷つける、鋭いハサミで正中線腹部筋の長さを縦に切開します。皮膚切開 (図 2 b) の長さを拡張します。
  10. 腸が公開されると、盲腸や小腸、検索、降順と s 状結腸を公開する内側左サイド内臓を回転させます。潤滑ゼリーと鈍プローブ先端をコートし、降順/s 状結腸結腸 (図 3) の識別に役立つ直腸にプローブを慎重に進めます。
    注: 人間と違って、腹部の左上腹部には一般的にマウス盲腸が見つかった。この手順でプローブと腸の壁に穴を開けるように注意してください。腸の壁に穴があいて、プロシージャを終了し、マウスを安楽死させます。
    1. 歯や尖ったピンセットで盲腸を把握しないでください。代わりに非外科的鉗子を使用、綿の先端アプリケータや内臓を回転する穏やかな指操作。
    2. 使用は、露出した腸を保湿し、プロシージャ全体を確実に滅菌生理食塩水を温めた。
    3. コロンは、正中線の左側になります、腸間膜後腹膜に接続されています。識別後、colotomy を容易にするために部分的に鈍的プローブを撤回します。
  11. S 状結腸の横 colotomy を実行します。
    1. 優しく非外科的鉗子 (図 4 a) で骨盤の入口に優れた s 状結腸を把握します。
    2. コロンとコロンの幅に 80-90% の間で及ぶ方向に垂直な s 状結腸の間でカットをする鋭いマイクロはさみを使用して。これは大腸外科の分野のうちの一方の端の収縮を防ぎ、修理 (図 4 b) を助けます。
    3. 腸間膜血管が内臓回転または colotomy の過程で負傷されている場合そっとガーゼや綿の先端アプリケータまで 2 分間圧力を保持します。出血が続くこの時間後場合、は、8の字の出血の点 8-0 モノフィラメント縫合糸を配置します。
      注: 腸壊死やこの後の損傷の兆候を示している場合、プロシージャを終了して人道的な方法あなたの制度上の動物の使用委員会の承認を使用してマウスを安楽死させます。
  12. S 状結腸の colotomy を修復します。
    1. カストロヴィーホー針ドライバーを使用、人工肛門を修復する 5-6 簡単な中断 8-0 裁断ポリプロピレン ステッチを配置します。縫合 0.5 mm 刺され互いから離れて 1 mm を配置します。
      1. それぞれのステッチ粘膜よりわずかにより多くの漿膜を取って修理に腸の端を圧延を避けるために注意してください。5 mm 長い尾を残します。縫合糸 (図 4) に誤って周囲腸をキャッチしないように注意してください。
        注: で縫合を開始すると便利です、最後の colotomy の反 mesenteric ほとんどの部分を保存、colotomy の腸間膜の国境近きます。
      2. 修理の進行により、最終的な縫合線を配置する前に、修理にまたがる事前トランス アナル郭清の鈍い先端プローブ。これは狭すぎる修理を防止し、吻合部狭窄率を減らすを助けます。
  13. 温めた生理食塩水で満たされた 10 mL の注射器を使用して、何度も腹部に水を引きます。マウス下の表面がずぶぬれになると、マウスを乾燥または乾燥表面に低体温症を避けるためにマウスを移動します。
    1. 過剰なかんがいを吸収する切開部に滅菌ガーゼを使用します。
    2. 最終的な洗浄で滅菌生理食塩水で腹部を埋めます。慎重に直腸に潤滑 18 G 血管カテーテルを進めるし、膨らませる 0.5 - 1 cm3の空気の。これは別ポリプロピレン縫合と吻合部にまたがる滅菌プローブを使用して修復することができますより吻合部に任意のリークを示します。
    3. コロンの除去の前に血管カテーテルを使用して空気を抜きます。
  14. 活動性出血がないことを確認します。ある場合、出血が続く場合は、上記のように 1 ~ 2 分位止血縫合の出血の点に直接穏やかな圧力を適用します。
  15. Medialized の内臓を正常な解剖学的位置 (図 5 a) にゆっくり戻ります。
  16. 腹部切開 (図 5 b) を閉じます。
    1. 4-0 吸収性の編みこみ縫合糸を使用して、腹壁切開の上部に開始し、切開部の下面に仕上げの筋層に沿って実行縫合を配置します。ネクタイをインストールし、5 mm の尾を残して縫合糸をカットします。
      注: は、腹壁閉鎖で腸を誤って含めないようにします。
    2. (図 5) 皮膚を閉じます 4-0 モノフィラメント縫合糸で繰り返します。
  17. 全体の動物が暖かく、乾燥、術後低体温症を防ぐためにことを確認します。
  18. それが麻酔から回復するように、動物を注意深く監視します。疼痛コントロールのため、手術後 2 〜 3 日のブプレノルフィン 0.1 mg/kg ごと 72 時間を管理します。 回復期間中にマウス検討すべき慎重に毎日膿瘍や敗血症腹膜の兆候。 痛みや苦痛の術後観察を含める必要があります: ハンチング姿勢、食べるか飲む、適切ではないグルーミング, 切開のサイトで正常に治癒の欠如、傷周囲の過剰な炎症の欠如の種類を含む運動の制限や正常ではないネスト。 これらの動作のいずれかを示すすべての動物は、両側開胸下に続いて 10 分の最低 CO2窒息によりすぐに安楽死する必要があります。
  19. 腹腔内感染症や、操作に関連付けられた糞便汚染による敗血症を防ぐために術後 7 日間のマウスの飲料水とエンロフロキサシンの 0.1 mg/mL を混ぜます。

2) 収穫の吻合部組織

  1. 吻合部組織を切除、直前には、制度上の動物の使用委員会によって承認された動物愛護法を用いたマウスを安楽死させます。
    両側開胸下を実行する前に、5 分の 2 L/分 100% 二酸化炭素ガス注入型炭酸ガス室にそれらを置くことによって私たち動物の安楽死制度政策に基づいて注意してください: 我々。
  2. クロルヘキシジン 70% エタノールが続くと腹部を滅菌します。
  3. 再元の正中切開を鋭いハサミで切開します。前の切開の下極でスタートし、(図 6 a) 剣状に上方にこのカットを拡張します。
  4. はさみを使用して、カットの筋層、腹膜腔を入力した後、切開部の上下にカットを拡張します。腸切開吻合する付着した可能性があるので、腹部を入力するときに、腸を傷つけるや吻合部を中断することを避けるために注意してください。
  5. 慎重に修復された s 状結腸 (図 6 b) を公開する左の内側の内臓回転を実行します。おそらく修理を取り巻く腸に腸の癒着があります。ゆっくりとにべもなく修理のサイトから離れてこれらの癒着を解剖します。吻合部を妨害しないように細心の注意を取る。
    1. 修理のために使用されるポリプロピレン縫合糸のツインテールを配置することによってサイトの修復を識別します。はさみを使用して、開始 1 cm 修理、近位結腸を通じてトランセクト横。この手順 1 cm 遠位吻合部を繰り返します。
  6. S 字状のセグメントを削除するには、大幅高級ハサミ (図 7) コロンの後縁に沿って取り付けられている腸間膜からコロンを解剖します。
  7. 結腸標本の腸間膜の境界を識別し、縦ファッションで腸間膜の境界線の長さに沿ってカットする高級はさみを使用します。これは、円柱供試体以前に削除 (図 8) からコロンの正方形または長方形のセクションを作成します。
  8. コロンのセグメントの削除する前にコロンの抗腸間膜の国境を画定するのにマーキング ペンを使用します。除去した後、マーキングの反対側結腸の長さに沿って縦のカットにします。修正、埋め込み、組織および免疫染色に必要なサンプル組織をカットします。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

7 日術後、吻合する必要がありますも癒されます。吻合部は後より 7 日間は、吻合部の治癒の段階を示して前に、時点で収穫することができます。図 9、組織学的分析の結果、線維 (コラーゲン ヒアリンの汚損によって視覚化) 平滑筋 α アクチン陽性芽によって仲介される応答。ただし、マウス、特に再上皮化および吻合部に芽の濃度の程度間組織学的解析の結果が異なることがわかった.この手順は、7 日間でよく治癒吻合を持つマウスを存続の 90% 以上 10% 未満に死亡率を報告する.

Figure 1
図 1:ドレープと手術準備します。A (A) 滅菌ドレープが腹部に準備されている後のマウスの上に置かれます。(B) A の小さい楕円や四角形は、腹部を公開するドレープに切断されます。(C) A の小さなスリットはプロシージャの間に直腸へのアクセスを許可する卵形または長方形の窓の近くのドレープの正中線に沿ってすべきであります。この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください

Figure 2
図 2: 切開します。(A) A 皮膚切開、腹膜を傷つけないように世話をしながら作られました。(B)、腹膜は腹部の内容から高架と切開腹腔内容を公開します。

Figure 3
図 3: プローブ配置します。鈍プローブは、直腸に優しく置かれます。盲腸が見つかったら、内側に以前置かれて直腸プローブを可視化、腹部の内容が回転します。

Figure 4
図 4: Colotomy および修復します。(A)、s 状結腸は非外科的鉗子で把持します。(B) 使用鋭いマイクロはさみ、コロンの方向に垂直な s 状結腸全体のカットにしてコロンの幅を 80-90% の間で拡張します。(C) カストロ ・ ビエホ針ドライバーを使用して、場所 5-6 簡単な中断 8-0 ポリプロピレン ステッチ、colotomy を修復します。縫合糸は、0.5 mm 刺され互いから離れて約 1 mm をする必要があります。この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください

Figure 5
図 5: 創傷閉鎖。(A) これらの内臓が通常の解剖学的位置に返されます。(B) 腹部切開は 4-0 の編みこみ縫合糸で閉じています。(C) 皮膚は 4-0 のモノフィラメント縫合糸で閉じています。この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください

Figure 6
図 6: 手術後切開します。(A) は、腹部の内容を明らかにオリジナルの正中切開を再度開きます。必ず、s 状結腸をより良い露出の上方や横方向に切開を延長してください。(B) s 状結腸吻合を明らかに内側に内臓を回転させます。

Figure 7
図 7: 吻合部を収穫します。それぞれの側に 1 cm で腸の近位および遠位吻合部のセグメントを削除します。

Figure 8
図 8: ティッシュ セクションのためのオリエンテーションします。縦断的方法で腸間膜の境界線の長さに沿って裁断します。これは長方形の試験片を残します。これは s 状結腸吻合の標本を示しています。

Figure 9
図 9: 完全に治癒結腸吻合部組織および免疫組織化学的解析します。組織学的分析を示して線維 (コラーゲン ヒアリンの汚損によって視覚化) 平滑筋 α アクチン陽性芽によって仲介される応答。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

確実に成功し、この手順に関連する罹患率/死亡率を最小限に抑えるいくつか主要な手順があります。まず、腸組織の慎重な取扱いの確保し、コロンを公開する内臓を回転させるときに牽引損傷に気をつけましょう。腸や腸間膜に過度の緊張は、吻合部から腸や血管原因腸壊死の損傷をことができます。また、シャープな鉗子または歯の鉗子をいない使用腸を処理します。

内臓回転中または鈍的プローブを用いた穿孔による計画的吻合部から別の腸への損傷は動物の安楽死になります。我々 の経験で腸管壊死または損傷腹部敗血症や死と治癒後の吻合部試料の回収が難しく法外大幅に増加炎症反応につながります。

できるだけ多く、できるだけ下行結腸の大腸の切除にまたがる必要がありますが、ないトランセクト腸漿膜、腸間膜との接触には注意が必要があります。我々 の経験は、漿膜を含む断裂で-特に腸間膜が結腸吻合が難しく、引き込められたセグメントを回復しようとすると、それ以上の損傷につながる可能性の近位部の後退につながる。

5-6 縫合と吻合を修復できます。詳細は、大規模なマウスに必要ことがあります。縫合糸は、1 mm 間隔にする必要があります。場所縫合上腸間のボーダーのどちら側でもし抗腸間膜の国境で中を満たすために断裂の両側を交互に簡単かつ迅速に吻合が容易になります。最終的な縫合前に鈍プローブと吻合部にまたがる特許吻合を保証し、「戻る-壁」コロンを縛ると効果的に吻合を防止します。

腹部閉鎖する前に止血を確認します。術後の抗生物質のカバレッジにもかかわらず腹腔内汚染後回復期に腹腔内出血は腹腔内感染や接着剤病気の受け入れがたいほど高い率につながることができます。

この手順を実行、まず、いくつかのマウスが術後に失われます。私たちの初期の死亡率は、30% を近似します。我々 は主に腸間膜損傷後閉塞、腸管壊死、吻合部の修復、または虚血による可能性が高い吻合部から腸の壁の壊死の内訳につながる吻合部の狭窄が原因であるとこれが見つけた。これらのすべては、腹腔内感染症、敗血症や死につながります。一度この手順で経験、執刀未満 10% の死亡率率を体験してください。化膿し、吻合部に密な癒着によって示されている潜在性吻合漏れの証拠は、さらに 10% 存在しました。この手順は、倍率の助けを借りず行うことが、再現可能な実験的モデルとしての最大の欠点は回盲部または上行結腸吻合に比べて相対的な技術的な課題。手術用ルーペは腸の壁に外傷を最小限に抑えながら吻合を行う極めて役に立たないとわかった。手術顕微鏡を使うことも可能性がありますが、見つかりませんでしたが必要。

大腸吻合のための動物モデルを記述する多くの技術が使用されています。特にラットおよびウサギのモデルを利用します。我々 は、マウス モデルの結腸吻合を降順の再現手順の少なさを発見しました。我々 はこれは吻合部の手順の技術的な難易度が高くマウスのサイズを小さくためと思われます。ただし、マウスより大きい選択とより広範な可用性の形質転換線と大腸吻合モデルで使用される利用できなかったこの時点で抗体があります。マウス モデルと結腸吻合のモデルを統一する現在のモデルを開発しました。

この手順で我々 の経験には、さまざまなサイズと年齢の男性と女性の両方のマウスが含まれています。この時点で我々 は吻合部創傷治癒の年齢、サイズまたはマウスの男女間での結果の違いが確かに存在し、このモデルを比較できるようになるを比較していません。

このモデルことができます簡単に、一貫して再現、吻合部の創傷治癒過程を研究するために使用と考えています。以前およびそれ以降で 7 日間、最初の標本収穫勧めタイム ポイントは吻合部治癒; のタイムラインを示すに役に立つかもしれません炎症性細胞と吻合にメディエーターの初期移行と次の週で線維芽細胞によるコラーゲンの沈着をたとえば、示します。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

著者は、彼らは競合する金銭的な利益があることを宣言します。

Acknowledgments

どれも

Materials

Name Company Catalog Number Comments
C57BL6/J mice Jackson Labs #00664 
Fisherbrand Absorbent Underpads, 20" x 24" Fisher Scientific 14-206-62
Polylined Sterile Field, 18" x 24" Busse Hospital Disposables 696 Cut a rectangular hole 
Isothesia isoflurane Henry Schein  50033
Fisherbrand Sterile cotton gauze pad, 4" x 4" Fisher Scientific 22-415-469
Puralube petrolatum ophthalmic ointment, 1/8 oz. tube Dechra Veterinary Products NDC 17033-211-38
Nair depilatory cream Church & Dwight Co. 22339-05
Buprenex buprenorphine  0.3 mg/ml Reckitt Benckiser Pharma Inc NDC 12496-0757-5
1 cc insulin syringe, 27 G Becton Dickinson 329412
Chloraprep Shampoo Medline APL82287
Webcol alcohol prep swabs Covidien 6818
BioGel PI surgical gloves Mölnlycke Health Care ALA42675Z
Micro Forceps with teeth Roboz RS-5150
Fine scissors- sharp Fine Science Tools 14060-09
Straight serrated forceps Fine Science Tools 11050-10
Castro-Viejo needle driver Fine Science Tools 12565-14
0.9% Sodium Chloride Irrigation Baxter BHL2F7121 Warm to 37 °C prior to use
10 ml syringe Becton Dickinson 309604
4-0 Vicryl absorbable braided suture, 18", PS-2 needle Henry Schein  6546037
Blue monofilament suture 24” BV-1 needle Henry Schein  8305H Usually comes double-armed. Cut the suture at the midway point to generate two usable sutures.
Cole-Parmer Microscissors, Standard Grade, Straight, 4". Cole- Parmer EW-10818-06
Medline Sterile lubricating jelly Medline MDS032273H

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Murrell, Z. A., Stamos, M. J. Reoperation for anastomotic failure. Clinics in colon and rectal surgery. 19, 213-216 (2006).
  2. Shaban, F., Carney, K., McGarry, K., Holtham, S. Perforated Diverticulitis: To Anastomose or Not to Anastomose? A Systematic Review and Meta-Analysis. International journal of surgery (London, England). , (2018).
  3. Chambers, W. M., Mortensen, N. J. Postoperative leakage and abscess formation after colorectal surgery. Best practice, research. Clinical gastroenterology. 18, 865-880 (2004).
  4. Ashkanani, F., Krukowski, Z. H. Surgery - Oxford International Edition. Intestinal Anastomosis. 20, 104-107 (2002).
  5. Raptis, D., Pramateftakis, M. G., Kanellos, I. Our 20-year experience with experimental colonic anastomotic healing. Journal of medicine and life. 11, 5-14 (2018).
  6. Pommergaard, H. C., Rosenberg, J., Schumacher-Petersen, C., Achiam, M. P. Choosing the best animal species to mimic clinical colon anastomotic leakage in humans: a qualitative systematic review. European surgical research. Europaische chirurgische Forschung. Recherches chirurgicales europeennes. 47, 173-181 (2011).
  7. Komen, N., et al. Colorectal anastomotic leakage: a new experimental model. The Journal of surgical research. 155, 7-12 (2009).
  8. Perry, T., Borowiec, A., Dicken, B., Fedorak, R., Madsen, K. Murine ileocolic bowel resection with primary anastomosis. Journal of visualized experiments : JoVE. , e52106 (2014).
  9. Pommergaard, H. C., Achiam, M. P., Rosenberg, J. Colon anastomotic leakage: improving the mouse model. Surgery today. 44, 933-939 (2014).
  10. Bosmans, J. W. A. M., Jongen, A. C. H. M., Bouvy, N. D., Derikx, J. P. M. Colorectal anastomotic healing: why the biological processes that lead to anastomotic leakage should be revealed prior to conducting intervention studies. BMC Gastroenterology. 15, 180 (2015).

Tags

医学問題 143、手術、吻合、マウス、コロン、医学、解剖学、リーク、内訳、狭窄
マウスの消化管吻合の作成
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

McCarthy, C. K., McGaha, P. K.,More

McCarthy, C. K., McGaha, P. K., Rozich, N. S., Yokell, N. A., Lees, J. S., Berry, W. L. Creation of Colonic Anastomosis in Mice. J. Vis. Exp. (143), e58742, doi:10.3791/58742 (2019).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter