Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Medicine

Armartären kateterisering hos svin

Published: March 30, 2019 doi: 10.3791/59365

Summary

Videon beskriver i detalj kateterisering av den distala armartären hos svin. Detta förfarande noggrant mäter arteriellt blodtryck och är en enkel och snabb metod att samla in prover för arteriellt blod gas mätningar.

Abstract

Videon beskriver i detalj kateterisering av den distala armartären hos svin. Denna teknik gör det möjligt för forskare att mäta arteriellt blodtryck kontinuerligt och samla arteriellt blodprover för att bedöma arteriellt blod gas mätningar. Arteriell blod tryck och arteriella blodgaser är viktiga fysiologiska parametrar att övervaka under experimentella rutiner. Hos svin, har fyra gemensamma metoder för arteriell kateterisering beskrivits, inklusive kateterisering av halspulsådern, femorala, öron och mediala ytlig artärerna. Var och en av dessa tekniker har fördelar, såsom hjälpmedel för auricular artären och nackdelar som inkluderar djup vävnad dissektion för halspulsådern kateterisering. Den beskrivna alternativa metoden för arteriell kateterisering hos svin, av kateterisering av den distala delen av armartären, är en snabb procedur som kräver relativt liten vävnad dissektion och innehåller information som är i linje med data samlas in från andra arteriella kateterisering webbplatser. Proceduren använder en medial strategi längs en plan av den lägre överarm, placerad mellan olecranon och flexor aspekten av armbågsled, och detta tillvägagångssätt tillåter forskare den stora fördelen med obehindrad frihet för förfaranden som involverar den caudoventral, caudodorsal rygg eller bakbenen av gris. På grund av placeringen av övre forelimb kateteriserade fartygets och potentiella utmaningar av effektiva homeostas efter katetern avlägsnats från artär, kan denna teknik vara begränsad till icke-indrivningsförfaranden.

Introduction

Kirurgiska ingrepp används i experimentell forskning för att utveckla djurmodeller som förbättrar vetenskaplig utveckling. Den vetenskapliga litteraturen är fylld med exempel på romanen kirurgiska djur modeller1,2,3. Kirurgiska ingrepp är en komplex process som involverar inte bara manipulering av anatomiska strukturer men också komplicerade fysiologiska interaktioner med olika droger krävs för anestesi och analgesi. Detta samspel kan framkalla stora förändringar i fysiologiska processer inom djuret och som sådan kräver vaksam övervakning av djurens4. Kliniskt framgångsrika kirurgiska resultat har förknippats med mätningar av arteriella blodgaser och arteriella blod Tryck5. Dessa kliniska parametrar kräver förmågan att mäta arteriellt blodtryck och samla arteriellt blod effektivt, vilket i sin tur kräver den framgångsrika kateterisering av en artär6,7.

Arteriell kateterisering att samla arteriellt blod och mäta trycket har använts i olika djurarter5,6,7,8,9,10, 11 , 12 , 13 , 14 , 15 , 16 , 17 , 18 , 19 , 20 , 21 och djur i olika åldrar utveckling19,20,21 och har riktats mot båda återhämtning (klinisk och diagnostiska) förfaranden4,5, 6,7,8 och icke-recovery (experimentell) förfaranden14,15,16,17,18. Dessutom, den arteriella lättillgänglighet och placeringen av artär i samband med det kirurgiska ingreppet är också viktiga överväganden när du väljer en artär för arteriellt blod mätningar. Median kaudala artär i hundar och ansikts artär i hästar, samt pedal artär i både hundar och hästar, är exempelvis används för diagnostisk mätning och övervakning under återhämtning förfaranden6,7, 8. däremot den halspulsådern och femoral artärer är ofta kateteriserade i svin för antingen icke-återhämtning eller långsiktiga katetern implantation experiment14,15,18.

Hos svin, har arteriell kateterisering att mäta antingen arteriellt blodtryck eller samla arteriellt blod rutinmässigt anställd antingen halspulsådern, femorala, mediala ytlig eller auricular artärer22,23. För specialiserade icke-rutinmässiga förfaranden, har andra mer ovanliga artärer använts, inklusive den subclavia och iliaca artärer, att mäta den armartären anatomiska tortuosity17 och bild på aorta16, respektive. Oavsett vilken artär är valt för kateterisering, varje artär har inneboende fördelar och nackdelar för dess användning. Exempelvis auricular artären är anatomiskt lätt att komma åt, men dess användning begränsas till dess närhet till den marginella öra vener11,12. I jämförelse, halspulsådern är relativt stor och robust24, men det ligger djupt i den jugular fåran och kräver materiella vävnad dissektion25. Som sådan, är att identifiera en annan artär som kunde vara catheterized för att mäta blodtryck och samla arteriellt blod befogad. Denna video och manuskript beskriva i detalj kateterisering av den distala armartären hos svin, en teknik som skulle kunna tillämpas på icke-indrivningsförfaranden. Särskilt användes gris armartären kateterisering för att mäta arteriella blod tryck och arteriellt blod gas parametrar under en ländrygg operation med bakbenen mätningar (data från denna del av operationen inte presenteras).

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

Alla förfaranden på försöksdjur som beskrivs i både video och manuskript godkändes av institutionella djur vård och användning kommittén av University of Alberta

1. kirurgisk anestesi och kirurgisk beredning av svinen.

  1. Premedicate 50 kg lantras-Yorkshire kommersiella svin intramuskulärt med bedövningsmedel drogen cocktail som innehåller Ketamin hydroklorid (22 mg/kg), Xylazinhydroklorid (2,2 mg/kg) och Glykopyrrolat hydroklorid (10 µg/kg).
  2. Ställa in all utrustning arbetar med övervakning av kliniska parametrar i slutet av tabellen nära den grishuvud. Se till att utrustningen inte kommer att begränsa åtkomsten till grisen. Producera korrekta arteriellt blodtryck mätning genom att placera tryckgivaren i det horisontella planet nivå med hjärtat.
  3. Söva grisar med inhalerade isofluran gas (4-5% isofluran på 500-1000 mL/min O2) använder en rätt storlek ansiktsmask. Visualisera stämbanden med en veterinär laryngoskopet (17-25 cm långa raka blad) och tillämpa aktuella 10% lidokain spay till stämbanden att begränsa risken för laryngospasm och luftvägarna obstruktion.
  4. Intubation grisarna genom att infoga en bojad endotrakealtub (9,0 mm innerdiameter (ID)) genom stämbanden och underhålla anestesi med isofluran gas (0,5% - 3,0% isofluran på 1000-2000 mL/min O2). Ventilera grisen en mekanisk ventilator (18-22 andetag/min) och säkerställa alla utgångna bedövningsmedel gasen rensas och ventilerade utanför den kirurgiska sviten. Bedöma nivån på anestesi av käken tonar, och både pedal och palpebrala reflex svar.
    Obs: Administrera intravenös laktat lösning (LRS, 10-50 mL/kg/h; se steg 1,6) att öka hemodynamiska funktion och minska isofluran gas anestesi induceras depression av kardiovaskulära produktionen i svin26.
  5. Säkra en pulsoximeter till slemhinneepitel av tungan med medicinsk tejp för att övervaka hjärtfrekvens och mättnaden i perifert blod syresättning (SpO2). Infoga en temperatur sond ca 2-4 cm i näshålan att övervaka kroppstemperatur. Placera en uppvärmd tabell att upprätthålla normal kroppstemperatur (38-40 ° C) svin under det kirurgiska ingreppet.
  6. Säkerställa kirurgisk sterilitet med ordentlig vävnad förberedelse.
    1. Ren utsidan av örat för att förbereda för venös kateterisering med kirurgisk scrub 10% povidon-jodlösning och låt lösningen att luften torr.
    2. Med en 20 G, 1 tum intravenös kateter, catheterize en marginell öra ven för att leverera antingen intravenösa vätskor (LRS; 10-50 mL/kg/h) eller genom tillsats av andra bedövningsmedel.
    3. Förbättra gris anestesi och analgesi vid behov för invasiva ingrepp med kontinuerlig intravenös remifentanil hydroklorid infusion (0,05-0,14 µg/kg/min).
  7. Placera grisen i en lateral recumbent position och försiktigt förlänga framsidan benet ca 10-12 cm från axeln. Klipp håret på ytan av huden av den mediala aspekten av överarm (övre forelimb). Landmärke distala armartären pulsen genom palpation.
    Obs: Den kulturminnesmärkta platsen av artären ligger längs en plan med brachium cirka 9 cm från olecranon och 5 cm från flexor aspekten av armbågsleden. Armartären reser proximalt mot den kaudala tredje av skulderbladet traversera humerus.
  8. Likaså om du vill stega 1.6, säkerställa kirurgisk sterilitet med ordentlig vävnad förberedelse. Ren hudytan med 10% povidonjod kirurgisk skrubba lösning och låt lösningen att luften torr. Drapera armartären kateterisering platsen med fyra små disponibla operationsdukar.

2. vävnad dissekering och kateterisering av armartären

  1. Gör en 6 cm huden snitt med en skalpell blad att exponera underliggande vävnad. Rakt på sak dissekera med Metzenbaum sax längs mediala ytor av den biceps brachii, fördjupning dissektion, tills den pulserande artären har identifierats.
  2. Använda bomullspinnar försiktigt reta bort adventitia från armartären, medianusnerven och brachialis ven; strukturer som är i närheten och inom samma fascian plan. Mild dissektion krävs, huvudsakligen säkerställa minimal skada på nervus medianus under förfarandet. Armartären ligger cirka 2,0-2,5 cm under huden och är medial till coracobrachialis och lateralt till tensor fasciae antibrachii overlies ett litet segment av mediala huvudet triceps muskeln27,28.
    Obs: Plats ett upprullningsdon att hålla huden snitt öppna, lättare tillgång till armartären. Placera en andra upprullningsdon (tillval) att ytterligare bistå i fartyget exponering.
  3. Fukta alla vävnader med varm saltlösning (37 ° C) för hela dissektion behålla bättre strukturell integritet och förbättrad vävnad hantering under förfarandet.
  4. Skapa en tunnel under artären med trubbiga pincett och sedan passera tre 2-0 polyglactin suturer under artären. Avsiktligt, lämna ändarna av denna sutur relativt lång (3-4 cm) att säkra katetern till artären. Lägga till en ”lös suturen tie” möjliggör snabb katetern fästa, de två första suturer som avskiljs 1,0 cm från varandra och är ca 1,5-2,0 cm proximalt tredje distala suturen. Ligera mest distala suturen först för att absorbera artären.
  5. Infoga en 22 G, 1 tum perifer venkateter i artär och sedan fram katetern (helt på katetern navet) av mandrängen in i kärlet. Delvis frånträda mandrängen katetern att visualisera arteriellt blod, att säkerställa korrekt fartyg placering av katetern. Sedan, fast säkra katetern i fartyget genom att knyta mellersta suturen. Avlägsna mandrängen och snabbt locket katetern för att minimera blödning.
  6. Spola av snitt och katetern med varm saltlösning (37 ° C). Knyt den mest proximala suturen och framför allt säkerställa att distala suturen är ordentligt säkrad runt katetern navet eftersom detta förbättrar katetern stabiliteten och minskar oavsiktlig glidning av katetern från artär (dvs. under gris ompositionering).
    Obs: Om den inledande placeringen av katetern i artär misslyckas, eller fartyget skadas, sätt tillbaka katetern in i artären på en ställning cirka 0,25 cm proximalt ursprungliga katetern insticksstället.
  7. Snabbt bifoga LRS fylld intravenös förlängning raden med anslutna artärtryck givaren till kateter och sedan lavage operationsområdet med varm saltlösning (37 ° C), att hålla vävnader fuktig, och rengör blod som spillts i den omgivande vävnaden . Spola katetern med koksaltlösning att säkerställa katetern patency och förhindra att blodproppar bildas längs katetern väggen.
    Obs: Kontrollera för givaren arteriellt blodtryck linje misslyckanden (dvs läckor), upprätta givaren baslinjen genom nollställning artärtryck monitor mätningar och säkerställa korrekt arteriellt blodtryck våg formationer.
  8. Säkerställa fortsatt katetern patency genom att upprätthålla spola porten av raden förlängning trycksatt ovan 250 mmHg, med ett tryck infuser väska att leverera 3-5 mL/min LRS.
    1. Valfritt: Placera antingen två 2-0 polypropylen eller två 2-0 polyglactin suturer runt katetern navet eller intravenös förlängning linje att ytterligare förbättra katetern stabilitet i artär.

3. vävnad stängning och kroppen positionering

  1. Stäng den muskel lager med en enkel kontinuerlig sutur mönster med en 2-0 polyglactin sutur på en skär- eller avsmalnande nål och stäng huden i en enkel avbrutna suturen mönster med en 2-0 polypropylen sutur på en skärande nål.
    Obs: Omväxlande, 2-0 polyglactin eller 2-0 polypropylen suturer kan användas att stänga muskel och hud.
  2. Placera grisen i ventrala koordinationsrubbning genom roterande buken av en lateral recumbent gris mot kirurgisk bordet. En vänster dubbelhäftande laterala recumbent gris roteras medurs, medan en rätt ensidig laterala recumbent gris vrids counter medurs.
  3. Placera kateteriserade forelimb 40° vinkel med mittlinjen av ryggraden av gris. Denna forelimb placering genererar bästa arteriella blodflödet och de mest exakta arteriell blodtrycksmätning.

4. övervakning av kliniska parametrar

  1. Mäta hemodynamiska och respiratoriska parametrar samt temperatur under hela bedövningsmedel och kirurgiska förfarandet med lämplig övervakningsutrustning.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Armartären kateterisering möjliggör kontinuerlig övervakning av arteriellt blodtryck och intermittent provtagning av arteriellt blod under utökade kirurgiska ingrepp hos svin. Uppmätta parametrar samlades in från sju 50 kg lantras-Yorkshire kommersiella svin som beskrivs. Den totala tiden som krävs för att catheterize armartären var 35,2 ± 4,4 min från den inledande artär landmarking till slutliga kirurgiska snitt stängning (figur 1). Arteriella trycket mättes över 120 min och systoliskt, diastoliskt och genomsnittliga arteriella trycket var 102,9 ± 1,76, 61,2 ± 0,92 och 74,8 ± 0,89 mmHg, respektive (figur 2). Data från figur 2 visar en övergående sänkning av systoliskt blodtryck på 75 min och 120 min under förfarandet med efterföljande återhämtning. Detta är ett svårt observation att förklara händelsen hade en kort varaktighet och föreföll inte har några skadliga effekter till grisarna. Det är möjligt kulmen på långvarig operation, kombination av anestesi (isofluran gas) och analgetika (remifentanil hydroklorid) påverkas det systoliska blodtrycket, men ytterligare undersökningar behövs för att avgöra den Mekanismerna resulterande i denna observation. Ännu viktigare, liknade dessa uppmätta trycket arteriella trycket hos grisar bedövas med antingen en kombination av injicerbara syntetiska narkotiska och isofluran gas eller isofluran gas ensam29,30,31 . De uppmätta arteriella blod gas komponenter över 120 min visas i tabell 1 och inkluderar kemiska parametrar för att utvärdera syra bas balans, hemoglobin innehåll och elektrolyten koncentrationer. De värden som presenteras var inom dokumenterade arteriellt blodtryck och klinisk kemi referensområden för svin18,32,33,34. men en märklig slutsats var ökad anion klyftan och minskade totala hemoglobin på 120 min. Dessa förändringar i värden var sannolikt associerade med fysiologiska förändringar som kan inträffa under materiella kirurgiskt. Viktigast av allt, och i samband med arteriell kateterisering, informationen understreck som korrekta åtgärder av arteriell påtryckningar och arteriellt blodkemi är lätt erhållas från armartären kateterisering.

Figure 1
Figur 1 : Tid krav: kateterisering av armartären svin. Resultaten uttrycks som menar ± SEM (n = 7). Fast bar = medelvärde och skuggade området = SEM.

Figure 2
Figur 2 : Brachialis arteriella trycket hos svin. Systoliskt = systoliskt artärtryck; Diastoliskt = diastoliskt artärtryck; KARTA = genomsnittlig artärtryck. Resultaten uttrycks som menar ± SEM (n = 7).

Tid
(min)
pH HCO3
(mmol/L)
AnGap
(mmol/L)
Bas överskott
(mmol/L)
PCO2
(mmHg)
Totala Hb
(g/dL)
Na+
(mmol/L)
K+
(mmol/L)
Cl
(mmol/L)
0 7.50 ± 0,03 24,8 ± 1,9 11.5 ± 1,1 3,0 ± 1,7 34,3 ± 3.2 13,1 ± 1,1 141.0 ± 1,1 4,5 ± 0,5 109,2 ± 1,5
120 7.47± 0,03 25,0 ± 2,7 14,0 ±1.2 2,0 ± 1,3 34,0 ± 3.9 10.3 ± 0,8 139,4 ± 0,6 5,0 ± 0,4 107,5 ± 0,6

Tabell 1: Brachialis arteriellt blod mätningar i svin. Resultaten uttrycks som menar ± SEM (n = 7).

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Arteriell kateterisering att mäta arteriella blod tryck och samla blodprov för arteriellt blod gas mätningar har fastställts i ett stort antal djurarter5,6,7,8 , 9 , 10 , 11 , 12 , 13 , 14 , 15 , 16 , 17 , 18 , 19 , 20 , 21. bestämning av vilken artär att välja för kateterisering är ofta regisserad av antingen diagnostiska programmet, experimentellt protokoll eller hjälpmedel artär. Nämligen dessa faktorer ändra valet för artär kateterisering och utnyttjas inte jämnt över djurarter. Som ett exempel, median kaudalt (svans) och pedal artärer har varit kateteriserade hos hundar under vanliga kirurgiska ingrepp i en klinisk miljö6,8. Likaså används i ansiktet och pedal artärer i hästar för att mäta blodtryck på grund av den relativa lättillgänglighet i stora djurarter, såsom omdiskuterat4,7. Till skillnad från hundar är median kaudala artär kateterisering dock inte en gemensam webbplats som används i hästar. Överväganden för tillämpningen av arteriell kateterisering används också att bestämma artären av val till catheterize hos svin, även om mer esoteriska artärer har varit kateteriserade för högspecialiserad förfaranden16, 17. I allmänhet fyra gemensamma strategier har använts för att mäta arteriell påtryckningar och samla arteriella blodgaser i svin. Den femorala, halspulsådern och mediala ytlig artärer används oftast i stora gris tekniker, medan auricular artären har använts på smågrisar och miniatyr svin22,23. Denna video beskriver en annan metod att mäta arteriella blod tryck och samla arteriellt blod gasprover hos svin via catheterizing den distala delen av armartären.

Även om kateterisering av femorala, halspulsådern, mediala ytlig och auricular artärer ger exakt mätning av arteriell påtryckningar och arteriella blodgaser i svin, finns det några potentiella nackdelar att varje teknik. Halspulsådern kateterisering kräver djup vävnad dissektion, med ofta inlemmat synligheten av djupa strukturer och artär, riskera att skada den inre halsvenen, vagosympathetic nerven stammen och återkommande nerv25,35 . Femoralartären är den största artären i fyra gemensamma artärer kateteriserade och bör möjliggöra lätt kateterisering36. Dessutom, på grund av dess relativa ytliga läge, mindre vävnad dissektion krävs för åtkomst till femoralartären jämfört med halspulsådern. Dock att besöka artären på den kraniala aspekten av den inre bakbenen eller nära för regionen inguinal i arteriell kateterisering kan begränsa dess användning. Lårbensartären kateterisering skulle faktiskt vara ett opraktiskt förfarande i experiment eller operationer som innefattar de caudoventral, caudodorsal tillbaka eller bakbenen. Mediala ytlig är en måttlig storlek artär och möjliggör relativt lätt kateterisering. Liknar femoralartären, anatomiska placeringen av den mediala ytlig artären, som den korsar den mediala distala aspekten av bakbenen, skulle begränsa dess användning för förfaranden som involverar underkroppen svin13. Auricular kateterisering är en snabb metod att mäta arteriella trycket beror på det ytliga läget i örat11. En potentiell begränsning med denna teknik är svårigheten att säkra katetern inom fartyget, eftersom det finns en begränsad mängd tjocka huden inom gris örat att placera bo suturer. En annan begränsning är att auricular artären är också en liten artär, och detta kan orsaka mer tekniska svårigheter för kateterisering förfarande12 och lönsamhet under lång forskning förfaranden. Viktigare, är den största nackdelen med catheterizing auricular artären förekomsten av marginell öra vener11,12 som ofta är de primära fartyg som används för att ge vätska intravenöst och administrera läkemedel för anestesi under kirurgiska ingrepp. Närheten av auricular artären och marginella öra vener, gör den samtidiga kateterisering av ven och artär tekniskt utmanande och kan störa både arteriellt blod mätningar och administrering av läkemedel och vätskor. Kateterisering av den distala armartären övervinner vissa av dessa nackdelar. För det första, isolering av armartären kräver mindre vävnad dissektion än isolering av halspulsådern. Armartären ligger även anatomiskt närmare till ytan, vilket möjliggör en enklare kateterisering, jämfört med den djupa halspulsådern. För det andra, kateterisering av armartären är en relativt snabb procedur och även om inte lika snabbt som den auricular artären, placering inom detta fartyg tillåter obegränsad tillgång till marginalnummer öra venerna; en viktig förutsättning för rehydrering terapi och administrering av intravenös narkotika och bedövningsmedel under operation. En betydande fördel med distala brachialis arteriell kateterisering, jämfört med femorala och mediala ytlig artär kateterisering, är slutligen att förfarandet inte stör kirurgiska eller experimentella förfaranden som inbegriper caudoventral, och caudodorsal baksidan, eller bakbenen.

Som med alla experimentella metoder finns det kritiska steg som behövs för ett lyckat resultat av förfarandet. Det finns tre viktiga processer som kräver särskild uppmärksamhet under brachialis arteriell kateterisering. Första, exakta topografiska landmarking genom palpation av svag puls av den distala armartären behövs. Avvikelse från rätt plats för fartyget inom forelimb påverkar riktningen av vävnad dissektion att isolera fartyget och orsaka onödiga vävnad dissektion och skada. Andra, försiktig vävnad dissektion och katetern insättning krävs. Detta inkluderar mild separation av artär från den omgivande fascian, bredvid brachialis venen och medianusnerven (minimera skada på nervus medianus), samt införande av katetern in i kärlet med tillägg av vistelse ligaturer till säkra katetern in i kärlet. Särskilt, även om armartären är en medelstor kan robust fartyget17, hårdhänt hantering av artär leda till utveckling av microhemorrhages inom fartyget intima och potentiellt orsaka koagelbildning längs skadade fartyget, således ökar risken för kateterisering misslyckande37. Slutligen, korrekt positionella anpassning av kateteriserade forelimb är viktigt för korrekt och konsekvent arteriellt tryckmätningar. Specifikt, som utvidga forelimb 40° vinkel från mittlinjen av kotpelaren bästa resultat. Att placera kateteriserade extremiteten mitten av bröstkorgen, och parallellt med kroppen eller utöka forelimb direkt framåt och parallellt med mittlinjen av ryggen kan orsaka en blygsam minskning i arteriell påtryckningar och kan vara mer benägna att intermittent förlust av arteriellt tryck mätningar.

Alla kirurgiska ingrepp har medfödda begränsningar och kateterisering av den distala armartären är inget undantag. Att identifiera, lokalisera, isolera och catheterizing artären är en procedur som kräver individer att ha en god förståelse av inte bara topografiska och vaskulär anatomi, men också utmärkta tekniska och kirurgiska färdigheter. Personer med denna kunskapsbas och kompetens blir sannolikt mer framgångsrik med catheterizing armartären än människor med begränsad tidigare erfarenhet. Den mest väsentliga begränsningen av proceduren är den armartären kateterisering kan begränsas till icke-recovery experimentella rutiner. Tillämpa denna teknik på ett uppbördsförfarande skulle kräva antingen avlägsnande av distala suturen säkra katetern till fartyget eller utelämna att placera den distala suturen under förfarandet med en potentiell efterföljande förlust av stabilitet. Dessutom, för att säkra katetern navet på utsidan av sys muskler och hud, skulle en längre kateter krävas. Slutligen skulle ett uppbördsförfarande kräva avlägsnande av katetern från fartyget. Denna aktivitet kan leda till markerade blödningen om adekvat hemostas inte erhölls; en process som kan vara särskilt svårt för relativt djupa fartyg i armar och ben av stora djurarter. Dessutom, om adekvat hemostas har uppnåtts, är det möjligt nybildade koagel kunde rubba under rörelse eller från mindre inverkan (dvs. mot pennan vägg), leder till djupgående och liv-threating arteriella blödningar.

Sammanfattningsvis, är brachialis arteriell kateterisering en utmärkt metod att mäta arteriella blod tryck och samla arteriellt blod för blod mätningar. Denna metod gav resultat i linje med observationer av arteriellt blod parametern mätningar från kateterisering av olika artärerna i grisen. Hos svin är detta förfarande särskilt användbart i icke-experimentella indrivningsförfaranden som involverar caudoventral, caudodorsal ryggen och bakbenen av gris.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Författarna har något att avslöja.

Acknowledgments

Detta arbete stöds av det kanadensiska institut för hälsa forskning och Kanada Stiftelsen för innovationsstöd till V. K. Mushahwar. A. Toossi stöddes av Vanier Kanada Graduate stipendium, Alberta utvecklar - hälsa lösningar Graduate STUDENTTILLVARO och Queen Elizabeth II Graduate stipendium. V.K. Mushahwar är en Kanada forskning stol i funktionella restaurering. Vi skulle vilja erkänna Mr J. Stack av Moss Street Productions för hans hjälp med ljudproduktion och personalen av kirurgiska medicinska forskningsinstitut för deras hjälp med förfaranden.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
0.9% NaCl (Saline) Solution EMRN JB1322P 1 x1 liter bag
10% Lidocaine spray AstraZeneca DIN:02039508 / 1 x  50 ml  bottle
10% Povidone-Iodine scrub Purdue Pharma 521232 1 x 500 ml bottle 
20 ga 1-inch angiocatheter Becton Dickinson 381433 1 x angiocatheter
2-0 polyglactin suture (Vicryl) Ethicon J339H 2-0 vicryl / 1 packet of suture
2-0 polypropylene suture (Prolene)  Ethicon 8833H 2-0 prolene / 1 packet of suture
22 ga 1-inch angiocatheter Becton Dickinson 381423 1 x angiocatheter
9 ID mm endotracheal tube Jorvet J0835P 1 x endotracheal tube
Arterial blood pressure IV line Argon Medical Devices 112411 1 x arterial blood pressure IV line
Disposable drapes Halyard Sales LLC 89731 4-8 x disposable drapes 
Glycopyrrolate hydrochloride  Sandoz DIN:02039508 / 1 x 20ml vial
Isoflurane Abbott Animal  Health 05260-5 1 x 250ml bottle
Kelly forceps-curved (14cm) Stevens 162-7-38 8-10  instruments
Ketamine hydrochloride Vetoquinol DIN:02374994 / 1 x 10ml vial
Lactated Ringer's Solution Hospira 0409-7953-09 4 x1 liter bag
Metzenbaum scissors Fine Science 14518-18
Miller laryngoscope blade Welch Allyn 68044 182 mm length  / 1 instrument
Nasal temperature probe Surgivet V3417 1 probe
Needle Drivers Stevens 162-V98-42 2 instruments
Q tip applicators Fisher Scientific 22-037-960 20-40  app
Remifentanil hydrochloride TEVA DIN:0234432 / 1 mg vial
Surgivet advisor: Vital signs monitor Surgivet V9203 1 monitor
Weitlaner retractor Stevens 162-11-602  2 retractors
Xylazine hydrochloride Bayer DIN:02169606 1 x 50ml bottle

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Uwiera, R. R., et al. Plasmid DNA induces increased lymphocyte trafficking: a specific role for CpG motifs. Cellular Immunology. 214 (2), 155-164 (2001).
  2. Uwiera, R. R., Kastelic, J. P., Inglis, G. D. Catheterization of intestinal loops in ruminants. Journal of Visualized Experiments. (28), (2009).
  3. Uwiera, R. R., Mangat, R., Kelly, S., Uwiera, T. C., Proctor, S. D. Long-Term Catheterization of the Intestinal Lymph Trunk and Collection of Lymph in Neonatal Pigs. Journal of Visualized Experiments. (109), (2016).
  4. Wohlfender, D. H., et al. International online survey to assess current practice in equine anaesthesia. Equine Veterinary Journal. 47, 65-71 (2015).
  5. Dugdale, A. H., Taylor, P. M. Equine anaesthesia-associated mortality: where are we now? Veterinay Anaesthesia Analgesia. 43 (3), 242-255 (2016).
  6. McGrotty, Y., Brown, A. Blood gases, electrolytes and interpretation 1. Blood gases. In Practice. 35 (2), 59-65 (2013).
  7. Taylor, P. M. Techniques and clinical application of arterial blood pressure measurement in the horse. Equine Veterinary Journal. 13, 271-275 (1981).
  8. Trim, C. M., Hofmeister, E. H., Quandt, J. E., Shepard, M. K. A survey of the use of arterial catheters in anesthetized dogs and cats: 267 cases. Journal of Veterinary Emergency and Critical. 27, 89-95 (2017).
  9. Komine, H., Matsukawa, K., Tsuchimochi, H., Nakamoto, T., Murata, J. Sympathetic cholinergic nerve contributes to increased muscle blood flow at the onset of voluntary static exercise in conscious cats. American Journal of Physiology - Regulatory, Integrative and Comparative Physiology. 295 (4), R1251-R1262 (2008).
  10. Krista, L. M., Beckett, S. D., Branch, C. E., McDaniel, G. R., Patterson, R. M. Cardiovascular Responses in Turkeys as Affected by Diurnal Variation and Stressor. Poultry Science. (60), 462-468 (1981).
  11. Bass, L. M., Yu, D. Y., Cullen, L. K. Comparison of femoral and auricular arterial blood pressure monitoring in pigs. Veterinay Anaesthesia Analgesia. 36 (5), 457-463 (2009).
  12. Karnabatidis, D., Katsanos, K., Diamantopoulous, A., Kagadis, G. C., Siablis, D. Transauricular arterial or venous access for cardiovascular experimental protocols in animals. Journal of Vascular and Interventional Radiology. 17 (11 Pt 1), 1803-1811 (2006).
  13. Namba, K., Kawamura, Y., Higaki, A., Nemoto, S. Percutaneous medial saphenous artery approach for Swine central artery access. Journal of Investigative Surgery. 26 (6), 360-363 (2013).
  14. Hong, Y., et al. Feasibility of Selective Catheter-Directed Coronary Computed Tomography Angiography Using Ultralow-Dose Intracoronary Contrast Injection in a Swine Model. Investigative Radiology. (50), 449-455 (2015).
  15. Kumar, A., et al. Aortic root catheter-directed coronary CT angiography in swine: coronary enhancement with minimum volume of iodinated contrast material. American Journal of Roentgenology. (188), W415-W422 (2007).
  16. Park, J. H., et al. Safety and Efficacy of an Aortic Arch Stent Graft with Window-Shaped Fenestration for Supra-Aortic Arch Vessels: an Experimental Study in Swine. Korean Circulation Journal. 47 (2), 215-221 (2017).
  17. Carniato, S., Mehra, M., King, R. M., Wakhloo, A. K., Gounis, M. J. Porcine brachial artery tortuosity for in vivo evaluation of neuroendovascular devices. American Journal of Neuroradiology. 34 (4), E36-E38 (2013).
  18. Hannon, J. P., Bossone, C. A., Wade, C. E. Normal Physiological Values for Consious pigs used in Biomedical Research. Laboratory Animal Science. 40, 293-298 (1990).
  19. Nijland, M. J., Shankar, U., Iyer, V., Ross, M. G. Assessment of fetal scalp oxygen saturation determination in the sheep by transmission pulse oximetry. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 183 (6), 1549-1553 (2000).
  20. Yawno, T., et al. Human Amnion Epithelial Cells Protect Against White Matter Brain Injury After Repeated Endotoxin Exposure in the Preterm Ovine Fetus. Cell Transplantation. 26 (4), 541-553 (2017).
  21. Amaya, K. E., et al. Accelerated acidosis in response to variable fetal heart rate decelerations in chronically hypoxic ovine fetuses. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 214 (2), e270-e271 (2016).
  22. Malavasi, L. M. Swine. Anesthesia and Analgesia for Domestic Species. , 5, John Wiley & Sons Inc. New Jersey. (2015).
  23. Moon, P. F., Smith, L. J. General Anesthetic Techniques in Swine. Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice. 12 (3), 663-691 (1996).
  24. Caramoni, P. R. A., et al. Postangioplasty restenosis: a practical model in the porcine carotid artery. Brazilian Journal of Medical and Biological Research. (30), 1087-1091 (1997).
  25. Sisson, S. The Anatomy of the Domestic Animals. , 2, W. B. Saunders Company. Philadelphia. 636-638 (1930).
  26. Lundeed, A. B., Manohar, M., Parks, C. Systemic distribution of blood flow in swine while awake and during 1.0 and 1.5 MAC isoflurane anesthesia with or without 50% nitrous oxide. Anesthesia and Analgesia. 31, 499-512 (1983).
  27. Sisson, S. The Anatomy of the Domestic Animals. , 2, W. B. Saunders Company. Philadelphia. 302-304 (1930).
  28. Adin, C. A., Gregory, C. R., Adin, D. B., Cowgill, L. D., Kyles, A. E. Evaluation of three peripheral arteriovenous fistulas for hemodialysis access in dogs. Veterinary Surgery. 31 (5), 405-411 (2002).
  29. Gladczak, A. K., Shires, P. K., Stevens, K. A., Clymer, J. W. Comparison of indirect and direct blood pressure monitoring in normotensive swine. Research in Veterinary Science. 95 (2), 699-702 (2013).
  30. Wenzel, K., et al. Survey of Effects of Anesthesia Protocols on Hemodynamic Variables in Porcine Cardiopulmonary Resuscitation Laboratory Models Before Induction of Cardiac Arrest. Comparative Medicine. 50 (6), 644-648 (2000).
  31. Duval, J. D., Pang, J. M., Boysen, S. R., Caulkett, N. A. Cardiopulmonary Effects of a Partial Intravenous Anesthesia Technique for Laboratory Swine. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 57 (4), 376-381 (2018).
  32. Friendship, R. M., Lumsden, J. H., McMillan, I., Wilson, M. R. Hematology and Biochemistry Reference Values for Ontario Swine. Canadian Journal of Comparative Medicine. (48), 390-393 (1984).
  33. Kiorpes, A. L., MacWilliams, P. S., Schenkman, D. I., Bickstrom, L. R. Blood Gas and Hematological Changes in Experimental Peracute Porcine Pleuropneumonia. Canadian Journal of Veterinary Research. (54), 164-169 (1990).
  34. Klem, T. B., Bleken, E., Morberg, H., Thoresen, S. I., Framstad, T. Hematologic and biochemical reference intervals for Norwegian crossbreed grower pigs. Veterinary Clinical Pathology. 39 (2), 221-226 (2010).
  35. Sisson, S. The Anatomy of the Domestic Animals. , 2, W. B. Saunders Company. Philadelphia. 804-810 (1930).
  36. Lopes-Berkas, V. C., Jorgenso, M. A. Measurement of Peripheral Arterial Vasculature in Domestic Yorkshire Swine by Using Quantitative Vascular Angiograph. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 50 (5), 628-634 (2011).
  37. Geary, R. L., et al. Wound healing: A paradigm for lumen narrowing after arterial reconstruction. Journal of Vascular Surgery. (27), 96-108 (1998).

Tags

Medicin fråga 145 armartären kateterisering kirurgi arteriell påtryckningar arteriella blodgaser svin
Armartären kateterisering hos svin
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Uwiera, R. R. E., Toossi, A.,More

Uwiera, R. R. E., Toossi, A., Everaert, D. G., Uwiera, T. C., Mushahwar, V. K. Brachial Artery Catheterization in Swine. J. Vis. Exp. (145), e59365, doi:10.3791/59365 (2019).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter