Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
JoVE Journal Medicine
Click here for the English version

Medicine

OP-IVM: Kombination af in vitromodning efter oocyt-hentning med gynækologisk kirurgi

Published: May 9, 2021 doi: 10.3791/61647
Automatic Translation
*1,2,3,4,5, *1,2,3,4,5, *1,2,3,4,5, 1,2,3,4,5, 1,2,3,5, 1,2,3,4,5, 1,2,3,4,5, 1,2,3,4,5
1Center for Reproductive Medicine, Department of Obstetrics and Gynecology, Peking University Third Hospital, 2National Clinical Research Center for Obstetrics and Gynecology, 3Key Laboratory of Assisted Reproduction, Ministry of Education, 4Beijing Key Laboratory of Reproductive Endocrinology and Assisted Reproduction, 5Research Units of Comprehensive Diagnosis and Treatment of Oocyte Maturation Arrest, Chinese Academy of Medical Sciences
* These authors contributed equally

ERRATUM NOTICE

Summary

In vitro modning (IVM) før gynækologisk drift (OP-IVM) kombinerer IVM efter oocyt hentning med rutinemæssig gynækologisk kirurgi og tjener som en forlængelse af konventionelle IVM applikationer til fertilitet bevarelse.

Abstract

Brugen af in vitromodning (IVM) før gynækologisk operation (OP-IVM) er en udvidelse af konventionel IVM, der kombinerer IVM efter oocyt hentning med rutinemæssig gynækologisk kirurgi. OP-IVM er velegnet til patienter, der gennemgår godartet gynækologisk kirurgi, og som har behov for fertilitetsbevarelse (FP) eller infertilitetsbehandlinger såsom in vitro-befrugtning og embryooverførsel (IVF-ET). På operationsstuen bedøves patienter, der gennemgår godartet gynækologisk kirurgi, først bedøvet og modtager ultralydstyret umoden follikel aspiration (IMFA) behandling. Efterhånden som den efterfølgende gynækologiske operation udføres, undersøges cumulus-oocytkomplekserne (COC'er), og de umodne COC'er overføres til IVM-mediet og dyrkes i 28-32 timer i IVF-laboratoriet. Efter vurdering vil modne oocytter i MII-stadiet blive udvalgt og kryopreserveret i flydende nitrogen til FP eller befrugtet ved intracytoplasmisk sædindsprøjtning (ICSI) til IVF-ET. Ved at kombinere IVM med gynækologisk kirurgi, umodne oocytter, der ville have været kasseret kan gemmes og bruges til assisteret reproduktiv teknologi (ART). Proceduren, betydningen og de kritiske aspekter af OP-IVM er beskrevet i denne artikel.

Introduction

IVM er en ART, hvor menneskelige umodne oocytter dyrkes in vitro til modning til IVF-ET eller FP. I IVM anvendes ægløsningsinduktionsmedicin ikke, hvilket reducerer smerter, økonomiske byrder og komplikationer som ovarie hyperstimulationssyndrom (OHSS)1,2. Derudover er IVM særligt velegnet til FP af kræftpatienter og infertilitetsbehandling af hormonfølsomme patienter, som måske ikke er i stand til eller ikke har tid til at modtage ægløsningsbehandling3. Derfor, selv om antallet af oocytter hentet, klinisk graviditet sats (CPR), og levende fødselsrate (LBR) er lavere end i IVF4,5, IVM har sine egne unikke fordele.

Ufrugtbare patienter med endometrielæsioner, hydrosalpinx, eller ovariecyster normalt har gynækologisk kirurgi før ART behandling, og deres oocytter er normalt umodne. OP-IVM bruger guidet transvaginale ultralyd til at hente de umodne oocytter og dyrke dem in vitro indtil modning for IVF-ET eller FP. OP-IVM kombinerer IVM efter oocyt hentning og gynækologisk kirurgi, hvilket reducerer komplikationer, der er almindelige i kontrollerede æggestokke hyperstimulation cykler og spare tid og penge. For frugtbare patienter, OP-IVM kunne tjene som en "fertilitetsforsikring", mens de gennemgår rutinemæssig gynækologisk kirurgi.

Desuden, skader forårsaget af gynækologiske operationer, såsom elektrokauteri6,7 og ovarie tumor resektion, kunne reduceres gennem oocyt hentning før gynækologisk kirurgi. Sammenlignet med rutinemæssig gynækologisk kirurgi kunne OP-IVM derfor reducere antallet af operationer under infertilitetsbehandling og forhindre tab af funktionelle oocytter under ovariekirurgi.

En tidligere undersøgelse har vist, at den ekstra procedure for oocyt hentning hverken ville øge kirurgiske komplikationer og negative graviditetsresultater eller forlænge hospitalsopholdet8. Nogle patienter har født levende gennem OP-IVM8, hvilket indikerer gennemførligheden af denne metode. Dette dokument beskriver karakteristika for patienter, der kan drage fordel af OP-IVM samt procedurer og kritiske punkter i OP-IVM og diskuterer evalueringen af menneskelig oocyt modenhed.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

BEMÆRK: Undersøgelser relateret til OP-IVM-metoden er blevet godkendt af det institutionelle review board (IRB) på Peking University Third Hospital og den etiske komité for Peking University (2014S2004). Et resumé af OP-IVM er vist i figur 1. Den trinvise procedure vil blive indført i det følgende afsnit.

1. Indførelse af OP-IVM til relevante patienter

  1. Identificere potentielle patienter, der kan drage fordel af OP-IVM, som dem, der er beskrevet i trin 1.1.1-1.1.3.:
    1. Polycystiske ovarie syndrom (PCOS) patienter med clomiphene resistens, der har brug for laparoskopisk ovarieboring kirurgi.
    2. Ufrugtbare patienter, der har brug for godartede gynækologiske operationer, såsom hysteroscopic myomektomi, polypetomi, transcervical resektion af septum og laparoskopisk tubal kirurgi, og oophorocystectomy, før ART behandling.
    3. Patienter med kræft eller hæmatologisk sygdom, der modtager kemoradioterapi eller strålebehandling.

2. Informeret samtykke

  1. Give fuld information til patienter, herunder hvorfor OP-IVM kan være gavnligt, dens procedure, anvendelser af IVM oocytter (IVF-ET eller cryopreservation), anslåede HLR og LBRs, og mulige komplikationer. Bed patienterne om at give informeret samtykke ved at underskrive samtykkeformularen.

3. Forbered etiketter og IVM oocyt medium

  1. Printidentifikation (ID) etiketter med patientens navn og datoer for kultur retter og rør.
  2. Der tilsættes 0,5 mL IVM medium suppleret med 0,075 IE/mL follikelstimulerende hormon (FSH) og 0,075 IE/mL luteiniserende hormon (LH) til hver brønd på en 4-brønds plade. Dæk mediet med olie.
    BEMÆRK: Udfør alle disse procedurer i laminar flow rene bænke.
  3. Forvarm 4-brøndspladen med IVM oocyt medium ved 37 °C i befugtet luft, der indeholder 5% CO2 og 5% O2 mindst 6 timer før brug.

4. Administrere anæstesi på en operationsstue

  1. Kontroller patientens navn, før du administrerer anæstesi.
  2. Intravenøst bedøve patienten ved anæstesiolog.

5. Udfør oocyt hentning

  1. Tag etiketterne med navn, dato og ID på kulturretterne og rørene.
  2. Placer patienten i blærelakotomi position; konstant desinficere, drapere og skrubbe skeden med varm saltvand.
  3. Placer ultralydsonden inde i skeden; scanne og registrere antallet af follikler i begge æggestokke. Find det sted tættest på æggestokken som punkteringsstedet, og undgå tarmen, blæren og store blodkar.
  4. Aspirat follikulær væske.
    1. Vask nålen med punkth-stabilt håndteringsmedium, før du punkterer (se Materialetabel).
    2. Indsprøjt 19 G, single-lumen aspirationsnålen i æggestokkene under vejledning af ultralyd.
    3. Punkter større follikler med klare grænser tættest på sonden. Ved en lav position injiceres skylleopløsningen hurtigt suppleret med 25 U/mL heparin. Aspirat follikulær væske med nålen under et tryk på 80-90 mmHg, dreje nålen lidt for at aspirere så meget follikulær væske som muligt. Punkter andre follikler fra den nærmeste til den anden side på dette fly.
      BEMÆRK: Under aspiration vil follikulær væske, der indeholder oocytter, strømme ind i et sterilt 10 mL reagensglas under negativt tryk. Heparin kan reducere follikulær væske viskositet for at lette aspiration proces.
    4. Fjern nålen fra æggestokken (hold nålen i vaginalvæggen). Juster retningen af ultralydsonden, og punkter de resterende follikler på andre planer. Prøv at aspirere alle follikler med en diameter på ~ 5-9 mm.
      BEMÆRK: Juster sondens position, så den altid holdes tættest på æggestokkene. Tryk på vaginal fornix med passende kraft for at reducere skader og blødning.
    5. Træk nålen ud efter endt i en æggestok, vask nålen med håndteringsmediet, og punkter den anden side ved hjælp af samme metode.
      BEMÆRK: Komplet follikel aspiration inden for 25-30 min.
  5. Overfør follikulær væske fra operationsstuen til IVF laboratoriet inden for få minutter efter at have bekræftet patientens navn og ID.
    BEMÆRK: Overfør indsugningsvæske til IVF-laboratoriebænken så hurtigt som muligt for at forhindre koagulering.
  6. Detekter aktiv blødning i bækkenhulen med B-mode ultralyd efter punktering af alle folliklerne. Indsæt et speculum, og ret spidsen mod den bageste fornix for at opdage aktiv blødning på punkteringsstedet.
    BEMÆRK: Der bør ikke observeres aktiv blødning på vaginalpunkturstedet, hvis æggestokkestillingen er normal, og oocytudtagning udføres omhyggeligt. For let blødning, der fortsætter selv efter kompression, holde en steril gaze komprimere i skeden i 2-4 timer. Kontrol overdreven blødning fra små arterier ved hjælp af klemmer med vaskulære sammenkværn i 2-4 timer. Blødning i bækkenhulen eller æggestokken, som sjældent sker, bør styres ved elektrokoagulation ved laparoskopisk kirurgi.

6. Gynækologisk kirurgi

  1. Baseret på patientens behov og tilstand udfører du passende gynækologisk kirurgi efter oocyt-hentning.
    1. Udfør laparoskopisk ovarieboringskirurgi for polycystiske ovarie syndrom (PCOS) patienter med clomiphene resistens.
    2. Udfør godartet gynækologisk kirurgi for ufrugtbare patienter før ART behandling, såsom hysteroscopic myomektomi, polypektomi, transcervical resektion af septum og laparoskopisk tubal kirurgi, og oophorocystectomy.
    3. Udfør ovariektomi for fertilitet kryopræservering af patienter med kræft eller hæmatologisk sygdom, der har brug for at modtage kemoradioterapi.
      BEMÆRK: Disse gynækologiske operationer er grundlæggende og standardiserede kliniske operationer. Retningslinjerne for driften i forskellige lande og hospitaler bør være relativt ens.

7. Udfør IVM

BEMÆRK: Udfør hele IVM-processen på en 37 °C homotermisk flad.

  1. Filtrer den indsugningssækkevæske med en 70 μm nyloncellesnive. Skyl gentagne gange kulturrøret og sien med forvarmet pH-stabilt håndteringsmedium. Sørg for, at alle de umodne COCs overføres fuldstændigt til kulturskålen. Saml den filtrerede væske, skyl og kultur i en 100 x 15 mm Petriskål.
  2. Undersøg COC'erne (figur 2) under stereoskopet med 40x forstørrelse. Overfør hurtigt umodaturerne til et forvarmet IVM oocyt medium.
    BEMÆRK: Vælg en passende forstørrelse afhængigt af operatørens vane.
  3. Registrer antallet af dyrkede umodne COCs.
  4. Informere patienten om antallet af dyrkede COCs. Diskuter indsamlingen af sæd med patienterne og deres partnere. Udfør sædudvinding efter den normale procedure.
  5. Kultur de umodne COCs ved 37 °C i befugtet luft, der indeholder 5% CO2 og 5% O2 i 28-32 timer.
  6. Vurder oocytens modenhed.
    1. Denude cumulus celler ved gentagne pipetter ved hjælp af et glas Pasteur pipette under stereoskop med 40x forstørrelse. Undersøg ekstrudering af polarkroppen (PB) for at identificere oocytternes udviklingsstadium. Se figur 2 for repræsentative billeder af oocytter i COC'er, metafase II (MII), metafase I (MI) og germinale vesikler (GVs) med klare morfologiske egenskaber.
      BEMÆRK: Brug en lodret flamme (f.eks. af en Bunsen-brænder) til at justere diameteren af glaspastaurpipetten til størrelsen af en oocyt.
    2. Tæl MII oocytter og registrere antallet.
    3. Vælg modne oocytter til IVF eller vitrifikation.
      BEMÆRK: Saml sæd på den dag oocytterne modnes til IVF, men ikke til oocyt vitrifikation.
    4. Kultur de umodne oocytter i GV og MI fase i den oprindelige IVM kultur medium med cumulus celler til en anden 10-14 timer. Gentag trin 7.6.2-7.6.3.

8. Udfør ICSI eller oocyt vitrifikation

  1. Følg standardproceduren for reproduktive center8.

9. Kultur embryoner og udføre embryo cryopreservation

  1. Følg standardproceduren for reproduktive center8.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Indtil december 2019 blev OP-IVM anvendt til fertilitetsbevarelse af 274 patienter. Embryologiske og reproduktive resultater af 158 patienter mellem 2014 og 2016 blev offentliggjort i et tidligere papir8. I følgende eksempel diskuteres den procedure, der blev fulgt for en PCOS-patient, der fik OP-IVM i 2016. Patienten er en 28-årig diagnosticeret med primær infertilitet, venstre adnexal cyste, og PCOS. Hun modtog laparoskopisk cystektomi og OP-IVMden 28. september 2016; Der blev opnået 27 umodne COC'er. Efter en 28 timers kultur blev 7 oocytter i MII-stadiet udvalgt og befrugtet af ICSI. Antallet af 2 pro-kerner af god kvalitet (2PN' er) på dag 1 og embryoner på dag 3, og dag 5 var henholdsvis 6, 6 og 2. De blastocyster, der blev opnået pådag 5 (4. oktober 2016), blev frosset. Den14.februar 2017 blev en blastocyst optøet. Denne optøede blastula var i live og overførttil livmoderen den 14. februar 2017. Resultaterne af en blod human chorionic gonadotropin (hCG) test var positive, og ultrasonografi viste intrauterin tidlig graviditet. Patienten leverede en sund pige ved kejsersnit på 40 uger den2.november 2017.

Figure 1
Figur 1: OP-IVM-rutediagram. Før gynækologisk kirurgi, under transvaginale ultralyd vejledning, follikel væske er indsugning gennem IMFA. Den opnåede follikelvæske overføres til IVF-laboratoriet, filtreres og skylles. Umodne COCs overføres til en præwarmed IVM kultur løsning og dyrkes i 28-32 timer. Modne oocytter med PB bruges til kryopræservering eller IVF-ET. Forkortelser: IMFA = umoden follikel aspiration; IVF = in vitro-befrugtning; IVF-ET = IVF og embryonoverførsel; COCs = cumulus-oocyte komplekser; IVM = in vitro modning; OP-IVM = IVM før en gynækologisk operation; GV = kiminal vesikel; MI = metafase I; ICSI = intracytoplasmisk sædindsprøjtning; PB = polar krop; PN = pro-kerne; D1 = dag 1. Klik her for at se en større version af dette tal.

Figure 2
Figur 2: Morfologiske egenskaber ved repræsentative billeder af oocytter. (A) COCs, (B) MII, (C) MI, (D) GV fase. Forkortelser: COCs = cumulus-oocyte komplekser; GV = kiminal vesikel; MI = metafase I; MII = metafase II. Klik her for at se en større version af dette tal.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

OP-IVM-metoden, der er beskrevet i denne artikel, omfatter konventionelle IVM-applikationer og kombinerer IVM efter oocyt-hentning med rutinemæssig gynækologisk kirurgi. Oocytter, der ville have været tabt i gynækologisk kirurgi kan nu bruges til IVF-ET eller FP uden yderligere kirurgiske risici. OP-IVM blev først brugt til at hente oocytter før ovarieboring hos PCOS-patienter. Dens anvendelse hurtigt udvidet til ufrugtbare patienter, der har brug for godartet gynækologisk kirurgi og kræft eller hæmatologiske sygdom patienter, der har brug for kemoradioterapi. På grund af den potentielle risiko for metastaser, OP-IVM er ikke egnet eller anbefales til patienter med ondartede tumorer. Baseret på OP-IVM, en ny kinesisk form for æg bank for FP af ufrugtbare patienter og kræftpatienter er blevet etableret på denne institution.

For OP-IVM bør det overvejes både at det haster med gynækologisk kirurgi og muligheden for at opnå et højere antal oocytter. Generelt er IVM-resultatet positivt korreleret med antallet af umodne oocytter, der er opnået under oocyt-hentning9. Dominerende follikler kan hæmme væksten af omgivende mindre follikler og forårsage atresia10, hvilket resulterer i et reduceret antal hentede umodne oocytter. Derfor, hvis den gynækologiske kirurgi ikke er presserende, er det bedste vindue for OP-IVM, når et større antal små follikler med få dominerende follikler observeres af B-mode ultrasonografi. Derudover kan anti-mullerisk hormon (AMH) bruges som parameter til at forudsige ovariereserve, da antallet af hentede oocytter er signifikant positivt korreleret med AMH11,12. I tilfælde, hvor gynækologisk drift er blevet prioriteret, bør så mange umodne oocytter hentes så meget som muligt. I nødoperationer bør oocyt-hentning og IVM evalueres omhyggeligt baseret på patientens tilstand og vilje.

IMFA under transvaginale ultralyd vejledning er en metode, der anvendes til at hente oocytter, der kan reducere skader på æggestokkene funktion13,14. Laparoskopisk ovariepunktur til aspirere umodne oocytter anvendes også i nogle undersøgelser15. Men sammenlignet med laparoskopi, IMFA under transvaginale ultralyd tager mindre tid, er mindre invasiv, er lettere at udføre16,17, og kan opnå mere målrettet follikel aspiration. Derfor, for at minimere virkningen på æggestokkene reserve og øge aspiration nøjagtighed, IMFA under transvaginale ultralyd vejledning anbefales som en bedre metode til oocyt hentning i OP-IVM. ICSI anbefales dog til befrugtning. Tidligere undersøgelser har vist, at zona pellucida vil hærde efter at være blevet kultiveret in vitro i lange perioder, hvilket resulterer i en reduceret sats for vellykket befrugtning18. ICSI har vist sig effektivt at forbedre befrugtningshastigheden af IVM oocytter i naturlige cyklusser19,20. Selv om nylige undersøgelser har vist lignende befrugtning satser for ICSI og IVF21,22, ICSI har den fordel at bruge naturlige cyklusser i stedet for ovarie stimulation. Indsamlede embryoner fryses på grund af uforberedt endometrium, og embryooverførsel kan udføres senere i henhold til standardproceduren på hvert center.

Formålet med ART er at behandle infertilitet og levere sunde babyer. Tidligere forskning om de reproduktive resultater af OP-IVM viste, at antallet af hentede oocytter og oocyt modning satser er sammenlignelige med dem, der observeres for konventionelle IVM cykler ved hjælp af FSH og hCG. OP-IVM har dog et lavere HLR og en lavere LBR end konventionel IVM8,23,24,25. Dette kan forklares ved begrænset oocyt modning på grund af det dårlige udviklingspotentiale af umodne oocytter i naturlige cyklusser. Men, hormonstimulation er ikke en mulighed for nogle patienter, der ikke er i stand til, eller som ikke har tid til at modtage behandlingen. Desuden kan vitrificering skade oocytternes udviklingspotentiale, hvilket resulterer i lave HLR ogLBR 26,27.

Desuden kan gonadotropiner forstørre æggestokkene og øge risikoen for blødning under oocyt hentning, hvilket påvirker eksponeringen af operative felter i laparoskopi negativt. LBR i OP-IVM-metoden er relativt lav. Flere undersøgelser er nødvendige for at undersøge den bedste operative timing og ændre IVM kultur system til at forbedre OP-IVM resultater. Samlet set KOMBINERER OP-IVM IVM med gynækologisk kirurgi, således at umodne oocytter, der ville have været beskadiget eller kasseret, kan gemmes og bruges til ART. OP-IVM har fordelene ved at undgå komplikationer forårsaget af ovarie stimulerende medicin og reducere antallet af operationer for infertilitet behandling. Op-IVM bør derfor betragtes som en potentielt værdifuld behandlingsmetode for visse patienter og undersøges mere indgående for bedre at forstå dens virkninger og resultater.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Forfatterne har intet at afsløre.

Acknowledgments

Dette arbejde blev støttet af tilskud fra China National Key R &D Program (nr. 2017YFC1002000, 2018YFC1004001, 2019YFA0801400), National Science Foundation of China (nr. 81571386, 81730038), CAMS Innovation Fund for Medical Sciences (2019-I2M-5-001) og specialforskningsprojektet for kinesisk kapitalsundhedsudvikling (2018-2-4095).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
19 G single-lumen aspiration needles Cook, Australia K-OPS-7035-REH-ET
4-well plate Corning
70 μm nylon cell strainer Falcon, USA 352350
CO2 Incubator Thermo
Culture oil Vitrolife, Sweden 10029,OVOIL  Step 3.2.
FSH & LH Ferring Reproductive Health, Germany MENOPUR®
Glass Pasteur pipette Hilgenberg GmbH, Germany 3154102-26
G-MOPS medium pH-stable handling medium for washing the needle before puncturing
IVM medium Origio, Denmark ART-1600-B
Laminar Flow Clean Benches ESCO
Petri dish Thermo Fisher Scientific, Denmark 263991
pH stable handing media designed to support the handling and manipulation of oocytes and embryos outside the incubator Vitrolife, Sweden 10130, G-MOPS PLUS Step 7.1.
Rinse solution Cook, Australia K-SIFB-100
Stereoscope Nikon

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Ho, V. N. A., Braam, S. C., Pham, T. D., Mol, B. W., Vuong, L. N. The effectiveness and safety of in vitro maturation of oocytes versus in vitro fertilization in women with a high antral follicle count. Human Reproduction. 34 (6), 1055-1064 (2019).
  2. Yang, Z. Y., Chian, R. C. Development of in vitro maturation techniques for clinical applications. Fertility and Sterility. 108 (4), 577-584 (2017).
  3. Hatirnaz, S., et al. Oocyte in vitro maturation: A sytematic review. Turkish Journal of Obstetrics and Gynecology. 15 (2), 112-125 (2018).
  4. Gremeau, A. S., et al. In vitro maturation or in vitro fertilization for women with polycystic ovaries? A case-control study of 194 treatment cycles. Fertility and Sterility. 98 (2), 355-360 (2012).
  5. Ho, V. N. A., Braam, S. C., Pham, T. D., Mol, B. W., Vuong, L. N. The effectiveness and safety of in vitro maturation of oocytes versus in vitro fertilization in women with a high antral follicle count. Human Reproduction. 34 (6), 1055-1064 (2019).
  6. Sahin, C., et al. Which should be the preferred technique during laparoscopic ovarian cystectomy. Reproductive Sciences. 24 (3), 393-399 (2017).
  7. Xiao, J., et al. Impact of hemostatic methods on ovarian reserve and fertility in laparoscopic ovarian cystectomy. Experimental and Therapeutic. 17 (4), 2689-2693 (2019).
  8. Song, X. -L., et al. Enhancing the scope of in vitro maturation for fertility preservation: transvaginal retrieval of immature oocytes during endoscopic gynaecological procedures. Human Reproduction. 35 (4), 837-846 (2020).
  9. Magnusson, Å, Källen, K., Thurin-Kjellberg, A., Bergh, C. The number of oocytes retrieved during IVF: a balance between efficacy and safety. Human Reproduction. 33 (1), 58-64 (2018).
  10. Larose, H., et al. Gametogenesis: A journey from inception to conception. Current Topics in Developmental Biology. Wellik, D. M., et al. 132, Academic Press. 257-310 (2019).
  11. Broer, S. L., Broekmans, F. J. M., Laven, J. S. E., Fauser, B. C. J. M. Anti-Müllerian hormone: ovarian reserve testing and its potential clinical implications. Human Reproduction Update. 20 (5), 688-701 (2014).
  12. Arce, J. C., La Marca, A., Mirner Klein, B., Nyboe Andersen, A., Fleming, R. Antimüllerian hormone in gonadotropin releasing-hormone antagonist cycles: prediction of ovarian response and cumulative treatment outcome in good-prognosis patients. Fertility and Sterility. 99 (6), 1644-1653 (2013).
  13. Katayama, K. P., et al. Ultrasound-guided transvaginal needle aspiration of follicles for in vitro fertilization. Obstetrics and Gynecology. 72 (2), 271-274 (1988).
  14. Dellenbach, P., et al. Transvaginal sonographically controlled follicle puncture for oocyte retrieval. Fertility and Sterility. 44 (5), 656-662 (1985).
  15. Hirata, T., et al. Concomitant ovarian drilling and oocyte retrieval by laparoendoscopic single-site surgery led to live birth using in vitro maturation of oocyte and transfer of frozen-thawed blastocyst in woman with polycystic ovary syndrome. Journal of Obstetrics and Gynaecology Research. 40 (5), 1431-1435 (2014).
  16. Deutinger, J., et al. Follicular aspiration for in vitro fertilization: sonographically guided transvaginal versus laparoscopic approach. European Journal of Obstetrics, Gynecology, and Reproductive Biology. 26 (2), 127-133 (1987).
  17. Tanbo, T., Henriksen, T., Magnus, O., Abyholm, T. Oocyte retrieval in an IVF program. A comparison of laparoscopic and transvaginal ultrasound-guided follicular puncture. Acta Obstetricia et Gynecologica Scandinavica. 67 (3), 243-246 (1988).
  18. Nagy, Z. P., et al. Pregnancy and birth after intracytoplasmic sperm injection of in vitro matured germinal-vesicle stage oocytes: case report. Fertility and Sterility. 65 (5), 1047-1050 (1996).
  19. Söderström-Anttila, V., Mäkinen, S., Tuuri, T., Suikkari, A. -M. Favourable pregnancy results with insemination of in vitro matured oocytes from unstimulated patients. Human Reproduction. 20 (6), 1534-1540 (2005).
  20. Hwang, J. L., Lin, Y. H., Tsai, Y. L. In vitro maturation and fertilization of immature oocytes: a comparative study of fertilization techniques. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 17 (1), 39-43 (2000).
  21. Walls, M., Junk, S., Ryan, J. P., Hart, R. IVF versus ICSI for the fertilization of in-vitro matured human oocytes. Reproductive Biomedicine Online. 25 (6), 603-607 (2012).
  22. Park, J. H., Jee, B. C., Kim, S. H. Comparison of normal and abnormal fertilization of in vitro-matured human oocyte according to insemination method. Journal of Obstetrics and Gynaecology Research. 42 (4), 417-421 (2016).
  23. Ho, V. N. A., Pham, T. D., Le, A. H., Ho, T. M., Vuong, L. N. Live birth rate after human chorionic gonadotropin priming in vitro maturation in women with polycystic ovary syndrome. Journal of Ovarian Research. 11 (1), 70 (2018).
  24. Zheng, X., et al. Effect of hCG priming on embryonic development of immature oocytes collected from unstimulated women with polycystic ovarian syndrome. Reproductive Biology and Endocrinology. 10, 40 (2012).
  25. Tannus, S., et al. Predictive factors for live birth after in vitro maturation of oocytes in women with polycystic ovary syndrome. Archives of Gynecology and Obstetrics. 297 (1), 199-204 (2018).
  26. Cohen, Y., et al. Decreased pregnancy and live birth rates after vitrification of in vitro matured oocytes. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 35 (9), 1683-1689 (2018).
  27. Yazdanpanah, F., Khalili, M. A., Eftekhar, M., Karimi, H. The effect of vitrification on maturation and viability capacities of immature human oocytes. Archives of Gynecology and Obstetrics. 288 (2), 439-444 (2013).

Tags

Medicin Udgave 171 IVM fertilitetsbevarelse transvaginaal hentning endoskopiske gynækologiske procedurer PCOS

Erratum

Formal Correction: Erratum: OP-IVM: Combining In vitro Maturation after Oocyte Retrieval with Gynecological Surgery
Posted by JoVE Editors on 06/26/2023. Citeable Link.

An erratum was issued for: OP-IVM: Combining In vitro Maturation after Oocyte Retrieval with Gynecological Surgery. The Protocol and Representative Results sections were updated.

Step 3.2 of the Protocol was updated from:

Add 0.5 mL of IVM medium supplemented with 0.075 IU/mL of follicle-stimulating hormone (FSH) and 0.075 IU/mL of luteinizing hormone (LH) to each well of a 4-well plate. Cover the medium with oil.

to:

Add 0.5 mL of IVM medium supplemented with 0.75 IU/mL of follicle-stimulating hormone (FSH) and 0.75 IU/mL of luteinizing hormone (LH) to each well of a 4-well plate. Cover the medium with oil.

The legend for Figure 2 was updated from:

Figure 2: Morphological characteristics of representative images of oocytes. (A) COCs, (B) MII, (C) MI, (D) GV stage. Abbreviations: COCs = cumulus-oocyte complexes; GV = germinal vesicle; MI = metaphase I; MII = metaphase II.

to:

Figure 2: Morphological characteristics of representative images of oocytes. (A) COCs, (B) GV, (C) MI, (D) MII stage. Abbreviations: COCs = cumulus-oocyte complexes; GV = germinal vesicle; MI = metaphase I; MII = metaphase II.

OP-IVM: Kombination af in vitromodning efter oocyt-hentning med gynækologisk kirurgi
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Liu, T., Song, X., Zheng, X., Yan,… More

Liu, T., Song, X., Zheng, X., Yan, L., Ma, C., Li, R., Yan, J., Qiao, J. OP-IVM: Combining In vitro Maturation after Oocyte Retrieval with Gynecological Surgery. J. Vis. Exp. (171), e61647, doi:10.3791/61647 (2021).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter