Summary
Nous décrivons une technique d’intubation endotracheal dans les lapins nouveau-nés après cathétérisme oesophagal avec un tube gastrique.
Abstract
Le lapin nouveau-né est un modèle animal utile pour diverses pathologies et procédures. La gestion des voies respiratoires du lapin est complexe en raison de ses caractéristiques anatomiques, ce qui est encore compliqué dans le cas du nouveau-né. Des différentes méthodes de gestion avancée des voies respiratoires, l’intubation enotracheal est moins agressive que la trachéostomie, et est plus faisable que la gestion supraglottique étant donné l’absence de dispositifs supraglottiques d’une si petite taille. Comme la visualisation directe de la glotte est très difficile chez les animaux de cette taille, ce modèle d’intubation aveugle est présenté comme une alternative efficace, en particulier pour les expériences nécessitant une anesthésie prolongée. En utilisant cette méthode, nous avons effectué des intubations aveugles avec un taux de réussite de 90%.
Introduction
L’anatomie particulière du système respiratoire du lapin complique l’intubation enotracheale. La cavité buccale est profonde et étroite avec une gamme limitée d’ouverture de la bouche et une langue relativement grande, ce qui rend la visualisation directe du larynx difficile, même avec l’utilisation d’un laryngoscope1,2. En outre, l’intubation du lapin nouveau-né, qui est 10-20 fois plus petit que l’adulte, est encore plus d’une procédure difficile. En plus de ces caractéristiques anatomiques, les lapins sont sujets au laryngospasme secondaire à la manipulation des voies respiratoires.
Plusieurs techniques d’intubation ont été décrites dans la littérature, telles que l’intubation trachéale de laryngoscope, l’intubation aveugle, l’intubation d’otoscope, l’intubation rétrograde, l’intubation d’endoscope, la trachéostomie et la ventilation supraglottic de dispositif3,4,5,6,7,8,9. Toutes ces techniques ont été réalisées avec succès chez les lapins adultes; cependant, il y a peu de publications concernant la gestion avancée de voie aérienne dans le lapinnouveau-né 10. Une étude décrit l’exécution de trachéostomies chez les animaux de cet âge pour évaluer la mécanique respiratoire et les volumes pulmonaires, bien qu’il s’agit d’une techniqueagressive et irréversible 11. Cette méthode pour l’intubation endotracheal s’est avérée être une méthode efficace et peu-coût de gestion des voies respiratoires chez les lapins nouveau-nés.
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Protocol
La procédure d’intubation décrite ci-dessous a été approuvée par le Comité institutionnel de soins et d’utilisation des animaux de l’Université de Barcelone (CEEA 180/19)
1. Préparation expérimentale
- Obtenez les matériaux suivants : tube d’alimentation en polyvinyle de 2 mm de diamètre (PVC), tube d’alimentation en polyuréthane de 6 Français (Fr), forceps de dissection à pointe plate et large et lubrifiant stérile (figure 1).
- Pendant les processus d’intubation et de chirurgie, maintenez des conditions stériles.
2. Anesthésie
- Anesthésier l’animal avec 5 mg/kg de xylazine et 25 mg/kg de kétamine appliqués ensemble intramusculairement dans le vastus lateralis des quadriceps fémoraux. Les agonistes Alpha-2 tels que la dexmedetomidine peuvent également être utilisés au lieu de la xylazine.
- Prévoyez de 3 à 5 minutes pour que le médicament atteigne l’effet.
- Lisez la même dose jusqu’à ce que l’anesthésie profonde soit atteinte (pédale négative, réflexes palpebraux et cornéens). Idéalement, le lapin maintiendra la respiration spontanée jusqu’à l’intubation.
3. Intubation endotracheal
- Déposer le lapin sur une couverture thermique à 37 °C. Placez l’animal dans la récumbence dorsale avec la tête dans l’hyperextension. Alignez la tête aussi droit et intermédiaire que possible. Un rouleau de quatre centimètres fait de gaze stérile placée dans la région dorsale du cou peut être utile pour atteindre au moins 45° d’extension (Figure 2).
- Utilisez des forceps de dissection à pointe plate et large pour ouvrir la cavité buccale d’environ un centimètre de large. Utilisez des forceps avec une extrémité émoussée et large pour éviter les traumatismes bucco-ux.
- Mesurer la distance entre la bouche et la région de l’estomac (première côte). Introduire un tube gastrique lubrifié de 6 Français (Fr) en polyuréthane à la marque pré-mesurée (figure 3-4).
- Déplacez le tube d’alimentation vers la gauche et fixez-le avec du ruban adhésif sur le champ chirurgical.
- Introduire le tube en endotracheal en PVC de 2 mm de diamètre, recouvert de lubrifiant stérile à la marque de 3 cm.
- S’il y a des difficultés à faire avancer le tube, déplacez-le complètement et reemptez jusqu’à ce qu’une glisse en douceur soit réalisée. Le risque de traumatisme au larynx et à l’épiglottis est significatif avec des tentatives multiples d’intubation. Fixer le tube avec du ruban adhésif sur le champ chirurgical (figure 5-6).
- Connectez le tube ensotracheal au ventilateur avec les réglages suivants : Volume de marée - 10 mL/kg; taux respiratoire : 40 respirations/min; FiO2 100%, PEEP 6.
- Confirmer la position correcte du tube par la détection de CO2 dans l’air expiré (ETCO2),la visualisation directe de l’expansion thoracique et la buée du tube. La surveillance de l’animal par oximétrie pulsée et auscultation pulmonaire peut également être utile (Figure 7).
- À la fin de l’expérience, utiliser un protocole normalisé d’euthanasie qui consiste en l’administration intraveineuse de pentobarbital 120-240 mg/kg. Répétez les doses jusqu’à ce que l’arrêt de l’haleine, l’absence réflexe et l’asystole soient atteints.
REMARQUE : Dans les expériences chirurgicales, l’animal est vivant pendant le processus de ventilation et est finalement euthanasié.
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Representative Results
En laboratoire, cette technique est réalisée par du personnel médical ayant de l’expérience dans l’expérimentation avec des lapins néo-zélandais et une expertise en gestion des voies respiratoires pédiatriques. La procédure a été effectuée par un chercheur sur 10 animaux avec un taux de réussite global de 90%. Auparavant, un autre chercheur avait pratiqué l’optimisation de la position de l’animal et de la longueur correcte de fixation du tube. Aucun des animaux n’a été intubé dans l’oesophage. Une seule tentative (10%) a échoué en raison de la taille extrêmement petite de l’animal( tableau 1). Une fois que l’intubation aveugle a été pratiquée, le succès est obtenu lors de la première tentative dans la plupart des cas, même si la procédure est effectuée par du personnel qui n’a pas été formé auparavant à la gestion des voies respiratoires du lapin. Nous avons atteint un taux de réussite d’intubation de 100% en une ou deux tentatives chez les animaux pesant égal ou supérieur à 120 g.
Figure 1: Matériaux nécessaires à l’expérience : forceps de dissection, tube d’alimentation, tube entéracheal, lubrifiant stérile. Veuillez cliquer ici pour voir une version plus grande de ce chiffre.
Figure 2: Position de l’animal avant l’intubation : Écume dorsale et hyperextension légère. Veuillez cliquer ici pour voir une version plus grande de ce chiffre.
Figure 3 :Ouverture de la bouche avec forceps de dissection. Veuillez cliquer ici pour voir une version plus grande de ce chiffre.
Figure 4 :Le tube d’alimentation est introduit dans l’estomac. Veuillez cliquer ici pour voir une version plus grande de ce chiffre.
Figure 5-6 : Le tube endotrachéal est introduit à l’aveuglette et fixé de 3 cm, avec le tube d’alimentation, dans le champ chirurgical. Veuillez cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.
Figure 6 :Tube endotrachéal fixe et tube d’alimentation. Veuillez cliquer ici pour voir une version plus grande de ce chiffre.
Figure 7 :L’animal est connecté au ventilateur. Veuillez cliquer ici pour voir une version plus grande de ce chiffre.
| NUMÉRO D’ANIMAL | POIDS (g) | Succès | Tentatives | Mort |
| 1 | 150 | + | 1 | - |
| 2 | 125 | + | 2 | - |
| 3 | 180 | + | 1 | - |
| 4 | 210 | + | 1 | - |
| 5 | 120 | + | 2 | - |
| 6 | 140 | + | 2 | - |
| 7 | 200 | + | 1 | - |
| 8 | 190 | + | 1 | - |
| 9 | 180 | + | 1 | - |
| 10 | 110 | - | 3 | + |
| Total | 160.5 | 90% | 1.5 | 10% |
Tableau 1 : Caractéristiques de l’échantillon animal et tentatives d’intubation enotracheal.
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Discussion
Les lapins sont largement utilisés dans l’expérimentation animale en raison de leur disponibilité, taux de reproduction élevé avec de courtes périodes intergénérationnelles, et facile àmanipuler 2. Dans notre centre, nous utilisons des lapins néo-zélandais de 5 à 7 jours (Oryctolagus cuniculus) comme modèle néonatal pour étudier les répercussions neurologiques de la chirurgie extracorporelle sur le cerveau en développement. En conséquence, nous utilisons des procédures qui nécessitent une anesthésie profonde et doit utiliser l’intubation ensotracheal pour des périodes de temps jusqu’à une heure.
Chez le lapin adulte, plusieurs techniques de gestion des voies respiratoires ont été décrites, généralement dans un contexte chirurgical. Lorsque nous avons essayé d’extrapoler ces techniques aux kits de lapin, plusieurs problèmes se sont posés. Les lapins pèsent entre 110 et 210 grammes et ont une plage maximale d’ouverture de la bouche de 1 cm. Ces caractéristiques rendent difficile la visualisation directe du larynx et il est compliqué de trouver un matériau endoscopique suffisamment petit. Une autre option décrite dans la littérature est de placer un otoscope dans la cavité buccale et de l’utiliser comme un guide pour introduire le tube de PVC7. Chez les lapins nouveau-nés, la présence de la langue et la petite taille de la bouche rendent difficile la visualisation directe de la glotte. En outre, il n’existe pas de dispositifs supraglottiques de dimensions adéquates pour les nouveau-nés.
En raison des circonstances mentionnées ci-dessus, il existe deux mécanismes fondamentaux pour sécuriser les voies respiratoires du très petit lapin : la trachéostomie et l’intubation aveugle. La trachéostomie est une approche invasive qui a été utilisée chez les lapins adultes etnouveau-nés 10,12. Il a l’avantage de la visualisation trachéale directe, permettant au procédural d’identifier l’emplacement exact du tube enchracheal. Cependant, il y a un risque élevé de complications mécaniques et d’infection de la zone d’incision, en plus d’un taux diminué de survie des animaux une fois que les procédures sontaccomplies 13. L’intubation endoscopique/fibreoptique est une méthode qui permettrait la visualisation directe sans chirurgie5. Une autre option pour prévenir le traumatisme laryngeal est l’utilisation d’un masque facial moulant, qui a quelques inconvénients supplémentaires tels que la ventilation sous-optimale et la distension gastrique.
En laboratoire, l’intubation aveugle est utilisée pour gérer les voies respiratoires des lapins nouveau-nés. Cette méthode a été décrite chez le lapin adulte comme une technique réalisable avec un indice de succès élevé6. Dans les premières expériences, nous avons essayé d’effectuer cette technique sans occlusion du tube digestif. Le résultat était un taux élevé d’introduction du tube endotracheal dans l’oesophage. Avec l’insertion du tube gastrique avant l’intubation, cependant, l’intubation réussie a été réalisée dans 90% de cas. En ce qui concerne la taille du tube entéracheal, nous avons d’abord essayé d’utiliser des cathéters veineux périphériques jusqu’à 14 jauges de diamètre, en observant les difficultés d’insertion (plus grande rigidité) et de ventilation (diamètre trop petit et difficulté à se connecter au ventilateur). D’après notre expérience, l’utilisation de tubes endotrarachéaux de 2 mm de diamètre interne introduits à une profondeur d’au plus 3 cm a été la plus efficace pour aérer les petits lapins, comme en montrent les valeurs gasométriques et ETCO2 correctes. Tandis que l’intubation chez les lapins adultes exige généralement l’hyperextension de la tête à essentiellement un angle de 90° à la surface horizontale de la table, nous avons pu exécuter la procédure avec seulement une extension douce de tête.
Un des éléments importants à considérer lors de l’exécution de cette procédure est la nature friable de la trachée de lapin nouveau-né. En gardant cela à l’esprit, nous introduisons le tube pré-lubrifié lentement et soigneusement pour éviter la perforation trachéale. Nous recommandons de ne pas insérer le tube plus loin que 3 cm, car il s’est révélé que c’était la longueur optimale pendant les tentatives de pratique, et d’arrêter l’intubation si le procédural rencontre une résistance; dans cette situation, il est préférable d’enlever le tube et de recommencer. Nous avons éprouvé un cas de perforation trachéale probable dans le plus petit animal dans la cohorte.
La principale limitation de cette technique est la difficulté à détecter la position correcte du tube ensotrachéal une fois introduit. D’après notre expérience, l’avancement de l’appareil sans résistance, la détection de l’ETCO2approprié, la buée du tube et la visualisation de l’expansion thoracique pendant la ventilation, ainsi que l’entretien des signes vitaux ont été suffisants pour corroborer l’adéquation de la procédure dans tous les cas. Dans certains des sujets expérimentaux, des gasometries artérielles ont été exécutées pendant la ventilation montrant des niveaux proportionnaux de dioxyde de carbone et de concentration d’oxygène. En outre, bien que l’analyse d’histopathologie n’ait pas été exécutée, la littérature précédemment éditée a décrit des dommages muqueux à la trachée en l’absence des changements cliniques secondaires à l’intubation14.
En conclusion, le modèle d’intubation chez les lapins nouveau-nés que nous avons décrit est une technique rapide qui utilise des fournitures de base et permet une ventilation efficace. Nous croyons que cette technique peut être incorporée dans l’arsenal de gestion des voies respiratoires des lapins néonatals.
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Disclosures
Les auteurs n’ont rien à divulguer.
Acknowledgments
Ces travaux ont été soutenus par des subventions de l’Instituto de Salud Carlos III [PFIS2017-0224], de « Beca Ruza » de la Sociedad Española de Cuidados Intensivos Pediátricos et du Vanderbilt Medical Scholars Program.
Les commanditaires n’ont pas participé à la collecte, à l’analyse ou à l’interprétation des données.
Nous tenons à remercier Isabel Salas pour l’aide apportée au sein du laboratoire animalier et M. Carles Fábrega et Mme Gemma Fernandez-Asensio de l’équipe techincal audiovisuelle de l’hôpital Sant Joan de Déu pour leur soutien technique à l’enregistrement vidéo et à la production.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 2 mm diameter Polyvinyl Chloride (PVC) endotracheal tube | Vygon | 520.20 | |
| 6 French polyurethane feeding tube | Vygon | 310.06 | |
| Anesthesia (Ketamine and Xylazine) | |||
| Multiparameter monitor Intellivue MP5 | Phillips | ||
| Plain and wide tip dissection forceps | LensforVision | AK005 | |
| Sterile lubricant (Silkospray) | Rush | ||
| Ventilator Servo 900c | Maquet |
References
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