Summary
Cet article présente un protocole pour l’échographie nerveuse dans les polyneuropathies pour aider au diagnostic des neuropathies inflammatoires.
Abstract
L’échographie nerveuse est de plus en plus utilisée dans le diagnostic différentiel de la polyneuropathie comme outil complémentaire aux études de conduction nerveuse. Des altérations morphologiques des nerfs périphériques, telles que l’augmentation de la section transversale (CSA), ont été décrites dans diverses polyneuropathies à médiation immunitaire. Les changements morphologiques les plus importants dans l’échographie nerveuse ont été décrits pour la maladie chronique de la polyneuropathie inflammatoire démyélinisante (CIDP). La PIDC peut être distinguée des polyneuropathies héréditaires et autres en mesurant l’étendue et le schéma des gonflements nerveux (augmentation de l’ASC). Les résultats typiques dans les neuropathies inflammatoires démyélinisantes sont des gonflements nerveux multifocaux avec une structure fasciculaire inhomogène, tandis que l’augmentation de l’ASC dans les neuropathies héréditaires démyélinisantes se produit d’une manière plus généralisée et homogène. Dans d’autres neuropathies axonales non inflammatoires, les nerfs peuvent apparaître avec une augmentation normale ou légère de l’ASC, en particulier dans les sites de piégeage typiques. Cet article présente les exigences techniques pour l’échographie nerveuse, une procédure d’examen utilisant un protocole d’examen standardisé, les valeurs de référence actuelles pour l’ASC et les résultats pathologiques échographiques typiques chez les patients atteints de neuropathies inflammatoires.
Introduction
Outre l’examen clinique, l’évaluation de toute polyneuropathie à grosses fibres comprend un examen électrophysiologique pour caractériser l’implication du système moteur ou sensoriel et différencier les dommages axonaux des dommages démyélinisants1. Dans la polyneuropathie axonale, la neuropathie toxique et diabétique sont les principales causes, tandis que dans les polyneuropathies démyélinisantes, les neuropathies héréditaires ou inflammatoires telles que la PIDC doivent être considérées 2,3,4. Les critères diagnostiques couramment utilisés pour la PIDC sont les critères de la Fédération européenne des sociétés neurologiques/Société des nerfs périphériques (EFNS/PNS) établis en 2005 et révisés en 2010 et 20215. Ceux-ci définissent des critères cliniques et électrophysiologiques pour diagnostiquer la PIDC et décrivent des critères supplémentaires tels que la biopsie nerveuse pour détecter la démyélinisation ou l’inflammation. Cependant, dans certains cas, malgré un bilan diagnostique approfondi, la cause de la neuropathie reste ambiguë. Dans ces cas, l’échographie nerveuse offre une méthode complémentaire pour examiner les nerfs non pas fonctionnellement mais morphologiquement6. Plusieurs études ont prouvé l’utilisation de l’échographie nerveuse comme outil supplémentaire dans le diagnostic de la PIDC, de sorte que les critères révisés de l’EFNS/SNP de 2021 ont mis en œuvre l’échographie nerveuse dans la ligne directrice5. L’avantage de l’échographie nerveuse par rapport à d’autres méthodes d’imagerie telles que la neurographie par résonance magnétique (MRN) est qu’elle peut être utilisée directement par les neurologues traitants comme outil de chevet; C’est relativement rentable. Il peut être utilisé à plusieurs reprises, car il est non invasif et non douloureux.
Les caractéristiques typiques de la PIDC observées dans l’échographie nerveuse sont l’augmentation de la section transversale (CSA)7,8, également observée dans les polyneuropathies héréditaires. Dans la PIDC, cela affecte les segments nerveux individuels de manière hétérogène 7,9.
Divers protocoles d’examen ont été publiés 10,11,12,13,14,15 pour tenter de clarifier les valeurs normales de l’ASC et de déterminer les positions anatomiques adéquates de l’examen échographique. Certains de ces postes sont similaires dans la plupart des protocoles d’examen. Cependant, il n’existe pas de protocole largement accepté pour normaliser le processus d’examen et simplifier l’interprétation des mesures.
Cet article démontre l’examen échographique nerveux à l’aide d’un protocole standardisé pour les polyneuropathies, présente diverses valeurs de référence pour l’ASC et montre des résultats pathologiques typiques chez les patients atteints de neuropathies inflammatoires.
Exigences techniques pour l’échographie nerveuse
L’échographie neuromusculaire est réalisée en mode B (mode Luminosité, image bidimensionnelle avec niveaux de gris) en utilisant l’imagerie composée de l’appareil échographique correspondant 6,16. L’imagerie composée permet de contrôler électroniquement les éléments piézoélectriques de la sonde sonique (transducteur) pour éclairer la structure cible sous différents angles17. Les ondes ultrasonores sont réfléchies dans plusieurs directions en raison de la structure histologique des nerfs périphériques. En raison du son provenant de différents angles, une partie plus importante des réflexions autrement perdues retourne à la sonde sonore (récepteur) et peut générer des images. Pour l’échographie neuromusculaire, une sonde à ultrasons à haute résolution avec transducteur linéaire de 18 MHz, pour les nerfs plus profonds, une sonde linéaire supplémentaire de 12 MHz (par exemple, pour afficher les nerfs tibial et fibulaire dans la fosse poplitée) est utilisée 6,16. Les transducteurs à basses fréquences entraînent une résolution spatiale et latérale réduite, de sorte que la différenciation des limites nerveuses des structures environnantes est moins précise. Les réglages optimaux peuvent être maintenus constants à l’aide d’un préréglage pour l’imagerie neuromusculaire fourni par le fabricant. Lors de l’examen, la profondeur de l’image et la position de mise au point doivent être ajustées à la structure à examiner et constamment adaptées à la position du nerf. Le gain de l’image B et le gain dépendant de la profondeur peuvent être ajustés pour optimiser l’image avec une luminosité uniforme. Les vaisseaux sanguins sont souvent proches des structures neurales et sont souvent utilisés comme points de repère pour effectuer les mesures à la même position. Pour représenter leur interaction anatomique et distinguer les nerfs et les vaisseaux, il est également nécessaire d’afficher la vitesse et la direction de l’écoulement à l’aide du Doppler pulsé et de l’échographie duplex à code couleur16,18. La fréquence de répétition des impulsions doit être adaptée aux vitesses de faible débit attendues dans les vaisseaux sanguins des extrémités, ou le Doppler de puissance doit être sélectionné pour le codage couleur16.
Les nerfs réfléchissent les ondes ultrasonores différemment selon les angles d’incidence, de sorte que l’échogénicité de l’image échographique varie (anisotropie)16,19. La meilleure image est obtenue sous un angle orthograde puisque les ondes ultrasonores sont réfléchies le plus fortement par les nerfs sous cet angle. Pour éviter l’anisotropie artificielle ou la déformation nerveuse, la sonde doit donc être maintenue en position neutre pendant l’examen sans appliquer de pression supplémentaire perpendiculaire aux nerfs (Figure 1). La section transversale (CSA) est mesurée dans l’épineurium mince et hyperéchogène (Figure 2) pour éviter les altérations du tissu épinerval dans la mesure19. Vous trouverez plus de détails sur l’échographie technique dans les références 6,16,17,18,19,20,21.
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Protocol
Tous les examens pour ce travail ont été effectués conformément aux directives institutionnelles de l’Université de la Ruhr à Bochum, en Allemagne.
1. Préparations expérimentales
- Préparation du patient
- Vérifiez les critères d’inclusion des patients: examinez les patients adultes diagnostiqués avec une polyneuropathie, suspecte d’origine inflammatoire.
- Vérifiez les critères d’exclusion des patients : n’examinez pas les patients présentant des plaies ouvertes ou des infections dans les régions à examiner.
- Points de contrôle instrumentaux
- Vérifiez l’intégrité de l’appareil à ultrasons et de tous les matériaux utilisés (voir Tableau des matériaux).
- Entrez le nom et les détails du patient dans l’appareil à ultrasons avant de commencer l’examen échographique (selon l’appareil).
- Choisissez une sonde à ultrasons appropriée (de préférence 14-18 MHz) (voir le tableau des matériaux) et préréglée pour l’échographie neuromusculaire.
- Pendant tout l’examen, ajustez la profondeur et concentrez-vous sur l’obtention d’une qualité d’image optimale.
- Dans la mesure du possible, examinez l’évolution complète de chaque nerf dans une vue en coupe transversale.
REMARQUE : Les nerfs recommandés pour l’examen sont : le nerf médian, ulnaire, radial, les racines cervicales, le plexus brachial et le nerf vagal, ainsi que les nerfs tibial, fibulaire et sural (figure 3). L’examen de chacun de ces nerfs est montré dans la section suivante et la vidéo. L’examen échographique complet selon le protocole suivant prendra ~30-45 min.
2. Examen échographique
- Commencez à examiner les nerfs du bras avec le patient assis dans une position neutre avec le bras reposant supiné sur une surface, par exemple, la jambe.
- Placez un peu de gel à ultrasons sur la sonde du transducteur, le poignet, l’avant-bras, le coude et le haut du bras.
- Pour l’examen du nerf médian, commencez par effectuer un balayage transversal au niveau du poignet.
- Déplacez-vous proximal pour suivre le parcours anatomique du nerf médian jusqu’au haut du bras.
- Mesurer l’ASC du nerf médian aux endroits suivants : à l’entrée du canal carpien (retinaculum flexorum); à l’avant-bras (10-15 cm proximal au flexorum du rétinaculum; au coude (creux du coude); au bras supérieur à côté de l’artère brachiale (au milieu de la distance entre l’épicondyle médial et la fosse axillaire).
- Pour l’examen du nerf ulnaire, commencez par effectuer un balayage transversal au niveau du poignet cubitus au nerf médian.
- Déplacez-vous proximale pour suivre le cours anatomique du nerf ulnaire le long du sillon jusqu’au haut du bras.
REMARQUE: En vous déplaçant vers le haut du bras, laissez le patient lever le bras plié au coude pour examiner le sillon et le haut du bras. - Mesurer l’ASC du nerf cubital aux endroits suivants : à l’entrée du canal de Guyon; à l’avant-bras (10-15 cm proximal au canal de Guyon); au niveau du coude (entre l’épicondyle médial et l’olécranon); au niveau du bras (au milieu de la distance entre l’épicondyle médial et la fosse axillaire).
- Pour examiner le nerf radial, laissez le patient tenir le bras devant l’estomac plié dans le coude et scanner le nerf radial directement à côté de l’humérus.
- Utilisez le mode duplex couleur pour éviter toute confusion avec l’artère et la veine qui l’accompagnent.
REMARQUE: Le mode duplex couleur montre le flux sanguin dans l’artère profunda brachii, et peut montrer un faible débit dans la veine correspondante, alors qu’aucun flux ne se produit dans le nerf radial. De plus, la veine peut être comprimée en exerçant une pression externe, et le nerf ne le peut pas. - Mesurer l’ASC du nerf radial à l’endroit suivant : nerf radial dans le sillon spiralé.
- Poursuivez l’examen du nerf vagal, des racines nerveuses cervicales et du plexus brachial.
- Placez le gel à ultrasons au milieu du cou.
- Pour examiner le nerf vagal, effectuez un balayage transversal au milieu du cou et trouvez l’artère carotide.
REMARQUE: Le nerf vagal se trouve directement à côté de l’artère carotide et de la veine jugulaire. - Mesurer l’ASC du nerf vagal au site suivant : au niveau de la gaine carotidienne au niveau de la bifurcation carotidienne.
- Pour l’examen des racines nerveuses cervicales, C5, C6, C7 déplacent la sonde dorsale et un peu de haut en bas.
REMARQUE: Les racines nerveuses cervicales apparaissent entre les tubercules antérieur et postérieur du processus transversal. C7 peut être reconnu par l’absence du tubercule antérieur de son processus transversal, tandis que les tubercules antérieurs et postérieurs se trouvent avec les autres racines nerveuses cervicales. - Mesurer l’ASC ou le diamètre des racines nerveuses cervicales à l’endroit le plus proximal possible, où la racine nerveuse sort au cours du processus transversal : C5; C6; C7.
- Pour examiner le plexus brachial, suivez le parcours anatomique des racines nerveuses cervicales distalement et trouvez-les effectuer des troncs et des cordons.
- Mesurer l’ASC du plexus aux endroits suivants : Espace intrascalène (entre le muscle scalène antérieur et le muscle scalène médial); Espace supraclaviculaire (à côté de A. subclavia).
- Poursuivez l’examen des nerfs des jambes.
- Laissez le patient s’allonger d’un côté avec les jambes légèrement pliées. Placez un peu de gel à ultrasons sur la sonde du transducteur, la fosse poplitée, le péroné, la malléole et la partie inférieure de la jambe.
- Pour l’examen du nerf fibulaire, palper la tête fibuleuse, placer le transducteur directement derrière elle, puis suivre le cours du nerf jusqu’à la fosse poplitée.
- Mesurer l’ASC du nerf fibulaire aux endroits suivants: juste proximal à la tête fibulaire; dans la fosse poplitée.
- Pour examiner le nerf tibial dans la fosse poplitée, trouvez le nerf fibulaire et l’artère poplitée dans la fosse poplitée.
REMARQUE: Le nerf tibial peut être trouvé juste au-dessus de l’artère poplitée dans la plupart des cas. - Mesurer l’ASC du nerf tibial au site suivant : dans la fosse poplitée.
- Pour l’examen du nerf tibial à la cheville, placez la sonde directement derrière la malléole médiale.
REMARQUE: Le nerf tibial peut être trouvé juste à côté de l’artère tibiale postérieure dans la plupart des cas. - Mesurer l’ASC du nerf tibial au site suivant : au niveau de la cheville médiale.
- Pour l’examen du nerf sural, placez la sonde à la cheville latérale.
REMARQUE: Le nerf sural peut être trouvé à côté d’une veine superficielle dans la plupart des cas. - Suivez l’évolution anatomique du nerf sural à proximité de la jambe.
- Mesurer l’ASC du nerf sural à l’endroit suivant : entre la tête latérale et médiale du muscle gastrocnémien.
- Effectuez toutes les mesures des deux côtés.
- Enregistrez les résultats de toutes les mesures (en fonction de l’appareil à ultrasons) et terminez l’examen.
REMARQUE : La figure 3 donne un aperçu de tous les sites de mesure de l’ASC.
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Representative Results
Chaque laboratoire d’échographie devrait établir ses valeurs de référence CSA en recueillant des données auprès de la population locale en bonne santé, car des appareils à ultrasons spécifiques et des variables dépendantes de l’examinateur ou de la population peuvent conduire à des résultats légèrement différents dans chaque laboratoire. Cependant, pour indiquer quelles valeurs d’ASC peuvent être considérées comme normales, les données de deux principaux groupes allemands d’échographie nerveuse et une méta-analyse récente de toutes les valeurs de référence publiées jusqu’à présent 13,14,15,22,23 sont résumées dans le tableau 1. Les valeurs de référence pour les patients étudiés dans le cadre de ce protocole dans notre service sont celles de Kerasnoudis et al.22 (Tableau 1).
Les résultats typiques dans les neuropathies inflammatoires démyélinisantes sont des gonflements nerveux multifocaux avec des fascicules inhomogènes, tandis que les gonflements nerveux dans les neuropathies héréditaires démyélinisantes se produisent plus généralisés et homogènes12,24. Le corrélat histologique de l’augmentation de l’ASE est supposé être une inflammation aiguë et une démyélinisation et une remyélinisation répétées; Toutefois, cette question doit encore faire l’objet d’une enquête7. Dans d’autres neuropathies axonales non inflammatoires, les nerfs peuvent sembler normaux ou légèrement augmentés, en particulier dans les sites de piégeage typiques25,26,27,28.
Pour simplifier l’interprétation des résultats, le score échographique Bochum ajusté est suggéré comme système de notation, ce qui aide à distinguer les neuropathies inflammatoires chroniques telles que la PIDC des neuropathies non inflammatoires.
Le score échographique de Bochum ajusté est calculé à partir du nombre de sites avec une ASC significativement élargie de six des sites de mesure décrits ci-dessus: nerf médian à l’avant-bras, nerf médian au bras, nerf ulnaire à l’avant-bras, nerf ulnaire au bras supérieur, nerf radial au bras supérieur et nerf sural au mollet. L’examen de ces six sites seulement prendra ~15 min. Chacun de ces six sites est noté avec 1 point si le nerf présente un élargissement pathologique de l’ASC d’un ou des deux côtés du corps. Ainsi, le score minimum est de 0 point, et le score maximum est de 6 points. Avec ce système de notation, si ≥2 points sont attribués, le diagnostic de PIDC est possible avec une sensibilité de ~53% et une spécificité de ~83%, même si des lésions axonales supplémentaires dans les études de conduction nerveuse entraînent une détection difficile par des critères électrophysiologiques.
Différents groupes ont proposé d’autres systèmes de notation pour différencier les neuropathies 10,11,18,29,30. Aucun de ces scores n’est largement utilisé. Le score échographique Bochum ajusté est basé sur des publications antérieures qui décrivent le score échographique de Bochum10 dérivé de quatre sites de mesure pour distinguer le CIDP du syndrome de Guillain-Barré et le protocole d’échographie nerveux30 dérivé de neuf sites de mesure pour différencier le CIDP de MMN, MADSAM et neuropathie vasculaire ou paraprotéinémique. Ces différents scores doivent être utilisés en fonction de la question exacte. Le score échographique Bochum ajusté a été développé pour diagnostiquer la PIDC si les études de conduction nerveuse montrent une PDIC possible définie par le critère électrophysiologique EFNS/PNS5.
Cependant, même si le score échographique de Bochum ajusté n’utilise que six sites nerveux pour le calcul, tous les autres sites nerveux décrits et l’ensemble de l’évolution de chaque nerf doivent être examinés pour détecter les lésions focales31 ou exclure une hypertrophie homogène. Dans le cas d’une hypertrophie nerveuse homogène, la neuropathie héréditaire doit être envisagée24. Les systèmes de notation de l’homogénéité et des altérations de la structure fasciculaire ont été décrits précédemment et peuvent aider à évaluer l’homogénéité 8,24,32.
Pour les images échographiques d’une personne en bonne santé, voir la figure 4; par exemple, les images d’un patient CIDP, voir la figure 5.
Figure 1 : Examen du nerf médian au niveau du poignet. Pour éviter l’anisotropie artificielle ou la déformation nerveuse, la sonde doit être maintenue dans une position neutre pendant l’examen sans appliquer de pression supplémentaire perpendiculaire aux nerfs. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.
Figure 2 : Mesure de la section transversale (CSA). La section transversale est mesurée dans l’épineurium mince et hyperéchogénique. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.
Figure 3 : Aperçu des sites de mesure pour l’ASC. Étoiles bleues - nerf médian, étoiles vertes - nerf ulnaire, étoile rouge - nerf radial, étoile rose - nerf vagal, étoiles jaunes - racines cervicales et plexus brachial, étoiles blanches - nerf fibulaire, étoiles violettes - nerf tibial, étoile brune - nerf sural. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.
Figure 4 : Exemples d’images d’une personne en bonne santé des six sites nerveux utilisés dans le score échographique Bochum ajusté. A - nerf médian à l’avant-bras, B - nerf médian au bras, C - nerf radial au bras, D - nerf ulnaire à l’avant-bras, E - nerf ulnaire au bras supérieur, F - nerf sural au mollet. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.
Figure 5 : Exemples d’images d’un patient atteint de PIDC des six sites nerveux utilisés dans le score échographique Bochum ajusté. A - nerf médian à l’avant-bras, B - nerf médian au bras, C - nerf radial au bras, D - nerf ulnaire à l’avant-bras, E - nerf ulnaire au bras supérieur, F - nerf sural au mollet. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.
| Kerasnoudis et coll.22 | Grimm et coll.23 | Méta-analyse par | ||||
| Fisse et coll.13-15 | ||||||
| Nerf | Site | moyenne ASC | écart type | moyenne ASC | moyenne ASC | IC à 95 % |
| (mm2) | (mm2) | (mm2) | (mm2) | |||
| Nerf médian | Poignet | 8.43 | 2.07 | 10.6 | 8.3 | 7.9 - 8.7 |
| Avant-bras | 6.6 | 1.6 | 7.2 | 6.4 | 5.9 - 6.9 | |
| Coude | - | - | 9.2 | - | - | |
| Bras supérieur | 8.4 | 2.87 | 9.1 | 8.3 | 7.5 - 9.0 | |
| Nerf cubital | Guyon loge | 5.16 | 1.03 | - | 4.1 | 3.6 - 4.6 |
| Avant-bras | 5.46 | 1.26 | 5.9 | 5.2 | 4.8 - 5.7 | |
| Coude | 5.33 | 1.4 | 8.7 | 5.9 | 5.4 - 6.5 | |
| Bras supérieur | 6.53 | 1.82 | 7 | 6.6 | 5.1 - 6.1 | |
| Nerf radial | Bras supérieur | 3.26 | 1.52 | - | 5.1 | 4.0 - 6.2 |
| Nerf vagal | Gaine carotidienne | - | - | 2.2 | 2.2 | 1.5 – 2.9 |
| C5 | - | - | 2.4* | 5.6 | 4.6 – 6.7 | |
| C6 | - | - | 3.4* | 8.8 | 7.4 – 10.3 | |
| C7 | - | - | - | 9.5 | 8.0 – 10.9 | |
| Plexus brachial | Espace intrascalène | 30.93 | 10.82 | - | - | - |
| Espace supraclaviculaire | 46.13 | 18.27 | - | - | - | |
| Nerf fibulaire | Tête de péroné | 7.1 | 2.3 | - | 8.4 | 6.8 – 9.9 |
| Fosse poplitée | 8.60 | 1.77 | 8.4 | 7.9 | 6.6 – 9.2 | |
| Nerf tibial | Fosse poplitée | 8.43 | 2.68 | 23.2 | 25.9 | 17.5 – 34.4 |
| Malleolus | 6.36 | 1.45 | 10.2 | 10 | 7.7 – 12.4 | |
| Nerf sural | Têtes du muscle gastrocnémien | 1.82 | 0.64 | 2.2** | 2.4 | 1.7 – 3.1 |
| * Grimm et al.23 ont mesuré le diamètre, pas le CSA pour les racines C5 et C6. | ||||||
| ** Grimm et al.23 ont mesuré le nerf sural à la cheville latérale. | ||||||
Tableau 1 : Valeurs de référence de l’ASE pour les patients. Les valeurs de référence proposées sont basées sur la publication de Kerasnoudis et al.22, Grimm et al.23 et une méta-analyse récente de Fisse et al.13,14,15. Les valeurs de référence pour les patients étudiés dans notre service dans le cadre du protocole présenté ici sont celles de Kerasnoudis et al.22.
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Discussion
L’échographie nerveuse est un outil de diagnostic supplémentaire utile dans les polyneuropathies. Il peut donner des informations sur les causes possibles de la polyneuropathie en fonction de l’étendue et du modèle d’élargissement des nerfs. De plus, les altérations de l’ASC dans l’évolution longitudinale de la maladie chez les patients atteints de PIDC ont été décrites comme étant corrélées à l’évolution clinique de la maladie et à la réponse au traitement33,34,35,36.
Étapes critiques du protocole
Pour obtenir des résultats reproductibles, une méthodologie cohérente et une normalisation des examens sont essentielles37,38. Chaque examinateur doit tenir compte des écarts résultant de différents appareils à ultrasons et des différences démographiques locales. Pour assurer la haute qualité et la reproductibilité des mesures échographiques, une formation spécifique de l’examinateur est également nécessaire 13,14,15,21,39.
Modifications et dépannage de la technique
Les résultats typiques dans les neuropathies inflammatoires démyélinisantes sont des gonflements nerveux multifocaux avec des fascicules inhomogènes33,40. Par conséquent, la mesure de l’ASC de sites nerveux spécifiques est nécessaire, mais le nerf entier doit être scanné. En outre, l’évaluation de la structure fasciculaire et de l’échogénicité peut aider dans les cas non concluants, car non seulement l’augmentation de l’ASC de l’ensemble du nerf, mais aussi les gonflements intrafasciculaires ainsi que les nerfs hypoéchogènes et hyperéchogènes se trouvent dans la PIDC. Les nerfs hypoéchogènes sont considérés comme résultant d’un œdème aigu, tandis que les nerfs hyperéchogènes résultent d’un remodelage fibreux40,41.
Limites de la technique
Il existe des limites anatomiques pour l’échographie nerveuse, c’est-à-dire que l’examen des racines nerveuses cervicales peut être difficile, voire impossible, chez les patients obèses et ayant un cou court. En outre, l’imagerie des racines nerveuses proximales des nerfs des membres inférieurs du plexus lombo-sacré n’est pas possible en raison de la profondeur de pénétration limitée des rayons ultrasonores. Une méthode alternative, l’évaluation de ces nerfs, est possible par MRN42, mais l’échographie est la méthode la plus courante en raison de sa flexibilité spatiale et temporelle et de son utilisation rentable43.
Importance par rapport aux méthodes existantes
L’échographie nerveuse est recommandée comme outil supplémentaire et complémentaire dans le diagnostic des polyneuropathies pour évaluer la morphologie nerveuse. Les séances d’entraînement diagnostiques standard, y compris les études de conduction nerveuse et d’autres outils tels que l’analyse du liquide céphalorachidien, doivent toujours être effectuées.
Applications futures de la technique
Pour les experts en polyneuropathies, l’échographie nerveuse est intéressante pour le diagnostic en routine clinique et car elle peut donner un aperçu des aspects physiopathologiques possibles, c’est-à-dire représenter l’inflammation. Par conséquent, l’échographie nerveuse est une méthode prometteuse non seulement dans l’utilisation clinique, mais aussi dans la recherche neuromusculaire. En outre, avec les progrès croissants de la technologie des ultrasons, les futures caractéristiques échographiques telles que l’élastographie par ondes de cisaillement ou la vascularisation des nerfs périphériques pourraient ajouter d’autres aspects à l’évaluation des polyneuropathies.
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Disclosures
Les auteurs ne déclarent aucun conflit d’intérêts lié à ce manuscrit.
Acknowledgments
Nous reconnaissons le soutien de l’Université de la Ruhr à Bochum pour nos recherches sur l’échographie neuromusculaire.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Affiniti 70 | Philips GmbH | n/a | with preset for neuromuscular ultrasound |
| L18-5 linear array transducer | Philips GmbH | n/a | |
| Ultrasound gel | C + V Pharma Depot GmbH | n/a |
References
- Lehmann, H. C., Wunderlich, G., Fink, G. R., Sommer, C.
- Sommer, C., et al. Polyneuropathies- etiology, diagnosis, and treatment options. Deutsches Arzteblatt International. 115 (6), 83-90 (2018).
- Shahrizaila, N., Lehmann, H. C., Kuwabara, S.
- Lehmann, H. C., Burke, D., Kuwabara, S. Chronic inflammatory demyelinating polyneuropathy: update on diagnosis, immunopathogenesis and treatment. Journal of Neurology, Neurosurgery, and Psychiatry. 90 (9), 981-987 (2019).
- den Bergh, P. Y. K. V., et al. European Academy of Neurology/Peripheral Nerve Society guideline on diagnosis and treatment of chronic inflammatory demyelinating polyradiculoneuropathy: Report of a joint Task Force - Second revision. Journal of the Peripheral Nervous System. , 1-27 (2021).
- Kramer, M., et al. Nerve ultrasound as helpful tool in polyneuropathies. Diagnostics. 11 (2), 211 (2021).
- Grimm, A., et al. A look inside the nerve - Morphology of nerve fascicles in healthy controls and patients with polyneuropathy. Clinical Neurophysiology. 128 (12), 2521-2526 (2017).
- Padua, L., et al. Heterogeneity of root and nerve ultrasound pattern in CIDP patients. Clinical Neurophysiology. 125 (1), 160-165 (2014).
- Winter, N., et al. Nerve ultrasonography as an additive tool to clinical examination and electrodiagnostics in sporadic mononeuritis - Imaging is the key. Ultraschall in der Medizin - European Journal of Ultrasound. 40 (4), 465-472 (2019).
- Kerasnoudis, A., Pitarokoili, K., Gold, R., Yoon, M. -S. Bochum ultrasound score allows distinction of chronic inflammatory from multifocal acquired demyelinating polyneuropathies. Journal of the Neurological Sciences. 348 (1-2), 211-215 (2015).
- Grimm, A., Rattay, T. W., Winter, N., Axer, H. Peripheral nerve ultrasound scoring systems: benchmarking and comparative analysis. Journal of Neurology. 264 (2), 1-11 (2016).
- Telleman, J. A., Grimm, A., Goedee, S., Visser, L. H., Zaidman, C. M.
- Fisse, A. L., Katsanos, A. H., Gold, R., Pitarokoili, K., Krogias, C. Cross-sectional area reference values for peripheral nerve ultrasound in adults: a systematic review and meta-analysis-Part I: Upper extremity nerves. European Journal of Neurology. 28 (5), 1684-1691 (2021).
- Fisse, A. L., Katsanos, A. H., Gold, R., Krogias, C., Pitarokoili, K. Cross-sectional area reference values for peripheral nerve ultrasound in adults: A systematic review and meta-analysis-Part II: Lower extremity nerves. European Journal of Neurology. 28 (7), 2313-2318 (2021).
- Fisse, A. L., Katsanos, A. H., Gold, R., Pitarokoili, K., Krogias, C. Cross-sectional area reference values for peripheral nerve ultrasound in adults: A systematic review and meta-analysis-Part III: Cervical nerve roots and vagal nerve. European Journal of Neurology. 28 (7), 2319-2326 (2021).
- Carroll, A. S., Simon, N. G. Current and future applications of ultrasound imaging in peripheral nerve disorders. World Journal of Radiology. 12 (6), 101-129 (2020).
- Entrekin, R. R., et al. Real-time spatial compound imaging: Application to breast, vascular, and musculoskeletal ultrasound. Seminars in Ultrasound, CT and MRI. 22 (1), 50-64 (2001).
- Walker, F. O., et al. Indications for neuromuscular ultrasound: Expert opinion and review of the literature. Clinical Neurophysiology. , 1-67 (2018).
- Dengler, R., et al. AANEM - IFCN glossary of terms in neuromuscular electrodiagnostic medicine and ultrasound. Muscle & Nerve. 62 (1), 10-12 (2020).
- Mah, J. K., van Alfen, N. Neuromuscular ultrasound: Clinical applications and diagnostic values. Canadian Journal of Neurological Sciences / Journal Canadien des Sciences Neurologiques. 45 (6), 605-619 (2018).
- Tawfik, E. A., et al. Guidelines for neuromuscular ultrasound training. Muscle & Nerve. 60 (4), 361-366 (2019).
- Kerasnoudis, A., Pitarokoili, K., Behrendt, V., Gold, R., Yoon, M. -S. Cross sectional area reference values for sonography of peripheral nerves and brachial plexus. Clinical Neurophysiology. 124 (9), 1881-1888 (2013).
- Grimm, A., Axer, H., Heiling, B., Winter, N. Nerve ultrasound normal values - Readjustment of the ultrasound pattern sum score UPSS. Clinical Neurophysiology. 129 (7), 1403-1409 (2013).
- Padua, L., et al. Intra- and internerve cross-sectional area variability: New ultrasound measures. Muscle & Nerve. 45 (5), 730-733 (2012).
- Kühn, E., et al.
- Pitarokoili, K., et al. Facing the diagnostic challenge: Nerve ultrasound in diabetic patients with neuropathic symptoms. Muscle & Nerve. 54 (1), 18-24 (2016).
- Pitarokoili, K., et al. High-resolution nerve ultrasound and electrophysiological findings in restless legs syndrome. Journal of Neuroimaging. 28 (5), 506-514 (2018).
- Fisse, A. L., et al. New approaches to critical illness polyneuromyopathy: High-resolution neuromuscular ultrasound characteristics and cytokine profiling. Neurocritical Care. 35 (1), 139-152 (2021).
- Grimm, A., Décard, B. F., Axer, H., Fuhr, P. The Ultrasound pattern sum score - UPSS. A new method to differentiate acute and subacute neuropathies using ultrasound of the peripheral nerves. Clinical Neurophysiology. 126 (11), 2216-2225 (2015).
- Kerasnoudis, A., Pitarokoili, K., Haghikia, A., Gold, R., Yoon, M. -S. Nerve ultrasound protocol in differentiating chronic immune-mediated neuropathies. Muscle & Nerve. 54 (5), 864-871 (2016).
- Klauser, A. S., et al. Carpal tunnel syndrome assessment with US: Value of additional cross-sectional area measurements of the median nerve in patients versus healthy volunteers. Radiology. 250 (1), 171-177 (2009).
- Grimm, A., et al. Ultrasound pattern sum score, homogeneity score and regional nerve enlargement index for differentiation of demyelinating inflammatory and hereditary neuropathies. Clinical Neurophysiology. 127 (7), 2618-2624 (2016).
- Fisse, A. L., et al. Clinical, sonographic, and electrophysiologic longitudinal features of chronic inflammatory demyelinating polyneuropathy. Journal of Neuroimaging. 29 (2), 223-232 (2018).
- Fionda, L., et al. Changes of clinical, neurophysiological and nerve ultrasound characteristics in CIDP over time: a 3-year follow-up. Journal of Neurology. 268 (8), 3011-3019 (2021).
- Härtig, F., et al. Nerve ultrasound predicts treatment response in chronic inflammatory demyelinating polyradiculoneuropathy-a prospective follow-up. Neurotherapeutics. 15 (2), 439-451 (2018).
- Décard, B. F., Pham, M., Grimm, A. Ultrasound and MRI of nerves for monitoring disease activity and treatment effects in chronic dysimmune neuropathies - Current concepts and future directions. Clinical Neurophysiology. 129 (1), 155-167 (2018).
- Alshami, A. M., Cairns, C. W., Wylie, B. K., Souvlis, T., Coppieters, M. W. Reliability and size of the measurement error when determining the cross-sectional area of the tibial nerve at the tarsal tunnel with ultrasonography. Ultrasound in Medicine & Biology. 35 (7), 1098-1102 (2009).
- Impink, B. G., Gagnon, D., Collinger, J. L., Boninger, M. L. Repeatability of ultrasonographic median nerve measures. Muscle & Nerve. 41 (6), 767-773 (2010).
- Garcia-Santibanez, R., Dietz, A. R., Bucelli, R. C., Zaidman, C. M. Nerve ultrasound reliability of upper limbs: Effects of examiner training. Muscle & Nerve. 57 (2), 189-192 (2018).
- Gamber, D., et al. High-resolution nerve ultrasound to assess nerve echogenicity, fascicular count, and cross-sectional area using semiautomated analysis. Journal of Neuroimaging. 30 (4), 493-502 (2020).
- Fisse, A. L., et al. Nerve echogenicity and intranerve CSA variability in high-resolution nerve ultrasound (HRUS) in chronic inflammatory demyelinating polyneuropathy (CIDP). Journal of Neurology. 266 (2), 468-475 (2019).
- van Rosmalen, M. H. J., et al. Quantitative assessment of brachial plexus MRI for the diagnosis of chronic inflammatory neuropathies. Journal of Neurology. 268 (3), 978-988 (2021).
- Pitarokoili, K., Schlamann, M., Kerasnoudis, A., Gold, R., Yoon, M. S. Comparison of clinical, electrophysiological, sonographic and MRI features in CIDP. Journal of the Neurological Sciences. 357 (1-2), 198-203 (2015).
