Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
JoVE Journal Medicine
Click here for the English version

Medicine

Выделение клеток моноцитарно-макрофаговой линии из костей крыс методом вторичной адгезии

Published: July 13, 2022 doi: 10.3791/64053
Automatic Translation
*1, *2, 1, 1, 1
1School of Medical Technology and Information Engineering, Zhejiang Chinese Medical University, 2School of Basic Medical Sciences, Fudan University
* These authors contributed equally

Summary

Здесь мы представляем протокол изоляции БММ от крыс SD, называемый методом вторичной адгезии.

Abstract

При снижении минеральной плотности костной ткани кости чаще ломаются, что негативно сказывается на качестве жизни пациента. Рост и развитие костей в основном регулируются остеобластами и остеокластами. Широко признано, что остеокласты получают из моноцитарно-макрофаговых клеток костного мозга (BBM). БММ и другие гемопоэтические стволовые клетки расположены в полости костного мозга. Поэтому выделение одиночных стабильных БММ из разных и гетерогенных клеточных популяций является огромной проблемой. Здесь мы представляем протокол изоляции БММ от крыс SD, называемый методом вторичной адгезии. Адгезивные клетки, культивируемые в течение 24-48 ч в первичной культуре, собирали. Проточный цитометрический анализ показал, что примерно 37,94% клеток были CD11b/c+ (моноцитарно-макрофагальный поверхностный антиген). Окрашивание тартрат-резистентной кислой фосфатазой (TRAP) и анализ вестерн-блоттинга показали, что BBM могут дифференцироваться в остеокласты in vitro. Приведенные выше результаты свидетельствуют о том, что вторичные клетки адгезии могут рассматриваться как подходящая клеточная модель для исследования дифференцировки остеокластов.

Introduction

Сообщалось, что клетки моноцитарно-макрофаговой линии, существующие в костном мозге, могут дифференцироваться в моноциты крови и тканевые макрофаги 1,2. Вышеуказанные клетки, которые могут дифференцироваться в остеокласты, чтобы сбалансировать рост и развитие костей, обычно используются в качестве клеточной модели для индуцирования остеокластов in vivo 3,4. Костный мозг представляет собой специальную ткань, содержащую несколько различных типов клеток, которые включают, но не ограничиваются только мезенхимальными стволовыми клетками костного мозга, моноцитарно-макрофагальными клетками (БММ), гемопоэтическими стволовыми клетками, эндотелиальными клетками и иммунными клетками. Фактически, несколько предыдущих исследований показали, что адгезивные клетки, выброшенные из полости костного мозга длинной кости, могут дифференцироваться в остеобласты, остеокласты, хондроциты или адипоциты 5,6,7,8. Хотя различные методы изоляции и культивирования использовались для получения различных однородных клеточных популяций, по-прежнему существуют большие проблемы в выделении и культивировании БММ из множества различных типов клеток.

Было разработано несколько методов извлечения мононуклеарных макрофагов костного мозга (BMSCs). Однако большинство из этих методов являются сложными 9,10,11. Например, центрифугирование градиента плотности требует специализированного комплекта, а операция занимает много времени и громоздко. Этот метод подходит для выделения БММ из больших объемов образцов крови, но не из образцов костного мозга 9,12,13. Кроме того, извлечение образцов тканей с помощью переваривания коллагеназы является сложной и трудоемкой процедурой; этот метод не рекомендуется для выделения БММ из образцов костного мозга14,15. Кроме того, хотя разделение потока может привести к высокоочищенным популяциям моноцитов/макрофагов, оно требует очень больших размеров выборки и высоких требований к инструментам и оборудованию10,16. Кроме того, метод обогащения микрогранул чрезвычайно дорог и неосуществим в общей лаборатории17.

Поэтому в текущем исследовании был предложен удобный, быстрый и дешевый метод выделения мононуклеарных макрофагов из костного мозга. Клетки костного мозга, приклеенные в течение разных временных точек, использовались для выделения БММ с использованием метода вторичной адгезии. BBM, извлеченные с помощью вышеуказанного метода, могут индуцировать образование остеокластов in vitro, обеспечивая тем самым простую и удобную клеточную модель для будущего изучения остеопороза in vitro.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

Все эксперименты в этом исследовании были проведены в соответствии с руководящими принципами экспериментов на животных Центра лабораторных исследований животных Чжэцзянского китайского медицинского университета (номер одобрения: IACUC-20181029-11).

1. Извлечение клеток

  1. Поместите крыс Sprague-Dawley (крысы SD, 1-10 дней, самец или самка) в клетки эвтаназии, заполненные CO2 со сбалансированной скоростью 30%-70% объема контейнера в минуту. После того, как крысы потеряют сознание (20-60 мин), усыпляют крысу путем вывиха шейки матки, чтобы обеспечить безболезненную смерть.
  2. Погрузите крыс в 75% спирт на 10 мин для дезинфекции.
  3. Аккуратно удалите все конечности крысы ножницами и щипцами, аспирируйте PBS с помощью пипетки и смойте кровь, прилипшую к конечностям.
  4. Добавьте 5 мл раствора пенициллина/стрептомицина в 500 мл ДМЭМ и хорошо перемешайте. Возьмите 50 мл стерильной центрифужной трубки, добавьте 5 мл FBS и 45 мл среды DMEM и тщательно перемешайте, чтобы получить 10% FBS DMEM, содержащий 1% раствор пенициллина / стрептомицина. Добавьте 2 мл вышеуказанной питательной среды в пробирку объемом 5 мл.
  5. Переместите кости конечностей в трубку объемом 5 мл. Используйте ножницы, чтобы разрезать кости конечностей в трубке на мелкие кусочки (1-3 мм) и смешать гомогенат, чтобы повторно подвешивать клетки костного мозга в культуральную среду. Постоять 5 мин, пока фрагменты ткани не осядут на дно трубки.
  6. Добавьте 10 мл 10% FBS DMEM в 100 мм культуральную чашку, а затем переложите супернатант в культуральную посуду. При аспирации надосадочного вещества избегайте переноса остатков тканей в культуральную посуду.
  7. Инкубировать при 37 °C и 5% CO2 в течение приблизительно 24 ч. После этого инкубационного времени большинство мезенхимальных стволовых клеток будут прилипать к стенке культуральной чашки и медленно расти, в то время как большинство БММ все еще будут подвешены в культуральной среде.
  8. Переместите клеточную суспензию в 100-мм чашке для культивирования в новую колбу размером25 см2 и продолжайте культивировать клетки при 37 °C и 5% CO2 в течение дополнительных 24 ч. БММ будут прилипать к стенке колбы через 24-48 ч культуры. Аккуратно удалите старую среду и замените ее свежей средой после того, как КБМ прилипнут к стенке колбы.
  9. Субкультура, когда клетки в колбе достигали 80%-90% слияния.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Все клетки культивировали при 37 °C и 5% CO2. Во время культивирования морфология клеток постепенно унифицировалась. Клетки были большими, неправильной формы, радиально растущими и прикрепленными к колбе в виде диска, где можно было наблюдать несколько ядер.

2. Окрашивание ячейки FACS

  1. Трипсин переваривают с использованием 1-2 мл коммерческого трипсина при 37 °C и 5% CO2 в течение 5 мин и подсчитывают вторичные адгезивные клетки для обеспечения конечного количества клеток 100 000 на образец (подсчет клеток с помощью гемоцитометра Нойбауэра).
  2. Разделить клетки на три группы (500 мкл PBS содержит 100 000 клеток): (1) пустая контрольная группа, содержащая неокрашенные клетки; 2) контрольная группа изотипов; и (3) экспериментальная группа (окрашивание CD11b/c).
  3. Инкубировать первичные антитела (отсутствие антител для пустой контрольной группы; контроль изотипа анти-CD11 для контрольной группы изотипа, 0,6 мкл антитела/образец, 1 мкг/образец; анти-CD11b/c для экспериментальной группы, 1 мкл антитела/образец, 1 мкг/образец) на льду в течение 30 мин.
  4. Центрифугу при 300-350 х г в течение 5 мин, отбросьте надосадочный агент и повторно суспендируйте ячейки с 500 мкл PBS. Повторите вышеуказанную процедуру один раз, чтобы убедиться, что несвязанные первичные антитела смыты.
  5. Инкубировать соответствующее вторичное антитело (без антитела для пустой контрольной группы; козий анти-кролик IgG для контроля изотипа и экспериментальных групп, антитело 0,25 мкл/образец, 1:2000) на льду в темноте в течение 30 мин.
  6. Центрифугу при 300-350 х г в течение 5 мин, отбросьте надосадочный агент и повторно суспендируйте ячейки с 500 мкл PBS. Повторите вышеуказанную процедуру один раз, чтобы убедиться, что несвязанные вторые антитела смыты.
  7. Обнаружение CD11b/c положительных клеток с помощью проточной цитометрии (10 000 клеток/образец) и анализ данных с помощью программного обеспечения (например, FlowJo 7.5).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Для получения конечного процента клеток CD11b/c+ использовалась следующая формула: Процент CD11b/c+ клеток в экспериментальной группе - процент CD11+ клеток в контрольной группе изотипа.

3. Окрашивание Райта-Гимса

  1. Посейте адгезивные вторичные клетки, которые были пройдены три раза, на 35 мм2 клеточные альпинистские листы (1 × 106 клеток / лунка) и культивируйте при 37 °C и 5% CO2 в течение 24 ч.
  2. Выбрасываем питательную среду и трижды промываем ПБС.
  3. Добавьте раствор красителя Райта-Гимса (0,5 мл-0,8 мл) в лист для подъема клеток в течение 1 мин.
  4. Краситель смешать с дистиллированной водой (0,5 мл-0,8 мл) ватным тампоном и постоять 10 мин.
  5. Раствор красителя промыть дистиллированной водой, а затем высушить в течение 1-3 мин. Наблюдайте под микроскопом.

4. Окрашивание TRAP

  1. Посейте адгезивные вторичные клетки, которые были пройдены три раза, на 35 мм2 клеточные альпинистские листы (1 × 106 клеток / лунка) и культивируйте при 37 °C и 5% CO2 в течение 24 ч.
  2. Заменить старую среду 10% FBS DMEM или индукционной средой остеокластов, дополненной активатором рецептора 50 нг/мл ядерного фактора-κB лиганда (RANKL) и 30 нг/мл макрофагового колониестимулирующего фактора (M-CSF), и культивировать при 37 °C и 5% CO2 в течение дополнительных 7 дней.
  3. Окрашивайте клетки с помощью окрашивающего набора TRAP в соответствии с протоколом производителя и наблюдайте под микроскопом.
    ПРИМЕЧАНИЕ: TRAP-положительные клетки были определены как остеокласты, которые были фиолетовыми под световым микроскопом. Количество TRAP-положительных клеток измеряли с помощью программного обеспечения ImageJ.

5. Вестерн Блот

  1. Засейте адгезивные вторичные клетки, которые были пройдены три раза на 35 мм2 клеточных альпинистских листах (1 × 106 клеток / лунка) и культивируйте в течение 24 ч.
  2. Заменить старую среду свежей 10% FBS DMEM или индукционной средой остеокластов (50 нг/мл RANKL и 30 нг/мл M-CSF) и культивировать в течение дополнительных 7 дней при 37 °C и 5% CO2.
  3. Экстрагируют общие клеточные белки с буфером RIPA, отделяют 10% SDS-PAGE и переносят на поливинилиденфторидные мембраны18,19.
  4. Запрещать 5% порошком обезжиренной кислоты (25 мл) в течение 2 ч и промывать трижды, по 10 мин каждый раз, с TBS-Tween 20 (TBST).
  5. Инкубировать первичные антитела при 4 °C в течение ночи (анти-β-актин, анти-TRAP и антикатепсин К; все первичные антитела разбавляли 1:1000, 10 мл разбавленного антитела / полосы) и трижды промывали TBST.
  6. Инкубировать вторичное антитело (козий анти-кролик IgG, разведение 1:2000, 10 мл разбавленного антитела/полосы) при комнатной температуре в течение 2 ч и трижды промыть TBST. Визуализируйте белковые полосы с помощью развивающегося раствора.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Уровни экспрессии вышеуказанных белков были нормализованы до β-актина.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Вторичная популяция адгезивных клеток была стабильной и однородной. При непрерывной пролиферации клеток большинство клеток становилось больше, с неправильной формой и росло в радиальный адгезивный диск (рисунок 2C,D). Проточная цитометрия показала, что процент клеток, экспрессирующих CD11b/c, молекулярный маркер на поверхности клеток моноцитарно-макрофаговой линии, составлял примерно 37,94% (рисунок 2A,B). Чтобы дополнительно проверить, что CD11b/c положительные клетки были клетками линии моноцитов-макрофагов, дифференцировка вторичных адгезивных клеток в остеокласты была индуцирована после лечения клеток RANKL и M-CSF. Результаты окрашивания TRAP показали, что по сравнению с контрольной группой количество внутриклеточных фиолетово-красных гранул было значительно увеличено в клетках, индуцированных RANKL и M-CSF (рисунок 2E,F). Кроме того, уровни экспрессии остеокласт-специфических белков TRAP и катепсина K были значительно увеличены (рисунок 2G,H).

Figure 1
Рисунок 1: Блок-схема метода экстракции вторичных адгезивных клеток. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Figure 2
Рисунок 2: (A-B) После трех поколений стабильной культуры вторичных адгезивных клеток CD11b/c положительные клетки были обнаружены с помощью проточной цитометрии. (С-Д) Показана морфология вторичных адгезивных клеток после трех поколений (C для белого света, D для окрашивания Райта-Гимса). (Е-Ф) Окрашивание TRAP использовалось для обнаружения влияния RANKL и M-CSF на образование остеокластов (E для контроля; F для RANKL и M-CSF). (Г-Н) Клетки обрабатывали RANKL и M-CSF в течение 7 дней, а уровни экспрессии TRAP и катепсина K определяли с помощью анализа вестерн-блоттинга. Данные выражаются как среднее ± SD трех независимых экспериментов. P < 0,001 по сравнению с контрольной группой. TRAP, тартрат-устойчивая кислая фосфатаза; РАНКЛ, активатор рецепторов ядерного фактора-κB лиганда; М-ликвор, макрофагальный колониестимулирующий фактор. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Таблица 1: Способ извлечения макрофагов Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы загрузить эту таблицу.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Остеокласты являются одним из наиболее значимых типов клеток, участвующих в возникновении и развитии заболеваний костей, а также одним из основных объектов исследования заболеваний костей20. Моноциты / макрофаги могут дифференцироваться в остеокласты. Поскольку мононуклеарные макрофаги (клетки RAW264.7) слишком дороги в покупке и легко активируются во время культивирования, трудно проводить эксперименты по дифференцировке in vitro с использованием этой клеточной линии. Хотя было разработано несколько методов извлечения моноцитов/макрофагов из костного мозга, включая центрифугирование градиента плотности, переваривание коллагеназы, обогащение микросферы и проточную цитометрию (таблица 1), эти методы отнимают много времени, хотя они требуют больших объемов образцов и дорогостоящего оборудования. Поэтому текущее исследование было направлено на то, чтобы предложить простой и быстрый метод извлечения моноцитов / макрофагов из образцов костного мозга.

В костном мозге есть много клеточных популяций, включая BMSCs, эндотелиальные клетки и иммунные клетки в дополнение к BBM. Как мы все знаем, BMSC могут дифференцироваться в остеобласты, и этот процесс повлияет на дифференциацию BBM в остеокласты21. Однородные и стабильные БММ являются значимыми факторами для индуцирования дифференцировки остеокластов in vitro, поэтому особенно важно учитывать эти ограничивающие факторы при выделении и извлечении БММ. В то же время способность БММ дифференцироваться в остеокласты также ослабнет во время непрерывного прохождения. Поэтому сложно выделить ИММ из костного мозга и успешно индуцировать их в остеокласты.

Мы обнаружили, что существуют различия во времени адгезии адгезивных клеток в костном мозге. Более конкретно, BMSC в основном прилипают к стене чашки культуры в течение 0-24 ч культуры, в то время как BMM начинают прилипать к стене чашки культуры через 24 ч. Основываясь на вышеприведенном выводе, был выбран метод вторичной приверженности для выделения БММ. Для извлечения БММ были выбраны крысы-сосущие SD (возраст 1-10 дней), поскольку КБМ молодых крыс проявляют более сильную дифференцировочную способность. Клетки костного мозга крыс SD собирали, и после культивирования в течение 24 ч клеточную суспензию переносили и культивировали еще в течение 24 ч. Собранные вторичные адгезивные клетки содержали большое количество БММ. После культивирования вторичные адгезивные клетки постепенно очищались и становились стабильными и однородными. Результаты проточной цитометрии показали, что процент cd11b/c положительных клеток достиг примерно 37,94%. Кроме того, окрашивание TRAP и анализ вестерн-блоттинга показали, что извлеченные BBM могут дифференцироваться в остеокласты. Этот вывод соответствовал предыдущему исследованию, также предполагающему, что BBM, извлеченные методом вторичной адгезии, могут быть успешно дифференцированы в остеокласты22.

Метод вторичного адгезии может быть использован для простого и быстрого извлечения мононуклеарных макрофагов из костного мозга, не требуя высокотехнологичного лабораторного оборудования. В то же время этот метод подходит для выделения клеток из небольшого образца костного мозга, тем самым преодолевая громоздкие и трудоемкие трудности, наблюдаемые в предыдущих методах, обычно используемых для извлечения мононуклеарных макрофагов. В целом, БММ, извлеченные методом вторичной адгезии, могут быть успешно дифференцированы в остеокласты in vitro, обеспечивая тем самым стабильную клеточную модель для исследования остеокластов in vitro .

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Авторы заявляют, что у них нет конкурирующих интересов.

Acknowledgments

Эта работа была поддержана Фондом естественных наук провинции Чжэцзян (грант No. LY19H060001) и Проект научно-технического плана традиционной китайской медицины провинции Чжэцзян (No 2022ZB093).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
35 mm2 cell climbing slices NEST Biotechnology 80102
Anti-cathepsin K Abcam ab19027 1:1,000
Anti-CD11 isotype control Abcam ab172730 1 μg/test,1.675 mg/Ml
Anti-CD11b/c Absin abs124232  1μg/test, 1 mg/mL
Anti-TRAP Abcam ab191406 1:1,000
Anti-β-actin Beyotime  AF5003 1:1,000
Cell climbing slices NEST Biotechnology 80102
Cell culture dish corning 430167
Cell culture flask corning 430168
Dulbecco's modified eagle medium (DMEM) Gibco C11995500BT
Fetal bovine serum (FBS) Gibco 10099141C
Goat anti-rabbit IgG Abcam ab150077 for IF, 1:2,000
goat anti-rabbit IgG Abcam ab6721 for WB, 1:2,000
M-CSF Pepro tech 400-28
PBS Biosharp BL302A
RANKL Pepro tech 400-30
SD rat Shanghai SLAC Laboratory Animal Co, Ltd 1-10 days old
SDS-PAGE gel preparation kit Solarbio P1200
TRAP/ALP Staining Kit Wako 294-67001
Trypsin-EDTA solution Biosharp BL512A
Wright-Giemsa solution Keygen Biotech KGA225-1

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Jakubzick, C. V., Randolph, G. J., Henson, P. M. Monocyte differentiation and antigen-presenting functions. Nature Reviews. Immunology. 17 (6), 349-362 (2017).
  2. Locati, M., Curtale, G., Mantovani, A. Diversity, mechanisms, and significance of macrophage plasticity. Annual Review of Pathology. 15 (1), 123-147 (2020).
  3. Boyle, W. J., Simonet, W. S., Lacey, D. L. Osteoclast differentiation and activation. Nature. 423 (6937), 337-342 (2003).
  4. Ono, T., Nakashima, T. Recent advances in osteoclast biology. Histochemistry and Cell Biology. 149 (4), 325-341 (2018).
  5. Zhou, X., et al. Wnt/ß-catenin-mediated p53 suppression is indispensable for osteogenesis of mesenchymal progenitor cells. Cell Death & Disease. 12 (6), 521-534 (2021).
  6. Yu, Q., Zhao, B., He, Q., Zhang, Y., Peng, X. B. microRNA-206 is required for osteoarthritis development through its effect on apoptosis and autophagy of articular chondrocytes via modulating the phosphoinositide 3-kinase/protein kinase B-mTOR pathway by targeting insulin-like growth factor-1. Journal of Cellular Biochemistry. 120 (4), 5287-5303 (2019).
  7. Li, Z., MacDougald, O. A. Preclinical models for investigating how bone marrow adipocytes influence bone and hematopoietic cellularity. Best Practice & Research. Clinical Endocrinology & Metabolism. 35 (4), 101547-101560 (2021).
  8. Horowitz, M. C., et al. marrow adipocytes. Adipocyte. 6 (3), 193-204 (2017).
  9. Maridas, D. E., Rendina-Ruedy, E., Le, P. T., Rosen, C. J. Isolation, culture, and differentiation of bone marrow stromal cells and osteoclast progenitors frommice. Journal of Visualized Experiments. (131), e56750 (2018).
  10. Schyns, J., et al. Non-classical tissue monocytes and two functionally distinct populations of interstitial macrophages populate the mouse lung. Nature Communications. 10 (1), 3964-3980 (2019).
  11. Atif, S. M., Gibbings, S. L., Jakubzick, C. V. Isolation and identification of interstitial macrophages from the lungs using different digestion enzymes and staining strategies. Methods in Molecular Biology. 1784, 69-76 (2018).
  12. Scheven, B. A., Milne, J. S., Robins, S. P. A sequential culture approach to study osteoclast differentiation from nonadherent porcine bone marrow cells. In Vitro Cellular & Developmental Biology. Animal. 34 (7), 568-577 (1998).
  13. Bradley, E. W., Oursler, M. J. Osteoclast culture and resorption assays. Methods in Molecular Biology. , 19-35 (2008).
  14. Yu, Y. R., et al. Flow cytometric analysis of myeloid cells in human blood, bronchoalveolar lavage, and lung tissues. American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology. 54 (1), 13-24 (2016).
  15. Gibbings, S. L., Jakubzick, C. V. A consistent method to identify and isolate mononuclear phagocytes from human lung and lymph nodes. Methods in Molecular Biology. 1799, 381-395 (2018).
  16. Jacquin, C., Gran, D. E., Lee, S. K., Lorenzo, J. A., Aguila, H. L. Identification of multiple osteoclast precursor populations in murine bone marrow. Journal of Bone and Mineral Research. 21 (1), 67-77 (2006).
  17. Gibbings, S. L., et al. Three unique interstitial macrophages in the murine lung at steady state. American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology. 57 (1), 66-76 (2017).
  18. Higashi, S. L., et al. Ultra-high-speed western blot using immunoreaction enhancing technology. Journal of Visualized Experiments. (163), e61657 (2020).
  19. Gallagher, S., Chakavarti, D. Immunoblot analysis. Journal of Visualized Experiments. 20 (16), 759 (2008).
  20. Yin, Z., et al. Glycyrrhizic acid suppresses osteoclast differentiation and postmenopausal osteoporosis by modulating the NF-κB, ERK, and JNK signaling pathways. European Journal of Pharmocology. 859, 172550 (2019).
  21. Liu, F., et al. LRRc17 controls BMSC senescence via mitophagy and inhibits the therapeutic effect of BMSCs on ovariectomy-induced bone loss. Redox Biology. , (2021).
  22. Jin, X., et al. Thioacetamide promotes osteoclast transformation of bone marrow macrophages by influencing PI3K/AKT pathways. Journal of Orthopedic Surgery and Research. 17 (1), 53-63 (2022).

Tags

Медицина выпуск 185 клетки линии моноцитов-макрофагов дифференциальная приверженность дифференцировка клеток
Выделение клеток моноцитарно-макрофаговой линии из костей крыс методом вторичной адгезии
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Jin, X., Li, Y., Chen, X., Chen, J., … More

Jin, X., Li, Y., Chen, X., Chen, J., Xu, J. Isolation of Monocyte-Macrophage Lineage Cells from Rat Bones by Secondary Adherence Method. J. Vis. Exp. (185), e64053, doi:10.3791/64053 (2022).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter