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Medicine

Eine modifizierte Technik zur arteriovenösen Fistelkonstruktion bei Kaninchen

Published: February 10, 2023 doi: 10.3791/64352
* These authors contributed equally

Summary

Das vorliegende Protokoll schlägt die Schaffung einer arteriovenösen Fistel bei Kaninchen unter Verwendung einer modifizierten No-Touch-Technik vor. Die Technik beinhaltet die seitliche Anastomose der A. carotis communis und der Vena jugularis externa, ohne dass das perivenöse Gewebe diseziert oder die Arterie durchtrennt wird.

Abstract

Die Juxta-Anastomosenstenose ist ein schwieriges Problem, das häufig zu einer Nichtreifung führt und die Durchgängigkeit einer arteriovenösen Fistel (AVF) verringert. Verletzungen der Venen und Arterien während der Operation und hämodynamische Veränderungen können zu einer Intimahyperplasie führen, die zu einer juxta-anastomosischen Stenose führt. Um Verletzungen der Venen und Arterien während der Operation zu reduzieren, wird in dieser Studie eine neue modifizierte No-Touch-Technik (MNTT) für die AVF-Konstruktion vorgeschlagen, die die Rate der Juxta-Anastomosenstenose verringern und die AVF-Durchgängigkeit verbessern kann. Um die hämodynamischen Veränderungen und Mechanismen der MNTT zu entschlüsseln, wurde in dieser Studie ein AVF-Verfahren mit dieser Technik vorgestellt. Obwohl dieses Verfahren technisch anspruchsvoll ist, wurde nach entsprechender Schulung ein Verfahrenserfolg von 94,4 % erzielt. Letztendlich hatten 13 von 34 Kaninchen 4 Wochen nach der Operation eine funktionelle AVF, was zu einer AVF-Durchgängigkeitsrate von 38,2 % führte. Nach 4 Wochen lag die Überlebensrate jedoch bei 86,1 %. Die Ultraschalluntersuchung zeigte einen aktiven Blutfluss durch AVF-Anastomose. Darüber hinaus wurde die spiralförmige laminare Strömung in der Vene und Arterie in der Nähe der Anastomose beobachtet, was darauf hindeutet, dass diese Technik die Hämodynamik der AVF verbessern könnte. Bei histologischer Beobachtung wurde eine signifikante venöse Intimalhyperplasie an der AVF-Anastomose beobachtet, während an der proximalen äußeren Jugularvene (EJV) der Anastomose keine signifikante Intimalhyperplasie beobachtet wurde. Diese Technik wird das Verständnis der Mechanismen verbessern, die der Verwendung von MNTT für die AVF-Konstruktion zugrunde liegen, und technische Unterstützung für die weitere Optimierung des chirurgischen Ansatzes bei der AVF-Konstruktion bieten.

Introduction

Die Konstruktion einer arteriovenösen Fistel (AVF) wird in der klinischen Praxis häufig bei Patienten eingesetzt, die sich einer Erhaltungshämodialyse (MHD) unterziehen, und sie hat eine höhere Durchgängigkeit und weniger Komplikationen als ein arteriovenöses Transplantat (AVG) oder ein getunnelter Manschettenkatheter (TCC)1,2. Obwohl AVF die bevorzugte Art des Gefäßzugangs ist, ist sie nicht perfekt und hat inhärente Einschränkungen. Die primären 1-Jahres-AVF-Durchgängigkeitsraten betragen nur 60%-65%, wobei viele Misserfolge in der nahen Anastomosenregion auftreten 3,4,5.

Die Gefäße werden während des traditionellen chirurgischen Zugangs unterschiedlich stark geschädigt, was sich letztendlich auf die Reifung der AVF auswirkt. Neue chirurgische Modalitäten, wie die von Hörer et al.6 vorgeschlagene No-Touch-Technik (NTT) (ergänzende Abbildung 1) und die von Sadaghianloo et al.7,8 und Bai et al.9 vorgeschlagene radiale Arterienexkursion und -reimplantation (RADAR), wurden entwickelt, um die Rate der juxta-anastomosischen Stenose zu verringern und die Durchgängigkeit der Fistel durch Modifikation der Operationstechnik zu verbessern. Obwohl die Wirkung von RADAR besser war als die von NTT, wurde beobachtet, dass die arterielle Stenose im Zufluss bei RADAR stärker ausgeprägt war. Um die Verletzung der Venen und Arterien während der Operation weiter zu reduzieren, wurde im Jahr 2021 eine neue modifizierte No-Touch-Technik (MNTT) vorgeschlagen, um eine radiozephale AVF zu erzeugen, bei der das perivenöse Gewebe um die Vena cephalica erhalten bleibt, ohne die Arteria radialis zu durchtrennen (ergänzende Abbildung 1 und ergänzende Abbildung 2). Die vorläufigen Ergebnisse zeigten eine erhöhte primäre Durchgängigkeit, eine verminderte juxta-anastomosische Stenose und keine arterielle Stenose10,11.

In Anbetracht des derzeitigen Mangels an Tiermodellen für AVF unter Verwendung von MNTT und um den Mechanismus der MNTT in der AVF-Chirurgie weiter zu erforschen, wird in dieser Studie ein AVF-Verfahren der gemeinsamen Halsschlagader (CCA) und der äußeren Jugularvene (EJV) mit MNTT eingeführt.

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Protocol

Die experimentellen Verfahren mit Versuchstieren wurden von der Ethikkommission für experimentellen Tierschutz der Medizinischen Universität Nanjing genehmigt. Für diese Studie wurden neuseeländische Kaninchen im Alter von 10 Monaten (beiderlei Geschlechts; Körpergewicht: 3,18 ± 0,24 kg) verwendet. Die Tiere stammen aus einer kommerziellen Quelle (siehe Materialtabelle).

1. Vorbereitung der Tiere

  1. Die Kaninchen werden mit einer gemischten intravenösen Injektion von Tiletaminhydrochlorid und Zolazepamhydrochlorid (3 mg/kg) in die marginale Ohrvene und einer intramuskulären Injektion von Sumianxin II (0,02 ml/kg) (siehe Materialtabelle) in den Muskel der Hintergliedmaßen anästhesiert.
    HINWEIS: Nach ca. 1-3 min stabilisiert sich die betäubende Wirkung. Bevor Sie fortfahren, sollte der Grad der Anästhesie überprüft werden, indem die Haut hinter dem Hals eingeklemmt und der Hornhautreflex beobachtet wird. Tiletaminhydrochlorid, Zolazepamhydrochlorid (0,5 mg/kg) und Sumianxin II (0,01 ml/kg) können bei Bedarf während der Operation hinzugefügt werden.
  2. Legen Sie das Kaninchen in Rückenlage auf einen festen Tisch (siehe Materialtabelle) und binden Sie die Gliedmaßen und Schneidezähne mit Fesseln zusammen.
  3. Rasieren Sie den Hals und die obere Brust mit einem Elektrorasierer und entfernen Sie die Haare mit tierischer Enthaarungscreme (siehe Materialtabelle).
  4. Halten Sie die sterilen Bedingungen während der Operation aufrecht, indem Sie die chirurgischen Geräte autoklavieren und den Operationsbereich mit Povidon-Jod-Lösung reinigen.

2. Hautschnitt

  1. Positionieren Sie das Kaninchen mit dem Kopf in Richtung des Chirurgen.
  2. Machen Sie einen Längsschnitt von ~3 cm zwischen dem Unterkiefer und dem Sternoklavikulargelenk mit einer chirurgischen Schere oder einer Skalpellklinge.

3. Präparation der Vena jugularis externa (EJV)

  1. Legen Sie den Schnitt frei und identifizieren Sie die richtige EJV. Stellen Sie sicher, dass die EJV und ihr perivaskuläres Gewebe deutlich sichtbar sind und nicht präpariert werden.
    HINWEIS: Die EJV zeigt ein umgekehrtes "Y"-Muster, und der Ast in der Nähe des medialen Halses muss anastomosiert werden.
  2. Bauen Sie einen Tunnel, durch den eine Gefäßklemme geführt werden kann (siehe Materialtabelle) in Richtung senkrecht zur EJV. Achten Sie darauf, dass die Abstände zwischen den Öffnungen auf beiden Seiten des Tunnels und der EJV >1 cm betragen.
  3. Platzieren Sie eine Gefäßklemme entlang des Tunnels.
  4. Machen Sie einen weiteren Tunnel (wie in Schritt 3.2) am distalen EJV mit der gleichen Methode.
    Anmerkungen: Stellen Sie sicher, dass der Abstand zwischen den beiden Tunneln ≥2 cm beträgt.
  5. Legen Sie eine 4-0-Naht (siehe Materialtabelle) und eine Gefäßklemme entlang des Tunnels an, um den Blutfluss zu kontrollieren (Abbildung 1A).

4. Präparieren und Präparatieren der Arteria carotis communis (CCA)

  1. Verwenden Sie eine Pinzette (siehe Materialtabelle), um die CCA lateral der Luftröhre und medial des M. sternocleidomastoideus zu untersuchen.
    HINWEIS: Der CCA hat eine pulsierende Empfindung und verläuft parallel zum Halsnerv.
  2. Präparieren Sie den CCA stumpf auf eine Länge von ca. 2 cm.
    HINWEIS: Vermeiden Sie eine Verletzung des Vagusnervs und seiner Äste mit einem tiefen arteriellen Verlauf.
  3. Legen Sie einen 4-0-Faden um den CCA, um den Blutfluss bei Bedarf zu kontrollieren.
  4. Gefäßklemmen (siehe Materialtabelle) so distal und proximal wie möglich anbringen (Abbildung 1B).

5. Vorbereitung der Anastomose

  1. Bei Aderlass und Anastomose wird mit einer Mikroschere ( siehe Materialtabelle) der innere Teil der EJV (4 mm lang) vom umgebenden Gewebe befreit.
  2. Machen Sie einen 4 mm langen Längsschnitt mit einer Mikroskopschere in der Mitte der Vene. Spülen Sie die Vene mit Heparinlösung (100 IE/ml), um eine Thrombose zu vermeiden.
  3. Machen Sie mit einer scharfen Klinge und einer Mikroschere einen ca. 4 mm großen Längsschnitt in der Vorderwand der Arterie. Spülen Sie die Arterie mit 100 IE/ml Heparinlösung, bis das Gefäß frei von Blut ist.

6. Seitliche Anastomose

  1. Ziehen Sie EJV und CCA so nah wie möglich zusammen.
  2. Wenden Sie die Kunlin-Technik12 für die Side-to-Side-Anastomose von CCA und EJV mit 8-0 an nicht resorbierbare Nähte (siehe Materialtabelle). Naht zuerst die Hinterwand des Gefäßes (Abbildung 1C), gefolgt von der Vorderwand des Gefäßes.
    HINWEIS: Da die EJV-Wand bei einem Kaninchen dünn ist, sollte während der Operation darauf geachtet werden, dass die Gefäße nicht beschädigt werden, die später die Durchgängigkeit der Anastomose beeinträchtigen könnten. Während des Prozesses der vaskulären Anastomose muss wiederholt Heparinlösung (100 I.E./ml) verwendet werden, um das Lumen zu spülen, um eine Thrombose zu verhindern.

7. Entfernung der Gefäßklemme und Ligatur der Vene

  1. Entfernen Sie nacheinander die distale Gefäßklemme des CCA, die proximale Gefäßklemme des EJV und die proximale Gefäßklemme des CCA. Beobachte den aktiven Blutfluss durch die Anastomose.
  2. Ligieren Sie das distale Ende der EJV mit der zuvor platzierten 4-0-Naht. Entfernen Sie die distale Gefäßklemme der EJV.
  3. Entfernen Sie den Faden, der um den CCA gelegt wurde (Abbildung 1D).

8. Hautverschluss und postoperative Pflege

  1. Nachdem sichergestellt wurde, dass keine signifikanten Blutungen im Operationsfeld auftreten, wird die Halshaut mit unterbrochenen Nähten verschlossen (4-0).
  2. Setzen Sie das Kaninchen in einen Käfig, bis es sich vollständig erholt hat. In der Regel dauert dies 30-45 Minuten.
    HINWEIS: Im Falle einer unvollständigen oder verzögerten Genesung sollte darauf geachtet werden, dass das Kaninchen keinen hämodynamischen Schock aufgrund von Blutungen im Operationsbereich erleidet. Bei Bedarf ist Sumianxin II (0,01 ml/kg) postoperativ zu verabreichen.

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Representative Results

Das Ergebnis der erfolgreichen Anwendung dieser Technik ist ein Patent-AVF im Hasenhals. In dieser Studie wurden die folgenden Kriterien verwendet, um den Erfolg zu bewerten: (1) Wenn die vaskuläre Anastomose abgeschlossen ist, kann der venöse Tremor der AVF berührt und das Gefäßgeräusch gehört werden; (2) 4 Wochen nach Etablierung der AVF kann der aktive Blutfluss durch die Anastomose der inneren Fistel mittels Farbdoppler-Ultraschall gemessen werden; (3) 4 Wochen nach Etablierung der AVF zeigt die Hämatoxylin-Eosin (H&E)-Färbung eine signifikante venöse Intimalhyperplasie an der AVF-Anastomose.

Insgesamt wurden 36 gesunde neuseeländische Kaninchen in diese Studie eingeschlossen. Insgesamt hatten 34 Kaninchen eine sofort erfolgreiche AVF mit dem MNTT. Drei Kaninchen hatten erhebliche postoperative Blutungen, und eines starb an Blutverlust. Die verbleibenden zwei Kaninchen benötigten eine Kompressionshämostase, um die Blutung zu stoppen. Darüber hinaus starben vier Kaninchen nach der Operation, mit häufigen Symptomen wie Niesen, Husten, laufender Nase, Magersucht und Durchfall. Schließlich überlebten 31 Kaninchen und 13 hatten 4 Wochen nach der Operation eine funktionelle AVF. Die Überlebensrate lag bei 86,1 % (Abbildung 2).

Die AVF wurde 4 Wochen nach der Operation mittels Farbdopplersonografie (CDU) beurteilt, um die Durchgängigkeit zu bestätigen, definiert als aktiver Blutfluss durch die AVF-Anastomose (Abbildung 3). Darüber hinaus wurde die spiralförmige laminare Strömung sowohl an der Vene als auch an der Arterie in der Nähe der Anastomose beobachtet (Abbildung 3). Hinsichtlich der Ultraschallparameter zwischen der AVF und den normalen Gefäßen am kontralateralen Hals zeigten sich signifikante Unterschiede im Durchmesser und PSV der EJV und im Durchmesser der CCA (Tabelle 1).

Die AVF wurde 4 Wochen nach der Operation entnommen und in Schnitte aufgeteilt. Die H&E-Färbung wurde an allen erhaltenen Schnitten durchgeführt. Eine signifikante venöse Intimalhyperplasie wurde an der Stelle der AVF-Anastomose beobachtet (Abbildung 4), während an der proximalen EJV der Anastomose keine signifikante Intimalhyperplasie beobachtet wurde (Abbildung 4).

Figure 1
Abbildung 1: Die CCA-EJV-AVF, die in Kaninchen mit dem MNTT erzeugt wurde. (A) Es wurden zwei Tunnel entlang der senkrechten Richtung zur EJV gebaut. (B) Die CCA wurde mobilisiert. (C) Mit Hilfe der Kunlin-Technik wurde eine Side-to-Side-Anastomose von CCA und EJV durchgeführt. (D) Das distale Ende der EJV war ligiert, und durch das proximale Ende war ein offener Blutfluss sichtbar. Abkürzungen: CCA = Arteria carotis communis; EJV = Vena jugularis externa; AVF = arteriovenöse Fistel; MNTT = modifizierte No-Touch-Technik. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung zu sehen.

Figure 2
Abbildung 2: Überlebenskurven für die Kaninchen. Ein Kaninchen starb unmittelbar nach der Operation an Blutverlust. Die restlichen vier Kaninchen starben am 3., 7., 10. und 26. Tag nach der Operation. Schließlich waren 4 Wochen nach der Operation 31 Kaninchen am Leben. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung zu sehen.

Figure 3
Abbildung 3: Der CDU-Auswertungsatlas der AVF . (A) Die CCA zeigte unidirektionale niederohmige Blutflussspektren, den Verlust eines normalen dreiphasigen Blutflusses, verbreiterte systolische Peaks und einen reichlichen diastolischen Blutfluss. (B) Die EJV zeigte arterienartige Blutflussspektren mit niedrigem Widerstand, mit erhöhtem PSV und erweiterten Spektren. (C) Aktiver Blutfluss durch die AVF-Anastomose. (D) Spiralförmige laminare Strömung wurde in den EJV-Ausflussgebieten beobachtet. Abkürzungen: AVF = arteriovenöse Fistel; CCA = Arteria carotis communis; EJV = Vena jugularis externa; PSV = maximale systolische Geschwindigkeit. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung zu sehen.

Figure 4
Abbildung 4: Beobachtung der AVF-Morphologie von Kaninchen 4 Wochen nach der Operation (H&E-Färbung). (A) Es wurde keine signifikante Intimahyperplasie der CCA mit einer offensichtlichen AVF beobachtet. (B) Die elastische Membran der EJV an der Anastomosenstelle mit einer patentierten AVF war stark gestört, mit signifikanter Intimalhyperplasie. Auf der Innenseite der elastischen Membranen waren dicke hyperplastische Fasergewebe mit reduzierten und fragmentierten elastischen Fasern deutlich sichtbar. (C) Die proximale EJV der Anastomose wies keine signifikante Intimalhyperplasie mit einer offenen AVF auf. Diese zeigte intakte elastische Membranen und schlanke, wellenförmige elastische Fasern. Abkürzungen: AVF = arteriovenöse Fistel; CCA = Arteria carotis communis; EJV = Vena jugularis externa. Vergrößerung: 200x. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung zu sehen.

Gruppe Vena jugularis externa Arteria carotis communis
Durchmesser (mm) PSV (cm/s) Durchmesser (mm) PSV (cm/s)
AVF 7.21 ± 1.55 79.64 ± 39.31 3,06 ± 0,32 59.38 ± 32.25
Normales Gefäß 3,13 ± 0,66 9.21 ± 2.77 2,17 ± 0,41 39.02 ± 11.56
t 5.413 3.996 3.779 1.329
P 0.001 0.004 0.005 0.22

Tabelle 1: Vergleich der Ultraschallparameter zwischen der AVF und normalen Gefäßen am kontralateralen Hals bei Kaninchen (n = 5). Abkürzung: PSV = Peak Systolic Speedcity. Der t-Test wird für die Datenanalyse verwendet. Wenn der P-Wert <0,05 beträgt, ist der Vergleich zwischen den beiden Gruppen statistisch signifikant.

Ergänzende Abbildung 1: Schematische Darstellung der vaskulären Anastomosenmodi in der AVF-Chirurgie. (A) Traditionelle AVF-Operation. (B) Ein AVF, das mit dem NTT erstellt wurde. (C) Ein AVF, das mit dem MNTT erstellt wurde. Abkürzungen: AVF = arteriovenöse Fistel; NTT = No-Touch-Technik; MNTT = modifizierte No-Touch-Technik. Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.

Ergänzende Abbildung 2: Funktionelle End-to-Side-Anastomose AVF mit dem MNTT. Abkürzungen: AVF = arteriovenöse Fistel; MNTT = modifizierte No-Touch-Technik. Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.

Ergänzende Abbildung 3: Kaninchenmodell von AVF, das mit der konventionellen Technik erstellt wurde. (A) Die EJV wurde aus dem perivenösen Gewebe heraus präpariert. (B) Die EJV und die CCA wurden zusammengelegt. (C) Mit Hilfe der Kunlin-Technik wurde eine Side-to-Side-Anastomose von CCA und EJV durchgeführt. (D) Das distale Ende der EJV war ligiert, und der offene Blutfluss wurde sichtbar durch das proximale Ende geleitet. Abkürzungen: CCA = Arteria carotis communis; EJV = Vena jugularis externa; AVF = arteriovenöse Fistel. Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.

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Discussion

Derzeit stehen mehrere Tiermodelle für AVF zur Verfügung. Unter ihnen werden Schweine, Schafe und Hunde meist als Großtiermodelle verwendet13,14,15. Zu den verwendeten Kleintiermodellen gehören Kaninchen, Ratten und Mäuse16,17,18. In dieser Studie wurden neuseeländische Kaninchen verwendet. Neuseeländische Kaninchen haben reichlich perivenöses Gewebe um die EJV herum, was sie für die Untersuchung der MNTT-Methode förderlich macht. Zu den Vorteilen der Verwendung von neuseeländischen Kaninchen gehören die einfache chirurgische Operation, die bequeme Fütterung und die geringen Kosten. Große Tiermodelle haben jedoch Vorteile gegenüber Kaninchenmodellen, wenn es um die Untersuchung der Hämodynamik geht.

In dieser Studie wurde ein einzigartiges CCA-EJV-AVF-Verfahren mit MNTT vorgeschlagen, ohne dass das perivenöse Gewebe diseziert oder die Arterie durchtrennt wird. Die funktionelle End-to-Side-Anastomose19,20 für die AVF-Bildung wurde durch eine Side-to-Side-arteriovenöse Anastomose mit anschließender Ligatur der distalen EJV durchgeführt. Im Vergleich zu konventionellen Techniken (ergänzende Abbildung 3) konnte bei der AVF-Erzeugung mit MNTT das perivenöse Gewebe besser erhalten werden. Während der arteriovenösen vaskulären Anastomose konnte aufgrund des Erhalts des perivenösen Gewebes die Venenwand durch Ziehen des perivenösen Gewebes vollständiger freigelegt werden, was der vaskulären Anastomose förderlich war.

In der Sonographie wurde ein spiralförmiger laminarer Fluss in der Vene und Arterie in der Nähe der Anastomose beobachtet, was darauf hindeutet, dass die MNTT möglicherweise eine günstigere Hämodynamik aufweist, was für die hervorragenden Durchgängigkeits- und Reifungsraten verantwortlich sein könnte21,22. Bei histologischer Beobachtung wurde eine signifikante venöse Intimalhyperplasie an der AVF-Anastomose beobachtet, während am proximalen EJV der Anastomose keine signifikante Intimalhyperplasie vorlag. Dieser Befund hängt wahrscheinlich mit der Verbesserung der Juxta-Anastomosenstenose durch diese Operationstechnik oder die spiralförmige laminare Strömung zusammen.

Häufig auftretende Probleme und Vorschläge
Aufgrund der dünnen Wand der EJV ist bei der Anastomosierung von Blutgefäßen eine schonende Operation erforderlich, um eine Schädigung der EJV zu vermeiden. Da das Gewebe um die EJV erhalten bleibt, kann es während der Anastomose gezogen werden, um das Gefäß zu entfalten und es für das Nähen förderlicher zu machen. Die Konservierung des Gewebes, das die EJV umgibt, ist jedoch störend. Nach der Venotomie kollabieren die Blutgefäße aufgrund des Blutabflusses aus den venösen Gefäßen und verursachen eine EJV-Retraktion. Während der EJV-Anastomose muss eine mikrovaskuläre Pinzette verwendet werden, um das umliegende Gewebe der EJV zu ziehen und die Venenwand vollständig freizulegen. Wenn der Abstand zwischen Arterien und Venen groß ist, sollte der CCA außerdem eine freie ausreichende Länge eingeräumt werden, um sicherzustellen, dass die beiden nahe beieinander liegen und somit die Anastomose erleichtert wird. Ein 8-0 Für die vaskuläre Anastomose wurde eine sterile Gefäßnaht verwendet, um die Schädigung der Gefäße zu reduzieren.

Technische Einschränkungen
Die Präparation der Vene erfordert immer noch das Tunneln und Abklemmen entlang des Tunnels, und dieses Manöver kann zu Venenverletzungen führen. Vor der Durchführung einer arteriellen und venösen Side-to-Side-Anastomose kann es zu einer Gefäßverletzung kommen, wenn die Arterie und die Vene gezogen werden. Da die Durchgängigkeitsrate mit 38,2 % niedriger war als bei anderen AVF-Modellen23,24, ist eine weitere Verbesserung der Pflege und Erkennung von Kaninchen nach AVF-Operationen notwendig.

Anwendungen der Technik
Um die Mechanismen der MNTT und der damit verbundenen Hämodynamik weiter zu untersuchen, sind pathologische, molekulare und genomische Studien erforderlich, um diese Technik zu validieren.

Schlussfolgerung
In dieser Studie wurde erfolgreich ein CCA-EJV AVF mit der MNTT-Methode erstellt. Die Operation war einfach, mit guter Reproduzierbarkeit und einer hohen Erfolgsrate, was darauf hindeutet, dass diese Technik das Potenzial hat, ideal für weitere Studien zur Anwendung von MNTT in der AVF-Chirurgie zu sein.

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Disclosures

Die Autoren haben keine potenziellen Interessenkonflikte in Bezug auf die in diesem Verfahren verwendeten Medikamente und Materialien.

Acknowledgments

Diese Studie wurde durch Zuschüsse aus dem Suzhou Science and Technology Plan Project (SYS2020077), dem Suzhou High-Tech Zone Medical and Health Science and Technology Plan Project (2020z001), dem Suzhou Science and Technology Development Plan Project-Medical and Health Science and Technology Innovation (SYK2021030), dem Nanjing Medical University Science and Technology Development Fund-General Project (NMUB20210253), dem Suzhou Science and Technology Bureau für die Anwendung des Grundlagenforschungsprojekts unterstützt (Nr. SYSD2019205, Nr. SYS2020119), das Projekt des Wissenschafts- und Technologieentwicklungsplans für die traditionelle chinesische Medizin der Provinz Jiangsu (Nr. MS2021098), das kollaborative Bildungsprojekt des Bildungsministeriums für die Zusammenarbeit zwischen Industrie und Universität (Nr. 202102242003), das sechste Projekt "333 High-level Talent Cultivation" in der Provinz Jiangsu, das Vorforschungsfondsprojekt des Suzhou Science and Technology City Hospital 2022 auf Krankenhausebene (SZKJCYY2022014) und das Suzhou "KeJiaoXingWei" Youth Science and Technology Project (KJXW2022086).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Animal Depilatory Fuzhou Feijing Biotechnology Co., Ltd. PH1877
Curved hemostatic forceps Xinhua Surgical Instrument Co., Ltd. ZH131R/RN
Dissecting forceps Xinhua Surgical Instrument Co., Ltd. ZDO25R/RN
electrical razor Shenbao Technology Co., Ltd PGC-660
Fixed Table Zhenhua Biomedical Instrument Co., Ltd ZH-DSB019
Halsey needleholder Xinhua Surgical Instrument Co., Ltd. ZM208R/RN
Heparin Dodium Injection Jiangsu Wanbang Biochemical Pharmaceutical Group Co., Ltd. H32020612
Medical gauze dressing Nanchang Kangjie medical hygiene products Co., Ltd 20172640135
Micro forceops Xinhua Surgical Instrument Co., Ltd. ZD275RN/T
Micro needle holder forceps Xinhua Surgical Instrument Co., Ltd. ZF2618RB/T
Micro scissors Xinhua Surgical Instrument Co., Ltd. ZF022T
Non-silk sutures 4-0 Kollsut Medical Instrument Co., Ltd. NMB020RRCN26C075-1
Non-absorbable sutures 8-0 (double needle) Yangzhou Yuankang Medical Instrument Co., Ltd. 10299023602
Povidone iodine solution Shanghai Likang Disinfection High-tech Co., Ltd. 310512
Rinse needle Jiangsu Tonghui Medical Instrument Co., Ltd 20180039
scalpel handle Shanghai Medical Instrument (Group) Co., Ltd. Surgical Instruments Factory J11030
Sharp blade Suzhou Medical Products Factory Co., Ltd. TY21232001
Sodium Chloride Injection  (100 mL) Guangdong Otsuka Pharmaceutical Co., Ltd. B21K0904
Sugical Scissors Xinhua Surgical Instrument Co., Ltd. ZC120R/RN
Sumianxin II Jilin Dunhua Shengda Animal Pharmaceutical Co., Ltd. 20180801
Syringe with needle?5 mL) BD medical devices (Shanghai) Co., Ltd 2006116
Tiletamine Hydrochloride and Zolazepam Hydrochloride for Injection Virbac Pet Health, France 83888204
Triangle needle Hangzhou Huawei medical supplies Co., Ltd 7X17
Vascular clamp Xinhua Surgical Instrument Co., Ltd. ZF220RN
New Zealand rabbits Suzhou Huqiao Biological Co., Ltd. SCXK2020-0001

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References

  1. Lok, C. E., et al. KDOQI Clinical Practice Guideline for Vascular Access: 2019 update. American Journal of Kidney Diseases. 75, 1 (2020).
  2. Schmidli, J., et al. Editor's choice - Vascular access: 2018 Clinical Practice Guidelines of the European Society for Vascular Surgery (ESVS). European Journal of Vascular and Endovascular Surgery. 55 (6), 757-818 (2018).
  3. Grogan, J., et al. Frequency of critical stenosis in primary arteriovenous fistulae before hemodialysis access: Should duplex ultrasound surveillance be the standard of care. Journal of Vascular Surgery. 41 (6), 1000-1006 (2005).
  4. Swinnen, J., Lean, T. K., Allen, R., Burgess, D., Mohan, I. V. Juxta-anastomotic stenting with aggressive angioplasty will salvage the native radiocephalic fistula for dialysis. Journal of Vascular Surgery. 61 (2), 436-442 (2015).
  5. Bharat, A., Jaenicke, M., Shenoy, S. A novel technique of vascular anastomosis to prevent juxta-anastomotic stenosis following arteriovenous fistula creation. Journal of Vascular Surgery. 55 (1), 274-280 (2012).
  6. Hörer, T. M., et al. No-touch technique for radiocephalic arteriovenous fistula--Surgical technique and preliminary results. The Journal of Vascular Access. 17 (1), 6-12 (2016).
  7. Sadaghianloo, N., et al. Salvage of early-failing radiocephalic fistulae with techniques that minimize venous dissection. Annals of Vascular Surgery. 29 (7), 1475-1479 (2015).
  8. Sadaghianloo, N., et al. Radial artery deviation and reimplantation inhibits venous juxta-anastomotic stenosis and increases primary patency of radial-cephalic fistulas for hemodialysis. Journal of Vascular Surgery. 64 (3), 698-706 (2016).
  9. Bai, H., et al. Artery to vein configuration of arteriovenous fistula improves hemodynamics to increase maturation and patency. Science Translational Medicine. 12 (557), (2020).
  10. Zhang, Y. Y., Wang, X. H., Liu, Z., Hou, G. C. Creating radio-cephalic arteriovenous fistula in the forearm with a modified no-touch technique. Journal of Visualized Experiments. (182), e62784 (2022).
  11. Hou, G. C., et al. Modified no-touch technique for radio-cephalic arteriovenous fistula increases primary patency and decreases juxta-anastomotic stenosis. The Journal of Vascular Access. , (2022).
  12. Kunlin, J. Long vein transplantation in treatment of ischemia caused by arteritis. Revue de Chirurgie. 70 (7-8), 206-235 (1951).
  13. Wang, Y., et al. Venous stenosis in a pig arteriovenous fistula model--Anatomy, mechanisms and cellular phenotypes. Nephrology, Dialysis, Transplantation. 23 (2), 525-533 (2008).
  14. Marius, C. F., et al. Sheep model of hemodialysis arteriovenous fistula using superficial veins. Seminars in Dialysis. 28 (6), 687-691 (2015).
  15. Ramacciotti, E., et al. Fistula size and hemodynamics: An experimental model in canine femoral arteriovenous fistulas. The Journal of Vascular Access. 8 (1), 33-43 (2008).
  16. Eiketsu, S., et al. Arterial enlargement, tortuosity, and intimal thickening in response to sequential exposure to high and low wall shear stress. Journal of Vascular Surgery. 39 (3), 601-612 (2004).
  17. Eddie, M., et al. A new arteriovenous fistula model to study the development of neointimal hyperplasia. Journal of Vascular Research. 49 (2), 123-131 (2012).
  18. Karl, A. N., et al. The murine dialysis fistula model exhibits a senescence phenotype: pathobiological mechanisms and therapeutic potential. American Journal of Physiology. Renal Physiology. 315 (5), 1493-1499 (2018).
  19. Hong, S. Y., et al. Clinical analysis of radiocephalic fistula using side-to-side anastomosis with distal cephalic vein ligation. The Korean Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 46 (6), 439-443 (2013).
  20. Tang, W. G., et al. A meta-analysis of traditional and functional end-to-side anastomosis in radiocephalic fistula for dialysis access. International Urology and Nephrology. 53 (7), 1373-1382 (2021).
  21. Marie, Y., et al. Patterns of blood flow as a predictor of maturation of arteriovenous fistula for haemodialysis. The Journal of Vascular Access. 15 (3), 169-174 (2014).
  22. Srivastava, A., et al. Spiral laminar flow, the earliest predictor for maturation of arteriovenous fistula for hemodialysis access. Indian Journal of Urology. 31 (3), 240-244 (2015).
  23. Loveland-Jones, C. E., et al. A new model of arteriovenous fistula to study hemodialysis access complications. The Journal of Vascular Access. 15 (5), 351-357 (2014).
  24. Wong, C. Y., et al. Vascular remodeling and intimal hyperplasia in a novel murine model of arteriovenous fistula failure. Journal of Vascular Surgery. 59 (1), 192-201 (2014).

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Medizin Heft 192
Eine modifizierte Technik zur arteriovenösen Fistelkonstruktion bei Kaninchen
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Zhen, L., Guocun, H., Xiaohe, W.,More

Zhen, L., Guocun, H., Xiaohe, W., Jingfang, H., Jie, L., Minggang, W. A Modified Technique for Arteriovenous Fistula Construction in Rabbits. J. Vis. Exp. (192), e64352, doi:10.3791/64352 (2023).

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