Summary
Il presente protocollo propone la creazione di una fistola artero-venosa nei conigli utilizzando una tecnica no-touch modificata. La tecnica prevede l'anastomosi laterale dell'arteria carotide comune e della vena giugulare esterna senza la dissezione dei tessuti perivenosi o il taglio dell'arteria.
Abstract
La stenosi iuxta-anastomotica è un problema impegnativo che spesso causa la mancata maturazione e diminuisce la pervietà di una fistola artero-venosa (AVF). Lesioni alle vene e alle arterie durante l'operazione e cambiamenti emodinamici possono portare a iperplasia intimale, portando a stenosi iuxta-anastomotica. Per ridurre le lesioni alle vene e alle arterie durante l'operazione, questo studio propone una nuova tecnica no-touch modificata (MNTT) per la costruzione di AVF che può ridurre il tasso di stenosi iuxta-anastomotica e migliorare la pervietà AVF. Per svelare i cambiamenti emodinamici e i meccanismi del MNTT, questo studio ha presentato una procedura AVF utilizzando questa tecnica. Sebbene questa procedura sia tecnicamente impegnativa, il 94,4% di successo procedurale è stato raggiunto dopo un'adeguata formazione. In definitiva, 13 conigli su 34 avevano un AVF funzionale 4 settimane dopo l'intervento, portando a un tasso di pervietà AVF del 38,2%. Tuttavia, a 4 settimane, il tasso di sopravvivenza era dell'86,1%. L'ecografia ha mostrato un flusso sanguigno attivo attraverso l'anastomosi AVF. Inoltre, il flusso laminare a spirale è stato osservato nella vena e nell'arteria vicino all'anastomosi, suggerendo che questa tecnica può migliorare l'emodinamica dell'AVF. All'osservazione istologica, è stata osservata iperplasia intimale venosa significativa all'anastomosi AVF, mentre nessuna iperplasia intimale significativa è stata osservata alla vena giugulare esterna prossimale (EJV) dell'anastomosi. Questa tecnica migliorerà la comprensione dei meccanismi alla base dell'uso di MNTT per la costruzione di AVF e fornirà supporto tecnico per l'ulteriore ottimizzazione dell'approccio chirurgico nella costruzione di AVF.
Introduction
La costruzione di una fistola artero-venosa (AVF) è ampiamente utilizzata nella pratica clinica per i pazienti sottoposti a emodialisi di mantenimento (MHD) e ha una maggiore pervietà e meno complicanze rispetto a un innesto artero-venoso (AVG) o a catetere a tunnel (TCC)1,2. Sebbene AVF sia la modalità preferita di accesso vascolare, non è perfetta e ha limitazioni intrinseche. I tassi di pervietà AVF primaria a 1 anno sono solo del 60% -65%, con molti fallimenti che si verificano nella regione anastomotica vicina 3,4,5.
I vasi subiscono diversi gradi di danno durante l'approccio chirurgico tradizionale, che alla fine influisce sulla maturazione dell'AVF. Nuove modalità chirurgiche, come la tecnica no-touch (NTT) (Figura supplementare 1) proposta da Hörer et al.6 e l'escursione e il reimpianto dell'arteria radiale (RADAR) proposti da Sadaghianloo et al.7,8 e Bai et al.9, sono stati progettati per ridurre il tasso di stenosi iuxta-anastomotica e per migliorare la pervietà della fistola modificando la tecnica chirurgica. Sebbene l'effetto di RADAR fosse migliore di quello di NTT, è stato osservato che la stenosi arteriosa in afflusso è più evidente con RADAR. Per ridurre ulteriormente le lesioni alle vene e alle arterie durante l'operazione, nel 2021 è stata proposta una nuova tecnica no-touch modificata (MNTT) per creare un AVF radiocefalico preservando il tessuto perivenoso attorno alla vena cefalica senza tagliare l'arteria radiale (Figura supplementare 1 e Figura supplementare 2). I risultati preliminari hanno mostrato un aumento della pervietà primaria, una diminuzione della stenosi iuxta-anastomotica e nessuna stenosi arteriosa10,11.
Considerando l'attuale mancanza di modelli animali di AVF utilizzando MNTT, e per esplorare ulteriormente il meccanismo di MNTT nella chirurgia AVF, questo studio introduce una procedura AVF comune arteria carotide (CCA)-vena giugulare esterna (EJV) utilizzando MNTT.
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Protocol
Le procedure sperimentali che utilizzano animali da laboratorio sono state approvate dal Comitato etico sperimentale per il benessere degli animali dell'Università medica di Nanchino. Per questo studio sono stati utilizzati conigli neozelandesi di età compresa tra 10 mesi (di entrambi i sessi; peso corporeo, 3,18 ± 0,24 kg). Gli animali sono stati ottenuti da una fonte commerciale (vedi Tabella dei materiali).
1. Preparazione degli animali
- Anestetizzare i conigli mediante iniezione endovenosa mista di tiletamina cloridrato e zolazepam cloridrato (3 mg/kg) nella vena marginale dell'orecchio e un'iniezione intramuscolare di sumianxina II (0,02 ml/kg) (vedere Tabella dei materiali) nel muscolo degli arti posteriori.
NOTA: Dopo circa 1-3 minuti, l'effetto anestetico si stabilizza. Prima di procedere, il livello di anestesia deve essere controllato pizzicando la pelle dietro il collo e osservando il riflesso corneale. Tiletamina cloridrato, zolazepam cloridrato (0,5 mg/kg) e sumianxin II (0,01 mL/kg) potrebbero essere aggiunti durante l'operazione, se necessario. - Posare il coniglio su un tavolo fisso (vedi Tabella dei materiali) in posizione supina e legare gli arti e gli incisivi con legami.
- Rasare il collo e la parte superiore del torace con un rasoio elettrico e rimuovere i peli con crema depilatoria animale (vedi Tabella dei materiali).
- Mantenere le condizioni sterili durante l'intervento chirurgico autoclavando l'apparecchiatura chirurgica e pulendo l'area chirurgica con soluzione di iodio povidone.
2. Incisione cutanea
- Posiziona il coniglio con la testa verso il chirurgo.
- Fare un'incisione longitudinale di ~ 3 cm tra la mandibola e l'articolazione sternoclavicolare usando forbici chirurgiche o una lama di bisturi.
3. Preparazione della vena giugulare esterna (EJV)
- Esporre l'incisione e identificare l'EJV corretta. Assicurarsi che l'EJV e i suoi tessuti perivascolari siano chiaramente visibili e non sezionati.
NOTA: L'EJV mostra un pattern a "Y" invertito e il ramo vicino al collo mediale deve essere anastomizzato. - Costruire un tunnel attraverso il quale un morsetto vascolare possa essere attraversato (vedere la tabella dei materiali) lungo la direzione perpendicolare all'EJV. Assicurarsi che le distanze tra le aperture su entrambi i lati del tunnel e l'EJV siano >1 cm.
- Posizionare un morsetto vascolare lungo il tunnel.
- Effettuare un altro tunnel (come al punto 3.2) in corrispondenza dell'EJV distale utilizzando lo stesso metodo.
NOTA: Assicurarsi che la distanza tra i due tunnel sia di ≥2 cm. - Applicare una sutura 4-0 (vedi Tabella dei materiali) e un morsetto vascolare lungo il tunnel per controllare il flusso sanguigno (Figura 1A).
4. Sezionamento e preparazione dell'arteria carotide comune (CCA)
- Utilizzare una pinza (vedi Tabella dei materiali) per esplorare il CCA laterale alla trachea e mediale al muscolo sternocleidomastoideo.
NOTA: Il CCA ha una sensazione pulsatile e corre parallelo al nervo cervicale. - Sezionare bruscamente il CCA per una lunghezza di circa 2 cm.
NOTA: Evitare lesioni al nervo vago e ai suoi rami con un decorso arterioso profondo. - Posizionare un filo di sutura 4-0 attorno al CCA per controllare il flusso sanguigno quando necessario.
- Applicare morsetti vascolari (vedi Tabella dei materiali) il più distalmente e prossimalmente possibile (Figura 1B).
5. Preparazione dell'anastomosi
- Per flebotomia e anastomosi, utilizzare microforbici (vedere Tabella dei materiali) per sezionare la parte interna dell'EJV (lunga 4 mm) libera dai tessuti circostanti.
- Fare un'incisione longitudinale lunga 4 mm con microforbici nel mezzo della vena. Risciacquare la vena con una soluzione di eparina (100 UI/ml) per prevenire la trombosi.
- Fare un'incisione longitudinale di circa 4 mm nella parete anteriore dell'arteria usando una lama affilata e microforbici. Risciacquare l'arteria con 100 UI/mL di soluzione di eparina fino a quando il vaso è libero dal sangue.
6. Anastomosi laterale
- Tirare l'EJV e il CCA vicini, il più vicino possibile.
- Applicare la tecnica12 di Kunlin per l'anastomosi side-to-side del CCA e dell'EJV usando 8-0 suture non assorbibili (vedi Tabella dei materiali). Suturare prima la parete posteriore del vaso (Figura 1C), seguita dalla parete anteriore del vaso.
NOTA: Poiché la parete EJV in un coniglio è sottile, è necessario prestare attenzione durante l'intervento chirurgico per evitare danni ai vasi che potrebbero successivamente compromettere la pervietà dell'anastomosi. Durante il processo di anastomosi vascolare, la soluzione di eparina (100 UI / ml) deve essere utilizzata ripetutamente per risciacquare il lume per prevenire la trombosi.
7. Rimozione del morsetto vascolare e legatura della vena
- Rimuovere il morsetto vascolare distale del CCA, il morsetto vascolare prossimale dell'EJV e il morsetto vascolare prossimale del CCA a turno. Osservare il flusso sanguigno attivo attraverso l'anastomosi.
- Ligare l'estremità distale dell'EJV utilizzando la sutura 4-0 posizionata in precedenza. Rimuovere il morsetto vascolare distale della EJV.
- Rimuovere il filetto di sutura che è stato posizionato attorno al CCA (Figura 1D).
8. Chiusura della pelle e cura postoperatoria
- Dopo aver assicurato che non ci siano sanguinamenti significativi in campo chirurgico, chiudere la pelle del collo utilizzando punti di sutura interrotti (4-0).
- Metti il coniglio in una gabbia fino a quando non si riprende completamente. In genere, questo richiede 30-45 minuti.
NOTA: In caso di recupero incompleto o ritardato, prestare attenzione per assicurarsi che il coniglio non subisca uno shock emodinamico a causa di sanguinamento nell'area chirurgica. Se necessario, somministrare Sumianxin II (0,01 ml/kg) dopo l'intervento chirurgico.
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Representative Results
Il risultato dell'applicazione di successo di questa tecnica è un brevetto AVF nel collo di coniglio. Questo studio ha utilizzato i seguenti criteri per valutare il successo: (1) quando l'anastomosi vascolare è completata, il tremore venoso dell'AVF può essere toccato e il soffio vascolare può essere sentito; (2) 4 settimane dopo la costituzione dell'AVF, il flusso sanguigno attivo attraverso l'anastomosi della fistola interna può essere misurato mediante ecografia color Doppler; (3) 4 settimane dopo la costituzione dell'AVF, la colorazione con ematossilina-eosina (H & E) mostra una significativa iperplasia intimale venosa all'anastomosi AVF.
In tutto, 36 conigli sani della Nuova Zelanda sono stati inclusi in questo studio. In totale, 34 conigli hanno avuto un AVF immediatamente efficace utilizzando l'MNTT. Tre conigli hanno avuto un significativo sanguinamento postoperatorio e uno è morto a causa della perdita di sangue. I restanti due conigli hanno richiesto emostasi da compressione per arrestare l'emorragia. Inoltre, quattro conigli sono morti dopo l'intervento chirurgico, con sintomi comuni tra cui starnuti, tosse, naso che cola, anoressia e diarrea. Infine, 31 conigli sono sopravvissuti e 13 hanno avuto un AVF funzionale 4 settimane dopo l'intervento. Il tasso di sopravvivenza è stato dell'86,1% (Figura 2).
L'AVF è stata valutata utilizzando l'ecografia color Doppler (CDU) 4 settimane dopo l'intervento chirurgico per confermare la pervietà, definita come flusso sanguigno attivo attraverso l'anastomosi AVF (Figura 3). Inoltre, il flusso laminare a spirale è stato osservato sia nella vena che nell'arteria vicino all'anastomosi (Figura 3). In termini di parametri ecografici tra l'AVF e i vasi normali sul collo controlaterale, ci sono state differenze significative nel diametro e PSV dell'EJV e nel diametro del CCA (Tabella 1).
L'AVF è stato ottenuto a 4 settimane dopo l'intervento chirurgico e trasformato in sezioni. La colorazione H&E è stata eseguita su tutte le sezioni ottenute. Iperplasia intimale venosa significativa è stata osservata nel sito dell'anastomosi AVF (Figura 4), mentre nessuna iperplasia intimale significativa è stata osservata all'EJV prossimale dell'anastomosi (Figura 4).
Figura 1: L'AVF CCA-EJV creato nei conigli utilizzando il MNTT . (A) Sono state realizzate due gallerie lungo la direzione perpendicolare alla EJV. (B) Il CCA è stato mobilitato. (C) Utilizzando la tecnica di Kunlin, è stata eseguita un'anastomosi laterale del CCA e dell'EJV. (D) L'estremità distale dell'EJV era legata e il flusso sanguigno pervio era visibile attraverso l'estremità prossimale. Abbreviazioni: CCA = arteria carotide comune; EJV = vena giugulare esterna; AVF = fistola artero-venosa; MNTT = tecnica no-touch modificata. Fare clic qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.
Figura 2: Curve di sopravvivenza per i conigli. Un coniglio è morto immediatamente dopo l'intervento chirurgico a causa della perdita di sangue. I restanti quattro conigli sono morti il 3 °, 7 °, 10 ° e 26 ° giorno dopo l'intervento chirurgico. Infine, 31 conigli erano vivi a 4 settimane dopo l'intervento. Fare clic qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.
Figura 3: L'atlante di valutazione CDU dell'AVF . (A) Il CCA ha mostrato spettri unidirezionali di flusso sanguigno a bassa resistenza, perdita del normale flusso sanguigno trifasico, picchi sistolici allargati e abbondante flusso sanguigno diastolico. (B) L'EJV ha mostrato spettri di flusso sanguigno a bassa resistenza simili a arteriosi, con un aumento del PSV e spettri allargati. (C) Flusso sanguigno attivo attraverso l'anastomosi AVF. (D) Il flusso laminare a spirale è stato osservato nei tratti di deflusso dell'EJV. Abbreviazioni: AVF = fistola artero-venosa; CCA = arteria carotide comune; EJV = vena giugulare esterna; PSV = velocità sistolica di picco. Fare clic qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.
Figura 4: Osservazione della morfologia AVF dei conigli a 4 settimane dopo l'intervento chirurgico (colorazione H&E). (A) Non è stata osservata alcuna iperplasia intimale significativa del CCA con AVF pervio. (B) La membrana elastica dell'EJV nel sito di anastomosi con un AVF pervio è stata gravemente compromessa, con iperplasia intimale significativa. Spessi tessuti fibrosi iperplastici erano chiaramente visibili sul lato interno delle membrane elastiche, con fibre elastiche ridotte e frammentate. (C) L'EJV prossimale dell'anastomosi non presentava iperplasia intimale significativa con AVF pervio. Ciò mostrava membrane elastiche intatte e fibre elastiche sottili e ondulate. Abbreviazioni: AVF = fistola artero-venosa; CCA = arteria carotide comune; EJV = vena giugulare esterna. Ingrandimento: 200x. Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.
| Gruppo | Vena giugulare esterna | Arteria carotide comune | ||
| Diametro (mm) | PSV (cm/s) | Diametro (mm) | PSV (cm/s) | |
| AVF | 7.21 ± 1.55 | 79,64 ± 39,31 | 3,06 ± 0,32 | 59,38 ± 32,25 |
| Nave normale | 3.13 ± 0.66 | 9.21 ± 2.77 | 2,17 ± 0,41 | 39.02 ± 11.56 |
| t | 5.413 | 3.996 | 3.779 | 1.329 |
| P | 0.001 | 0.004 | 0.005 | 0.22 |
Tabella 1: Confronto dei parametri ecografici tra l'AVF e i vasi normali sul collo controlaterale nei conigli (n = 5). Abbreviazione: PSV = velocità sistolica di picco. T-test viene utilizzato per l'analisi dei dati. Quando il valore P è <0,05, il confronto tra i due gruppi è statisticamente significativo.
Figura supplementare 1: Schema delle modalità di anastomosi vascolare nella chirurgia AVF. (A) Chirurgia tradizionale AVF. (B) Un AVF creato utilizzando NTT. (C) Un AVF creato utilizzando il MNTT. Abbreviazioni: AVF = fistola artero-venosa; NTT = tecnica no-touch; MNTT = tecnica no-touch modificata. Clicca qui per scaricare questo file.
Figura supplementare 2: Anastomosi funzionale end-to-side AVF con MNTT. Abbreviazioni: AVF = fistola artero-venosa; MNTT = tecnica no-touch modificata. Clicca qui per scaricare questo file.
Figura supplementare 3: Modello di coniglio di AVF creato utilizzando la tecnica convenzionale. (A) L'EJV è stato sezionato dal tessuto perivenoso. (B) L'EJV e il CCA sono stati uniti. (C) Utilizzando la tecnica di Kunlin, è stata condotta un'anastomosi laterale del CCA e dell'EJV. (D) L'estremità distale dell'EJV era legata e il flusso sanguigno pervio passava visibilmente attraverso l'estremità prossimale. Abbreviazioni: CCA = arteria carotide comune; EJV = vena giugulare esterna; AVF = fistola artero-venosa. Clicca qui per scaricare questo file.
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Discussion
Attualmente, diversi modelli animali sono disponibili per AVF. Tra questi, maiali, pecore e cani sono per lo più utilizzati come modelli di animali di grandi dimensioni13,14,15. I piccoli modelli animali utilizzati includono conigli, ratti e topi16,17,18. I conigli della Nuova Zelanda sono stati utilizzati in questo studio. I conigli neozelandesi hanno abbondanti tessuti perivenosi intorno all'EJV, il che li rende favorevoli allo studio del metodo MNTT. I vantaggi dell'utilizzo di conigli neozelandesi includono la semplice operazione chirurgica, l'alimentazione conveniente e il basso costo. Tuttavia, i modelli animali di grandi dimensioni hanno benefici rispetto ai modelli di coniglio quando studiano l'emodinamica.
Questo studio ha proposto una procedura unica CCA-EJV AVF utilizzando MNTT senza la dissezione del tessuto pervenoso o il taglio dell'arteria. L'anastomosi funzionale end-to-side19,20 per la creazione di AVF è stata ottenuta mediante anastomosi artero-venosa side-to-side seguita dalla legatura dell'EJV distale. Rispetto alle tecniche convenzionali (Figura supplementare 3), la creazione di AVF con MNTT ha preservato in modo più adeguato il tessuto perivenoso. Durante l'anastomosi vascolare artero-venosa, a causa della conservazione del tessuto perivenoso, la parete venosa potrebbe essere esposta più completamente tirando il tessuto perivenoso, che era favorevole all'anastomosi vascolare.
In ecografia, il flusso laminare spirale è stato osservato nella vena e nell'arteria vicino all'anastomosi, indicando che il MNTT può avere emodinamica più favorevole, che può spiegare gli eccellenti tassi di pervietà e maturazione21,22. All'osservazione istologica, è stata osservata iperplasia intimale venosa significativa all'anastomosi AVF, mentre nessuna iperplasia intimale significativa era presente all'EJV prossimale dell'anastomosi. Questo risultato è probabilmente correlato al miglioramento della stenosi iuxta-anastomotica mediante questa tecnica chirurgica o del flusso laminare a spirale.
Problemi comuni riscontrati e suggerimenti
Data la sottile parete dell'EJV, è necessario un funzionamento delicato quando si anastomosi i vasi sanguigni per evitare danni all'EJV. Poiché il tessuto intorno all'EJV è preservato, può essere tirato durante l'anastomosi per dispiegare il vaso e renderlo più favorevole alla sutura. Tuttavia, la conservazione del tessuto che circonda l'EJV è fastidiosa. Dopo la venotomia, dato il deflusso di sangue dai vasi venosi, i vasi sanguigni collassano e causano la retrazione dell'EJV. Durante l'anastomosi dell'EJV, devono essere utilizzate pinzette microvascolari per tirare i tessuti circostanti dell'EJV ed esporre completamente la parete venosa. Inoltre, se la distanza tra le arterie e le vene è lunga, al CCA dovrebbe essere concessa una lunghezza libera sufficiente per garantire che i due siano vicini l'uno all'altro e, quindi, per facilitare l'anastomosi. Un 8-0 La sutura vascolare sterile è stata utilizzata per l'anastomosi vascolare per ridurre i danni ai vasi.
Limitazioni tecniche
La preparazione della vena richiede ancora tunneling e bloccaggio lungo il tunnel, e questa manovra può causare lesioni venose. Prima di eseguire un'anastomosi arteriosa e venosa laterale, può derivare una lesione vascolare dalla trazione dell'arteria e della vena. Poiché il tasso di pervietà del 38,2% era inferiore a quello di altri modelli AVF23,24, è necessario migliorare ulteriormente la cura e l'individuazione dei conigli dopo l'intervento chirurgico AVF.
Applicazioni della tecnica
Per studiare ulteriormente i meccanismi del MNTT e la relativa emodinamica, sono necessari studi patologici, molecolari e genomici per convalidare questa tecnica.
Conclusione
Un AVF CCA-EJV è stato creato con successo in questo studio utilizzando il metodo MNTT. L'operazione è stata semplice, con una buona riproducibilità e un alto tasso di successo, indicando che questa tecnica ha il potenziale per essere ideale per ulteriori studi sull'applicazione della MNTT nella chirurgia AVF.
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Disclosures
Gli autori non hanno potenziali conflitti di interesse relativi ai farmaci e ai materiali utilizzati in questa procedura.
Acknowledgments
Questo studio è stato supportato da sovvenzioni del Suzhou Science and Technology Plan Project (SYS2020077), Suzhou High-tech Zone Medical and Health Science and Technology Plan Project (2020z001), Suzhou Science and Technology Development Plan Project-Medical and Health Science and Technology Innovation (SYK2021030), Nanjing Medical University Science and Technology Development Fund-General Project (NMUB20210253), Suzhou Science and Technology Bureau of the application of the basic research project (No.SYSD2019205, No.SYS2020119), Progetto del piano di sviluppo scientifico e tecnologico della medicina tradizionale cinese della provincia di Jiangsu (n. MS2021098), il progetto di educazione collaborativa della cooperazione industriale-universitaria del Ministero dell'Istruzione (n. 202102242003), il sesto progetto "333 High-level Talent Cultivation" nella provincia di Jiangsu, il progetto del fondo di pre-ricerca a livello ospedaliero 2022 dell'ospedale di Suzhou (SZKJCYY2022014) e il progetto di scienza e tecnologia giovanile "KeJiaoXingWei" di Suzhou (KJXW2022086).
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Animal Depilatory | Fuzhou Feijing Biotechnology Co., Ltd. | PH1877 | |
| Curved hemostatic forceps | Xinhua Surgical Instrument Co., Ltd. | ZH131R/RN | |
| Dissecting forceps | Xinhua Surgical Instrument Co., Ltd. | ZDO25R/RN | |
| electrical razor | Shenbao Technology Co., Ltd | PGC-660 | |
| Fixed Table | Zhenhua Biomedical Instrument Co., Ltd | ZH-DSB019 | |
| Halsey needleholder | Xinhua Surgical Instrument Co., Ltd. | ZM208R/RN | |
| Heparin Dodium Injection | Jiangsu Wanbang Biochemical Pharmaceutical Group Co., Ltd. | H32020612 | |
| Medical gauze dressing | Nanchang Kangjie medical hygiene products Co., Ltd | 20172640135 | |
| Micro forceops | Xinhua Surgical Instrument Co., Ltd. | ZD275RN/T | |
| Micro needle holder forceps | Xinhua Surgical Instrument Co., Ltd. | ZF2618RB/T | |
| Micro scissors | Xinhua Surgical Instrument Co., Ltd. | ZF022T | |
| Non-silk sutures 4-0 | Kollsut Medical Instrument Co., Ltd. | NMB020RRCN26C075-1 | |
| Non-absorbable sutures 8-0 (double needle) | Yangzhou Yuankang Medical Instrument Co., Ltd. | 10299023602 | |
| Povidone iodine solution | Shanghai Likang Disinfection High-tech Co., Ltd. | 310512 | |
| Rinse needle | Jiangsu Tonghui Medical Instrument Co., Ltd | 20180039 | |
| scalpel handle | Shanghai Medical Instrument (Group) Co., Ltd. Surgical Instruments Factory | J11030 | |
| Sharp blade | Suzhou Medical Products Factory Co., Ltd. | TY21232001 | |
| Sodium Chloride Injection (100 mL) | Guangdong Otsuka Pharmaceutical Co., Ltd. | B21K0904 | |
| Sugical Scissors | Xinhua Surgical Instrument Co., Ltd. | ZC120R/RN | |
| Sumianxin II | Jilin Dunhua Shengda Animal Pharmaceutical Co., Ltd. | 20180801 | |
| Syringe with needle?5 mL) | BD medical devices (Shanghai) Co., Ltd | 2006116 | |
| Tiletamine Hydrochloride and Zolazepam Hydrochloride for Injection | Virbac Pet Health, France | 83888204 | |
| Triangle needle | Hangzhou Huawei medical supplies Co., Ltd | 7X17 | |
| Vascular clamp | Xinhua Surgical Instrument Co., Ltd. | ZF220RN | |
| New Zealand rabbits | Suzhou Huqiao Biological Co., Ltd. | SCXK2020-0001 |
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