Summary

Metod för kultur av tidig kycklingembryon ex vivo (New Kultur)

Published: October 20, 2008
doi:

Summary

Denna video visar ny kultur, en metod som kycklingembryon odlas utanför ägget i upp till 24 tim. Denna metod gör en att studera tidig utveckling (primitivstrimman till 14 SOM.) En period som motsvarar E7-9 i mus. Tillämpningar av denna teknik inkluderar elektroporation, in situ hybridisering och immunhistokemi.

Abstract

Den kycklingembryo är ett värdefullt verktyg i studiet av tidiga embryonala utvecklingen. Dess öppenhet, tillgänglighet och enkel manipulation, gör det ett idealiskt verktyg för att studera bildning och mönstring av hjärnan, neuralrörsdefekter, somit och hjärta primordia. Tillämpningar av kycklingembryo kultur inkluderar elektroporering av DNA eller RNA konstruktioner för att analysera geners funktion, ympar av bestruket tillväxtfaktor pärlor som FGFs och BMP, liksom hela montera in situ hybridisering och immunhistokemi. Denna video visar de olika stegen i kycklingembryo kultur, det första är embryot explanterade i koksaltlösning. Då är embryot centrerad på ett glas ring. Membranen omger embryot lyfts längs väggarna i ringen. Ringen placeras sedan i en kultur maträtt som innehåller en pool av albumine. Kulturen skålen är förseglas och placeras i en fuktig kammare, där embryot odlas i upp till 24 timmar. Slutligen är embryot ut ur ringen, fasta och bearbetas för ytterligare ansökningar. En felsökningsguide presenteras också.

Protocol

Del 1: Bänk upprätta En fuktig kammare är beredd genom att placera Kimwipe / DDH 2 O i kammare av plast. En Falcon rör för att samla in albumin, rätter för kultur, ringar, klockglas och avfallshantering placeras på bänken. Pyrex skålen är fylld med 1,4 liter saltlösning (se not [a]). Del 2: Embryo är uttagna i saltlösning Ägg är ur inkubatorn efter 16 timmar (steg 4). Ägget är opene genom att knacka på skalet med pin…

Discussion

Den nya kulturen metod 2 kan användas för en mängd olika tillämpningar, från transplantat av tillväxtfaktor som innehåller pärlor 3, till hela montera in situ hybridisering och hela montera immunohistokemi 4. Kultur över en 24-timmars period möjliggör kontinuerlig övervakning av embryonal utveckling i applikationer såsom tid förfaller celler rörelseanalys 5 eller övervakning av GFP innehåller electroporated konstruktioner 6.

Acknowledgements

Detta arbete stöddes av Margaret M. Alkek Foundation för att RHF.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Eggs Animal Charles River Laboratories Premium Fertile  
Stereomicroscope Microscope Leica Microsystems MZ9.5 or similar  
Marsh Automatic Incubator Tool Lyon RX  
Hybridization Incubator Tool Robbins Scientific M1000  
Pyrex dish (2) Tool      
Watchmaker’s glass 50mm Tool VWR 66112-060  
Glass rings Tool Physical Plant facility   cut 4 mm thick sections of glass tubing (27 mm outer diam, 25 mm inner diam). Do not fine polish.
Curved Forceps (1) Surgery Electron Microscopy Sciences 72991-4C  
Forceps (2) Surgery Fine Science Tools 11002-13 blunt ended using sharpening Stone and 100ul mineral oil
Sharpening Stone Dan’s Black Arkansas Surgery Electron Microscopy Sciences 62082-00  
Fine scissors Surgery Fine Science Tools 14161-10  
Plastic dishes Tool Falcon 353001  
Rubber Bulb Tool Electron Microscopy Sciences 70980  
Pasteur Capillary Pipette Tool Electron Microscopy Sciences 70950-12 round edge under flame
Microcapillary tube Surgery Sigma P1049-1PAK Pull using vertical micropipette puller; blunt end with fine forceps
Microdissecting knife Surgery Fine Science Tools 10056-12 Use to puncture cavities prior to in situ hybridization
Minuten pins 0.2mm diam Surgery Fine Science Tools 26002-20  
Sylgard 184 Silicon Elastomer Curing Agent and Base Reagent Dow Corning 0001986475 Mix 1 part Curing Agent, 9 parts Base; set O/N at 37C
Diethylpyrocarbonate (depc) Reagent Acros Organics 10025025 Add 1ml depc to 1l PBS; shake; autoclave

References

  1. Pannett, P. A., Compton, C. A. The cultivation of tissues in saline. Lancet. 206, 381-384 (1924).
  2. New, D. T. A new technique for the cultivation of the chick embryo in vitro. J. Embryol. Exp. Morph. 3, 326-331 (1955).
  3. Alvarez, I. S., Araujo, M., Nieto, M. A. Neural induction in whole chick embryo cultures by FGF. Dev. Biol. 199, 42-54 (1998).
  4. Psychoyos, D., Stern, C. D. Restoration of the organizer after radical ablation of Hensen’s node and the anterior primitive streak in the chick embryo. Development. 122, 3263-3273 (1996).
  5. Psychoyos, D., Stern, C. D. Fates and migratory routes of primitive streak cells in the chick embryo. Development. 122, 1523-1534 (1996).
  6. Voiculescu, O., Papanayotou, C., Stern, C. D. Spatially and temporally controlled electroporation of early chick embryos. Nature Protoc. 3, 419-426 (2008).

Play Video

Cite This Article
Psychoyos, D., Finnell, R. Method for Culture of Early Chick Embryos ex vivo (New Culture). J. Vis. Exp. (20), e903, doi:10.3791/903 (2008).

View Video