The Journal of Visualized Experiments (JoVE) is a peer reviewed, PubMed-indexed video journal. Our mission is to increase the productivity of scientific research.
Authors
The Journal of Visualized Experiments (JoVE) is a peer reviewed, PubMed-indexed video journal. Our mission is to increase the productivity of scientific research.
This translation into Russian was automatically generated through Google Translate.
English Version | Other Languages
Department of Physiology and Biophysics, University of California, Irvine (UCI)
This article is a part of JoVE General. If you think this article would be useful for your research, please recommend JoVE to your institution's librarian.
Recommend JoVE to Your LibrarianCurrent Access Through Your IP Address
You do not have access to any JoVE content through your current IP address.
IP: 54.224.75.101, User IP: 54.224.75.101, User IP Hex: 920669029
Current Access Through Your Registered Email Address
You aren't signed into JoVE. If your institution subscribes to JoVE, please sign in or create an account with your institutional email address to access this content.
Beeton, C., Garcia, A., Chandy, K. G. Drawing Blood from Rats through the Saphenous Vein and by Cardiac Puncture. J. Vis. Exp. (7), e266, doi:10.3791/266 (2007).
Рисование крови от грызунов необходимо для большого числа как в пробирке и в естественных исследованиях. Сайты крови привлекает множество у грызунов: ретро-орбитальной пазухи, яремной вены, верхнечелюстной вены, подкожной вены, сердце. Каждый метод имеет свои преимущества и недостатки, а некоторые из них не одобрен уже не в некоторых странах (например, ретро-орбитальной привлекает в Голландии). Обсуждение различных методов для рисования крови имеются 1-3. Здесь мы приведем два способа забора крови у крыс, каждый со своими специфическими приложениями.
Кровь извлечь из подкожной вены, если это сделано должным образом, вызывает минимальное бедствие у животных и не требует анестезии. Эта техника позволяет повторять привлекает небольших количеств крови, например, сколько необходимо для фармакокинетических исследований 4,5, определяющих плазмохимии, или анализ крови 6.
Сердечная пункция позволяет собирать большое количество крови от одного животного (до 10 мл крови можно сделать из 150 крыс г). Этот метод, следовательно, очень полезны в качестве терминала процедуры при взятии крови из подкожной не обеспечит достаточно большой выборке. Мы используем пункции сердца, когда нам нужно достаточное количество сыворотки от конкретного штамма крыс расти Т-лимфоцитов в пробирке линиями 4-9.
Взятии крови у крыс путем подкожной вены и пункции сердца
Примечание: Все процедуры должны быть одобрены животного ваш институт по уходу и использованию комитета.
1. Кровь извлечь из подкожной вены
2. Кровь ничью пункции сердца
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Рисование крови из подкожной вены является удобным способом получить небольшое количество крови без наркоза. Если повторный отбор требуется, проверьте правила, чтобы обеспечить Вам не привлекают слишком много крови из одной крысы.
Рисование крови пункции сердца является удобный способ получить большое количество крови, но это терминал процедуры. Животное должно быть умерщвлены в конце кровь рисовать.
Эти методы (как и все методы на живых животных) должно быть сделано впервые в присутствии ветеринара или ветеринарной техника, который будет в состоянии оценить, что у животных, обрабатываются должным образом и не подвергаются ненужной боли и / или терпящим бедствие.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
| Name | Type | Company | Catalog Number | Comments |
| Needle 20G 1/2 | Tool | BD Biosciences | 305176 | For puncturing the saphenous vein |
| Microvette 300 | Tool | Sarstedt Ltd | 20.1308.100 | To collect blood from the saphenous vein |
| Electric trimmer | Tool | Braintree Scientific, Inc. | CLP-32130 | |
| Needle 23 G 1 | Tool | BD Biosciences | 305145 | For cardiac puncture |
| 5 ml plastic syringe, slip tip | Tool | Fisher Scientific | 14-826-12 | For cardiac puncture |
1. Van Herck, H., Baumans, V., Brandt, C.J.W.M., Boere, H.A.G., Hesp, A.P.M., Van Lith, H.A., Schurink, M., Beynen, A.C. Blood sampling from the retro-orbital plexus, the saphenous vein and the tail vein in rats: comparative effects on selected behavioural and blood variables. Laboratory Animals. 35, 131-139 (2001).
2. Luzzi, M., Skoumbourdis, E., Baumans, V., Conte, A., Sherwin, C., Kerwin, A., Lang, T., Morton, D., Barley, J., Moreau, E., Weilenmann, R.F., Reinhardt, V. Collecting blood from rodents: a discussion by the laboratory animal refinement and enrichment forum. Animal Technology and Welfare. 4, 99-102 (2005).
3. Angelow, O., Schroer, R.A., Heft, S., James, V.C., Noble, J. A comparison of two methods of bleeding rats: the venous plexus of the eye versus the vena sublingualis. Jounal of Applied Toxicology. 4: 258-260 (2006).
4. Beeton C., Wulff H., Barbaria J., Clot-Faybesse O., Pennington M., Bernard D., Cahalan M.D., Chandy K.G., Beraud E. Selective blockade of T lymphocyte K+ channels ameliorates experimental autoimmune encephalomyelitis, a model for multiple sclerosis. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 98:13942-13947 (2001).
5. Beeton C., Pennington M.W., Wulff, H., Singh S., Nugent D., Crossley G., Khaytin I., Chen C.Y., Calabresi P.A., Chandy K.G. Targeting effector memory T cells with a selective peptide inhibitor of Kv1.3 channels for therapy of autoimmune diseases. Mol. Pharmacol. 67:1369-1381 (2005)
6. Beeton C.,Wulff H., Standifer N.E., Azam P., Mullen K.M., Pennington M.W., Kolski-Andreaco A., Wei E., Grino A., Counts D.R., Wang P.H., LeeHealey C.J., Andrews B.S., Sankaranarayanan A., Homerick D., Roeck W.W., Tehranzadeh J., Stanhope K.L., Zimin P., Havel P.J., Griffey S., Knaus H.G., Nepom G.T., Gutman G.A., Calabresi P.A., Chandy K.G. Kv1.3 channels are a therapeutic target for T cell mediated autoimmune diseases. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 103:17414-17419 (2006).
7. Beeton C., Barbaria J., Devaux J., Benoliel A.-M., Gola M., Sabatier J.-M., Bernard D., Crest M., Beraud E. Selective blocking of voltage-gated K+ channels treats experimental autoimmune encephalomyelitis and inhibits T-cell activation. J. Immunol. 166:936-944 (2001).
8. Devaux J., Forni C., Beeton C., Barbaria J., Beraud E., Gola M., Crest M. Myelin basic protein-reactive T cells induce conduction failure in vivo but not in vitro. Neuroreport 14:317-320 (2003).
9. Beeton C., Chandy K.G. Induction and monitoring of adoptive delayed type hypersensitivity in rats, Journal of Visualized Experiments, 8, http://www.jove.com/index/Details.stp?ID=325 (2007).
Does the cardiac puncture procedure also work with mice? If not, how can I do a cardiac puncture with mice?
1
ReplyPosted by: Rouminder KaurOctober 1, 2008, 6:35 PM