فحص التصوير المقطعي بالإصدار البوزيتروني / التصوير المقطعي المحوسب المستند إلى FDG: طريقة لاستخدام المقتفي الإشعاعي للتصوير غير الجراحي لعملية التمثيل الغذائي للورم

الملخص

المصدر: Momcilovic M. et al. ، استخدام ¹⁸F-FDG PET / CT IMAGING والأنسجة الكمية لقياس التغيرات الديناميكية في استقلاب الجلوكوز في نماذج الفئران لسرطان الرئة. J. Vis. إكسب. (2018)

توضح هذه المقالة التصوير متعدد الوسائط للأنسجة السرطانية باستخدام التصوير التشخيصي المقطعي بالإصدار البوزيتروني والتصوير المقطعي المحوسب باستخدام المقتفي الإشعاعي ¹⁸F-FDG. الأنسجة السرطانية ذات النشاط العالي للسكر تمتص أكثر ^{من 18}F-FDG.

البروتوكول

تمت مراجعة جميع الإجراءات المتعلقة بالحيوانات من قبل اللجنة المؤسسية المحلية لرعاية ومجلس المراجعة البيطرية JoVE.

فئة

^1.18تصوير F-FDG PET و CT في الفئران

تنبيه: استخدم معدات الحماية عند التعامل مع النشاط الإشعاعي. اتبع جميع الإجراءات التنظيمية المعمول بها عند التعامل مع النشاط الإشعاعي.

1. ضع القفص مع الفئران المراد تصويرها على سرير دافئ عند 37 درجة مئوية قبل 1 ساعة من حقن ¹⁸F-FDG لتقليل استهلاك الدهون البنية ل ¹⁸F-FDG.
   ملاحظه: يمكن أن يساعد صيام الفئران لمدة 4-16 ساعة في تقليل استهلاك عضلة القلب البالغ ¹⁸F-FDG.
2. قم بوزن الماوس وتسجيل وزنه.
3. قم بتخدير الفأر باستخدام 2 - 3٪ إيزوفلوران في الأكسجين عند 0.5 - 2 لتر / دقيقة لمدة 2 - 3 دقائق باستخدام غرفة التخدير المحفوظة عند 37 درجة مئوية. تأكد من تخدير الفأر عن طريق الضغط على إصبع القدم ؛ لن يتم ملاحظة أي رد فعل إذا تم تخدير الفأر. ضع مرهم العين على العينين لمنع أي جفاف أثناء التخدير.
4. تمييع ¹⁸F-FDG (109 دقائق نصف عمر مشع) في محلول ملحي معقم بتركيز حقن مصحح للتسوس 70 - 75 ميكرو Ci / 100 ميكرولتر < br / > ملاحظه: اتبع جرعة ¹⁸فهرنهايت الموصى بها من الشركة المصنعة للماسح الضوئي PET للحصول على تصوير الماسح الضوئي الأمثل.
5. ارسم 70 - 75 ميكروسي بحقنة أنسولين بإبرة 28 جم ، وقم بقياس جرعة النشاط الإشعاعي باستخدام معاير الجرعة ، وسجل القياس والوقت. ضع المحقنة في حامل حقنة الرصاص.
   ملاحظه: يتم قياس كمية ¹⁸F-FDG من النشاط الإشعاعي في كل جرعة باستخدام معايرة الجرعات ، والتي تتم معايرتها مقابل مادة مرجعية قياسية ، مثل السيزيوم 137 ، وفقا لبروتوكولات الشركة المصنعة. يتم تسجيل وقت القراءة أيضا لتحديد تصحيح الاضمحلال.
6. وخز الطرف البعيد من ذيل الفأر وقياس نسبة الجلوكوز في دم الفأر باستخدام جهاز قياس السكون.
7. قم بتسخين الذيل لمدة 1-2 دقيقة بشاش مبلل بالماء الدافئ. امسح الذيل بنسبة 70٪ من الأيزوبروبانول لتوسيع وريد الذيل قبل الحقن مباشرة. قم بإعطاء 100 ميكرولتر من ¹⁸F-FDG (الحجم الكامل في المحقنة) بحقن البلعة عبر وريد الذيل الجانبي وسجل وقت الحقن. قم بقياس الجرعة المتبقية في المحقنة باستخدام معاير الجرعة وسجل القياس والوقت.
   ملاحظه: سيكون هناك قدر من المسبار المتبقي في المحقنة. يفضل استخدام محاقن الأنسولين على المحاقن المتصلة بالإبر عبر أقفال Luer بسبب انخفاض كمية الجرعة المحبوسة في المحقنة / الإبرة بعد إعطاء الحقن.
8. ضع الفأر المحقون في غرفة التخدير مع الاحتفاظ به تحت 1.5 - 2٪ إيزوفلوران عند 37 درجة مئوية للسماح بتوزيع المسبار عبر الدورة الدموية الجهازية للماوس لمدة ساعة واحدة قبل فحص التصوير المقطعي بالإصدار البوزيترو><ني. ملاحظه: قد يكون من المفيد إفراغ المثانة قبل المسح للسماح بتصور أسهل ¹⁸F-FDG PET للأورام المزروعة في الأجنحة السفلية للفأر.
9. بعد 1 ساعة ، ضع الفأر في غرفة التصوير تحت تخدير الأيزوفلوران المخروطي للأنف وعند 37 درجة مئوية ، وقم بتأمين أطرافه في مكانها بشريط طبي في وضع ضعيف.
10. ضع حجرة التصوير في ماسح التصوير المقطعي بالإصدار البوزيتروني / التصوير المقطعي المحوسب.
11. احصل على فحوصات التصوير المقطعي بالإصدار البوزيتروني والتصوير المقطعي المحوسب كما هو موضح في دليل الماسح الضوئي بالإصدار البوزيتروني/التصوير المقطعي المحوسب.
    ملاحظه: يتم الحصول على صور PET لمدة 600 ثانية مع نافذة طاقة تتراوح من 150 إلى 650 كيلو فولت ، وأعيد بناؤها باستخدام تعظيم توقعات الاحتمالية القصوى مع تصحيحات لتوهين الفوتون ، وتطبيع الكاشف ، واضمحلال النظائر المشعة (لم يتم تطبيق تصحيح الانتثار). يتم الحصول على صور التصوير المقطعي المحوسب في وضع مستمر لمدة 50 ثانية باستخدام مصدر أشعة سينية 50 كيلو فولت في الثانية و 200 ميكرو أمبير وكاشف مسطح ، ويتم إعادة بنائها باستخدام خوارزمية فيلدكامب.
12. بعد اكتمال التصوير المقطعي بالإصدار البوزيتروني / التصوير المقطعي المحوسب ، قم بإزالة الماوس من غرفة التصوير واتركه يتعافى في قفصه.

المواد