Method Article

الركض الخلايا الجذعية العصبية البشرية

DOI:

10.3791/263

⸱

August 22nd, 2007

 , 
1Department of Pathology, University of California, Irvine (UCI)

In This Article

Summary

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

القدرة على التعامل مع الإنسان الجذعية العصبية / السلائف الخلايا (hNSPCs) في المختبر يسمح للتحقيق في فائدتها وزرع الخلايا لأغراض علاجية واستكشاف التنمية العصبية البشرية. هذا البروتوكول يمثل طريقة زراعة وhNSPCs الركض وتأمل في زيادة استنساخ الإنسان من أبحاث الخلايا الجذعية.

Abstract

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

القدرة على التعامل مع الإنسان الجذعية العصبية / السلائف الخلايا (hNSPCs) في المختبر يوفر وسيلة لتحقيق فائدتها وزرع الخلايا لأغراض علاجية وكذلك لاستكشاف العديد من العمليات الأساسية للتنمية البشرية وعلم الأمراض العصبية. هذا البروتوكول يمثل طريقة بسيطة للزراعة وhNSPCs الركض وتأمل في توحيد هذه التقنية وزيادة استنساخ الإنسان من أبحاث الخلايا الجذعية. وقد عزل hNSPCs نستخدمها من جثي قشرات الدماغ بعد الولادة من قبل الإنسان الجذعية العصبية الوطنية الموارد ونمت الخلايا والثقافات ملتصقة على قوارير مغلفة مع فبرونيكتين (بالمر وآخرون ، 2001 ؛. شوارتز وآخرون ، 2003). نحن ثقافتنا hNSPCs في DMEM : F12 المصل خالية من وسائل الإعلام تستكمل مع EGF ، جمعية جيل المستقبل ، ولهم والمرور PDGF 01:02 تقريبا كل سبعة أيام. باستخدام هذه الظروف ، فإن الغالبية العظمى من الخلايا في ثقافة الحفاظ على التشكل الثنائي القطب وأعرب عن علامات المفاضلة الخلايا الجذعية العصبية (مثل nestin وsox2).

Protocol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ملاحظة : للحصول على زراعة الروتيني للhNSPCs دينا ، ونحن تغيير 5-10 ٪ من وسائل الإعلام كل يوم والمرور عليها عادة 1:02 مرة في الأسبوع. وسائل الإعلام على الثقافة بت 9500 بنسبة 20 ٪ ، 1X عوامل المضادات الحيوية / مضاد فطري ، والنمو (EGF ، جمعية جيل المستقبل ، ولكل PDGF في 40 نانوغرام / مل) في DMEM : وسائل الإعلام قاعدة F12.

إعداد قارورة المغلفة وعدم الربط بين الخلايا

  1. لإعداد قوارير جديدة للخلايا passaged ، ومعطف T25 القوارير مع 10 ميكروغرام / مل فبرونيكتين الإنسان في EMEM لمدة 4 ساعات ، أو بين عشية وضحاها ، في 37 درجة مئوية نسيج الثقافة الحاضنة. الحق قبل الركض الخلايا ، وإزالة الحل فبرونيكتين وشطف القوارير مع برنامج تلفزيوني.
  2. نقل "مشروطة" القديمة وسائل الاعلام من الخلايا لتكون passaged إلى قوارير فبرونيكتين المغلفة الجديدة (مثل أن نصف الحجم النهائي من وسائل الإعلام عن كل قارورة ستكون "مشروطة" وسائل الاعلام). هذه الظروف تساعد على الحفاظ على زراعة هذه الخلايا في حالتها غير متمايزة.
  3. بمجرد إزالة كافة وسائل الإعلام من الخلايا لتكون passaged ، شطف خلايا مرة واحدة مع برنامج تلفزيوني. الحرص على ألا تجف الخلايا.
  4. إضافة خلية التفكك الاحتياطي (المصرف) مباشرة على الخلايا (1،0-1،5 مل دورق T25). احتضان خلايا في المنطقة العازلة لمدة 5 دقائق في درجة حرارة الغرفة. سوف التنصت بلطف القارورة تساعد في تسريع مفرزة الخلية.

الطرد المركزي ، إعادة التعليق ، وخلايا التصفيحات

  1. إضافة مصل المحتوية على وسائل الإعلام (DMEM : F12 مع 10 ٪ للحرارة المعطل مصل بقري جنيني) (~ 3X استخدام حجم CDB) إلى القارورة مع خلايا منفصلة. وسائل الإعلام وإزالة الخلايا المخروطية أنبوب 15 مل. استخدام كمية صغيرة من وسائل الإعلام التي تحتوي على مصل جديد لشطف القارورة واستعادة الخلايا المتبقية.
  2. وسائل الإعلام وأجهزة الطرد المركزي في الخلايا دورة في الدقيقة 1000 (~ 200xg) لمدة 5 دقائق.
  3. شفط خارج وسائل الإعلام التي تحتوي على مصل وresuspend الخلايا في وسائل الإعلام ثقافة جديدة ، pipetting صعودا ونزولا لجعل التعليق خلية متجانسة.
  4. نقل نصف الخلايا معلق في كل قارورة جديدة لتقسيم 1:2. لاحظ عدد مرور جديدة على القارورة.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

لقد وجدنا أن هذا البروتوكول يتيح الثقافات موثوق hNSPCs. أحد العوامل الحاسمة لخلايانا هو أنها تحتاج إلى أن تبقى ، لأن الحضارات كثيفة الى حد ما ولا يمكن passaged إلى النقطة التي كانت الخلايا متفرق. في أيدينا ، والثقافات متفرق تنمو ببطء شديد أو الكف تماما عن الانقسام. لهذا السبب ، فإننا عادة تقسيم ثقافاتنا 01:02 أو 01:03 عندما ثقافة كثيفة للغاية. طلاء سطح الطبق الثقافة مع فبرونيكتين مهم لأنه يعزز جيدة مرفق الخلية والهجرة ، ولكن ، على عكس laminin ، فإنه يسمح أيضا باستخدام خلية التفكك الاحتياطي (المصرف) لف...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Acknowledgements

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

الكتاب الامتنان الدكتور فيليب H. شوارتز من العصبية الوطنية الجذعية البشرية الموارد خلية في مستشفى للأطفال ، أورانج كاونتي معهد البحوث لتوفير التعليم الأولي وhNSPCs في زراعة بهم.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
BIT-9500 (BSA ، الأنسولين ، الترانسفيرين) تقنياتالخلايا الجذعيةالكاشف 09500
كاشفالمضادات الحيوية المضادة للفطرياتInvitrogen15240-062
DMEM: F12 (1X)كاشفInvitrogen11330-032
EMEM (1X)ReagentMediatech، Inc.MT-10-010-CVتم توزيعه بواسطة Fisher بموجب الكتالوج المشار إليه #
كاشف مصل الأبقار الجنينيInvitrogen10437-028
FGF ، كاشف مؤتلف أساسيللإنسان PeproTech Inc100-18B
PDGF-ABكاشفPeproTech Inc100-00AB
EGF ، كاشف مؤتلف بشريBD BiosciencesCB40052تم توزيعه بواسطة Fisher تحت الكتالوج المشار إليه #
قارورة ثقافة الخلية ، 25 سم 2أداةCorning10-126-28تم توزيعها بواسطة Fisher ضمن الكتالوج المشار إليه #
Fibronectin ، الإنسان ،الكاشفBD BiosciencesCB40008Aوزعها فيشر بموجب الكتالوج المشار إليه #
الجذعية العصبية البشرية / الخلايا السليفةموردالخلايا الجذعية العصبية البشرية الوطنية
المخزن المؤقت لتفكك الخليةInvitrogen13150-016
الطبيعي الخلايا كاشف

References

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Flanagan, L. A., Rebaza, L. M., Derzic, S., Schwartz, P. H., Monuki, E. S. Regulation of human neural precursor cells by laminin and integrins. J. Neurosci. Res. 83, 845-856 (2006).
  2. Nethercott, H. N., Maxwell, H., Schwartz, P. H. Neural stem cell culture. Human Stem Cell Manual: A Laboratory Guide. Loring, J. F., Wesselschmidt, R. W., Schwartz, P. H. , Elsevier/Cell Press. (2007).
  3. Palmer, T. D., Schwartz, P. H., Taupin, P., Kaspar, B., Stein, S. A., Gage, F. H. Cell culture. Progenitor cells from human brain after death. Nature. 411, 42-43 (2001).
  4. Schwartz, P. H., Bryant, P. J., Fuja, T. J., Su, H., O'Dowd, D. K., Klassen, H. Isolation and characterization of neural progenitor cells from post-mortem human cortex. J Neurosci Res. 74, 838-851 (2003).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Human Neural Stem CellsCell PassagingFibronectin CoatingCell Dissociation BufferSerum Free MediaT25 Flask CultureCentrifugation ResuspensionImmunofluorescence StainingTransfection ProtocolCell Counting

Related Articles