كيمياء سيتولوجية مناعية : الخلايا الجذعية العصبية البشرية

Steven Marchenko; Lisa Flanagan

doi:10.3791/267

مقالة منهجية

كيمياء سيتولوجية مناعية : الخلايا الجذعية العصبية البشرية

DOI:

10.3791/267

⸱

أغسطس 24, 2007

Steven Marchenko¹ , Lisa Flanagan¹

¹Department of Pathology, University of California, Irvine (UCI)

في هذه المقالة

ملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

كيمياء سيتولوجية مناعية قوية هو وسيلة لتحديد وجود والتطويع اللغوي التحت خلوية ، والوفرة النسبية للمستضد من الفائدة في الخلايا المستزرعة. يعرض هذا البروتوكول وسيلة سهلة لمتابعة سلسلة من الخطوات التي من شأنها تمكين أحد الأجسام المضادة للحفاظ على والحصول على أقصى استفادة من تلطيخ واحد.

الملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

كيمياء سيتولوجية مناعية هو وسيلة قوية للغاية واضحة إلى حد ما لتحديد وجود والتطويع اللغوي التحت خلوية ، والوفرة النسبية للمستضد من الفائدة ، والأكثر شيوعا وهو بروتين في الخلايا المستزرعة. يعرض هذا البروتوكول وسيلة سهلة لمتابعة سلسلة من الخطوات التي من شأنها تمكين الباحثين للحفاظ على الأجسام المضادة الابتدائي والثانوي في حين الحصول على الجودة العالية والنوعية والبيانات الكمية استنساخه من تلوين الخاصة بهم. هناك جانبان لهذا البروتوكول الذي يساعد على الحفاظ على حجم الأجسام المضادة اللازمة للتلوين. لأحد ، وتزرع الخلايا على coverslips الصغيرة الدائرية التي يتم وضعها في الآبار من نسيج لوحة الثقافة. بعد التثبيت ، يمكن إزالة الخلايا على coverslips من الآبار لوحة. لتلوين الأجسام المضادة ، هو مقلوب ساترة مع الخلايا على قطرة صغيرة من المحلول على الضد parafilm ومغطاة بقطعة الثاني من parafilm لمنع جفاف. باستخدام هذا الأسلوب ، وهناك حاجة فقط ~ 25 ميكرولتر من محلول الأجسام المضادة لكل ساترة (أو عينة) ليكون الملون. يصف هذا البروتوكول immunostaining من الخلايا الجذعية البشرية / السلائف العصبي (hNSPCs) ، ولكن يمكن استخدامها لكثير من أنواع الخلايا الأخرى.

البروتوكول

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

اليوم 1 : خلايا إعداد Coverslips زجاج الألمانية والبذر

ملاحظة : coverslips الزجاج الألماني غالبا ما تكون الأفضل لزراعة الخلايا الجذعية الأولية العصبي والخلايا العصبية. نحن نستخدم بروتوكول التنظيف التالية لتحسين التصاق الخلايا وانتشارها. coverslips الموقف في رف صغير من شأنها أن تسمح بالوصول السائلة إلى جانبي ساترة. الأولى ، في احتضان coverslips Liquinox 1 ٪ لمدة 10 دقيقة ، تليها 3 يغسل بماء منزوع الأيونات. تأكد من عدم وجود فقاعات الصابون لا تزال قائمة. المقبل ، وقسائم في احتضان حمض الهيدروكلوريك 1M لمدة 30 دقيقة ، تليها 3 يغسل بماء منزوع الأيونات. coverslips الجافة على 65 درجة مئوية خلال الليل. coverslips نقل إلى صحن الزجاج وتعقيم لتعقيم.

هود في نسيج الثقافة والمكان في لوحة coverslips العقيمة بئر بحجم مناسب.
coverslips معطف مع laminin للالتصاق الخلية. coverslips احتضان في 10 ميكروغرام / مل بولي D - يسين (PDL) في الماء المعقم لمدة 5 دقائق في درجة حرارة الغرفة. إزالة coverslips PDL واحتضانها في 20 ميكروغرام / مل في laminin EMEM لمدة 4 ساعات ، أو بين عشية وضحاها ، في 37 درجة مئوية نسيج الثقافة الحاضنة.
1. ملاحظة : يرجى الرجوع إلى الإنسان الركض الخلايا الجذعية العصبية المادة ( https://www.jove.com/index/Details.stp؟ID=263 ) والإنسان العصبية العد المادة الخلايا الجذعية ( https://www.jove.com / مؤشر / Details.stp؟ ID = 262 ) لمعرفة كيفية resuspend hNSPCs والعد.
شطف laminin المغلفة coverslips مع برنامج تلفزيوني والبذور في كل الخلايا التي تحتوي على ساترة البئر على كثافة معينة (ونحن غالبا ما تستخدم في كثافة الطلاء الأولي 100،000-300،000 خلية / مل لخلايا أننا الطلاء لimmunostaining).
لوحة مكان في 37 درجة مئوية نسيج الثقافة الحاضنة ويسمح للخلايا التمسك coverslips (عادة ما لا يقل عن 4 ساعات هو مطلوب).

اليوم 2 : إصلاح ، Permeabilizing ، حجب ، وإضافة إلى خلايا جسم الابتدائية

ملاحظة : نحن نستخدم ما يلي تثبيتي بارافورمالدهيد 4 ٪ للحفاظ على مورفولوجيا الخلايا. وصفة يتضمن الانتقال الرقم الهيدروجيني للسماح للبارافورمالدهيد للذهاب الى حل. نحن نفضل هذه الطريقة بدلا من استخدام الحرارة لإذابة بارافورمالدهيد بسبب ارتفاع درجات الحرارة يمكن أن يؤدي إلى توليد حمض الفورميك ، والتي يمكن أن تزيد تلوين الخلفية عند استخدام مضان. بعض المكونات من العون للحفاظ على هيكل تثبيتي هيكل الخلية ₍₂ و MgCl EGTA) ، بينما تساعد على الحفاظ على التشكل العام (السكروز).

4 ٪ لامتصاص العرق تثبيتي للخلايا

الكواشف والخطوات التالية :	مبلغ 100 مل من تثبيتي :
MilliQ المياه	75 مل
بارافورمالدهيد (تزن في غطاء الدخان)	4 ز
10N هيدروكسيد الصوديوم ، وإثارة وإضافة قطرة قطرة حتى حل يزيل	حسب الحاجة
10X PBS	10 مل
1M MgCl ₂	0.5 مل
0.5 M EGTA	2 مل
السكروز	4 ز
6N حمض الهيدروكلوريك ، يعاير إلى الرقم الهيدروجيني 7.4	حسب الحاجة
MilliQ المياه	يرتفع الى 100 مل
المحل في 4 درجات مئوية لمدة تصل إلى 1 في الاسبوع. الحارة إلى 37 درجة مئوية قبل الاستخدام

على مقاعد البدلاء ، وإزالة وسائل الاعلام وإضافة تثبيتي prewarmed. لاحتضان 5-15 دقائق (اعتمادا على أن يتم الكشف عن مستضد ، ونحن نستخدم عادة 10 دقيقة). وتنفيذ هذه الخطوات التالية في درجة حرارة الغرفة.
تجاهل تثبيتي في وعاء مناسب ، والتعامل مع العديد من المؤسسات بارافورمالدهيد كنفايات خطرة. غسل الخلايا 3 مرات مع برنامج تلفزيوني ، 5 دقائق في كل مرة. عند إزالة الحلول من الخلايا ، وتوخي الحذر بأن الشفط لا تجف الخلايا. أيضا ، يكون دائما الحل في متناول اليد المقبل إضافة إلى إزالة الخلايا قبل الحل الذي المعاطف لهم حتى لا تترك لتجف الخلايا.
إذا كان داخل الخلية مستضد المصالح ، يجب أن تكون غشاء الخلية منفذة للسماح بدخول الأجسام المضادة. لpermeabilize الخلايا ، استخدام الطازجة بنسبة 0.3 ٪ تريتون X - 100 الحل في برنامج تلفزيوني. ماصة ببطء لأن تريتون هو لزج ، وتأكد هو تتفكك المنظفات في برنامج تلفزيوني قبل إضافة إلى الخلايا. Permeabilize الخلايا لمدة 5 دقائق ، ثم غسل الخلايا 3 مرات مع برنامج تلفزيوني ، 5 دقائق في كل مرة.
ويجب أن يعامل الخلايا مع وكيل لمنع عرقلة غير محددة وملزمة من الأجسام المضادة. نستخدم ألبومين المصل البقري (BSA) كعامل حظر. يتم حجب الحل عن طريق إذابة BSA 5 ٪ في برنامج تلفزيوني (على الروك أو المدورة لأنه يستغرق وقتا طويلا في حل) تصفية ثم سولution مع فلتر حقنة 0.45 ميكرون. كتلة الخلايا في حل جيش صرب البوسنة / PBS 5 ٪ لمدة 1 ساعة في درجة حرارة الغرفة.

تمييع الضد الأساسي (الذي هو المأمول محددة للبروتين من الفائدة) إلى تركيز محدد مسبقا في 1 ٪ BSA / PBS (أعدها التخفيف من 5 ٪ BSA / PBS). مكان المخفف الضد الابتدائي (30 ميكرولتر في ساترة 25 مم ، 20 ميكرولتر في ساترة 18 مم و 15 مم ساترة لكل ميكرولتر 12) على لوحة زجاجية مغطاة parafilm. التقط ساترة مع الخلايا الثابتة ، عكس هذه الخلايا التي وجهها لأسفل ، ووضع ذلك على الضد حل بحيث الخلايا على اتصال مع الأجسام المضادة. وضع الشريط parafilm الثاني على بناء بأكملها. احتضان عند 4 درجات مئوية خلال الليل.

يوم 3 : الغسل ، الحضانة جسم الثانوية ، وصمة عار النووية والتركيب

إزالة الشريط بعناية parafilm العلوي والتقط ساترة ، عكس ذلك ، ووضعه مرة أخرى إلى لوحة مع برنامج تلفزيوني في كل يغسل جيدا لدرجة أن الخلايا هي مواجهة.
غسل الخلايا 3 مرات مع برنامج تلفزيوني ، 5 دقائق في كل مرة.
اختيار الأضداد الثانوية التي من شأنها الكشف عن الأجسام المضادة الأولية ، على سبيل المثال ، إذا كان أدلى الضد الأساسي في الأرانب ، والأجسام المضادة الثانوية يجب أن تعترف الأرنب مفتش الحكومة. الحرص على تطابق أيضا isotype الأضداد (IgG والغلوبولين المناعي ، الخ). إذا باستخدام الأجسام المضادة الأولية متعددة ، تأكد من أنها من الأنواع المختلفة أو isotypes ، والكشف عن خطة لمع علامات مختلفة تعلق على الأجسام المضادة الثانوية. على سبيل المثال ، هل يمكن استخدام يقترن المضادة للأرنب ثانوية لfluorophore الحمراء مع جانب ضد الماوس ثانوية لfluorophore الخضراء. احتضان الخلايا في الجسم المضاد الثانوي حل المخفف إلى التركيز المناسب في جيش صرب البوسنة 1 ٪ لمدة 2 ساعة في الظلام في درجة حرارة الغرفة ، وذلك باستخدام تقنية لنفس الابتدائية (الخطوات لا يظهر في شريط الفيديو). قد حجم الأجسام المضادة الثانوية اللازمة لحضانة يكون أكبر قليلا من تلك التي للأجسام المضادة الأولية إذا تم تخزين ثانوية كحل الجلسرين (40 ميكرولتر في ساترة 25 مم و 30 مم ساترة ميكرولتر في 18 و 25 ميكرولتر في ساترة 12 ملم) .
- ملاحظة : إذا كنت تستخدم جزيئات الفلورسنت لتصور الجسم المضاد الثانوي ، ويجب أن يكون نموذج محمية من الضوء مرة واحدة تم إضافة الجسم المضاد الثانوي. احتضان في الظلام ، أو في لوحة احباط المغطاة.
إزالة بعناية coverslips من parafilm صفه للجسم الأساسي. غسل الخلايا 2 مرات مع برنامج تلفزيوني ، 5 دقائق في كل مرة ، يليه في الحضانة 1 دقيقة 2 ميكروغرام / مل النووية هويشت صمة مخففة في برنامج تلفزيوني (إذا كان يفضل ملون مباين النووية). إذا كان وصمة عار هويشت قديمة والإشارة قاتمة جدا ، ويمكنك زيادة فترة حضانة و / أو تركيز. بعد حضانة مع هويشت ، ويغسل 1 الوقت مع برنامج تلفزيوني لمدة 5 دقائق.
وينبغي أن يتم تنظيمها coverslips على شريحة متزايدة مع وسائل الاعلام عن التصور على المجهر. في الحالات التي يتم استخدام جزيء نيون للتصور من الأجسام المضادة الثانوية ، يجب أن تحتوي على وسائل الاعلام المتزايدة للحد من عوامل photobleaching. نحن نستخدم وسائل الاعلام بوصفها Vectashield متزايدة لمضان. مكان هبوط الحجم المناسب للVectashield على شريحة المجهر (12 ميكرولتر في ساترة 25 مم و 6 لكل ميكرولتر ساترة 18 مم و 3 مم ساترة لكل ميكرولتر 12).
اختيار بعناية وساترة وشطف الظهر مع الماء منزوع الأيونات لإزالة الأملاح (من برنامج تلفزيوني). وضع الداب قبالة المياه الزائدة على kimwipe أو منشفة ورقية ، وعلى قطرة Vectashield مع خلايا أسفل. ضع ساترة على بزاوية والسماح لتنحدر ببطء لتجنب فقاعات الهواء محاصرة. تسمية الشريحة مع التاريخ ، وأية معلومات العينة.
تسمح الشرائح مع coverslips حتى يجف (في الظلام) شفط ثم قبالة Vectashield الزائدة من حول حافة ساترة. ويمكن الآن حواف ساترة تكون مختومة مع طلاء الأظافر ، إذا كان المطلوب (مفيدة خصوصا إذا كان سيتم عرضها على coverslips المجهر المقلوب). وعادة ما نقوم بتخزين الشرائح لدينا في الفريزر -20 درجة مئوية.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يصف هذا البروتوكول إجراء immunostaining hNSPCs لأنه يقلل من حجم الأجسام المضادة الضرورية ويعطي موثوقة تلوين الخلية. الإجراء كما هو موضح هو أفضل لمستضدات الخلايا ، ولكن يمكن تعديلها لطخه جزيئات سطح الخلية أو لتعزيز تلطيخ من الهيكل الخلوي.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

شكر وتقدير

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

فإن الكتاب أن نعترف الدكتور فيليب H. شوارتز من العصبية الوطنية الجذعية البشرية الموارد خلية في مستشفى للأطفال ، أورانج كاونتي معهد البحوث لتوفير hNSPC الثقافات والدكتور غاري Bassell في جامعة إيموري للتعليم الأولي في تقنية تلوين parafilm.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسم	الشركة	رقم فهرسي	التعليقات
أغطية الزجاج الألماني (Deutsche Spiegelglas)	أداة	Carolina Biological	WW-63-3029	12،15،18 ، 22 ، 25 مم أغطية متوفرة
Liquinox منظف خال من الفوسفات	كاشف	سيجما ألدريتش	Z273279	لزج جدا
كاشف هيدروبروميد بولي دي ليسين		سيجما ألدريتش	P7280
لامينين ، كاشف فأر طبيعي		Invitrogen	23017-015
EMEM (1X)	Reagent	Mediatech، Inc.	MT-10-010-CV	وزعته فيشر بموجب الكتالوج المشار إليه #
24 أداة لوحة البئر		فيشر Scientific	08-772-1
Triton X-100	Reagent	Fisher Scientific	BP151-500	كاشف
بارافورمالديهايد		جدا Sigma-Aldrich	P6148	مادة مسرطنة محتملة ، توخي الحذر عند استخدامه في شكل
مسحوق ومحلولألبومين مصل الأبقار ، كاشف خال من IgG		Jackson ImmunoResearch	001-000-161
H&# 8211; chst 33342	كاشف	Invitrogen	H-1399
مختبرات ناقلات	الكاشف	Vectashield	H-1000	لزجة

لزج

المراجع

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Flanagan, L. A., Chou, J., Falet, H., Neujahr, R., Hartwig, J. H., Stossel, T. P., Filamin, A. Filamin A, the Arp2/3 complex, and the morphology and function of cortical actin filaments in human melanoma cells. J. Cell Biol. 155, 511-518 (2001).
Flanagan, L. A., Rebaza, L. M., Derzic, S., Schwartz, P. H., Monuki, E. S. Regulation of human neural precursor cells by laminin and integrins. J. Neurosci. Res. 83, 845-856 (2006).
Flanagan, L. A., Ziaeian, B., Palmer, T., Schwartz, P. H. Immunocytochemical analysis of stem cells. In Human Stem Cell Manual: A Laboratory Guide. Loring, J. F., Wesselschmidt, R. W., Schwartz, P. H. , Elsevier/Cell Press. (2007).
Marchenko, S., Flanagan, L. A. Passaging Human Neural Stem Cells. Journal of Visualized Experiments. 7, (2007).
Marchenko, S., Flanagan, L. A. Counting Human Neural Stem Cells. Journal of Visualized Experiments. 7, (2007).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

Parafilm PBS Vector Shield

كيمياء سيتولوجية مناعية : الخلايا الجذعية العصبية البشرية

في هذه المقالة

ملخص

الملخص

البروتوكول

المناقشة

شكر وتقدير

المواد

المراجع

إعادة الطباعة والأذونات

الوسوم

مقالات ذات صلة