مقالة منهجية

عزل أوعية دماغ الفئران: بروتوكول لعزل الأوعية السليمة من عينة دماغ الفئران

يوليو 8, 2025

في هذه المقالة

الملخص

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

المصدر: Boulay، A. C. et al. تنقية أوعية دماغ الفأر. J. Vis. Exp. (2015)

يوضح هذا الفيديو عزل الأوعية السليمة عن دماغ الفأر التي تشكل الحاجز الدموي الدماغي (BBB) جنبا إلى جنب مع الخلايا العصبية والخلايا الدبقية. يمكن استخدام الأوعية المعزولة كنموذج في المختبر لدراسة دورها في الحفاظ على توازن الدماغ.

البروتوكول

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تمت مراجعة جميع الإجراءات التي تنطوي على نماذج حيوانية من قبل لجنة رعاية المؤسسية المحلية ومجلس المراجعة البيطرية JoVE.

< p class = "jove_title" >1. تشريح

ملاحظة: الظروف المعقمة غير مطلوبة ما لم يتم استخدام الأوعية لأغراض زراعة الخلايا. تحضير محاليل الأوعية العازلة: B1 ، أضف 1.5 مل من HEPES 1M إلى 150 مل من HBSS ؛ B2 ، أضف 3.6 جم من Dextran إلى 20 مل من B1 ؛ B3 ، أضف 1 جم من BSA إلى 100 مل من B1.

  1. تحضير دورق سعة 150 مل مع 20 مل من B1. يحفظ على الثلج ويغطى بالبارافيلم لتجنب تلوث الهواء.
  2. قم
  3. بتخدير الماوس بعمق تحت غطاء المحرك بمنشفة ورقية صغيرة مبللة ب 1 مل من الأيزوفلوران النقي الذي يضاف إلى القفص. يتم التحقق من التخدير من خلال عدم وجود رد فعل على قرصة إصبع القدم. اقتل الفأر عن طريق خلع عنق الرحم.
    ملاحظه: يتم إنجاز هذه الخطوات وفقا للوائح الوطنية والمؤسسية.
  4. اختياري: قم بإجراء التروية داخل القلب مع 20 مل من PBS 1x للتخلص من محتوى الدم.
  5. قسم الجلد بمشرط من الرقبة إلى الأنف واسحبه بعيدا. قم بإزالة جميع الشعيرات الملوثة باستخدام PBS 1x.
  6. لفتح الجمجمة ، أولا ، أدخل المقص الأمامي إلى البصلة الشمية ، وافتح المقص لتمزيق الجمجمة إلى جزأين.
  7. قم بإزالة الدماغ بعناية باستخدام ملعقة دماغية. قم بتشريح الضفيرة المشيمية من البطينين الجانبيين لأنها قد تلوث تحضير الأوعية الدموية.
    ملاحظه: اختياري: سيحتوي المستحضر النهائي على أوعية متني وسحايا. إذا لم تكن ترغب في ذلك ، يمكن تقشير السحايا.
  8. انقل الدماغ إلى الدورق الذي يحتوي على محلول B1 على الجليد. يمكن علاج ما يصل إلى 8 أدمغة معا.

< p class = "jove_title" >2. تجانس أنسجة المخ

  1. باستخدام مشارطين ، تغلب يدويا وبقوة على الدماغ في محلول B1 ، ثم احصل على قطع صغيرة يبلغ طولها حوالي 2 مم.
  2. قم بتجانس المستحضر باستخدام الخالط Dounce الآلي ، مع أداء 20 ضربة عند 400 دورة في الدقيقة. تأكد من الحفاظ على الأنبوب الزجاجي في الجليد وأن الجزء العلوي من المثول في المحلول عند التحرك لأعلى ولأسفل ، وذلك لمنع تكوين الجيوب الهوائية. إذا تم تحضير عدة عينات ، اغسل الكرسي بالماء المتأين بين كل تجانس.

فئة

3. تنقية الأوعية

  1. انقل الجانس إلى أنبوب بلاستيكي سعة 50 مل وانتقل إلى الطرد المركزي عند 2,000 × جم لمدة 10 دقائق عند 4 درجات مئوية. ستتشكل واجهة بيضاء كبيرة (معظمها من المايلين) في الجزء العلوي من حبيبات الوعاء (أحمر إذا لم يتم إجراء التروية).
  2. تخلص من المادة الطافية. ستظل حبيبات الوعاء والواجهة البيضاء متصلتين ببعضهما البعض. أضف 20 مل من محلول B2 المثلج ورج الأنبوب يدويا وبقوة لمدة 1 دقيقة.
  3. انتقل إلى الطرد المركزي الثاني عند 4,400 × جم لمدة 15 دقيقة عند 4 درجات مئوية. سيشكل المايلين الآن طبقة بيضاء كثيفة على سطح المادة الطافية.
  4. افصل طبقة المايلين بعناية عن جدران الأنبوب عن طريق إمساك الأنبوب وتدويره ببطء للسماح للمادة الطافية بالمرور على طول الجدران. تخلص من المايلين مع المادة الطافية. تظل الحبيبات التي تحتوي على الأوعية متصلة في قاع الأنبوب.
  5. امسح الجدار الداخلي للأنبوب بورق ماص ملفوف حول ماصة بلاستيكية سعة 5 مل وقم بإزالة جميع السوائل المتبقية ، وتجنب لمس حبيبات الوعاء. احتفظ بالأنبوب مقلوبا على ورق ماص لتصريف أي سائل متبقي.
  6. قم بتعليق الحبيبات في 1 مل من محلول B3 المثلج عن طريق سحب العينة لأعلى ولأسفل بأطراف منخفضة الارتباط ، مع إبقاء الأنبوب على الجليد ، ثم أضف 5 مل أخرى من محلول B3. تأكد من أن السفن مشتتة قدر الإمكان ولا تشكل مجاميع.

فئة < ص = "jove_title" >4. الترشيح

  1. قم بإعداد دورق على الثلج مع 30 مل من محلول B3 المثلج. قم بتغطيتها بالبارافيلم لتجنب تلوث الهواء.
  2. ضع مرشحا شبكيا 20 ميكرومتر على حامل مرشح معدل أعلى قارورة بيكر وقم بالتوازن عن طريق تطبيق 10 مل من محلول B3 المثلج.
  3. صب مستحضر الوعاء على الفلتر واشطف الأوعية ب 40 مل من محلول B3 المثلج.
  4. استرجع الفلتر باستخدام ملقط نظيف واغمره على الفور في الدورق الذي يحتوي على محلول B3. افصل الأوعية عن الفلتر عن طريق رجها برفق.
  5. صب محتوى الدورق في أنبوب بلاستيكي سعة 50 مل وجهاز طرد مركزي عند 2,000 × جم لمدة 5 دقائق عند 4 درجات مئوية < br / > ملاحظه: بدلا من ذلك ، يمكن ترشيح تعليق الأوعية الدماغية من الخطوة 3.6 على مرشح شبكي 100 ميكرومتر. في هذه الحالة ، يتم الاحتفاظ بالأوعية الأكبر حجما بشكل تفضيلي على المرشح بينما يحتوي التدفق على أوعية دقيقة (شعيرات دموية بشكل أساسي) ، والتي يتم ترشيحها بعد ذلك على مرشح شبكي 20 ميكرومتر على النحو الوارد أعلاه.
  6. قم بتعليق حبيبات الأوعية الدقيقة في 1 مل من محلول B3 المثلج ونقلها عن طريق ماصتها إلى أنبوب Eppendorf سعة 1.5 مل. جهاز طرد مركزي عند 2,000 × جم لمدة 5 دقائق عند 4 درجات مئوية.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
لم يتم الإعلان عن أي تضارب في المصالح.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة الاسم الشركة رقم فهرسي التعليقات طاحونة مناديل مقاس C توماس العلمية 3431ه 25 جهاز طرد مركزي 5415 R Eppendorf جهاز طرد مركزي 5810 R Eppendorf 5811000320 مجهر مجسم معياري عالي الأداء لايكا MZ6 نصائح ربط منخفضة (P1000) سورنسون بيوساينس 14200T حامل مرشح Swinnex 47 مم PP 8 / Pk ميليبور SX0004700 قرص مرشح صافي من النايلون محب للماء 20 ميكرومتر 47 مم 100 / عبوة ميليبور NY2004700 قرص مرشح صافي من النايلون ماء 100 ميكرومتر 47 مم 100 / عبورات ميليبور NY1H04700 PARAFILM M (حجم اللفة 4 بوصات × 125 قدما) سيغما P7793-1EA HBSS, خال من الكالسيوم, بدون مغنيسيوم, خال من الفينول الأحمر تكنولوجيا الحياة 14175-129 هيبس (1 م) تكنولوجيا الحياة 15630056 ديكستران من Leuconostoc spp. السيد ~ 70,000 سيغما 31390 ألبومين مصل الأبقار سيغما أ 2153 10x PBS يوروميدكس ET330

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

مقالات ذات صلة