مقالة منهجية

تلطيخ الإيوزين لعينات الأنسجة الرخوة: إجراء قائم على الإيوزين لتلطيخ الكلى الكاملة للفأر لتصور الهياكل المجهرية للأنسجة

يوليو 8, 2025

في هذه المقالة

الملخص

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

المصدر: Busse، M. et al. ، 3D تصوير عينات الأنسجة الرخوة باستخدام طريقة تلطيخ خاصة بالأشعة السينية والتصوير المقطعي المحوسب بالمنظار النانوي.J. Vis. Exp.(2019)

يوضح هذا الفيديو إجراء تحمض كلية الفأر بأكملها مع التثبيت متبوعا بتلوين Eosin Y. تساعد طريقة تلطيخ الأيزين الخاصة بالسيتوبلازم على تصور وتحديد الهياكل التشريحية في الأنسجة.

البروتوكول

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تمت مراجعة جميع الإجراءات التي تنطوي على نماذج حيوانية من قبل لجنة رعاية المؤسسية المحلية ومجلس المراجعة البيطرية JoVE.

< p class = "jove_title" >1. بروتوكول تلطيخ الإيوسين

  1. لتثبيت عينات الأنسجة الرخوة ، املأ أنبوب طرد مركزي سعة 50 مل بمحلول مثبت يحتوي على 9.5 مل من محلول الفورمالديهايد (FA) بنسبة 4٪ (حجم / حجم) و 0.5 مل من حمض الخليك الجليدي (AA).
    ملاحظه: قم بإعداد محلول FA طازجا من محلول FA خال من الأحماض بنسبة 37٪ مثبت بحوالي 10٪ من الميثانول. قم بتخفيف محلول FA بشكل أكبر باستخدام محلول ملحي مخزن بالفوسفات (DPBS) من Dulbecco. اختر DPBS بدون الكالسيوم والمغنيسيوم. احتفظ بمحلول FA المخفف لمدة لا تزيد عن شهر واحد. أثناء التحمض ، يتغير الرقم الهيدروجيني للمحلول المثبت من محايد إلى حوالي 3.
    أنذر: نظرا لأن FA سام حاد للأعضاء ومسببا للتآكل ومسرطن ، فإن استخدام غطاء الدخان إلزامي ويجب استخدام المعدات الشخصية الواقية المناسبة.
    1. أضف عينة الأنسجة الرخوة التي تمت إزالتها حديثا إلى أنبوب طرد مركزي سعة 50 مل وقم بتبريد أنبوب الطرد المركزي سعة 50 مل لمدة 24-72 ساعة < ب / > ملاحظه: يمكن إيقاف البروتوكول مؤقتا هنا.
    2. اغسل عينة الأنسجة الرخوة بمحلول DPBS لمدة 1 ساعة.
  2. لتلطيخ عينة الأنسجة الرخوة المثبتة (على سبيل المثال ، كلية فأر كاملة) ، ضع الأنسجة الرخوة في 2 مل من محلول تلطيخ اليوزين Y واحتضن العينة لمدة 24 ساعة. احتفظ بالعينة على لوحة اهتزاز أفقية للحصول على هزاز سلس (حوالي 60 دورة في الدقيقة) أثناء عملية الحضانة><. ملاحظه: يحتوي محلول تلطيخ اليوزين Y على تركيز 30٪ (وزن / حجم) في الماء المقطر. اختر حجم محلول التلوين بحيث يتم تغطية العينة بالكامل بمحلول التلوين والسماح للعينة بالتحرك بحرية داخل حاوية العينة. قد يختلف وقت الحضانة باختلاف العينات الأخرى ويجب تعديله وفقا لذلك.
  3. بعد التلوين ، قم بإزالة عينة الأنسجة الرخوة بعناية من حاوية العينة.
    1. قم بإزالة فائض عامل التلوين بعناية باستخدام مناديل السليلوز.
    2. ضع عينة الأنسجة الرخوة في حاوية عينة مخروطية فوق مرحلة بخار الإيثانول للتخزين والاستخدام الإضافي.
      ملاحظه: يجب أن تحتوي حاوية العينة المخروطية دائما على بضع قطرات من 70٪ من الإيثانول (حجم / حجم) في قاع الأنبوب للحفاظ على رطوبة عينة الأنسجة الرخوة ومنع القطع الأثرية.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
لم يتم الإعلان عن أي تضارب في المصالح.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة الاسم الشركة رقم فهرسي التعليقات أنبوب طرد مركزي سعة 50 مل من Falcon VWR 734-0453 محلول الفورمالديهايد ، 37٪ كارل روث CP10.2 خال من الأحماض ، مستقر مع ~ 10٪ MeOH حمض الخليك الجليدي ألفا إيسار 36289.AP ملح إيوسين واي ثنائي الصوديوم سيجما ألدريتش [إ4382] معتمد من قبل لجنة البقع البيولوجية محلول ملحي مخزن بالفوسفات (PBS) ميرك [ل1825] شكلية Dulbecco ، بدون الكالسيوم والمغنيسيوم أنابيب العينة بواسطة Nalgene كارل روث هجوم5.1 هزاز شاكر ST5 قط 60281-0000 المناديل الورقية السليلوز VWR 115-0600 أنابيب الطرد المركزي الدقيقة من Eppendorf VWR 211-2120 قفل آمن، 2.0 مل الإيثانول المطلق بواسطة بيكر تحلل VWR 80252500 طبق بتري من Sterilin ملقط ، بواسطة USBECK Laborgeräte VWR 232-0096 ماصة باستور بلاستيكية كارل روث ه.أ68.1 تخرج ، 1 مل

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

Tissue FixationCytoplasm StainingEosin YParaffin EmbeddingMicrotome SectioningTissue DehydrationHistological AnalysisKidney Microstructure

مقالات ذات صلة