Method Article

Multimer-PAGE لفصل مجمعات البروتين الأصلية: تقنية فصل هجينة تتكون من Blue Native-PAGE و SDS-PAGE لفصل البروتينات متعددة المستويات السليمة عن محللة الأنسجة

July 8th, 2025

In This Article

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

المصدر: Rhinesmith، T. et al.، Multimer-PAGE: طريقة لالتقاط وحل مجمعات البروتين في العينات البيولوجية. J. Vis. Exp. (2017).

يصف هذا الفيديو صفحة متعددة الطبقات لفصل مجمعات البروتين الأصلية عن متجانسات الأنسجة. هذه التقنية عبارة عن مزيج من تقنيات PAGE الأصلية الزرقاء و SDS-PAGE. يمكن وصف المجمعات المنفصلة ودراستها لدورها في عمل الخلية.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
< ص الفئة = "jove_title">1. تحضير الأنسجة

  1. قم بإعداد 10 مل من 4x BN-PAGE عينة عازلة (200 ملي مخلل (2-هيدروكسي إيثيل) أمينو تريس (هيدروكسي ميثيل) ميثان (Bis-Tris) ، 200 ملي كلوريد الصوديوم ، 40٪ وزن / حجم جلسرين ، 0.004٪ بونسو S ، درجة الحموضة 7.2) .
    ملاحظه: يمكن صنع محلول المخزون هذا مسبقا وتخزينه في درجة حرارة 4 درجات مئوية.
  2. تمييع 250 ميكرولتر من 4x عينة عازلة في 750 ميكرولتر dH2O تحتوي على 1x كوكتيل مثبط البروتياز التجاري. دوامة وبرد على الجليد.
  3. قم بتجانس 20 مجم من الأنسجة المستهدفة في 1 مل 1x المخزن المؤقت لعينة BN-PAGE البارد مع 30 ضربة من الخالط النظيف.
    ملاحظه: بالنسبة لهذه التجربة التوضيحية ، فإن الأنسجة المستهدفة هي أنسجة دماغ الفئران الكاملة. بعد التجانس ، يمكن معالجة العينات بمنظف معتدل مثل 2٪ ديجيتونين للذوبان والسماح بالرحلان الكهربائي لبروتينات الغشاء.
  4. انقل الجانس إلى أنبوب طرد مركزي دقيق سعة 1.5 مل ، وجهاز طرد مركزي عند 14,000 × جم لمدة 30 دقيقة إلى محتويات خلوية غير قابلة للذوبان من الحبيبات. بعد الطرد المركزي ، صب المادة الطافية في أنبوب نظيف على الجليد.
  5. اتبع تعليمات الشركة المصنعة لقياس تركيز البروتين الطافي باستخدام حمض البيسنكونينيك (BCA) أو مقايسة كمية البروتين المماثلة.
  6. إذا كانت العينة (العينات) المتجانسة تحتوي على منظف ، أضف كمية 5٪ Coomassie Blue G-250 في محلول مائي يكفي لجلب المحلول المتجانس إلى 0.25٪ Coomassie.
< p class = "jove_title" >2. BN-PAGE

  1. قم بتخفيف 25 مل 20x مخزون الرحلان الكهربائي الأزرق الأصلي (BN) (1.0 M Bis-Tris ، 1.0 M tricine ، درجة الحموضة 6.8) إلى 475 مل dHH2O يحتوي على 0.002٪ Coomassie Blue لصنع 500 مل من 1x تشغيل المخزن المؤقت.
    1. إذا كانت العينات تحتوي على منظف ، فقم بدلا من ذلك بعمل 250 مل من 1x Running Buffer يحتوي على 0.02٪ Coomassie و 250 مل أخرى تحتوي على لا شيء.
  2. يبرد المخزن المؤقت (المؤقتات) إلى 4 درجات مئوية.
  3. قم بتنظيف وتجميع كاسيت صب هلام بولي أكريلاميد وفقا لتعليمات الشركة المصنعة.
  4. صب جل بولي أكريلاميد BN (طبقة تكديس 3٪ T ، طبقة حل 6٪ T) وفقا للوصفة القياسية وضع مشط البئر.
  5. بعد بلمرة المواد الهلامية ، اشطف الكاسيت ب dH2O وقم بتجميع جهاز الرحلان الكهربائي وفقا لتعليمات الشركة المصنعة.
  6. قم بإزالة مشط البئر واملأ الآبار بمخزن مؤقت تشغيل 1x BN-PAGE. تجنب ملء الغرفة الداخلية بأكملها بالمخزن المؤقت حتى يتم تحميل العينات.
    1. إذا كانت العينات تحتوي على منظف ، فاملأ الآبار بالمخزن المؤقت الذي يحتوي على 0.02٪ Coomassie Blue.
      ملاحظة: قم بتنفيذ الخطوات 2.7-2.9 عند 4 درجات مئوية.
  7. باستخدام أطراف تحميل الهلام، قم بإدخال حجم من الجانسات يحتوي على 20 ميكروغرام من البروتين في الآبار المرغوبة. ماصة حجم مكافئ من 1x BN-PAGE عينة مؤقتة في أي آبار غير مستخدمة.
    ملاحظه: استخدم تركيز البروتين المحدد من اختبار BCA لحساب الحجم المناسب للتجانس لإضافته إلى الآبار.
  8. بعد تحميل العينات ، املأ الغرفة الداخلية بمخزن مؤقت للتشغيل 1x BN-PAGE. تأكد من أن الجل مغمور بالكامل في المخزن المؤقت. بعد ذلك ، املأ الغرفة الخارجية بمخزن مؤقت تشغيل 1x إلى المستوى الذي حددته الشركة المصنعة.
    1. إذا كانت العينات تحتوي على منظف ، فاملأ الغرفة الداخلية بمخزن 1x يحتوي على 0.02٪ Coomassie Blue ، والغرفة الخارجية بمخزن مؤقت 1x خال من الصبغة.
  9. قم بتوصيل الأقطاب الكهربائية بمصدر الطاقة وقم بعمل البروتينات الموجودة في الجل عند 150 فولت حتى يتقدم نطاق الصبغة ~ 2 سم إلى طبقة الحل. أوقف مصدر الطاقة وافصله.

3. الربط المتبادل

ملاحظة: قم بتنفيذ الخطوات 3.1-3.6 عند 4 درجات مئوية.

  1. قم بتفكيك جهاز الرحلان الكهربائي وافصل الألواح الزجاجية لكاسيت الجل. قم بإزالة طبقة التراص وتجاهلها.
  2. قم بقص الجل بعناية أسفل الحافة السفلية لواجهة الصبغة. احرص على جعل هذا القطع سلسا ومستقيما قدر الإمكان ، ثم تخلص من قطعة الجل غير المستخدمة. سيترك هذا شريطا أفقيا بعرض ~ 2 سم من هلام بولي أكريلاميد ، والذي سيحتوي على كل البروتين في العينة المتجانسة.
  3. قم بقص أي أجزاء غير مستخدمة على طول حواف شريط الجل.
  4. ضع الشريط بحذر في محلول ملحي مخزن بالفوسفات سعة 10 مل (PBS) في وعاء صغير ، واخلطه برفق عن طريق التعويذة لمدة 30 دقيقة حتى يتوازن.
  5. بعد التوازن ، تخلص من PBS واستبدله ب 10 مل أخرى. ماصة 500 ميكرولتر من 25 ملي مولار DSP مذابة في ثنائي ميثيل سلفوكسيد في PBS ، واستمر في الخلط على النحو الوارد أعلاه (الخطوة 3.4) لمدة 30 دقيقة.
  6. اسكب محلول DSP. أضف 10 مل من 0.375 M tris(hydroxymethyl)aminomethane hydrochloride (Tris-HCl) ، الرقم الهيدروجيني 8.8 ، الذي يحتوي على 2٪ كبريتات دوديسيل الصوديوم (SDS) لإخماد DSP غير المتفاعل. استمر في التعويذة لمدة 15 دقيقة.

4. SDS-PAGE

    أثناء تبريد
  1. شريط الجل ، قم بإعداد محاليل جل SDS-PAGE وفقا للطرق القياسية. لا تضيف كواشف البلمرة.
  2. بعد التبريد ، أعد شريط الجل ΒΝ إلى درجة حرارة الغرفة ، وقم بصب الشريط في كاسيت هلام جديد.
    1. للقيام بذلك ، التقط الجل بعناية وضعه على لوحة فاصل كاسيت هلام نظيفة.
    2. قم بتوجيه الشريط بحيث يكون الجزء السفلي من واجهة الصبغة أقرب إلى الجزء العلوي من الكاسيت الجديد (على سبيل المثال ، يجب أن يكون الجانب الذي سافر إلى أبعد أثناء BN-PAGE هو الأقرب إلى الجزء العلوي من الكاسيت الجديد ؛ يجب قلب شريط الجل من اتجاهه السابق). انظر الشكل 1.
    3. ضع الشريط بحيث تكون حافته العلوية حتى مع مكان الحافة العلوية للوحة الغطاء (أي سيكون في الجزء العلوي من الجل الجديد). تأكد من أن واجهة الصبغة موازية للحواف الأفقية للوحة الزجاجية.
    4. ادفع جانبا واحدا من الشريط المقطوع على أحد جدران الفاصل ، مع ترك مساحة على الجانب الآخر لسكب الجل وتحميل معيار البروتين أو السلم.
    5. إذا كانت الحافة السفلية لشريط الجل تحتوي على أي مناطق خشنة أو غير مستوية ، فقم بقصها بعناية. إذا كانت موجودة ، فسوف تحبس الفقاعات أثناء صب الجل.
    6. بمجرد وضع شريط الجل بشكل صحيح ، ضع لوحة الغطاء فوق لوحة الفاصل. استخدم ضغطا برفق لدفع أي فقاعات هواء محاصرة.
    7. استمر في تجميع جهاز صب الهلام وفقا لتعليمات الشركة المصنعة.
  3. أضف كواشف البلمرة إلى المخزن المؤقت للهلام المحلل ، واسكبه في كاسيت الجل المحضر ، باستخدام ماصة مصلية. املأ علبة الجل إلى ~ 2 سم أسفل شريط جل BN-PAGE المقطوع ، لترك مساحة لطبقة التكديس.
  4. أضف 100 ميكرولتر من البيوتانول فوق الجزء العلوي من الجل المصبوب واترك 30 دقيقة لبلمرة طبقة الحل. اسكب البيوتانول.
  5. أضف كواشف البلمرة إلى محلول هلام التكديس. باستخدام ماصة مصلية ، اسكب طبقة التكديس لملء كل المساحة الفارغة المتبقية في علبة الجل.
    1. قم بإمالة كاسيت الجل أثناء سكب طبقة التكديس بحيث تملأ الفراغ أسفل شريط الجل ، ولا يتم احتجاز فقاعات الهواء.
    2. نظرا لأن المخزن المؤقت لجل التكديس يملأ المساحة الفارغة أسفل شريط الجل ، أعد علبة الجل تدريجيا إلى مستوى القدم.
    3. استمر في ملء المساحة الفارغة بجوار شريط الجل المستأصل بمحلول جل التكديس ، حتى يفيض تقريبا.
  6. اسمح لطبقة التكديس بالبلمرة لمدة 30 دقيقة
    ملاحظه: اصنع 10x SDS-PAGE عازل قيد التشغيل (250 ملي مولار تريس (هيدروكسي ميثيل) أمينوميثان (تريس) ، 1.9 م جلايسين ، 1٪ SDS) أثناء بلمرة الجل. يمكن أيضا إجراء ذلك مسبقا وتخزينه في درجة حرارة الغرفة.
  7. قم بتخفيف 50 مل 10x SDS-PAGE من مخزون المخزن المؤقت في 450 مل dH2O لإنشاء مخزن مؤقت يعمل 1x.
  8. بعد بلمرة طبقة التكديس ، قم بإزالة كاسيت الجل من جهاز الصب ، واشطفه ب dH2O ، وقم بتجميع جهاز الرحلان الكهربائي وفقا لتعليمات الشركة المصنعة.
  9. املأ الغرفة الداخلية بالكامل بمخزن مؤقت للتشغيل 1x SDS-PAGE ، ثم املأ الغرفة الخارجية إلى المستوى الذي حددته الشركة المصنعة.
  10. قم بتحميل المساحة المجاورة لشريط الجل المستأصل بسلم الوزن الجزيئي أو معيار البروتين المناسب.
  11. قم بتوصيل الأقطاب الكهربائية بمصدر الطاقة ، وقم بتشغيل العينات بالكهرباء عند 120 فولت. عندما تنفد صبغة Coomassie من الجل ، أوقف مصدر الطاقة وافصله.
  12. تحليل الجل باستخدام الطرق القياسية للنشاف الكهربائي والكشف عن البروتين عن طريق ربط الأجسام المضادة.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Results

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

p class = "jove_content" >figure-results-1
الشكل 1: مخطط انسيابي عام متعدد PAGE.< / > (أ) تحضير محللة الأنسجة باستخدام طرق غير تمسخ ، مثل التجانس في المخزن المؤقت لعينة BN-PAGE. (ب) تحلل الماصة في هلام BN-PAGE، ثم تقوم بإجراء الرحلان الكهربائي (150 فولت) في المخزن المؤقت لتشغيل BN-PAGE. اسمح للعينة بالترحيل حتى تهاجر مقدمة الصبغة ~ 2 سم إلى جل الحل. (ج) قم بإزالة طبقة التكديس والجزء غير المستخدم من طبقة الحل. (...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
لم يتم الإعلان عن أي تضارب في المصالح.

Materials

List of materials used in this article Name Company Catalog Number Comments المواد الكيميائيه حمض ε-أمينوكابرويك سيغما أ 2504 أكريلاميد أكروس أورجانكس 164855000 سام. أكريلاميد / بيساكريلاميد 37.5: 1 (محلول مخزون 40٪ طن) بيورراد 161-0148 سام. بيرسلفات الأمونيوم سيغما أ 3678 مضاد للأرانب IgG-HRP من الماعز سانتا كروز التكنولوجيا الحيوية ال SC-2004 طقم فحص حمض البيسنكونينيك ثيرموفيشر هاتف: 23225 بيس تريس سيغما ب 9754 ألبومين مصل الأبقار سيغما أ 9647 بوتانول فيشر ساينتيك أ 399-1 طقم الركيزة التلألؤ الكيميائي ثيرموفيشر هاتف: 24078 كوماسي بلو G-250 سيجما ألدريتش ب 0770 ديجيتونين سيغما د141 سام. ثنائي ميثيل سلفوكسيد فيشر ساينتيك د128-1 ديثيوبيس (سوكسينيميديل بروبيونات) الترمو: العلمية هاتف: 22585 الحليب الجاف الخالي من الدسم مختبر علمي M0841 الجلسرين سيغما جي 9012 جلايسين فيشر ساينتيك ص381-5 كوكتيل وقف مثبطات البروتياز ثيرموفيشر 78430 حمض الهيدروكلوريك فيشر ساينتيك أ 144SI-212 للمعايرة بالتحليل الحجمي. الكاويه. ميثانول فيشر ساينتيك أ 412-4 لتنشيط غشاء PVDF. سام. أحادي النسيلة المضاد α سينوكلين IgG من الأرنب سانتا كروز التكنولوجيا الحيوية SC-7011-R N ، N ، N '، N '- رباعي ميثيل إيثيلين ديامين سيغما تي 9281 N ، N'-methylenebisacrylamide أكروس أورجانكس 16479 [إ] سام. NP40 بوسطن بيوبروكتس ف -872 بولي سوربات 20 (توين -20) فيشر ساينتيك بي ت 337-500 أغشية نقل فلوريد البولي فينيلدين الترمو: العلمية 88518 بونسو إس سيغما ص 3504 كلوريد البوتاسيوم فيشر ساينتيك ص 217-3 فوسفات البوتاسيوم أحادي القاعدة سيغما ص 9791 كوكتيل مثبط البروتياز الترمو: العلمية 88265 حل SDS (10٪ وزن حجم) بيورراد 161-0416 كلوريد الصوديوم فيشر ساينتيك ص358-212 كبريتات دوديسيل الصوديوم سيغما L37771 فوسفات الصوديوم أحادي القاعدة فيشر ساينتيك BP329-1 تريسين سيغما تي 0377 قاعدة تريس فيشر ساينتيك بي ت 152-500 Tris-HCl (عازلة 0.5 م ، درجة الحموضة 6.8) بيورراد 161-0799 Tris-HCl (عازلة 1.5 م ، درجة الحموضة 8.8) بيورراد 161-0798 الصكوك جنرال إلكتريك إيمجكوانت LAS 4000 جنرال إلكتريك للرعاية الصحية 28-9558-10 برنامج ImageJ المعاهد الوطنية للصحة قارئ الألواح الدقيقة Synergy H1 بيوتك جل سابق + حامل بيوراد جهاز طرد مركزي Microfuge 22R بيكمان كولتر 2 مل الخالط خلاط دوامة فيشر ساينتيك الخالط الأنسجة بالموجات فوق الصوتية فيشر ساينتيك FB120220

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Multimer PAGEBlue Native PAGESDS PAGEProtein Complex SeparationNative Protein AnalysisTissue Lysate ProcessingCross Linking StabilizationGel Electrophoresis TechniqueProtein Complex CharacterizationHybrid Separation Method

Related Articles