تمت مراجعة جميع الإجراءات التي تنطوي على نماذج حيوانية من قبل لجنة رعاية المؤسسية المحلية ومجلس المراجعة البيطرية JoVE.
ملاحظة: يجب أن تتم جميع الإجراءات في خزانة السلامة البيولوجية من الفئة الثانية مع تشغيل المنفاخ وإطفاء الأضواء.
< p class = "jove_title" >1. تحضير المواد
ملاحظة: جميع المواد مدرجة في جدول المواد.
- قم بإعداد المتوسط 1 ، ووسط الطرد المركزي 2 ، ومحاليل التخزين والعمل من الفلورسنت 2-deoxy-2- [(7-nitro-2،1،3-benzoxadiazol-4-yl) amino] -D-glucose (2-NBDG أو FD-glucose) وفقا للجدول 1 في خزانة السلامة الحيوية من الفئة الثانية. قم بحماية FD-glucose من الضوء طوال التجربة عن طريق إطفاء جميع الأضواء الموجودة أسفل الغطاء.
- استخدم كواشف زراعة الخلايا الجاهزة للاستخدام: Trypsin-EDTA ، والمحلول الملحي المخزن بالفوسفات (PBS) ، ووسط النسر المعدل الخالي من الجلوكوز والفينول (المشار إليه فيما يلي ، DMEM الخالي من الجلوكوز).
< p class = "jove_title" >2. قياس
خارج الجسم الحي لاستنفاد الجلوكوز FD خارج الخلية في الأعضاء
- قم بمعالجة الفئران بمركبات تحفز استقلاب الجلوكوز قبل تشريح الأعضاء ، على النحو التالي.
- استخدم ذكور Lepob البالغة من العمر تسعة أسابيع (ن = 11). أطعم جميع الفئران بنظام غذائي منتظم قبل التجربة.
- قم بتعيين الفئران بشكل عشوائي إلى ثلاث مجموعات للحقن داخل الصفاق (IP).
- حقن الفئران من مجموعة التحكم Lepob مع 0.1 مل من PBS المعقم (ن = 4).
- حقن الفئران من مجموعة الأنسولين Lepob مع 0.1 مل من PBS المعقم ، الذي يحتوي على 12 وحدة دولية من الأنسولين البشري لكل جرام من وزن الجسم (BW) (ن = 3).
- حقن الفئران من مجموعة AAC2 Lepob ب 0.1 مل من PBS المعقم ، الذي يحتوي على 0.1 نانومول AAC2 لكل جرام من وزن الجسم (BW) (ن = 4).
- بعد 15 دقيقة ، قم بتعريض الفئران لاستنشاق 5٪ من الأيزوفلوران وإخراج الدم عن طريق ثقب القلب من المخدرة.
- تشريح الأنسجة الدهنية البيضاء البربخية الحشوية (200 مجم) والكبد (200 مجم) والدماغ كله من كل. استخدم شفاط السلامة الحيوية من الفئة الثانية لمناولة الأنسجة.
- قم بإعداد محلول عمل FD-glucose (0.29 ملم) في DMEM الخالي من الجلوكوز في خزانة السلامة الحيوية من الفئة الثانية بدون ضوء.
- قم بقياس تألق محلول عمل FD-glucose (0.29 mM) عند الأطوال الموجية للإثارة والانبعاث 485 و 535 نانومتر ، على التوالي ، باستخدام قارئ صفيحة دقيقة.
- احتضان الأنسجة / الأعضاء المحصودة في صفيحة من 6 آبار تحتوي على PBS لمدة 1 دقيقة.
- بعد 1 دقيقة ، ضع كل منديل على منشفة ورقية معقمة لامتصاص PBS. نقل الأنسجة / الأعضاء إلى صفيحة منفصلة مكونة من 6 آبار تحتوي على 4,000 ميكرولتر من DMEM الخالي من الجلوكوز واحتضانها لمدة دقيقتين.
- بعد دقيقتين ، قم بإزالة الأنسجة ونقلها إلى آبار من صفيحة مكونة من 6 آبار تحتوي على 0.29 ملي مولار FD-glucose محلول عمل (1 مل / بئر). احتضان الألواح المكونة من 6 آبار التي تحتوي على أنسجة في محلول عمل FD-glucose عند 37 درجة مئوية (5٪ CO2 و 95٪ رطوبة).
- اجمع 100 ميكرولتر من محلول عمل FD-glucose من كل بئر بعد 0 و 10 و 20 و 30 و 40 و 60 و 90 و 120 دقيقة من الحضانة ، لتحليل حركية استنفاد الجلوكوز FD خارج الخلية. رج العبوة قبل الجمع وبعده.
- انقل 100 ميكرولتر من محلول عمل الجلوكوز FD إلى ألواح ذات 96 بئرا لقياس التألق عند الأطوال الموجية للإثارة والانبعاث 485 و 535 نانومتر ، على التوالي ، باستخدام قارئ صفيحة دقيقة.
- تطبيع التألق إلى قيمة 0 دقيقة (100٪) لكل عضو في كل (الشكل 1).
الجدول 1: تحضير وسائط الاستزراع ومحاليل FD-glucose.
الحل / متوسط
مكونات
الإيثانول: DMSO (1: 1 / حجم / حجم)
الإيثانول (200 ميكرولتر) و DMSO (200 ميكرولتر) في أنبوب 1-1.5 مل ؛ استخدم الإيثانول بدرجة زراعة الخلايا و DMSO
متوسط 1
DMEM (89 مل) ، البنسلين / الستربتومايسين (1٪) (1 مل) ومصل العجل (10٪) (10 مل) في أنبوب معقم سعة 50 مل
الطرد المركزي متوسط 2
DMEM (89 مل) ، البنسلين / الستربتومايسين (1٪) (1 مل) ومصل البقر (10٪) (10 مل) في أنبوب معقم سعة 50 مل
تخزين محلول FD-glucose 5 مجم / مل (14.5 مل)
FD الجلوكوز (1 مجم) والإيثانول: DMSO (1: 1 / v / v) (200 ميكرولتر) في أنبوب 0.5 مل ؛ يحفظ عند -80 درجة مئوية ، ويفضل تحت جو الأرجون أو النيتروجين
محلول FD-glucose العامل 5 ميكروغرام / مل (14.5 مل)
تخزين محلول الجلوكوز FD 5 مجم / مل (1 ميكرولتر) ، DMEM خال من الجلوكوز (999 ميكرولتر) ؛ تحضير مباشرة قبل التجربة.