تم إجراء تجارب الخلايا التائية
وفقا للاتفاقية الأخلاقية 42502-2-1273 Uni MD.
< p class = "jove_title" >1. تحضير الخلايا للتجربة
ملاحظة: متوسط عدد الخلايا لهذا الترسيب المناعي هو 1 × 107. يجب زرع الخلايا الملتصقة قبل يوم واحد من التجربة بحيث يكون هناك 1 × 10 7 خلايا في يوم التجربة.
- تحضير الخلايا الملتصقة للتجربة
- البذور 5-8 × 106 خلايا ملتصقة في 20 مل من الوسط (انظر جدول المواد لمعرفة التركيبة) لكل حالة في أطباق 14.5 سم قبل يوم واحد من بدء التجربة.
- في يوم التجربة ، تأكد من أن الخلايا ملتقية بنسبة 80-90٪ وتلتزم بالطبق. تخلص من الوسيط وأضف وسيطا جديدا إلى الخلايا الملتصقة.
- تحضير خلايا التعليق للتجربة
- ضع بعناية 1 × 107 خلايا معلقة في 10 مل من وسط الثقافة (انظر جدول المواد لمعرفة التركيبة) لكل حالة في أطباق مقاس 14.5 سم مباشرة قبل بدء التجربة.
- في حالة استخدام الخلايا الأولية ، قم بعزل الخلايا التائية الأولية وفقا للإجراء الموضح سابقا. عالج الخلايا التائية الأولية ب 1 ميكروغرام / مل من الهيماجلوتينين النباتي لمدة 24 ساعة ، متبوعا ب 25 وحدة / مل علاج IL2 لمدة 6 أيام.
- ضع بعناية 1 × 108 خلايا تائية أولية في 10 مل من وسط الاستزراع (انظر جدول المواد لمعرفة التركيبة) لكل حالة في أطباق مقاس 14.5 سم مباشرة قبل بدء التجربة.
ملاحظه: يوصى بهذا العدد الأكبر من الخلايا التائية الأولية ، لأن هذه الخلايا أصغر.
فئة
2. تحفيز CD95L
- تحفيز الخلايا باستخدام CD95L (تم إنتاجه كما هو موضح سابقا أو متاح تجاريا (انظر جدول المواد).
ملاحظه: يعتمد تركيز CD95L ووقت التحفيز على نوع الخلية. قم بإعداد حالة تحفيز واحدة مرتين لإنشاء عينة "تحكم في الخرزة" بالتوازي.
- تحفيز الخلايا الملتصقة بالتركيز المحدد من CD95L. أمسك اللوحة بزاوية وقم بإدخال الترابط في الوسط دون لمس الخلايا الملتصقة.
- تحفيز خلايا التعليق باستخدام CD95L عن طريق سحب محلول الترابط في معلق الخلية.
< p class = "jove_title" >3. حصاد الخلايا وتحللها
- ضع أطباق الخلية على الثلج.
ملاحظه: لا تتخلص من الوسيط. تطفو الخلايا المحتضرة في الوسط وهي مهمة للتحليل.
- أضف 10 مل من المحلول الملحي المخزن بالفوسفات البارد (PBS) إلى تعليق الخلية واكشط الخلايا المرفقة من اللوحة. اجمع معلق الخلية في أنبوب سعة 50 مل.
- اغسل طبق الخلية ب 10 مل من PBS البارد مرتين وضع محلول الغسيل في نفس الأنبوب سعة 50 مل. جهاز الطرد المركزي لتعليق الخلية عند 500 × جم لمدة 5 دقائق ، 4 درجات مئوية.
- تخلص من المادة الطافية وأعد تعليق حبيبات الخلية ب 1 مل من PBS البارد. انقل معلق الخلية إلى أنبوب سعة 1.5 مل.
- قم بالطرد المركزي لتعليق الخلية عند 500 × جم لمدة 5 دقائق ، 4 درجات مئوية. تخلص من المادة الطافية وأعد تعليق حبيبات الخلية ب 1 مل من PBS البارد.
- قم بالطرد المركزي لتعليق الخلية عند 500 × جم لمدة 5 دقائق ، 4 درجات مئوية. تخلص من المادة الطافية وأعد تعليق حبيبات الخلية ب 1 مل من محلول التحلل (يحتوي على كوكتيل مثبط للبروتينات بنسبة 4٪). احتضنها لمدة 30 دقيقة على الجليد.
- جهاز الطرد المركزي للمحللة بسرعة قصوى (~ 17,000 × جم) لمدة 15 دقيقة ، 4 درجات مئوية.
- انقل المادة الطافية (المحللة) إلى أنبوب نظيف. تخلص من الحبيبات. خذ 50 ميكرولتر من المحللة في أنبوب آخر. قم بتحليل تركيز البروتين عن طريق فحص برادفورد وخذ كمية المحللة المقابلة ل 25 ميكروغرام من البروتين في قارورة. أضف مخزن التحميل (انظر جدول المواد للتكوين) إلى القارورة. قم بتخزينه في درجة حرارة -20 درجة مئوية كعنصر تحكم في المحلل.
< p class = "jove_title" >4. الترسيب المناعي (IP)
- أضف 2 ميكرولتر من الأجسام المضادة ل APO-1 و 10 ميكرولتر من حبات سيفاروز البروتين A (المحضرة على النحو الموصى به من قبل الشركة المصنعة) إلى المحللة. أضف 10 ميكرولتر فقط من الخرزات إلى أنبوب منفصل يحتوي على محللة (عينة محفزة) لإنشاء "تحكم في الخرزة><".
ملاحظه: استخدم أطراف الماصة ذات الفتحات العريضة إما عن طريق قص الأطراف أو شراء نصائح خاصة للملكية الفكرية أثناء التعامل مع حبات البروتين A sepharose.
- احتضان خليط المحللة مع الأجسام المضادة / حبات السيفاروز البروتين A مع الخلط اللطيف بين عشية وضحاها عند 4 درجات مئوية. الطرد المركزي المحللات بالأجسام المضادة / حبات البروتين A سيفاروز عند 500 × جم لمدة 4 دقائق ، 4 درجات مئوية. تخلص من المادة الطافية ، وأضف 1 مل من PBS البارد إلى الخرز ، وكرر هذه الخطوة ثلاث مرات على الأقل.
- تخلص من المادة الطافية. يفضل أن يكون استنشاق الخرزات باستخدام حقنة هاميلتون سعة 50 ميكرولتر.
< ص الفئة = "jove_title" >5. وصمة عار غربية
- أضف 20 ميكرولتر من مخزن التحميل 4x (انظر جدول المواد لمعرفة التركيبة) إلى الخرز وقم بتسخينه عند 95 درجة مئوية لمدة 10 دقائق.
- قم بتحميل المحللات و IP ومعيار البروتين على هلام 12.5٪ من كبريتات دوديسيل الصوديوم (SDS) (انظر جدول المواد لتحضير الجل) وقم بتشغيله بجهد ثابت يبلغ 80 فولت.
- انقل البروتينات من هلام SDS إلى غشاء النيتروسليلوز.
ملاحظه: هنا ، تم استخدام التقنية شبه الجافة ، المحسنة للبروتينات ذات الأهمية ، للنقل على مدى 12 دقيقة (25 فولت ؛ 2.5 أمبير = ثابت). انقع غشاء النيتروسليلوز واثنين من مكدسات النقل صغيرة الحجم في المخزن المؤقت للرحلان الكهربائي (انظر جدول المواد للتكوين ، وقم بالتحضير وفقا لتعليمات الشركة المصنعة) لبضع دقائق قبل النشاف الغربي.
- ضع الغشاء النشاف في صندوق وقم بحجبه لمدة ساعة واحدة في محلول مانع (0.1٪ Tween-20 في PBS (PBST) + 5٪ حليب). احتضان الغشاء بمحلول الحجب تحت التحريض اللطيف.
- اغسل الغشاء ثلاث مرات باستخدام PBST لمدة 5 دقائق لكل غسلة.
< p class = "jove_title" >6. كشف اللطخة الغربية
- أضف أول جسم مضاد أولي عند التخفيف المشار إليه (انظر جدول المواد) إلى الغشاء واحتضنه طوال الليل عند 4 درجات مئوية مع تحريك لطيف.
- اغسل الغشاء ثلاث مرات باستخدام PBST لمدة 5 دقائق لكل غسلة.
- احتضان الغشاء ب 20 مل من الجسم المضاد الثانوي (مخفف 1: 10,000 في PBST + 5٪ حليب) مع رج لطيف لمدة ساعة واحدة في درجة حرارة الغرفة.
- اغسل الغشاء ثلاث مرات باستخدام PBST لمدة 5 دقائق لكل غسلة.
- تخلص من PBST وأضف ما يقرب من 1 مل من ركيزة بيروكسيداز الفجل إلى الغشاء.
- اكتشف إشارة التلميء الكيميائي (انظر جدول المواد).
ملاحظه: يعتمد وقت التعرض وعدد الصور الملتقطة على كمية البروتين في الخلية وخصوصية الأجسام المضادة المستخدمة. يجب أن يتم تحديده تجريبيا لكل جسم مضاد يستخدم للكشف.