مقالة منهجية

اختبار لدراسة دور الفيترونكتين في التصاق البكتيري بالخلايا الظهارية المضيفة

660 مشاهدات

يوليو 8, 2025

في هذه المقالة

الملخص

المصدر: سينغ ، ب. وآخرون ، فحوصات لدراسة دور الفيترونكتين في التصاق البكتيري ومقاومة المصل. J. Vis. Exp. (2018)

في هذا الفيديو، نوضح اختبارا لدراسة دور الفيترونكتين في المستدمية النزلية الالتصاق بالخلايا الظهارية المضيفة.

البروتوكول

< p class = "jove_title" >1. دراسة التصاق البكتيريا المعتمدة على Vn بالخلايا الظهارية

  1. زراعة الخلايا A549 (الخلايا الظهارية السنخية من النوع الثاني) في قارورة زراعة أنسجةمقاس 75 سم 2 مع وسط F12 مكمل بمصل ربلة الساق الجنينية بنسبة 10٪ (vol/vol) (FCS) (متوسط كامل) و 5 ميكروغرام / مل جنتاميسين. احتضان القارورة في حاضنة تحتوي على 5٪ ثاني أكسيد الكربون2 عند 37 درجة مئوية لمدة 3 أيام حتى تتماسك 80٪ (يمكن تقدير التقاء التقاء من خلال تصور التغطية السطحية بواسطة الخلايا باستخدام مجهر مقلوب). توضح الخطوات الأربع التالية كيفية تحضير الخلايا الظهارية للمقايس.
    1. اغسل طبقة واحدة من الخلية في القارورة مرتين باستخدام 20 مل من PBS عن طريق الدوران اللطيف. لفصل الخلايا عن سطح القارورة ، أضف 2 مل من محلول إنزيم انفصال الخلية واحتضان القارورة لمدة 5 دقائق عند 37 درجة مئوية. اضغط على القارورة براحة يدك لفصل جميع الخلايا عن السطح البلاستيكي. الماصة لأعلى ولأسفل عدة مرات لتفريق كتل الخلايا.
    2. أضف 18 مل من الوسط الكامل F12 إلى القارورة وانقل معلق الخلية بالكامل إلى أنبوب فالكون معقم سعة 50 مل. قم بالطرد المركزي لتعليق الخلية لمدة 5 دقائق عند 200 × جم عند RT وتخلص من المادة الطافية. أعد تعليق حبيبات الخلية في 10 مل من الوسط الكامل F12.
    3. قم بإزالة 10 ميكرولتر من معلق الخلية وضعه في أنبوب Eppendorf ، ثم أضف 90 ميكرولتر من محلول Trypan الأزرق. قم بتحميل العينة في مقياس كثافة الدم (عمق 0.1 مم) بعد وضع الغطاء.
    4. احسب جميع الخلايا القابلة للحياة في المناطق A و B و C و D (يتكون كل حقل من 16 مربعا ، وتبلغ مساحة كل مربع 0.0025 مم2) ، ثم احسب متوسط عدد الخلايا ([A + B + C + D] / 4). احسب عدد الخلايا لكل مليلتر باستخدام المعادلة التالية:
      خلايا قابلة للحياة / مل = متوسط عدد الخلايا × 104 × عامل التخفيف.
      ملاحظه: هنا ، عامل التخفيف هو 10.
    5. خفف معلق الخلية إلى 5.0 × 103 خلايا / مل باستخدام وسط كامل يحتوي على 5 ميكروغرام / مل من الجنتاميسين. قم بتوزيع 500 ميكرولتر من تعليق الخلية في كل بئر من لوحة زراعة الخلايا المكونة من 24 بئرا. احتضان اللوحة عند 37 درجة مئوية في 5٪ ثاني أكسيدالكربون 2 حتى تتلاقى الخلايا بنسبة 90٪.
  2. قبل الإصابة البكتيرية ، قم بإزالة الوسط من الآبار وأضف وسط F12 (بدون FCS) ، ثم احتضانه طوال الليل عند 37 درجة مئوية.
  3. اغسل الخلية أحادية الطبقة ثلاث مرات باستخدام 500 ميكرولتر من PBS في RT. ضع اللوحة على الثلج وأضف 100 ميكرولتر من وسط F12 المبرد مسبقا الذي يحتوي على 10 ميكروغرام / مل من Vn. احتضان اللوحة عند 4 درجات مئوية لمدة 1 ساعة. لآبار التحكم ، أضف وسط F12 فقط.
  4. بعد الحضانة ، تخلص من المحلول عن طريق سحب العينات واغسل طبقة الخلية مرتين باستخدام 1 مل من PBS في RT.
  5. ثقافة Hif العزلات السريرية في وسط تسريب الدماغ والقلب (BHI) مكمل ب 10 ميكروغرام / مل NAD والهيمين عند 37 درجة مئوية مع الاهتزاز عند 200 دورة في الدقيقة. استخدم وسط لوريا بيرتاني لزراعة الإشريكية القولونية. حصاد Hif في منتصف مرحلة لوغاريتم (OD600 = 0.3) وإعادة تعليق البكتيريا في محلول ملحي مخزن بالفوسفات (PBS) ، درجة الحموضة 7.2 ، التي تحتوي على 1٪ (وزن / حجم) ألبومين مصل البقر (BSA) (مانع المخزن المؤقت ؛ PBS-BSA). اضبط التعليق على 109 CFU / مل. أعد تعليق مزرعة Hif M10 المزروعة حديثا في وسط F12 (2×108 CFU / مل). أضف 100 ميكرولتر من هذا المعلق البكتيري إلى كل بئر واحتضن اللوحة لمدة ساعتين عند 37 درجة مئوية < / > ملاحظه: يحتوي كل بئر على ما يقرب من 2 × 105 خلايا A549. للعدوى, تمت إضافة 2 × 107 CFU البكتيرية, ما يتوافق مع تعدد العدوى من 100.
  6. قم بإزالة الوسط عن طريق سحب العينة واغسل الخلايا الظهارية A549 ثلاث مرات باستخدام PBS. أضف 50 ميكرولتر / بئر من محلول انفصال الخلية واحتضان اللوحة لمدة 5 دقائق عند 37 درجة مئوية.
  7. بعد ذلك ، أضف 50 ميكرولتر من F12 الوسط الكامل لكل بئر لإيقاف التفاعل الأنزيمي. انقل الخلايا الظهارية (≈100 ميكرولتر [أي الحجم بأكمله]) من كل بئر إلى أنبوب زجاجي سعة 6 مل يحتوي على أربعة حبات زجاجية. قم بتحليل الخلايا في RT عن طريق الدوامة لمدة دقيقتين.
  8. قم بتخفيف 10 ميكرولتر من محللة الخلية 100 مرة عن طريق إضافة 10 ميكرولتر من المحللة إلى 990 ميكرولتر من وسط F12. طبق 10 ميكرولتر من العينة المخففة على طبق أجار الشوكولاتة.
  9. احتضن طبق أجار الشوكولاتة عند 37 درجة مئوية طوال الليل ، ثم عد المستعمرات. كل مستعمرة تمثل CFU واحدا.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

لم يتم الإعلان عن تضارب في المصالح.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
5 مل من البوليسترين أنبوب دائري القاعBD Falcon60819-13812 × 75 ملم نمط
5٪ CO2 حاضنة موردةحراري علميBBD6220
6 مل أنبوب البوليسترين المستدير القاعVWR89000-478 12 × نمط 75 مم مع غطاء
أطباق 24 بئرBD Falcon08-772-1Hدرجة زراعة الخلايا
75 سم2 قارورة زراعة الأنسجةBD FalconBD353136تنفيس
A549 خط الخلية البشريسيجما ألدريتش 86012804-1VL
إنزيم انفصال الخلية (Accutase) سيجما ألدريتش A6964-500MLدرجة زراعة الخلية
ألبومينات مصل الأبقار (BSA)سيجما ألدريتش A2058مناسب لزراعة الخلايا
F12 متوسطسيجما ألدريتش D6421درجة ثقافة الخلية
مصل ربلة الساق الجنينية (FCS)سيجما ألدريتش 12003Cمناسب لزراعة الخلايا
مقياس الدممارينفيلد640210
قارورة زراعة الأنسجةBD Falcon317516775 سم2
فيترونكتين (Vn) من البلازما البشرية سيجما ألدريتش V8379-50UGدرجة زراعة الخلايا

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

Haemophilus influenzae PBS vortex

مقالات ذات صلة