تمت مراجعة جميع إجراءات النموذج الحيواني من قبل لجنة رعاية المؤسسية المحلية ومجلس المراجعة البيطرية JoVE.
< p class = "jove_title" >
1. تحصين
تحت - الجلد (s.c) حقن إناث الفئران BALB / c ، 6-8 أسابيع من العمر ، مع 50 ميكروغرام من بروتين APN أو محلول ملحي مخزن بالفوسفات (PBS ، تحكم سلبي) ممزوج بالمواد المساعدة مرة كل أسبوعين. استخدم مساعد فرويند الكامل الذي يحتوي على البكتيريا الفطرية المقتولة بالحرارة للتحصين الأولي ، ومساعد فرويند غير المكتمل للتطعيمات المعززة. امزج كميات متساوية من بروتين APN (أو PBS) ومساعد فرويند أو مساعد فرويند غير المكتمل ، على التوالي.
- الكشف عن عيارات الأجسام المضادة ضد APN في مصل هذه الفئران عن طريق مقايسة الممتز المناعي غير المباشر المرتبط بالإنزيم (ELISA) باستخدام صفيحة ميكروتيتر مطلية ببروتين APN 5 ميكروغرام / مل مخفف في 0.05 M PBS (الرقم الهيدروجيني 9.6).
فئة
2. تقنية الورم الهجين لإنتاج أجسام مضادة وحيدة النسيلة ضد APN
- داخل الصفاق (IP) حقن 100 ميكروغرام من بروتين APN في الفئران المختارة لتعزيز المستضد النهائي.
- بعد ثلاثة أيام ، قتل الفئران باستخدام البنتوباربيتال الصوديوم (50 مجم / كجم ، V / v ، داخل الصفاق) وخلع عنق الرحم.
- اجمع الطحال واغسله ب DMEM مرتين لإزالة الدم والخلايا الدهنية. قم بتصفية معلق خلايا الطحال باستخدام شبكة نحاسية مكونة من 200 شبكة لإزالة بقايا الأنسجة ، وحصاد خلايا الطحال باستخدام الطرد المركزي (1500 × جم ، 10 دقائق) لإزالة غشاء الطحال.
- خلايا الورم النخاعي لفأر البذور SP2 / 0 في قارورة 2 مقاس 25 سم تحتوي على 5 مل من وسط النسر المعدل (DMEM) من Dulbecco مع 6٪ مصل بقري جنين (FBS) ومزرعة عند 37 درجة مئوية ، 6٪ جو ثاني أكسيد الكربون2 للحفاظ على بقاء الخلية. بعد 5-6 أيام من الثقافة ، تصل الخلايا إلى 80٪ -90٪ من التقاء بعد الإنعاش وهي في مرحلة سجل النمو. تحت المجهر ، تكون الخلايا مستديرة ومشرقة وواضحة.
- قبل يوم واحد من التهجين ، اجمع البلاعم من التجاويف البريتونية للفئران وفقا لطريقة منشورة مسبقا.
- ضامة بريتونية البذور بكثافة 0.1-0.2 × 105 / مل في ألواح 96 بئرا ، تحتوي كل بئر على 100 ميكرولتر من وسط HAT (DMEM مكمل بنسبة 10٪ FBS و 1x HAT) ، وتحتضن عند 37 درجة مئوية ، 6٪ ثاني أكسيد الكربون2 جو مرطب بين عشية وضحاها.
- للتهجين، قم بشفط خلايا SP2/0 برفق باستخدام ماصة من 8-10 زجاجات، وعلقها في 10 مل من وسط DMEM الخالي من المصل. اغسل الخلايا بجهاز طرد مركزي جديد من DMEM (1500 × جم ، 10 دقائق) مرتين ، ثم أعد تعليقه في 10 مل من DMEM.
- امزج خلايا الطحال المحددة كميا مع خلايا SP2 / 0 بنسبة 10: 1 وانقلها إلى أنابيب سعة 50 مل. جهاز طرد مركزي (1500 × جم ، 10 دقائق) وتخلص من المادة الطافية. اجمع كريات الخلية في الجزء السفلي من الأنابيب واضغط براحة اليد لفك الكريات قبل التهجين.
- أضف 1 مل من البولي إيثيلين جلايكول 1500 (PEG 1500) ، الدافئ مسبقا إلى 37 درجة مئوية ، بالتنقيط باستخدام قطارة إلى حبيبات الخلية المفككة خلال الفترة الزمنية التي تبلغ 45 ثانية أثناء تدوير قاع الأنبوب برفق.
- أضف ببطء 1 مل من DMEM المسخن مسبقا إلى 37 درجة مئوية إلى الخليط أعلاه على مدى 90 ثانية ، متبوعا ب 30 مل أخرى من DMEM الطازج. ضع أنبوب الانصهار في حمام مائي 37 درجة مئوية لمدة 30 دقيقة.
- بعد الحضانة في الحمام الدافئ ، احصد الخلايا وأعد تعليقها في وسط HAT. ثم استزراع في صفيحة 96 بئرا ملقحة بالضامة الصفاقية.
- بعد خمسة أيام ، أضف 100 ميكرولتر من وسط HAT الطازج إلى كل بئر ، واحتضن الطبق لمدة 5 أيام إضافية ، وبعد ذلك استبدل الوسط بوسط HT (DMEM مكمل بنسبة 10٪ FBS و 1x HT Supplement).
- استخدم صفيحة ميكروتيتر مطلية ببروتين APN 5 ميكروغرام / مل مخفف في 0.05 M PBS (الرقم الهيدروجيني 9.6) لتحليل الأجسام المضادة وحيدة النسيلة في الورم الطافي الهجين باستخدام مقايسة ELISA.
- عندما يتحول الوسط الموجود في آبار الصفيحة المكونة من 96 بئرا إلى اللون الأصفر (بسبب نمو الخلايا وإطلاق المستقلب ، ينخفض الرقم الهيدروجيني في الوسط إلى 6.8 ، ويتحول لون الفينول الأحمر من الفوشيه إلى الأصفر) أو لوحظت مجموعات الخلايا ، احصل على 100 ميكرولتر من المادة الطافية من الآبار المختارة وأضفها إلى آبار لوحة ELISA المطلية. استخدم قارئ الألواح الدقيقة لقياس قيم OD450.
- استخدم الأجسام المضادة متعددة النسيلة ضد APN ومصل الفأر غير المصاب كتحكم إيجابي وسلبي ، على التوالي ، واستخدم PBS كتحكم فارغ. في هذه الدراسة ، تم التعرف على نسبة OD450 للعينة إلى المراقبة السلبية (P / N) ≥ 2.1 كمعيار انتقاء إيجابي.