$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
تمت مراجعة جميع الإجراءات التي تنطوي على نماذج حيوانية من قبل لجنة رعاية المؤسسية المحلية ومجلس المراجعة البيطرية JoVE.
< p class = "jove_title" >
1. الاستعدادات
- تحضير 10 لتر من محلول ملحي مخزن بالفوسفات (PBS): 32.27 جم من فوسفات هيدروجين الصوديوم (Na2HPO4 · 12H2O) ، 4.5 جم من فوسفات ثنائي هيدروجين الصوديوم (NaH2PO4 · 2 H2O) ، 80.0 جم من كلوريد الصوديوم (NaCl) مضاف إلى الماء عالي النقاء إلى حجم نهائي قدره 10 لتر.
- تحضير 200 مل من PBS-T: 200 مل من PBS من الخطوة 1.1 مع 100 ميكرولتر من بولي أوكسي إيثيلين (10) أوكتيل فينيل الأثير إلى تركيز نهائي قدره 0.05٪ (المجلد: المجلد). تخزين في RT.
- أثناء ارتداء القفازات وواقي العين ، قم بإعداد 50 مل من السكروز 15٪ في محلول الفورمالين المحايد المخزن 10٪: يضاف 7.5 جم من السكروز إلى محلول الفورمالين المحايد المخزن 10٪ (جدول المواد) إلى الحجم النهائي 50 مل. تخزينها في RT.
أنذر: يمكن أن يكون الاستنشاق و / أو ملامسة الجلد / العين مع الفورمالديهايد في محلول الفورمالين المحايد المخزن 10٪ خطيرا. تعامل بحذر.
- قم بإعداد 1.5 مل من 200 وحدة / مل محلول مخزون الصبغة المترافقة بالفالويد الفلورسنت: الفلودين - الفلورسنت صبغة مترافقة (300 وحدة في قارورة واحدة ، مواد صلبة مجففة بالتجميد ، الإثارة ، وأطوال موجات الانبعاث: 581 نانومتر و 609 نانومتر ، على التوالي) معلقة في 1.5 مل من الميثانول. قم بتخزين المحلول في الظلام عند -20 درجة مئوية.
- تحضير 5 مجم / مل 4 '، 6-دياميدينو-2-فينيليندول ، محلول مخزون ثنائي هيدروكلوريد (DAPI): 10 مجم من DAPI في 2 مل من N ، N-dimethylformamide (DMF). قم بتخزين المحلول في الظلام عند -20 درجة مئوية.
- تحضير 5٪ ألبومين مصل البقر (BSA) في PBS: 0.5 جم من BSA ، 10 مل من PBS. يحفظ في درجة حرارة 4 درجات مئوية.
- قم بإزالة الطرف المشطوف لإبرة مستقيمة قياس 18 باستخدام قراصة ، واضغط على الطرف المقطوع بقرصة في اتجاه طولي للسماح للسائل بالتدفق عبر تجويف الإبرة (الشكل 1A1).
ملاحظه: يمكن إيقاف البروتوكول مؤقتا هنا.
< p class = "jove_title" >
2. تشريح وعزل الصائم
- تثبيت التروية للفأر
- ارتد القفازات واعمل في منطقة جيدة التهوية.
- قم بإعداد دورق زجاجي سعة 100 مل ، ومحلول فورمالين محايد مخزن بنسبة 10٪ ، وأدوات جراحية (مقص ، ملقط) ، وصينية معدنية ، وخيوط مقطوعة من النايلون 6-0 ، وإبرة مستقيمة عيار 18 محضرة كما في 1.7 ، وإبرة مجنحة عيار 22 ، وحقنة سعة 20 مل.
- قم بتحميل 20 مل من محلول الفورمالين المحايد المخزن بنسبة 10٪ من الدورق الزجاجي في المحقنة سعة 20 مل وقم بتوصيل الإبرة المجنحة قياس 22 بالمخرج.
- قم بإعداد الجيلاتين السائل عن طريق إضافة 1 جم من مسحوق الجيلاتين إلى 20 مل من PBS (الجيلاتين النهائي 5٪) في أنبوب طرد مركزي سعة 50 مل. بعد النقع في RT لمدة 15 دقيقة ، احتضن عند 50 درجة مئوية في حمام مائي لمدة 15 دقيقة دون رج.
دوامة - لفترة وجيزة واحتضانها عند 50 درجة مئوية لمدة 15 دقيقة أخرى لإذابة الجيلاتين تماما. اترك الأنبوب في RT حتى الاستخدام.
- القتل الرحيم لفأر بالغ عن طريق خلع عنق الرحم.
- ضع الماوس من الخطوة 2.1.6 على صينية معدنية وقم بعمل شق صغير على الجلد من خلال الغضروف المتماثل باستخدام الأدوات الجراحية.
- قم بتوسيع الشق بكلتا يديه لكشف المناطق الصدرية والبطنية.
- افتح الصفاق لكشف الحجاب الحاجز ، ثم افتح الحجاب الحاجز على كلا الجانبين.
- اقطع القفص الصدري على طول الخطوط الإبطية الأمامية على كلا الجانبين ، ثم قم بإزالة الجدار الصدري عن طريق القطع في اتجاه عرضي في موضع الغدة الصعترية لكشف القلب.
- قم بعمل شق صغير في أذن الأذين الأيمن لتصريف الدم وإدخال إبرة مجنحة عيار 22 في قمة البطين الأيسر. ادفع المكبس لنفخ الأنسجة بمحلول فورمالين محايد مخزن بنسبة 10٪.
- بعد تعريض الأعضاء في الحوض ، قم بقطع نهاية المستقيم عن فتحة الشرج ، وافصل الأمعاء عن الجسم عن طريق قطع المساريق.
- لعزل الصائم ، قم بقطع الأمعاء على بعد 4 سم من الجانب الشرجي من antrum المعدة. تخلص من النصف الشرجي من الأمعاء الدقيقة المتبقية.
- قص الصائم إلى نصفين لتسهيل عملية التنظيف. قم بتحميل 20 مل من محلول الفورمالين المحايد المخزن 10٪ في المحقنة سعة 20 مل ، وقم بتوصيل الإبرة المستقيمة عيار 18 المحضرة في الخطوة 1.7 بالمخرج.
- حقن محلول الفورمالين المحايد المخزن 10٪ من أحد طرفي الصائم المقطوع لطرد محتويات الأمعاء وإصلاح سطح تجويف الأمعاء (الشكل 1A2).
- اغسل تجويف الأمعاء عن طريق حقن PBS كما هو موضح في الخطوة 2.1.15.
- اغسل الجيلاتين السائل في تجويف الأمعاء كما هو موضح في الخطوة 2.1.15 لاستبدال PBS بالجيلاتين السائل.
- أغلق أحد طرفي الصائم المقطوع عن طريق ربط الخياطة باستخدام خياطة مقطوعة من النايلون 6-0 ، واملأ الصائم بالجيلاتين السائل ، وأغلق الطرف الآخر عن طريق ربط الخياطة (الشكل 1A3).
- أضف أربع عقدة خياطة لتناسب قسم الصائم على شكل نقانق إلى الجزء المكتئب من cryomold (الشكل 1A4). < / >
ملاحظه: بالنسبة للقوالب المبردة ذات القسم المكتئب 20 مم × 25 مم × 5 مم ، يفضل قسم الصائم الشبيه بالنقانق ~ 20 مم.
- انقع المناديل في 50 مل من السكروز 15٪ في محلول فورمالين محايد مخزن 10٪ طوال الليل عند 4 درجات مئوية.
ملاحظه: تضمن هذه الخطوات الحماية بالتبريد عن طريق السكروز وتثبيت البروتين بواسطة الفورمالين من الجيلاتين والأنسجة. لا يذوب الجيلاتين الفورمالين الجيلاتين عند RT ، بينما يذوب الجيلاتين الجيلاتين غير الثابت عند 4 درجات مئوية عند RT.
< p class = "jove_title" >
3. التجميد المفاجئ لأنسجة الصائم المملوءة بالجيلاتين
- عن طريق قطع الصائم عند عقدة الخياطة ، يتم الحصول على ثلاث قطع صائم تشبه النقانق مع ربط كلا الطرفين (الشكل 1A4). قم بمحاذاة القطع الشبيهة بالنقانق في بريدي لإضافة مركب التضمين لتحضير عينات الأنسجة المجمدة.
قم - بتجميد المبرد في الأيزوبنتان المبرد بالنيتروجين السائل. قم بتخزين قوالب التبريد في -80 درجة مئوية
ملاحظة: يمكن إيقاف البروتوكول مؤقتا هنا.
< p class = "jove_title" >
4. التألق المناعي لخلايا الخصل باستخدام عمليات القطع بالتبريد العائمة بحرية
- التقطيع بالتبريد
- اضبط كل من درجة حرارة غرفة ناظم التبريد (CT) ودرجة حرارة الجسم (OT) على -22 درجة مئوية. ضع كتلة الأنسجة المجمدة في حجرة التبريد في غرفة التبريد لمدة 15 دقيقة على الأقل.
- أضف 3 مل من PBS إلى طبق استزراع مقاس 35 مم.
- قم بإزالة كتلة الأنسجة المجمدة من cryomold وقطع الكتلة إلى نصفين بشفرة حلاقة لكشف الجزء العرضي من الصائم. قم بتركيب نصف الكتلة على ظرف (محول ناظم البرد) لتقسيم مستوى القطع بشفرة الحلاقة.
- قسم الصائم المملوء بالجيلاتين إلى أقسام بسمك 30 ميكرومتر. استخدم ملقطا مجمدا لنقل الأقسام برفق إلى طبق الثقافة مقاس 35 مم المحضر في الخطوة 4.1.2 (الشكل 2 ب ، على اليمين).
- تطبيق الأجسام المضادة الأولية
- اغسل الأقسام العائمة الحرة في طبق الاستزراع مقاس 35 مم 3 مرات لمدة 5 دقائق مع 3 مل PBS-T مع اهتزاز خفيف على شاكر متبادل (حوالي 36 مرة / دقيقة).
- تحضير محلول استرجاع المستضد: 0.3 مل من مركز محلول استرجاع المستضد (جدول المواد) في 2.7 مل من الماء فائق النقاء. أضف 3 مل من محلول استرجاع المستضد إلى طبق الاستزراع مقاس 35 مم الذي يحتوي على أقسام عائمة بحرية.
- أغلق الغطاء ، وأغلق الفجوة بين الطبق والغطاء بشريط من شريط الفينيل ، واحتضن عند 50 درجة مئوية في حاضنة تهجين لمدة 3 ساعات دون اهتزاز.
- أخرجي الطبق من الحاضنة واتركيه يبرد في RT لمدة 20 دقيقة. بعد إزالة شريط الفينيل ، اغسل الأقسام 3 مرات لمدة 5 دقائق مع 3 مل من PBS-T ورج خفيف.
- قم بشفط PBS-T وأضف 5 قطرات من محلول الحجب (جدول المواد) إلى الأقسام. احتضن في RT لمدة 5 دقائق مع رج خفيف.
- تحضير محلول الأجسام المضادة الأساسي: 495 ميكرولتر من 5٪ BSA في PBS مع 5 ميكرولتر من الأجسام المضادة phospho-Y1798 girdin (pY1798) (جدول المواد). أضف 500 ميكرولتر من محلول الأجسام المضادة الأولية إلى الأقسام (لا يلزم إزالة محلول الحظر).
- ضع الطبق في حجرة حضانة رطبة واحتضنه طوال الليل عند 4 درجات مئوية مع رج خفيف. < / >
ملاحظه: يمكن تمديد الحضانة الليلية إلى ما يصل إلى ثلاث ليال.
- تطبيق الأجسام المضادة الثانوية
- اغسل الأقسام 3 مرات لمدة 5 دقائق لكل منها 3 مل من PBS-T مع رج خفيف.
- تحضير محلول مخزون DAPI المخفف: 2 ميكرولتر من محلول مخزون DAPI (الخطوة 1.5) ، 998 ميكرولتر من PBS.
- اصنع محلول الأجسام المضادة الثانوية: 476 ميكرولتر من 5٪ BSA في PBS ، 10.5 ميكرولتر من محلول DAPI المخفف ، 12.5 ميكرولتر من محلول مخزون الصبغة المترافقة بالفالويد الفلوري ، 1 ميكرولتر من الماعز المضاد للأرانب IgG-fluorescent صبغة مترافقة (الطول الموجي: الإثارة 496 نانومتر ، الانبعاث 520 نانومتر).
- بعد شفط PBS-T ، ضع محلول الجسم المضاد الثانوي واحتضنه في غرفة حضانة محمية من الضوء في RT لمدة 30 دقيقة مع اهتزاز خفيف.
- اغسل الأقسام 3 مرات لمدة 5 دقائق مع 3 مل من PBS-T ورج خفيف.
- بعد الغسيل النهائي ، قم بإزالة PBS-T واستبدله ب 3 مل من PBS يفتقر إلى بولي أوكسي إيثيلين (10) أوكتيل فينيل إيثر. انقل الطبق إلى مجهر مجسيم.
- ضع 200 ميكرولتر من PBS في قطرة في وسط شريحة زجاجية بيضاء مطلية ب MAS وانقل قسما واحدا من الصائم من الطبق إلى القطرة باستخدام طرف ماصة P200.
- بعد ضبط محاذاة المقطع تحت المجهر المجسم ، قم بشفط جميع PBS المتبقية المحيطة بالقسم.
- أضف 20 ميكرولتر من وسائط التركيب المائية وضع غطاء مقاس 20 × 20 مم فوق الوسائط.
- أغلق حواف الغطاء على الفور بوسائط تثبيت قائمة على الزيلين. ضع الشريحة على خريطة خشبية واترك وسائط التثبيت القائمة على الزيلين تتصلب عند RT لمدة 2-3 ساعات.
ملاحظه: يمكن إيقاف البروتوكول مؤقتا هنا. بعد أن تصلب وسائط التثبيت القائمة على الزيلين ، يمكن تخزين الشرائح لمدة 2-3 أسابيع في صندوق شرائح محمي من الضوء في RT.
< p class = "jove_title" >
5. الفحص المجهري متحد البؤر
- ضع زيت الغمر على هدف 63X من المجهر متحد البؤر. اقلب شريحة الغطاء لأسفل وضع الشريحة على المسرح.
- قم برقمنة صور TC التي تم الحصول عليها بأطوال موجات الليزر 405 و 488 و 555 نانومتر واحفظ الصور بتنسيق tiff (.tiff).
ملاحظه: اختر مجموعة مرشح الكشف المناسبة للأصباغ الفلورية (أي الحد الأقصى للإثارة / الانبعاث: 358/461 نانومتر و 490/525 و 590/617).