$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
تمت مراجعة جميع الإجراءات التي تنطوي على عينات حيوانية والموافقة عليها من قبل المراجعة الأخلاقية المناسبة للحيوانات.
1. حلول للجراحة والتسجيل التجريبي
- تحضير عازلة طبيعية للسائل الدماغي النخاعي الاصطناعي (aCSF) تحتوي على (ملليمتر) كلوريد الصوديوم (كلوريد الصوديوم) 124 ، KCl (كلوريد البوتاسيوم) 3.75 ، KH2PO4 (فوسفات ثنائي هيدروجين البوتاسيوم) 1.25 ، MgSO4 (كبريتات المغنيسيوم) 2 ، NaHCO3 (بيكربونات الصوديوم) 26 ، سكر العنب 10 ، وكلور الكالسيوم2 (كلوريد الكالسيوم) 2. استخدم هذا aCSF العادي لاستعادة الأنسجة بعد التشريح ولنظام الغسيل في بداية التجربة.
- تحضير السكروز aCSF المستخدم أثناء تشريح الحصين ويحتوي على (مللي مولار): السكروز 220 ، KCl 2.95 ، NaH2PO4 (فوسفات ثنائي هيدروجين الصوديوم) 1.3 ، MgSO4 2 ، NaHCO3 26 ، سكر العنب 10 ، وكلورالكالسيوم 2 2. من أجل تحفيز نشاط الصرع في تحضير أنسجة الحصين السليمة ، أضف 4-Aminopyridine (4-AP) إلى aCSF الطبيعي بتركيز 100 ميكرومتر.
< p class = "jove_title" >
2. وضع الحصين غير المطوي على مصفوفة الأقطاب الكهربائية الدقيقة المخترقة (PMEA) لتسجيل النشاط العصبي
- لتحضير الإعداد التجريبي ، املأ زجاجة واحدة ب aCSF العادي وزجاجة أخرى ب 4-AP aCSF. في كلتا الزجاجتين ، قم بفقاعة 95٪ O2 / 5٪ CO2 من بداية كل تجربة. استخدم موصل ثلاثي الصمامات للتحكم في الحل الذي سيتم اختياره أثناء التجربة. قم بتوصيل أنبوب مفرغ عند مخرج الغرفة لضخ المحلول في حاوية الغبار. قم بتسخين خط الأنابيب قبل تسليمه إلى غرفة التسجيل واحتفظ بالمحلول عند مستوى درجة حرارة متحكم فيه (35 درجة مئوية).
- عند إغلاق مدخل ومخرج غرفة التسجيل ، استخدم قطارة ماصة زجاجية مصنوعة خصيصا لنقل الحصين غير المطوي ووضعه في الغرفة. تحت المجهر ، ضع الحصين المكشوف باستخدام فرشاة طلاء صغيرة عادية بينما يطفو النسيج في المحلول. ضع الحصين المكشوف بحيث يكون جانبه الحويقي متجها لأسفل ، ومنطقة CA3 تشير بعيدا ، ويشير حقل CA1 إلى الباحث.
- امتصاص المحلول في الغرفة بعناية باستخدام ماصة مفرغة من حافة غرفة التسجيل لخفض مستوى المحلول حتى تجف الغرفة ويتم إنزال الأنسجة على المصفوفة. بعد ذلك ، ضع بعناية مرساة أنسجة مخصصة (الشكل 1) (رقم 7 في مواد ومعدات محددة) أعلى الأنسجة لتثبيت الحصين غير المطوي على المصفوفة. ضع بضع قطرات من المحلول في غرفة التسجيل لإعادة تعبئتها ، وافتح المدخل والمخرج تدريجيا لضبط معدل التدفق إلى حوالي قطرتين في الثانية في غرفة التنقيط الوريدي.
- احتضان الأنسجة في غرفة التسجيل باستخدام aCSF العادي لمدة 1 دقيقة تقريبا للتعافي ، ثم قم بتبديل إمداد المحلول إلى aCSF المذاب 4-AP واضبط معدل التدفق بشكل صحيح. احتضان الأنسجة في 4-AP aCSF المذاب لمدة 5 إلى 10 دقائق ، وبعد ذلك يمكن للباحث بدء تشغيل البرنامج لتسجيل الإشارة عند ظهور نشاط تلقائي.