Method Article

إعداد نموذج الفئران لتقييم سلامة المسار البصري باستخدام إعداد الفيزيولوجيا الكهربية

July 8th, 2025

In This Article

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
< p class = "jove_content" >المصدر: Nguyen ، C. T. et al. ، التسجيل المتزامن لتخطيط كهربية الشبكية والإمكانات البصرية المستحثة في الفئران المخدرة.J. Vis. Exp. (2016)

يوضح هذا الفيديو إعداد نموذج الفئران لدراسة صحة الشبكية وسلامة المسار البصري. يتم توصيل الجهد المستحث البصري ومرجع التصوير الكهربائي والقطب النشط بالجرذ ، متبوعا بمحاذاة المنصة مع الجرذ أمام وعاء Ganzfeld لإضاءة شبكية العين وإغلاق قفص فاراداي لتجنب التداخل الخارجي.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تمت مراجعة جميع الإجراءات التي تنطوي على نماذج حيوانية من قبل لجنة رعاية المؤسسية المحلية ومجلس المراجعة البيطرية JoVE.

< p class = "jove_title" >1. الزرع المسبق لأقطاب الجهد البصري المزمن (VEP)

ملاحظة: إذا تم جمع إشارات مخطط كهربية الشبكية المتزامن (ERG) و VEP ، فيجب زرع جراحيا بأقطاب VEP قبل أسبوع واحد على الأقل من جمع الإشارة.

  1. تعقيم المقعد الجراحي قبل التجربة عن طريق التنظيف بالكلورهيكسيدين (0.5٪ في 70٪ إيثانول). الأوتوكلاف جميع المعدات الجراحية قبل الاستخدام. قم بتغطية بستارة جراحية معقمة. تأكد من ارتداء جميع المجربين للأقنعة الجراحية والعباءات والقفازات المعقمة.
  2. تحفيز التخدير ب 3 - 3.5٪ إيزوفلوران مع O2 بمعدل تدفق 3 لتر / دقيقة. الحفاظ على التخدير عند 1.5٪ و 2 لتر / دقيقة طوال الجراحة. تأكد من عمق التخدير الكافي من خلال عدم وجود منعكس قرصة المخلب.
  3. ضع 1٪ كربوكسي ميثيل سلولوز الصوديوم على القرنية لمنع جفاف العينين.
  4. حلق مساحة 30 مم × 30 مم فوق الجبهة وخلف العينين وأمام الأذنين.
  5. ضع على وسادة حرارية (37 درجة مئوية) للحفاظ على درجة حرارة الجسم وتثبيت رأس بإطار تجسيمي.
  6. تطهير المنطقة المحلوقة ب 10٪ بوفيدون اليود ثلاث مرات. بالنسبة للمنطقة القريبة من العين ، تجنب استخدام المطهرات التي تحتوي على الكحول ، بما يتفق مع معيار الممارسة الذي وضعته جمعية التقنيين الجراحيين.
  7. قم بعمل شق سهمي متوسط على الرأس بمشرط ومن هذا المكوس دائرة قطرها ~ 20 مم من الأنسجة الجلدية لفضح عظم الجمجمة.
  8. قم بإزالة السمحاق الأساسي عن طريق الكشط والتجفيف بالشاش لكشف خيوط الجمجمة الإكليلية والسهمية.
  9. باستخدام نتوءات الأسنان المتصلة بالمثقاب ، قم بحفر فتحتين (قطر 0.7 مم ، عمق ~ 1 مم) من خلال الجمجمة على نصفي الكرة الأرضية عند الإحداثيات التجسيمية: 7 مم ذيلية إلى بريجما ، 3 مم جانبي إلى خط الوسط.
  10. قم بربط مسامير من الفولاذ المقاوم للصدأ (قطر 0.7 مم ، طول 3 مم ، معقمة بالكلورهيكسيدين) في الفتحتين المعدة مسبقا حتى عمق ~ 1 مم (2 مم من المسمار المكشوف) للسماح بالتثبيت الثابت. هذا يلامس الجافية دون الإضرار بالأنسجة القشرية الأساسية.
  11. تحضير المنطقة الجراحية لملغم الأسنان عن طريق تجفيف عظم الجمجمة بالشاش ، وسحب الجلد المترهل بخرزتين 3-0 عند ~ 4 و 8 الساعة.
  12. انشر ملغم الأسنان على الجمجمة المكشوفة لتثبيت الأقطاب الكهربائية اللولبية (مسامير الفولاذ المقاوم للصدأ الموضحة في الخطوة 1.10) في مكانها. تأكد من بقاء ~ 1.5 مم من البراغي مكشوفة للتسجيل.
  13. قم بإزالة خيوط التراجع.
  14. حقن 0.5٪ كاربروفين تحت الجلد (5 ملغ/كغ) لتسكين الألم والمحلول الملحي (كلوريد الصوديوم 0.9٪، 1.5 مل) تحت الجلد لاستبدال السوائل.
  15. اسمح للحيوانات بالتعافي في أقفاص منفصلة. لا تترك دون رقابة حتى يستعيد وعيه الكافي للحفاظ على الاستلقاء القصي.
  16. لا تعيد إلى صحبة الأخرى حتى يتعافى تماما من الجراحة (5 أيام على الأقل).
  17. يجب الاستمرار في إعطاء 0.5٪ كاربروفين تحت الجلد للمسكن (5 ملغ/كغ) مرة واحدة يوميا لمدة 4 أيام.
  18. سجل ERG و VEP بعد أسبوع واحد من الجراحة.
فئة

2. تسجيل ERG و VEP

  1. التحضير لجمع البيانات
    1. استخدم برامج الكمبيوتر لتشغيل التحفيز في وقت واحد والحصول على البيانات وفقا للإعدادات الموصى بها أدناه.
      1. تضخيم الإشارات (ERG: ×1,000 ، VEP: x10,000) مع ضبط الكسب داخليا بواسطة مضخم مسبق معزول ومضخم للصوت ، ومع مطابقة كلتا العينين للمقاومة.
      2. اضبط معدل أخذ العينات ل ERG على 4 كيلو هرتز على نافذة تسجيل 650 مللي ثانية (2,560 نقطة) ، للقيام بذلك ، انقر فوق علامة التبويب الخاصة ب "القاعدة الزمنية" في برنامج الحصول على البيانات (للحصول على اسم البرنامج وإصداره ، انظر جدول المواد) ، وحدد "2,560" للعينات ، و "500 مللي ثانية" للوقت الذي سيعيد نافذة تسجيل 650 مللي ثانية.
        1. استخدم نفس الطريقة لتعيين معدل أخذ العينات ل VEP إلى 10 كيلو هرتز خلال فترة 250 مللي ثانية. اسمح بخط أساس مسبق للتحفيز 10 مللي ثانية لكل من تسجيلات ERG و VEP. للقيام بذلك ، انقر فوق علامة التبويب "الإعداد" ؛ حدد "المحفز" لإظهار نافذة حوار جديدة ؛ في تلك النافذة ، حدد "نبض" من القائمة المنسدلة ل "الوضع" ؛ وقم بتعيين قيمة "التأخير" إلى "10 مللي ثانية".
      3. اضبط تصفية تمرير النطاق ERG على 0.3 - 1,000 هرتز (- 3 ديسيبل). يتم ذلك عن طريق النقر فوق "Bio Amplifier" في برنامج الحصول على البيانات. ثم اضبط قيمة "High Pass" على "0.3 هرتز" ، وقيمة "التمرير المنخفض" إلى "1 كيلو هرتز".
      4. باستخدام الطريقة المذكورة أعلاه في 2.1.1.3 ، اضبط إعدادات تمرير النطاق VEP على 0.1 - 100 هرتز (- 3 ديسيبل) على النحو الموصى به من قبل الجمعية الدولية للفيزيولوجيا الكهربية السريرية للرؤية (ISCEV) لتسجيلات VEP البشرية.
فئة

2. تحضير القطب الكهربائي

  1. قم بعمل أقطاب ERG النشطة / غير النشطة و VEP النشطة / غير النشطة حسب الطلب عن طريق ربط سلك فضي أو مشبك تمساح بسلك قطب كهربائي ، على التوالي. الحصول تجاريا على القطب الأرضي.
  2. بالنسبة للأقطاب الكهربائية الأربعة المصنوعة حسب الطلب ، قم بقص الطرف الذكري من امتداد الرصاص القطب. قم بإزالة 1 سم من طلاء عازل البولي تترافلورو إيثيلين الخارجي بشفرة مشرط لضمان عدم تلف السلك الداخلي.
  3. قم بتصميم أقطاب ERG غير النشطة مسبقا عن طريق قطع سلك فضي بطول 70 مم (سمك 0.3 مم) وتشكيل حلقة بقطر ~ 8 مم لتطويق عين الفئران. قم بإعداد دائرة موحدة عن طريق تشكيل الحلقة على طرف ماصة سعة 1 مل.
  4. أقطاب VEP غير النشطة قبل الموضة عن طريق قطع الفضة بطول 70 مم وتشكيل قطع ناقص ~ 8 مم بقطر طولي لتثبيته على قواطع الفئران.
  5. قم بتصميم الأقطاب الكهربائية النشطة ERG مسبقا عن طريق قطع سلك فضي بطول 30 مم وتشكيل حلقة صغيرة للاتصال برفق بقرنية الفئران (~ 1-2 مم في القطر)
  6. قم بتوصيل الأقطاب الكهربائية بإحكام (2 ERG نشط ، 2 ERG غير نشط ، 1 VEP غير نشط) بسلك القطب الكهربائي عن طريق ربط الفضة بالسلك الداخلي المكشوف.
  7. اعزل المعدن المكشوف الزائد بشريط لاصق لتقليل القطع الأثرية الكهروضوئية.
  8. على أقطاب ERG غير النشطة ، قم بلصق قطعة صغيرة من قفل الخطاف والحلقة (~ 5 مم × 20 مم) بالشريط اللاصق لتمكين التثبيت الثابت بحزام عنق القوارض.
  9. قم بتوصيل مشبك التمساح بالسلك الداخلي لأسلاك القطب الكهربائي لعمل أقطاب VEP النشطة.
  10. قبل التسجيلات ، قم بطلاء الأسطح المكشوفة للأسلاك الفضية (أي الحلقة غير النشطة والطرف النشط) بالكلوريد باستخدام مصدر تيار مستمر 9 فولت لمدة 20 ثانية لتحسين توصيل الإشارة.
    1. للقيام بذلك ، اغمر الطرف الفضي لسلك القطب الكهربائي ERG (الذي يعمل كأنود للخلية الأولية) في محلول ملحي عادي ؛ وقم بتوصيل الطرف الآخر من سلك القطب هذا بالطرف الموجب لبطارية 9 فولت.
    2. قم بتوصيل سلك آخر (الكاثود) بالطرف السالب للبطارية ، واغمر الطرف الآخر في محلول ملحي أيضا. افصل بعد 20 ثانية ولاحظ الطرف الفضي لسلك قطب ERG ليتم طلاؤه بالتساوي باللون الأبيض.
      ملاحظة: قم بإعداد أقطاب كهربائية جديدة من ERG لكل جلسة تجريبية (~ حتى 8 ساعات) لضمان سالكية طلاء الكلوريد.
< ص الفئة = "jove_title" >3. تحضير

    قم
  1. بتكييف في الظلام طوال الليل (≥ 8 ساعات) قبل التسجيلات في غرفة ضيقة الضوء. تأكد من أقصى قدر من التكيف مع الظلام عن طريق إطفاء أضواء الغرفة وإغلاق جميع الأبواب والستائر. قلل من تسرب الضوء عن طريق وضع مواد مقاومة للضوء حول تقاطعات الأبواب / النوافذ ووضع شاشات الكمبيوتر خارج الستائر السوداء السميكة.
  2. قم بإجراء تحضير في غرفة مظلمة بمساعدة الصمام الثنائي الباعث للضوء الأحمر الخافت (LED ؛ 17.4 شمعة في متر -2 ، λكحد أقصى = 600 نانومتر) للحفاظ على حساسية القضيب.
  3. تخدير الجرذ عن طريق حقن الكيتامين / الزيلازين (60: 5 مجم / كغ) في العضل. تأكد من عمق التخدير الكافي من خلال عدم وجود منعكس قرصة المخلب.
  4. للحفاظ على التخدير ، قم بإعطاء جرعة أخرى من التخدير (50٪ من الجرعة الأولية) بعد 50 دقيقة إذا لزم الأمر.
  5. للتخدير الموضعي الإضافي ، ضع قطرة واحدة من 0.5٪ بروكسي ميتاكائين على كل عين ، وقم بغش السوائل الزائدة.
  6. لتوسيع حدقة العين ، ضع قطرة واحدة من 0.5٪ تروبيكاميد على كل عين ، ثم جفف السوائل الزائدة.
فئة

4. تحديد موضع قطب ERG و VEP

  1. ضع على منصة ERG أمام وعاء Ganzfeld الموجود في قفص فاراداي. تجنب استخدام وسادة التدفئة الكهربائية ، حيث يمكن أن تدخل ضوضاء كهربائية في التسجيلات الفيزيولوجية الكهربية.
    ملاحظة: المنصة متصلة بمنصة مياه ساخنة متداولة للحفاظ على درجة حرارة الجسم.
  2. قم بتأمين على المنصة بشريط من قفل الخطاف والحلقة الموضوعة بإحكام ولكن ليس بإحكام حول مؤخرة العنق.
  3. اربط قطب VEP غير النشط حول القواطع السفلية للفأر المخدر.
  4. ضع أقطاب ERG غير النشطة عن طريق تطويق الحلقة الصلبة بشكل غير جراحي حول خط الاستواء للعين. قم بتثبيت ذلك عن طريق توصيل أقطاب كهربائية بشريط التثبيت المتصل بالخطاف والحلقة حول مؤخرة العنق. كرر للعين المقابلة.
  5. اربط أقطاب VEP النشطة عن طريق ربط مشابك التمساح بمسامير من الفولاذ المقاوم للصدأ مزروعة مسبقا على الجمجمة.
  6. ضع قطرة صغيرة من 1٪ كربوكسي ميثيل سلولوز الصوديوم على القرنية قبل وضع القطب النشط ERG لتحسين جودة الإشارة.
    ملاحظة: يساعد سائل الفسكوز أيضا في الحفاظ على ترطيب القرنية طوال فترة التجربة لتقليل تكوين إعتام عدسة العين من نوع الجفاف في القوارض.
  7. ضع قطرة صغيرة من 1٪ كربوكسي ميثيل سلولوز الصوديوم على القواطع السفلية لتحسين ملامسة القطب الكهربائي غير النشط VEP وبالتالي جودة الإشارة.
  8. ضع الأقطاب الكهربائية النشطة ERG للمس سطح القرنية المركزي برفق باستخدام معالج دقيق متصل بذراع تجسيمي مصمم خصيصا.
  9. أدخل 2-5 مم من قطب الإبرة الأرضية (الفولاذ المقاوم للصدأ) تحت الجلد في الذيل.
  10. إذا لزم الأمر، جفف أي سائل زائد من الجفن السفلي قبل التسجيل لتحسين جودة الإشارة.
  11. حرك المنصة بالقرب من وعاء Ganzfeld لضمان محاذاة عيون مع فتحة الوعاء لتمكين الإضاءة المتساوية لشبكية العين (انظر الخطوة 2.4.1).
  12. أغلق قفص فاراداي لتقليل الضوضاء الدخيلة.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
لم يتم الإعلان عن أي تضارب في المصالح.

Materials

List of materials used in this article Name Company Catalog Number Comments مشبك التمساح العلامة التجارية العامة إتش إتش 3022 مشبك من الفولاذ المقاوم للصدأ مقاس 26 مم لتوصيل أقطاب برغي VEP بالكابلات مكبر للصوت الحيوي أدينسيرومنتس مل 135 لتضخيم إشارات ERG و VEP كربوكسي ميثيل سلولوز الصوديوم 1.0٪ اليرجان سجل المستخلصات الكيميائية 0009000-11-7 سائل لزج لتحسين جودة إشارة قطب ERG النشط كاربروفين 0.5٪ مجموعة فايزر لصحة كياس 53716-49-7 اسم الملكية: ريماديل عن طريق الحقن (50 مجم / مل). لتسكين الألم بعد الجراحة، مخفف إلى 0.5٪ (5 ملغ/مل) في محلول ملحي عادي كلورهيكسادين 0.5٪ مختبرات أوريون 27411 ، 80085 لتطهير الأدوات الجراحية حمام مائي متداول Lauda-Königshoffen إم جي دبليو لاودا للحفاظ على درجة حرارة جسم المخدر أثناء الجراحة والتسجيلات الفيزيولوجية الكهربية ملغم الأسنان DeguDent GmbH 64020024 لتغليف مجموعة الجمجمة الكهربائي لجعلها أكثر قوة لدغ الأسنان Storz Instruments و Bausch و Lomb #E0824A رأس حفر مصغر بقطر ~ 0.7 مم لعمل ثقب صغير في الجمجمة فوق كل نصف كرة لزرع مسامير VEP نقب بوش سلسلة Dremel 300 مثقاب أوتوماتيكي للنقب الرصاص الكهربائي تليفكتور العشب إف-E2-30 كابلات بلاتينية لتوصيل أقطاب الأسلاك الفضية بمكبر الصوت قفص فاراداي حسب الطلب يضمن مقاومة الضوء للحفاظ على التكيف مع الظلام. يرفق إعداد Ganzfeld لتحسين نسبة الإشارة إلى الضوضاء مسحات الشاش Multigate Medical Products Pty Ltd 57-100 ب لتجفيف الشق الجراحي وسطح الجمجمة المكشوف أثناء الجراحة Ganzfeld دمج المجال الحلول الضوئية الدولية محفز الضوء المصمم خصيصا: قطر 36 مم ، حجم فتحة 13 سم VELCRO الفيلكرو أستراليا بي تي واي المحدودة التفاف العلامة التجارية VELCRO القابلة لإعادة الاستخدام قفل خطاف وحلقة لتأمين الأقطاب الكهربائية على منصة التسجيل إيزوفلوران 99.9٪ أبوت أستراليا بي تي واي المحدودة سجل المستخلصات الكيميائية 26675-46-7 اسم الملكية: Isoflo (TM) التخدير الاستنشاقي. مخدر استنشاقي من الدرجة الصيدلانية ممزوج بغاز الأكسجين لجراحة زرع القطب الكهربائي VEP الكيتامين مختبرات تروي كيتاميل الحرقف اسم الملكية: حقن الكيتاميل ، العلامة التجارية: Ilium. مخدر من الدرجة الصيدلانية للتسجيل الفيزيولوجي الكهربي مصابيح Luxeon LED شركة فيليبس للإضاءة لتحفيز الضوء عشرين 5 واط وواحد 1 واط LED. معالج دقيق جهاز هارفارد BS4 50-2625 يحمل القطب النشط ERG أثناء التسجيلات قطب إبرة تليفكتور العشب إف-E2-30 يتم إدخاله تحت الجلد في الذيل ليكون بمثابة القطب الأرضي لكل من ERG و VEP فينيل إيفرين 2.5٪ الحد الأدنى باوش ولومب CAS 61-76-7 مغرس مع تروبيكاميد لتحقيق أقصى تمدد لتسجيل ERG بوفيدون اليود 10٪ سانوفي أفينتيس سجل المستخلصات الكيميائية 25655-41-8 الاسم الخاص: بيتادين ، مطهر لتحضير الجلد المحلوق للجراحة 10٪ ، 500 مل نظام الحصول على البيانات Powerlab أدينسيرومنتس مل 785 يتحكم في مصابيح LED بروكسي ميتاكايين 0.5٪ مختبرات ألكون كيان 5875-06-9 لتخدير القرنية أثناء تسجيلات ERG محلول ملحي جيلفليكس غير قابلة للحقن ، للطلاء الكهربائي لأقطاب الأسلاك الفضية برنامج النطاق أدينسيرومنتس الإصدار 3.7.6 يقوم في نفس الوقت بتشغيل التحفيز عبر نظام Powerlab وجمع البيانات فضي (سلك دائري ناعم) معدن A&E 0.3 ملم تستخدم لصنع أقطاب كهربائية ERG نشطة وغير نشطة ، وقطب VEP غير النشط مسامير streel غير القابل للصدأ مايكروفاسترنر قطر العمود 0.7 مم ، بطول 3 مم ليتم زرعها فوق القشرة البصرية الأولية وتكون بمثابة أقطاب VEP النشطة إطار تجسيمي ديفيد كوبف نموذج 900 أداة تجسيمية للحيوانات الصغيرة لتحديد القشرة البصرية الأولية وفقا لإحداثيات أطلس دماغ الفئران لعام 2007 ل Paxinos & Watson شفرة جراحية سوان مورتون المحدودة 206 ريال لشق منطقة الجلد التي تراكب القشرة البصرية الأولية لزرع أقطاب VEP خياطه شنغهاي بودونغ جينهوان المنتجات الطبية المحدودة 3-0 خياطة مضفرة من الحرير غير قابلة للامتصاص ، لتراجع الجلد أثناء جراحة زرع القطب الكهربائي VEP مرهم العين Tobramycine 0.3٪ مختبرات ألكون 32986-56-4 اسم الملكية: Tobrex. مرهم مضاد حيوي وقائي يوضع حول الجرح الجلدي بعد الجراحة تروبيكاميد 0.5٪ مختبرات ألكون سجل المستخلصات الكيميائية 1508-75-4 اسم الملكية: 0.5٪ قطرة عين Mydriacyl ، مغروسة لتحقيق mydriasis لتسجيل ERG زيلازين مختبرات تروي الإلييوم زيلازيل-100 مخدر من الدرجة الصيدلانية للتسجيل الفيزيولوجي الكهربي طرف الماصة Eppendorf Pty المحدودة 0030 073.169 Eppendorf epTIPS 100 - 5000 مل ، للأقطاب الكهربائية المصنوعة حسب الطلب حقن Lethabarb القتل الرحيم فيرباك (أستراليا) بي تي واي المحدودة LETHA450 325 مجم / مل بنتوباربيتال الصوديوم للقتل الرحيم السريع مايكروسوفت أوفيس إكسل مايكروسوفت إصدار 2010 برنامج جداول البيانات لتحليل البيانات

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Visual Evoked PotentialsElectroretinographyGanzfeld BowlFaraday CageRat ModelElectrode PlacementDark AdaptationKetamine XylazineCorneal LubricationGround Electrode

Related Articles