مقالة منهجية

تحميل وتفريغ صبغة FM بوساطة القطب الكهربائي الدقيق في ذبابة الفاكهة الخلايا العصبية

يوليو 8, 2025

في هذه المقالة

الملخص

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

المصدر: Kopke ، D. L. ، et al. ، FM صبغة التدوير في المشبب: مقارنة إزالة الاستقطاب العالي من البوتاسيوم ، والتحفيز الكهربائي والتحفيز الكهربائي ورودوبسين. J. Vis. إكسب. (2018)

< p class = "jove_content"> في هذا الفيديو ، ذبابة الفاكهة تغمر الألياف العصبية في صبغة FM ، التي ترتبط بدهون غشاء الخلية. يحفز قطب الشفط الدقيق والنبضات الكهربائية عملية الالتقام الخلوي ، ويدمج صبغة FM في حويصلات داخلية مشكلة حديثا. هذه الطريقة ، التي تصور مراحل ما قبل المشبكي للنقل العصبي ، مفيدة لدراسة الوظيفة المشبكية وإطلاق الناقل العصبي.

البروتوكول

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
< p class = "jove_title" >1. تشريح غراء اليرقات

  1. امزج جيدا 10 أجزاء من قاعدة المطاط الصناعي المصنوعة من السيليكون مع جزء واحد من عامل معالجة المطاط الصناعي السيليكوني من مجموعة المطاط الصناعي.
  2. قم بتغطية غطاء زجاجي مقاس 22 × 22 مم بالمطاط الصناعي وقم بمعالجته على لوح ساخن عند 75 درجة مئوية لعدة ساعات (حتى لا يصبح لزجا عند اللمس).
  3. ضع غطاء زجاجي مطلي بالمطاط الصناعي في غرفة تشريح زجاج شبكي المصنوعة خصيصا لتشريح اليرقات.
  4. قم بإعداد ماصات الغراء من الشعيرات الدموية الزجاجية البورسليكات باستخدام مجتذب قطب كهربائي دقيق قياسي للحصول على حجم الاستدقاق والطرف المطلوب.
  5. قم بقطع طرف الماصة الدقيقة برفق، وإلى الطرف الآخر، قم بتوصيل 2 قدم من الأنبوب البلاستيكي المرن (1/32 بوصة القطر الداخلي، المعرف؛ 3/32 بوصة القطر الخارجي، OD؛ 1/32 بوصة، مع تركيب الفم (طرف الماصة P2).
  6. استعدادا لتشريح اليرقات ، املأ وعاءا صغيرا (0.6 مل غطاء أنبوب Eppendorf) بحجم صغير (~ 20 ميكرولتر) من الغراء.
  7. املأ الغرفة بالمحلول الملحي (بالملليمتر): 128 كلوريد الصوديوم ، 2 كيلو كلوريد ، 4 ملجمكلوريد2 ، 1 كلوريدالكالسيوم 2 ، 70 سكروز ، و 5 2- [4- (2-هيدروكسي إيثيل) بيبيرازين -1-يل] حمض الإيثان سلفونيك (HEPES) الرقم الهيدروجيني 7.2.
  8. أضف الجسم المضاد المضاد لبيروكسيداز الفجل الحصان (HRP) المقترن ب Alexa Fluor 647 (مضاد ل HRP: 647 ؛ خفف 1:10 من مخزون 1 مجم / مل) لوضع العلامات على الطرف المشبكي NMJ أثناء التشريح 21،22.
  9. باستخدام فرشاة رسم دقيقة (مقاس 2) ، قم بإزالة الطور الثالث المتجول من قارورة الطعام وضعها على زجاج الغطاء المطلي بالمطاط الصناعي.
  10. املأ طرف الماصة الدقيقة الزجاجية بحجم صغير من الغراء باستخدام ضغط الهواء السالب الناتج عن الفم مع الملحق (الخطوة 1.5).
  11. ضع الجانب الظهري لليرقة لأعلى باستخدام ملقط وألصق الرأس على الغطاء المطلي بالمطاط الصناعي بقطرة صغيرة من الغراء باستخدام ضغط هواء إيجابي عن طريق الفم.
  12. كرر هذا الإجراء مع الطرف الخلفي لليرقة ، مع التأكد من شد مشدودا بين مرفقي الغراء.
  13. باستخدام المقص (شفرات 3 مم) ، قم بعمل قطع أفقي (~ 1 مم) في الخلف وقطع رأسي على طول خط الوسط الظهري.
  14. باستخدام ملقط دقيق (# 2) ، قم بإزالة القصبة الهوائية الظهرية والأمعاء والجسم الدهني والأعضاء الداخلية الأخرى التي تغطي العضلات.
  15. كرر إجراء اللصق للوحات جدار الجسم الأربعة ؛ قم بتمديد جدار الجسم برفق أفقيا ورأسيا.
  16. ارفع الحبل العصبي البطني (VNC) باستخدام الملقط ، وقم بقطع الأعصاب الحركية بعناية بالمقص ، ثم قم بإزالة الحبل العصبي البطني تماما.
  17. لإيقاف ركوب SV ، استبدل محلول ملحي بالتشريح بمحلول ملحي خال من Ca2+ (مثل محلول ملحي التشريح أعلاه بدون CaCl2).
فئة < p = "jove_title" >2. التحفيز الكهربائي تحميل صبغة FM

  1. قم بإعداد ماصة شفط باستخدام مجتذب القطب الكهربائي الدقيق للحصول على حجم الاستدقاق والطرف المطلوبين.
  2. قم
  3. بتلميع طرف القطب الكهربائي الدقيق بقوة دقيقة حتى يمكن امتصاص عصب حركي واحد بمقاس محكم.
  4. حرك ماصة الشفط على حامل القطب الكهربائي الموجود على مناور دقيق وقم بتوصيله بالأنبوب البلاستيكي المرن الطويل والحقنة.
  5. تعيين معلمات المحفز (على سبيل المثال ، 15 فولت ، تردد 20 هرتز ، مدة 20 مللي ثانية ، ووقت 5 دقائق أو 1 دقيقة.
  6. استبدل المحلول الملحي الخالي من Ca2 + في تحضير اليرقات بالمحلول الملحي FM1-43 أعلاه (4 ميكرومتر ؛ 1 ملي مولار CaCl2) في جهاز الفيزيولوجيا الكهربية.
  7. ضع المستحضر على مرحلة المجهر وارفع المسرح حتى يتم تركيز اليرقة وماصة الشفط (هدف الغمر في الماء 40X).
  8. امتصاص حلقة من العصب الحركي المقطوع الذي يعصب الجزء النصفي المحدد بضغط هواء سلبي ناتج عن المحقنة في قطب الشفط.
  9. اختبر وظيفة قطب الشفط بدفعة قصيرة من التحفيز أثناء المراقبة البصرية لتقلص العضلات في الجزء النصفي المحدد.
  10. تحفيز العصب الحركي باستخدام المعلمات المحددة (الخطوة 2.4) لدفع الالتقام الخلوي SV وامتصاص صبغة FM1-43.
  11. يغسل بسرعة باستخدام محلول ملحي خال من Ca2+ (5x لمدة 1 دقيقة) لإزالة محلول الصبغة FM1-43 تماما.
  12. حافظ على مستحضر اليرقات في محلول ملحي طازج خال من Ca2+ للتصوير الفوري باستخدام بروتوكول التصوير متحد البؤر من الأعلى.
  13. لاحظ بعناية صورة NMJ (الجزء والجانب والعضلة) لضمان الوصول إلى نفس NMJ بعد تفريغ صبغة FM.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
لم يتم الإعلان عن أي تضارب في المصالح.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة الاسم الشركة رقم فهرسي التعليقات SylGard 184 سيليكون المطاط الصناعي كيت فيشر ساينتيك NC9644388 لوضع غطاء زجاجي للتشريح غطاء مجهر زجاجي 22x22-1 فيشربراند 12-542-ب لوضع SylGard للتشريح الألومنيوم أعلى لوحة ساخنة نوع 2200 ثيرمولين HPA2235M لعلاج SylGard غرفة تشريح زجاج شبكي غير متاح غير متاح اليدويه الشعيرات الدموية الزجاجية البورسليكات WPI 1ب 100 إف -4 لصنع الماصات الدقيقة للشفط والغراء مجتذب الماصات الدقيقة القائم على الليزر أداة سوتر ف-2000 لصنع الماصات الدقيقة للشفط والغراء أنابيب مختبر Tygon E-3603 شركة توريد المكونات تي تي -031 أ لماصة الفم والشفط طرف ماصة P2 الولايات المتحدة الأمريكية العلمية 1111-3700 لماصة الفم 0.6 مل غطاء أنبوب Eppendorf فيشر ساينتيك 05-408-120 تستخدم لوضع الغراء للتشريح فيتبوند 3 م WPI فيتبوند الغراء المستخدم في التشريح كلوريد البوتاسيوم فيشر ساينتيك ف -217 الفورسالين كلوريد الصوديوم ميليبور سيجما S5886 للمحلول الملحي كلوريد المغنيسيوم فيشر ساينتيك م 35-500 للمحلول الملحي ثنائي هيدرات كلوريد الكالسيوم ميليبور سيجما [ك7902] للمحلول الملحي سكروز فيشر ساينتيك م5-3 للمحلول الملحي هيبس ميليبور سيجما إتش 3375 للمحلول الملحي HRP: أليكسا فلور 647 جاكسون للأبحاث المناعية 123-605-021 لتسمية الأغشية العصبية الرسام Winsor & Newton 94376864793 للتلاعب باليرقات ملاقط دومون دوموستار # 5 WPI 500233 تستخدم أثناء التشريح مقص ماكفرسون-فاناس 7 سم (شفرات 3 مم) WPI 14177 [14177] [م] تستخدم أثناء التشريح FM1-43 فيشر ساينتيك ت35356 صبغة الفلورسنت ستايريل مؤقت رقمي VWR 62344-641 لتوقيت تحميل / تفريغ صبغة FM مايكرو فورج WPI MF200 لحريق الماصات الدقيقة الزجاجية البولندية 20 مل حقنة زلة تلميح دينار بحريني 301625 لامتصاص المحور العصبي للتحفيز الكهربائي. مناور صغير (قاعدة مغناطيسية) ناريشيجي MMN-9 للتحكم في قطب الشفط للتحفيز الكهربائي مشجعا حشيش S48 للتحكم في LED والتحفيز الكهربائي مجهر زايس أكسيوسكوب زييس تستخدم أثناء التحفيز الكهربائي. 40X Achroplan الهدف الغمر في الماء زييس يستخدم أثناء التحفيز الكهربائي والتصوير متحد البؤر مجهر زايس ستيمي مع منفذ الكاميرا زييس 2000-ج يستخدم أثناء تحفيز القناة رودوبسين سائق T-Cube LED ثورلاب الصمام 1 ب للتحكم في LED مزود طاقة LED شركة سينكون للإلكترونيات TR15RA150 لتشغيل مؤشر LED عداد الطاقة الضوئية والطاقة ثورلاب PM100D لقياس شدة LED

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

FM Dye UnloadingSuction MicroelectrodeElectrical StimulationNerve FibersSynaptic Vesicle EndocytosisNeuromuscular JunctionMicromanipulator UnitMicroelectrode Puller

مقالات ذات صلة