تصوير TSPO-PET / CT للكشف عن تكوين الاحتشاء في نموذج فأر للسكتة الدماغية الإقفارية

الملخص

المصدر: Chaney, A. M., et.al. تصوير التصوير المقطعي بالإصدار البوزيتروني للالتهاب العصبي باستخدام [¹¹C]DPA-713 في نموذج فأر للسكتة الدماغية. J. Vis. Exp. (2018).

يوضح هذا الفيديو تقنية للتصوير في الجسم الحي للالتهاب العصبي في نموذج فأر للسكتة الدماغية الإقفارية باستخدام جهاز تتبع إشعاعي خاص ب TSPO. بعد الحقن ، يرتبط المقتفي الإشعاعي ب TSPO ، وهو بروتين يقع على غشاء الميتوكوندريا الخارجي ويتم التعبير عنه بشكل مفرط في الخلايا المناعية المنشطة. يكتشف ماسح التصوير المقطعي بالإصدار البوزيتروني / التصوير المقطعي المحوسب توزيع المقتفي الإشعاعي ويولد صورة مسجلة بشكل مشترك مع بيانات التصوير المقطعي المحوسب ، مما يسمح بالتحديد الدقيق للمناطق الالتهابية العصبية في الدماغ.

البروتوكول

تمت مراجعة جميع الإجراءات التي تنطوي على نماذج حيوانية من قبل اللجنة المؤسسية المحلية لرعاية ومجلس المراجعة البيطرية JoVE.

1. معايرة التصوير المقطعي بالإصدار البوزيتروني / التصوير المقطعي المحوسب وإعداد سير العمل (6 أيام بعد جراحة dMCAO)

1. إنشاء سير عمل تصوير في برنامج تشغيل الماسح الضوئي ليشمل الحصول على توهين التصوير المقطعي المحوسب ، اكتساب ديناميكي للتصوير بالإصدار البوزيتروني C-11 لمدة 60 دقيقة (تمييز مستوى 350 - 650 كيلو فولت ، نافذة صدفة 3.438 نانوثانية) ، الرسم البياني (20 إطارا: 5 × 15 ثانية ، 4 × 1 دقيقة ، 11 × 5 دقائق ؛ مع تصحيح الوقت المهم) وإعادة بناء 3DOSEM-OP (تكراران ، 18 مجموعة فرعية) لإنشاء صورة 128 × 128 × 159 بحجم فوكسل 0.776 × 0.776 مم.
2. قم بإجراء تكييف مصدر الأشعة السينية عبر لوحة معايرة التصوير المقطعي المحوسب الموجودة في الزاوية العلوية اليسرى من الواجهة. يجب إجراء هذه المعايرة أسبوعيا أو قبل الفحص إذا لم يتم استخدام النظام في ال 48 ساعة الماضية.
3. قم بإجراء معايرة الظلام / الضوء (D / L) والإزاحة المركزية (C / O).
   1. اضغط على زر معايرة التصوير المقطعي المحوسب (X) في الجزء العلوي الأيسر من الواجهة.
   2. حدد D / L و C / O لملف CT الذي ستقوم بتشغيله ، وقم بإزالة السرير من القنطرية وقم بتشغيل معايرة D / L.
   3. أدخل سرير أداة المعايرة في الماسح الضوئي وقم بتشغيل معايرة C / O ، مع التأكد من تبديل التحديد على الواجهة إلى "أداة المعايرة" بدلا من "لوحة 70 مم".
4. قم بإزالة أداة المعايرة وأعد سرير PET القياسي ، مع التأكد من تغيير التحديد على الواجهة مرة أخرى إلى "لوحة 70 مم".
5. قم بتأمين سرير تصوير مكون من 4 ماوس على منصة الماسح الضوئي باستخدام شريط لاصق وقم بتوصيل أنبوب التخدير (الشكل 1A). تأكد من أن الأيزوفلوران يتدفق عبر الأنابيب وعدم وجود مكامن الخلل.
6. ادفع السرير للأمام بحيث يكون في وسط مجال الرؤية (FOV) ، وأغلق باب التصوير المقطعي المحوسب واحصل على عرض استكشافي للتصوير المقطعي المحوسب للتأكد من أن السرير في الموضع الصحيح.
7. إجراء معايرة "قياسية" للماسح الضوئي PET / CT باستخدام شبح مصنوع داخليا يحتوي على جرعة معروفة من محلول C-11 كمصدر للإشعاع.
   1. قم بإعداد حقنة سعة 20 مل مملوءة بجرعة التتبع المكافئة لتلك التي يتم إعطاؤها لفأر واحد (~ 250 - 350 ميكرو Ci / 9 - 13 ميجابايت من متتبع C-11 المخفف في محلول ملحي).
   2. سجل النشاط في المعيار باستخدام معاير الجرعة ولاحظ وقت القياس.
   3. قم بإجراء فحص التصوير المقطعي بالإصدار البوزيتروني / التصوير المقطعي المحوسب للمعيار باستخدام نفس المعلمات بالضبط التي سيتم استخدامها لتصوير الفئران (كما هو موضح أعلاه). افعل ذلك أسبوعيا لإنشاء عامل تصحيح لتطبيق الماسح الضوئي المقطعي بالإصدار البوزيتروني على بيانات التصوير.

2. إعداد مساحة العمل لتصوير التصوير المقطعي بالإصدار البوزيتروني / التصوير المقطعي المحوسب

1. إنشاء بيئة معقمة باستخدام مطهر بمبيد للفيروسات (انظر جدول المواد ) ووضع حشوة ماصة واقية على جميع الأسطح.
2. تأكد من ملء خزانات الأيزوفلوران والأكسجين بشكل كاف.
3. قم بإعداد قسطرة وريد الذيل عن طريق ملء حقنة سعة 1 مل (مزودة بطرف إبرة 27.5 جم) بكلوريد الصوديوم 0.9٪ (محلول ملحي معقم) والتنظيف من خلال قسطرة فراشة 27.5 جم و 24 سم. قم بقطع أجنحة القسطرة قبل القسمية للتأكد من أنها لا تحجب رؤية وريد الذيل وللمساعدة في سهولة تحريك الفئران إلى الماسح الضوئي دون إزاحة القسطرة.
4. تأكد من وضع جميع المعدات الأساسية في محطة العمل بما في ذلك المحاقن الاحتياطية "المتدفقة" (المملوءة بمحلول ملحي معقم) ، ومواد تشحيم العين ، ومسحات الإيثانول ، والمصابيح الحرارية ، والقسطرة المحضرة (مملوءة مسبقا بالمحلول الملحي) ، والشريط الجراحي ، وغراء المناديل ، ومحاقن جرعة 0.5 مل ، ومقص ، ولاعة لإغلاق القسطرة بعد وضعها بنجاح في وريد الذيل {{TAG_141 TAG_142}} (الشكل 1 ب) .

3. تحضير وقناتها

1. وزن الفئران لتحديد الحد الأقصى للحجم المسموح بحقنها في كل فأر ( أي يجب ألا يتجاوز حجم المقتفي وأي محلول ملحي يتم تناوله 10٪ من وزن الجسم).
2. قم بتخدير الفئران في غرفة الحث باستخدام 3٪ Isoflurane والحفاظ عليها عند 1-2٪ (2 لتر / دقيقة 100٪ O ₂ ).
3. ضع مادة تشحيم العين على كل فأر وتأكد من التخدير عن طريق منعكس الدواسة (قرصة إصبع القدم). اضبط مستويات التخدير إذا لزم الأمر.
4. ضع الماوس على سرير مدفأ مزود بمخروط أنف لتوصيل الأيزوفلوران بنسبة 1-2٪ (2 لتر / دقيقة 100٪ O ₂ ).
5. أثناء تخدير الفأر ، قم بإجراء قنية وريد الذيل باستخدام البروتوكول التالي:
   1. ضع الماوس على جانبه لكشف أحد الأوردة الجانبية ، بينما يظل الرأس في مخروط الأنف.
   2. قم بتسخين الذيل باستخدام مصباح حراري ، مع الحرص على عدم ارتفاع درجة الحرارة أو حرق الذيل ، ومسحها بمنديل كحولي لتوسيع الوريد وتعقيم موقع الحقن.
   3. أمسك الإبرة مع الشطبة لأعلى وقم بمحاذاة الوريد بزاوية حادة.
   4. اضغط برفق لثقب الجلد وتسوية الإبرة بحيث تتماشى مع الوريد.
   5. ادفع برفق إلى الأمام بضعة ملليمترات بعد الشطبة حتى تدخل الإبرة إلى الوريد.
   6. تأكد من وجود القسطرة عن طريق إعطاء تدفق صغير (10-20 ميكرولتر) من المحلول الملحي. يجب أن يترك المحلول الملحي المحقنة بسلاسة ويجب أن يكون الوريد واضحا. إذا لوحظت أي مقاومة أو ضغط خلفي ، فمن المحتمل أن القسطرة ليست في الوريد وينصح بإعادة محاولة القنية. إذا لوحظ تخثر ، استخدم الهيبارين (1,000 وحدة هيبارين لكل مل من المحلول الملحي) لإعداد القنية والتنظيف.
      ملاحظة: لقد قمنا بتقييم القنية مع وبدون الهيبارين في سلالة الفأر ذات الأهمية ، وبما أنه لم يلاحظ أي تخثر ، فقد تم استخدام المحلول الملحي وحده في القنات.
   7. قم بتثبيت القسطرة على الذيل باستخدام قطرة صغيرة من غراء الأنسجة ، متبوعة بشريط جراحي ، للتأكد من بقاء القسطرة غير متحركة عند نقل الفئران إلى الماسح الضوئي.
   8. قم بإزالة حقنة التدفق من نهاية القسطرة وأغلق النهاية بولاع وزنا ، مما يضمن أن الباحث ليس بالقرب من أي إيزوفلوران أو إيثانول.
   9. كرر ذلك مع 3 فئران إضافية بحيث يتم تسديد جميع الفئران الأربعة المراد مسحها ضوئيا وإعدادها.
6. قم بتشغيل تدفق التخدير (2.5٪ إيزوفلوران ، 2 لتر / دقيقة 100٪ O ₂ ) المتصل بالتصوير المقطعي بالإصدار البوزيتروني / التصوير المقطعي المحوسب ووضع الفئران المعرضة بعناية في سرير الماسح الضوئي ، مما يضمن بقاء القسطرة في مكانها وأن رأس كل فأر مستقيم وآمن داخل مخروط الأنف. قم بلصق رأس وجسم كل فأر على السرير بشريط جراحي ناعم ، مما يضمن عدم تقييد التنفس بوضع الشريط. سجل موضع كل ماوس للسماح بالموقع الصحيح وتخصيص المجموعة لتحليل الصور.
7. حافظ على تسخين الفئران طوال الإجراء ( على سبيل المثال ، باستخدام مصباح حراري أو نظام مضخة هواء ساخن لضمان دفء الفئران دون ارتفاع درجة الحرارة). مراقبة معدل التنفس لجميع الفئران ، إما بصريا إذا كنت تستخدم جسرية مفتوحة أو من خلال نظام مراقبة عن بعد باستخدام ضمادات تنفسية ، وقم بتغيير مستويات التخدير حسب الضرورة.

4. اكتساب التصوير المقطعي المحوسب

1. بمجرد أن تكون آمنة في السرير ويكون التنفس مستقرا ، قم بتشغيل الشعيرات المتقاطعة بالليزر وحرك سرير المسح بحيث يتماشى مع دماغ الفئران الأربعة. انقل سرير الماسح الضوئي إلى موضع الاستحواذ (الموضع 3) مع أدمغة الفئران بالقرب من مركز مجال الرؤية قدر الإمكان.
2. احصل على صورة عرض استكشافية للفئران للتحقق من موقعها (استخدم مجال رؤية 200 مم) ، واضبط الموضع عن طريق سحب مربع مجال الرؤية على الواجهة إذا لزم الأمر. انقر فوق "بدء سير العمل" في برنامج الماسح الضوئي لبدء الفحص بالتصوير المقطعي المحوسب ، مع التأكد من تحديد "عرض مطالبات المستخدم التفاعلية" حتى يمكن بدء فحص التصوير المقطعي بالإصدار البوزيتروني يدويا قبل حقن المتتبع.

5. [¹¹C]DPA-713 Dose Preparation

1. {TAG_341{TAG_342}}¹¹C]DPA-713, التأكد من أنك ترتدي معدات الحماية الشخصية المناسبة للتعامل مع النشاط الإشعاعي ، بما في ذلك معطف المختبر والقفازات ومقاييس جرعات الإصبع والجسم. تأكد من تغيير القفازات بانتظام لمنع التلوث الإشعاعي ، وزيادة المسافة بينك وبين المصدر المشع عندما يكون ذلك ممكنا.
2. استخدم ملقط لنقل قارورة التتبع الإشعاعي بعناية خلف درع الرصاص.
3. إعداد محاقن جرعة 0.5 مل لكل فأر تحتوي على حوالي 250-350 ميكرو Ci / 9-13 ميجابايت في حجم 100-200 ميكرولتر لضمان جرعة كافية لفحص التصوير المقطعي بالإصدار البوزيتروني الديناميكي لمدة 60 دقيقة (يجب تحديد الجرعة المعطاة مع مراعاة عمر النصف للنظير والخط الزمني لتصميم الدراسة ، مع اعتماد الحجم على وزن الفأر).
4. قم بقياس النشاط باستخدام معاير الجرعة المضبوطة على C-11 ، الموجود على مقربة من موقع القنية ، وسجل أوقات القياس والحقن لتمكين تصحيح التسوس. ارسم الجرعات قبل انتهاء التصوير المقطعي المحوسب مباشرة للحد من التسوس والتأكد من حقن المستوى المطلوب من النشاط الإشعاعي في كل فأر.
5. تحقق من عدم وجود فقاعات هواء في حقنة الجرعة قبل قياس النشاط والحقن في كل فأر.

6. اكتساب التصوير المقطعي بالإصدار البوزيتروني

1. بمجرد أن تتقدم الفئران تلقائيا من التصوير المقطعي المحوسب إلى التصوير المقطعي بالإصدار البوزيتروني ، قم بإعداد الجزء الخلفي من الماسح الضوئي ل [TAG_388¹¹C]حقن DPA-713 (الشكل 1C). ضع حشوة ماصة واقية على الحافة وتأكد من وجود مقص ولاعة في متناول اليد.
2. قم بقص أنبوب القسطرة المختوم بالمقص ، وتحقق من خلو خطوط القسطرة من أي فقاعات ، وتأكد من أن القنية لا تزال داخل الوريد عن طريق إجراء تدفق محلول ملحي 10-20 ميكرولتر. قم بتحميل محاقن الجرعة المقاسة من الخطوة 5.4 في كل من القسطرة الأربعة ، مع تتبع الجرعة التي تم إعطاؤها لكل فأر.
3. انقر فوق "موافق" عندما يكون فحص التصوير المقطعي بالإصدار البوزيتروني جاهزا للبدء مع بدء مؤقت مدته 10 ثوان في نفس الوقت. اطلب من باحثين في الجزء الخلفي من الماسح الضوئي مع محاقن الجرعة في متناول اليد ، لحقن جميع الفئران الأربعة في وقت واحد عند وصول المؤقت إلى الصفر. اغسل كل قسطرة ب 50-100 ميكرولتر من المحلول الملحي (اعتمادا على طول أنبوب القسطرة — أي الحجم الميت) للتأكد من دخول الجرعة الكاملة إلى الوريد الخلفي ، وأعد إغلاق الأنبوب مرة أخرى باستخدام ولاعة.
4. قياس الحقن الجرعة باستخدام معاير الجرعة للحصول على قيمة النشاط الإشعاعي المتبقية (أي متتبع متبقي في المحقنة). لاحظ القيم ووقت تسجيلها.
5. بمجرد اكتمال الفحص ، قم بوضع سرير PET في موضعه الأصلي باستخدام زر "الصفحة الرئيسية" الأفقي داخل لوحة التحكم في الحركة. قم بإزالة الفئران من الماسح الضوئي وقم بإزالة القسطرة بعناية. اضغط برفق على موقع القنية لمنع النزيف المفرط.
6. قم بقياس النشاط المتبقي في القسطرة باستخدام معاير الجرعة.
7. إذا كان سيتم استرداد الفئران ، فتأكد من القيام بذلك في بيئة دافئة ( على سبيل المثال ، في صندوق به وسادة ساخنة تحتها أو تحتوي على قفاز مملوء بالماء الدافئ) لتسهيل التعافي. إذا كنت تخطط للقتل الرحيم للفئران ، فضع الفئران في غرفة الحث التي تحتوي على الأيزوفلوران حتى تظل مخدرة قبل القتل الرحيم عن طريق التروية.
8. لإعادة بناء البيانات ، افتح برنامج إدارة ما بعد المعالجة (انظر جدول المواد ) ، والذي سيعيد بناء كل مسح تلقائيا باستخدام بيانات الرسم البياني التي تم إنشاؤها من ملف lst.

7. تحليل صور PET الديناميكي

1. افتح برنامج تحليل الصور (انظر جدول المواد) وانقر على أيقونة "البيانات المفتوحة" لتحميل صورة التصوير المقطعي المحوسب (كمصدر) وأيقونة "إلحاق البيانات" لتحميل الإصدار البوزيتروني الديناميكي (كمرجع).

2. قم بإجراء مراقبة جودة مرئية للبيانات عبر مشغل السلسلة الزمنية في القائمة المنسدلة: حدد المرجع ("المرجع") و "العام" وقم بتطبيق الحد الأدنى والحد الأقصى المناسبين لمقياس الألوان. تصور بيانات PET الديناميكية إطارا تلو الآخر ، وتحقق من امتصاص النشاط الإشعاعي والتحقق من أي إرباك في الحركة داخل الفحص.

3. قم بإنشاء صورة PET متوسطة باستخدام "عامل الحساب".

1. اختر "متوسط المحدد" ، وقم بإلغاء تحديد "ref" ، وتأكد من تحديد الإدخال 1 ("Inp1") ، والإدخال 2 ("Inp2") ونجمة الإدخال ("Inp *" - بما في ذلك بقية إطارات PET في المسح) لإنشاء متوسط لجميع إطارات PET.

2. انتقل إلى علامة التبويب "مدير البيانات" (DM) واسحب متوسط الصورة إلى موضع "input1" لأغراض التصور. أعد توزيع مقياس الألوان بالنقر فوق الحساب التلقائي في أداة "الحد الأدنى".

4. قم بتسجيل CT في ملف PET العادي باستخدام وظيفة "3D تلقائي" في القائمة المنسدلة "إعادة التوجيه / التسجيل".

1. حدد "ref" و "Inp1" ، واختر التسجيل "Rigid" و "fast" و "Inp1 to Ref". تحقق بصريا من التسجيل في جميع الأبعاد الثلاثة واضبطها يدويا إذا لزم الأمر في علامة التبويب "3D اليدوي" باستخدام وظائف "الترجمة" و "التدوير".

2. عندما تكون راضيا عن التسجيل ، حدد "Inp2" و "Inp *" ، وقم بتطبيقه على جميع إطارات PET بالنقر فوق علامة الاختيار. انقر بزر الماوس الأيمن على ملفات CT و PET في DM واحفظها بتنسيق خام.

5. قص دماغ فأر واحد في كل مرة لتحليل الدماغ باستخدام التصوير المقطعي المحوسب كدليل: حدد "اقتصاص" من القائمة المنسدلة واسحب حدود الصورة لاقتصاص رأس الماوس أسفل جذع الدماغ. أعد توجيه صور التصوير المقطعي بالإصدار البوزيتروني والتصوير المقطعي المحوسب باستخدام وظيفة "إعادة التوجيه ثلاثية الأبعاد اليدوية" كما هو موضح أعلاه بحيث تكون الجمجمة مستقيمة في جميع الأبعاد.

6. قم بتحميل صورة MR لهذا الماوس (بتنسيق DICOM) باستخدام زر "إلحاق البيانات" في الجزء العلوي الأيسر من الواجهة. حرك MR باستخدام "إعادة التوجيه ثلاثية الأبعاد اليدوية" وقم بملاءمته مع الجمجمة داخل صورة التصوير المقطعي المحوسب (تأكد من أن جميع الطرائق في نفس الاتجاه).

7. ارسم عائد الاستثمار للسكتة الدماغية على صورة MR باستخدام "أداة 3D ROI".

1. قم بإيقاف تشغيل تصور التصوير المتوافق مع الإصدار البوزيتروني عن طريق إلغاء تحديده داخل علامة تبويب وحدة التحكم المرئية (VC) واستخدم فقط MR و CT لرسم عائد الاستثمار.

2. انقر فوق الزر "إضافة عائد استثمار" لإنشاء عائد استثمار جديد وتسميته "inferct". حدد "أداة الشريحة" ، وانقر بزر الماوس الأيسر لرسم حد عائد الاستثمار وانقر بزر الماوس الأيمن لإغلاقه.

3. كرر جميع الشرائح التي تشمل السكتة الدماغية ، وتأكد من عدم التقاط أي من الجمجمة في عائد الاستثمار ، مع أفضل الممارسات هي ترك فجوة فوكسل بين حدود الجمجمة وعائد الاستثمار للسكتة الدماغية.

8. قم بتوليد عائد استثمار مقابل باستخدام حجم الاحتشاء.

1. قم بإنشاء عائد استثمار جديد وقم بتسميته بأنه "معاكس". انقر بزر الماوس الأيمن على عائد الاستثمار في Infarct وحدد "تصدير". اسحب عائد الاستثمار إلى الموضع 2 ("Inp1").

2. مع تحديد "Inp1" فقط ، قم بتطبيق قلب يسار يمين باستخدام وظيفة "المشغل" داخل قائمة "إعادة التوجيه / التسجيل". ضع علامة في مربع "عائد الاستثمار" ، واختر "عرض فقط" ، وانقل عائد الاستثمار الجديد يدويا إلى المنطقة المتطابقة على الجانب المقابل. حدد عامل التشغيل "الحسابي" وقم بتطبيق الضرب العددي 2 على عائد الاستثمار الجديد ، مما يسمح بالقياس الكمي المستقل لعائد الاستثمار.

3. ارجع إلى أداة 3D ROI. انتقل إلى علامة التبويب "خبير وتجريبي" وانقر على زر "استيراد عائد الاستثمار". حدد Inp1 من مربع الحوار لتحميل وحدة التخزين الجديدة باعتباره عائد الاستثمار المقابل.

9. انقر بزر الماوس الأيمن على متوسط صورة PET وقم بتفريغها وأعد تشغيل PET. قم بإنشاء نتائج الامتصاص الكمي باستخدام أيقونة "نتائج التصدير" داخل أداة 3D ROI.

10. قم بإجراء تحليل إضافي للدماغ المنقسم إذا رغبت في ذلك (على سبيل المثال ، توليد عائد الاستثمار الآلي لمناطق نصف الكرة المخية الأيمن مقابل الأيسر باستخدام وحدة البرنامج المساعد ثلاثية الأبعاد لأطلس دماغ الفأر لبرنامج Vivoquant).

1. أعد تحميل صور التصوير المكتسب بالإصدار البوزيتروني / التصوير المقطعي المحوسب المسجلة.

2. قم باستيراد أطلس دماغ الماوس بالنقر فوق قائمة "الوحدات المتقدمة" وتحديد أداة أطلس الدماغ ثلاثية الأبعاد. حدد "جميع المناطق إلى اليسار / اليمين" في "الإعدادات المتقدمة" وانقر فوق "تشغيل" لاستيراد أطلس 3D.

3. قم بتركيب الأطلس يدويا داخل الدماغ باستخدام الجمجمة كحدود.

4. أعد تشغيل الأطلس مع التأكد من التحقق من "استيراد عائد استثمار ثلاثي الأبعاد" لإنشاء جدول بيانات بالنتائج لجميع عائد الاستثمار في نصف الكرة الأيسر والأيمن البالغ عددها 14 (النخاع ، المخيخ ، الدماغ المتوسط ، الجسور ، القشرة ، الحصين ، المهاد ، تحت المهاد ، المخطط ، الشحوب ، المصابيح الشمية ، الجسم الثفني والمادة البيضاء).

11. قم بقياس امتصاص جهاز التتبع في الطحال باستخدام برنامج تشغيل الماسح الضوئي (انظر جدول المواد).

1. قم بتحميل ملفات صور PET و CT عن طريق تمييزها في قاعدة البيانات والنقر فوق "التحليل العام".

2. انقر فوق علامة تبويب التسجيل وشارك في تسجيل صور التصوير المتوافق مع التصوير المقطعي بالإصدار البوزيتروني والتصوير المقطعي المحوسب بالنقر فوق رمز "التسجيل الصارم".

3. انقر فوق علامة التبويب قياس عائد الاستثمار ، وانقر فوق رمز "إنشاء عائد استثمار" وقم بتسميته الطحال.

4. اختر أداة "الكرة" لرسم عائد استثمار الطحال باستخدام ملف التصوير المقطعي المحوسب كمرجع ، مما يضمن عدم وجود تداخل مع امتصاص الكلى (باستخدام صورة وإشارة PET لتجنب الانتشار من الكلى).

5. قم بتحرير عائد الاستثمار للحفاظ على أحجام عائد استثمار متسقة بين.

12. احسب قيمة التصحيح القياسية لتطبيع الامتصاص.

1. قم بتحميل بيانات التصوير المقطعي بالإصدار البوزيتروني / التصوير المقطعي المحوسب من الفحص القياسي وقم بإنشاء عائد استثمار أسطواني يشمل حقنة 20 مل باستخدام أداة "عائد الاستثمار ثلاثي الأبعاد اليدوي".

2. احصل على مستوى النشاط الإشعاعي الموجود في المعيار باستخدام رمز جدول البيانات.

3. استخدم نتيجة nCi / cc هذه والنشاط الإشعاعي الأصلي المسجل للمعيار (أي قياس معاير الجرعة للمعيار في nCi / cc) لإنشاء عامل تصحيح لقيم امتصاص PET. أي اقسم النشاط الإشعاعي للمعيار المسجل بواسطة معاير الجرعة على النشاط الإشعاعي المحسوب من صورة PET للمعيار.

13. استخدم أنشطة الجرعة ووقت القياسات للاضمحلال الصحيح لوقت اكتساب التصوير المقطعي بالإصدار البوزيتروني لجميع الفئران (أي حساب نشاط الجرعة في بداية فحص التصوير المقطعي بالإصدار البوزيتروني).

14. كرر القيم المتبقية واطرح من الجرعة المصححة للاضمحلال لحساب النشاط الدقيق الذي تلقاه كل.

15. بعد تطبيق تصحيح الاضمحلال هذا ، قم أيضا بتطبيق التصحيح القياسي للتأكد من أن البيانات في مستوى النشاط الصحيح. تأكد من تطبيق هذه التصحيحات على نتائج عائد الاستثمار المرسومة يدويا ، وبيانات عائد الاستثمار لأطلس الدماغ ذات الصلة بمناطق الدماغ لموقع dMCAO (على سبيل المثال ، القشرة والحصين والمخطط).

16. احسب ٪ID/g لجميع عائد الاستثمار باستخدام المعادلة التالية: ٪ID/g = (النشاط الإشعاعي لعائد الاستثمار في nCi/cc / الجرعة المصححة للاضمحلال المستلمة في nCi/cc) x100. ارسم ٪ID/g كدالة للوقت باستخدام برنامج الرسوم البيانية لإنشاء منحنيات نشاط الوقت لكل عائد استثمار.

17. استخدم برنامج الماسح الضوئي للتصور النهائي للصور وإنشاء الشكل. تطبيع الصور وفقا للجرعة المصححة للاضمحلال التي يتلقاها كل ماوس في وقت المسح الضوئي، مع التأكد من أن جميع الصور على نفس مقياس ٪ID/g.

ملاحظة: هذا ضروري لتمكين المقارنة الدقيقة للصور من الفئران المختلفة و / أو الصور من الدراسات التي أجريت في أيام مختلفة.

النتائج

المواد

<فئة الشكل = نمط الجدول='العرض: 100٪;'><فئة الجدول='ck-table-resize' style='collapse-collapse:collapse;font-family:Calibri;font-size:11pt;table-layout:fixed;' cellspacing='0' cellpadding='0' dir='ltr' border='1' data-sheets-root='1' data-sheets-baot='1'>قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة الاسم الشركة رقم فهرسي التعليقات < td style='border-bottom:1px solid #000000;border-left:1px solid #000000;border-right:1px solid #000000;font-size:12pt;overflow:hidden;padding:0px 3px;vertical-align:top;white-space:normal;word-wrap:break-word;wrap-strategy:4;'>Inveon PET / CT scannerSiemens Version 4.2 VivoQuant software< td style='border-bottom:1px solid #000000;border-right:1px solid #000000;font-size:12pt;overflow:hidden;padding:0px 3px;vertical-align:top;white-space:normal;word-wrap:break-word;wrap-strategy:4;'>InVicro Version 2.5< td style='border-bottom:1px solid #000000;border-right:1px solid #000000;font-size:12pt;overflow:hidden;padding:0px 3px;vertical-align:top;-space:normal;word-wrap:break-word;wrap-strategy:4;'> برنامج تحليل الصورInveon Research Workspace SoftwareSiemens Version 4.2Scanner Operating Software. يتضمن microQView ، برنامج إدارة ما بعد المعالجة < tr style = 'height: 20px ؛ '>< td style = 'border-bottom: 1px solid # 000000 ؛ border-left: 1px solid # 000000 ؛ border-right: 1px solid # 000000 ؛ حجم الخط: 12pt ؛ الفائض: مخفي ؛ الحشو: 0 بكسل 3 بكسل ؛ المحاذاة الرأسية: أعلى ؛ المساحة البيضاء: عادي ؛ التفاف الكلمات: كلمة فاصلة ؛ التفاف الإستراتيجية : 4 ؛ '>معاير الجرعة < نمط td = 'border-bottom: 1px solid # 000000 ؛ الحدود اليمنى: 1 بكسل صلبة # 000000 ؛ حجم الخط: 12pt ؛ الفائض: مخفي. الحشو: 0 بكسل 3 بكسل ؛ المحاذاة الرأسية: أعلى ؛ المساحة البيضاء: عادي. التفاف الكلمات: كلمة فاصلة. التفاف الاستراتيجية: 4 ؛ >Capintech CRC-15 PETTyphoon phosphor imager 9410GE Healthcare8149-30-9410 القسطرة الفراشة< td style='border-bottom: 1px solid #000000;border-right:1px solid #000000;line-size:12pt;overflow:hidden;padding:0px 3px;vertical-align:top;white-space:normal;word-wrap:break-word;wrap-strategy:4;'>SAI Infusion TechnologiesBFL-2427.5 G needle1 مل محاقن< td style='border-bottom:1px solid #000000;border-right:1px solid #000000;font-size:12pt;overflow:hidden;padding:0px 3px;vertical-align:top;white-space:normal;word-wrap:break-word;wrap-strategy:4;'>BD محاقن الأنسولين< td style='border-bottom: 1px solid #000000؛ border-right:1px solid #000000;font-size:12pt;overflow:hidden;padding:0px 3px;vertical-align:top;white-space:normal;word-wrap:break-word;wrap-strategy:4;'>BD329461< td style='border-bottom: 1px solid #000000;border-right:1px solid #000000;font-size:12pt;overflow:hidden;padding:0px 3px;vertical-align:top;white-space:normal;word-wrap:break-word;wrap-strategy:4;'>0.5 مل محاقن الأنسولين مع إبرة20 mL حقنة< td style='border-bottom:1px solid #000000;border-right:1px solid #000000;font-size:12pt;overflow:hidden;padding:0px 3px;vertical-align:top;white-space:normal;word-wrap:break-word;wrap-strategy:4;'>VWRBD302831< td style='border-bottom: 1px solid #000000;border-right:1px solid #000000;font-size:12pt;overflow:hidden;padding:0px 3px;vertical-align:top;white-space:normal;word-wrap:break-word;wrap-strategy:4;'>BD b-slipe slip tip Graduated Tissue glueSanta Cruz Animal Healthsc-361931< td style='border-bottom: 1px solid #000000؛ border-right: 1px solid #000000؛ حجم الخط: 12pt؛ overflow: مخفي؛ الحشوة: 0px 3px؛ المحاذاة الرأسية: أعلى؛ المساحة البيضاء: عادي؛ التفاف الكلمات: كلمة فاصلة؛ التفاف استراتيجية: 4;>3 ملheat lamp< td style='border-bottom:1px solid #000000;border-right:1px solid #000000;font-size:12pt;overflow:hidden;padding:0px 3px;vertical-align:top;white-space:normal;word-wrap:break-word;wrap-strategy:4;'>Fluker27002< td style='border-bottom: 1px solid #000000؛ border-right: 1px solid #000000؛ حجم الخط: 12pt؛ الفائض: مخفي؛ الحشوة: 0 بكسل 3 بكسل؛ المحاذاة الرأسية: أعلى؛ المساحة البيضاء: عادي؛ التفاف الكلمة: كلمة فاصلة؛ التفاف الاستراتيجية: 4؛ مصباح حراري للزواحف > 5.5 بوصة مع مشبك ومفتاح0.9٪ محلول ملحي معقم< td style='border-bottom:1px solid #000000;border-right:1px solid #000000;font-size:12pt;overflow:hidden;padding:0px 3px;vertical-align:top;white-space:normal;word-wrap:break-word;wrap-strategy:4;'>Pfizer00409-4888-10< td style='border-bottom: 1px solid #000000;border-right:1px solid #000000;font-size:12pt;overflow:hidden;padding:0px 3px;vertical-align:top;white-space:normal;word-wrap:break-word;wrap-strategy:4;'>0.9٪ كلوريد الصوديوم للحقن، 10 ملChux Priment Sheets< td style='border-bottom: 1px solid #000000;border-right:1px solid #000000;font-size:12pt;overflow:hidden;padding:0px 3px;vertical-align:top;white-space:normal;word-wrap:break-word;wrap-strategy:4;'>ThermoFisher Scientific1420662< td style='border-bottom: 1px solid #000000؛ border-right: 1px solid #000000؛ font-size: 12pt؛ overflow: hidden؛ boardding: 0px 3px؛ vertical-align: top؛ white-space: normal؛ word-wrap: break-word؛ wrap-strategy: 4;'> حشوة ماصة يمكن التخلص منهاIris Pencil< td style = 'border-bottom: 1px solid # 000000 ؛ border-right: 1px solid # 000000 ؛ حجم الخط: 12pt ؛ الفائض : مخفي ؛ الحشوة: 0 بكسل 3 بكسل ؛ المحاذاة الرأسية: أعلى ؛ المساحة البيضاء: عادي ؛ التفاف الكلمات: كلمة فاصلة ؛ التفاف الإستراتيجية : 4 ؛ '> العالمية للأدوات الدقيقة < نمط td = 'border-bottom: 1px solid # 000000 ؛ border-right: 1px solid # 000000 ؛ حجم الخط: 12pt ؛ الفائض: مخفي ؛ الحشوة: 0 بكسل 3 بكسل ؛ المحاذاة الرأسية: أعلى ؛ المساحة البيضاء: عادي ؛ التفاف الكلمات: كلمة فاصلة ؛ استراتيجية التفاف: 4 ؛ '> 503708-12< td style='border-bottom: 1px solid #000000;border-right:1px solid #000000;font-size:12pt;overflow:hidden;padding:0px 3px;vertical-align:top;white-space:normal;word-wrap:break-word;wrap-strategy:4;'>11.5cm, straight, 12-pack Surgical Tape3M Durapore1538-0< td style='border-bottom: 1px solid #000000;border-right:1px solid #000000;font-size:12pt;overflow:hidden;boardding:0px 3px;vertical-align:top;white-space:normal;word-wrap:break-word;wrap-strategy:4;'>1/2" X10 yard roll, silk, hypoallgenic Mouse PET bedin house < نمط TD = 'الحد السفلي: 1 بكسل صلب # 000000 ؛ الحدود اليسار: 1 بكسل صلب # 000000 ؛ الحدود اليمنى: 1 بكسل صلب # 000000 ؛ حجم الخط: 12pt ؛ الفائض: مخفي ؛ الحشوة: 0 بكسل 3 بكسل ؛ المحاذاة الرأسية: أعلى ؛ المساحة البيضاء: عادي ؛ التفاف الكلمات: كلمة فاصلة ؛ استراتيجية التفاف: 4 ؛ > أخف وزنا< td style='border-bottom:1px solid #000000;border-right:1px solid #000000;font-size:12pt;overflow:hidden;padding:0px 3px;vertical-align:top;white-space:normal;word-wrap:break-word;wrap-strategy:4;'>BicUDP2WMDC Isoflurane Henry Schein < td style='border-bottom: 1px solid #000000؛ border-right: 1px solid #000000؛ حجم الخط: 12pt؛ overflow: مخفي؛ الحشوة: 0px 3px؛ المحاذاة الرأسية: أعلى؛'>NDC 11695-6776-2Isothesia ، مخدر بالاستنشاق ،
250 مل Oxygen Praxiar UN1072 the Pressed Gas Eye Lubricatcant Watson Rugby PV926977< td style='border-bottom: 1px solid #000000;border-right:1px solid #000000;font-size:12pt;overflow:hidden;padding:0px 3px;vertical-align:top;'> Artificial Tears Lubricatcant Eye
مرهم, 1/8 أوقية